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L’oïdium de la vigne
Erysiphe necator
Claire NEEMA
Protection des Plantes et Pathologie Végétale
Montpellier supagro
Vue synoptique de la classification des champignons
Oomycota
hyphes coenocytiques
paroi cellulosique
Production de zoospores
Ascomycota
Ascospores
Basidiomycota
Basidiospores
Pas de phase mobile
Phase trophique
avec paroi
Organismes fongiformes Champignons vrais
Plasmodiophoromycota
Plasmode coenocytique
production de zoospores
hyphes cloisonnés
paroi chitineuse
Chytridiomycota
Hyphes coenocytiques
paroi chitineuse
Zygomycota
Hyphes coenocytiques
paroi chitineuse
Phase trophique
sans paroi
Adapté de P. Lepoivre
2 flagelles 1 flagelle
2 flagelles
3
Eumycota - Ascomycota
~ 35 000 espèces (>3 000 genres)
ordre le plus important dans les Eumycota
comprend l'ex phylum des Deuteromycota
Ecologie
50 % des espèces sont mutualistes (lichens, mycorhizes)
Milieux marins, aquatiques et terrestres
Beaucoup de saprophytes, parasites (plantes, animaux, insectes)
Caractéristiques de la classe
Thalle unicellulaire (levures) ou filamenteux cloisonné
Organismes haploïdes
Reproduction sexuée asques et ascospores
asexuée conidies
Asques nus ou contenus dans un ascocarpe
Ascocarpes et classification des Ascomycètes
Asques nus Asques agrégés et contenus
dans un ascocarpe clos
Cléistothèce Périthèce Apothécie
Asques agrégés dans un
ascocarpe en forme de coupe
Archiascomycètes
Ascomycètes primitifs
8 à n ascospores/asques
ex: Agent des cloques
Pyrénomycètes
Ascomycètes évolués
8 ascospores/asques
ex: Oïdiums, tavelures…
Discomycètes
Ascomycètes évolués
8 ascospores/asques
ex: Sclérotinioses…
5
Ecologie des champignons
Relations trophiques entre plantes et champignons phytopathogènes
Biotrophes (parasite obligatoire) – se développent en association étroite avec des
cellules vivantes. Des hyphes spécialisés (haustorium) pénètrent la paroi cellulaire
et induisent l'invagination de la membrane cellulaire
ex: agents des oïdium, rouilles des céréales, agents de mildiou
Néctrophes – produisent des enzymes ou toxines pour tuer les cellules de la plante
hôte en avant de la zone d'infection. Les hyphes se développent entre les cellules
mortes.
ex: agent de la pourriture grise B. cinerea…
Hémibiotrophes – se développent initialement en biotrophe en association avec
des cellules vivantes mais deviennent plus ou moins rapidement nécrotrophes.
ex: Agent de la nécrose du collet des crucifères, d'anthracnoses…
Maladies causées par les Ascomycota (et les Deuteromycota)
Agents d'oïdiums
Causée par des champignons de l'ordre des Erysiphales (Pyrénomycètes)
o Parasites obligatoires biotrophes
o Feutrage blanc sur les feuilles, bourgeons, fruits
21 genres, 440 espèces infectant > 40,000 espèces de plantes (dicotylédones surtout)
Souvent spécificité d’hôte étroite (qqes espèces polyphages)
Sporulation abondante (> 30 000 conidies à partir d’un symptôme)
Cléistothèce Oïdium de la vigne – Uncinula necator
Colonisation des tissus végétaux : compartiments cellulaires occupés
Infection des cellules épidermiques
Les champignons qui causent les maladies tu type « blanc » ou « oïdium » se multiplient à la
surface de la plante et envoient des haustoria dans les cellules épidermiques.
Sphaerotheca pannosa sur rosier (d ’après http://www.phyto.qc.ca/)
Infection de blé par l'oïdium du blé
Nutrition
utilise les cellules épidermiques
9
Cycle asexué de Erysiphe necator
Croissance mycélium
+ haustoria
Adhésion conidie
Pied d’ancrage
Sporulation
(conidiophores)
Cycle parasitaire d’un champignon phytopathogène
Inoculum primaire Infection primaire
Inoculum
Infection
Dispersion
Dispersion
Conservation
Epidémie = Conservation de l'inoculum + Infection + Dispersion
Cycle infectieux de base d'un champignon pathogène
Dépôt de spores sur
les tissus
Pénétration des tubes
germinatifs
Colonisation des
tissus
Premier symptômes
Sporulation, dispersion
PO
LL
UT
ION
L
AT
EN
CE
P
ER
IOD
E
INF
EC
TIE
US
E
Inoculum
Infection
Cycle biologique Oïdium de la vigne – Uncinula necator
source: www.syngenta-agro.fr
Dispersion
par le vent
Cléistothèce
Maturation des cléistothèces.
Débourrement.
Symptômes de "drapeaux".
Contaminations
primaires
Conidiophores
Développement sur
tous les organes verts.
Contaminations secondaires
(oïdies)
Dispersion
Cléistothèce (organe de conservation)
Cycle biologique de Uncinula necator sur vigne.
Infection des bourgeons
néoformés. Entrée en latence du mycélium
Reproduction sexuée.
Mycélium latent dans les bourgeons
Cléistothèces sur l'écorce
retard maturation des baies baies avec pellicule éclatée
Ascospores
Oïdies
Le cycle biologique de l’oïdium de la vigne
La température est le facteur majeur :
sur croissance du parasite optimum = 22 à 25°C (Tmin = 6°C et Tmax = 30-35°C)
L’eau (état liquide et vapeur)
l’eau liquide - germination
Pluies - éjection des ascospores (conta. primaires) - dispersion des conidies (conta. secondaires)
l’humidité (>75%) germination, développement, sporulation.
Le vent - dispersion des spores mais sur Hygrométrie
La lumière directe (U.V.B.) 1ères taches, face inférieure des feuilles,
développement à l’intérieur de la végétation, (mais développement en face sup. en fin d’été !?)
Les facteurs du climat
Cycle parasitaire
Incubation
latence
Temps
Proportion
de tissu
malade
Dispersion
Infection
Inoculum primaire
Résistance ontogénique
-La variation due aux conditions climatiques sur le déroulement de l’épidémie
est principalement due aux variations sur la croissance de la plante plutôt que
l’effet de la température sur l’agent pathogène.
- La sévérité de la maladie est corrélée avec l’émergence précoce des feuilles
le développement de rameaux secondaires et le nombre de feuilles infectées
à la floraison
- Influence de la vigueur dépend de la pression d’inoculum
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