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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDACTICA QUIMICA, PRIMER AÑO
QUÍMICA 2018
SEMANAS 14 A 31
Nombre: _____________________________________________________
Código Académico _____________________________________________
Docente: ___________________________ Día y hora de Clase:__________
MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO
2
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDACTICA QUIMICA, PRIMER AÑO
SEMANA No. 14 PROYECTO MEDIO AMBIENTE 2018
MANEJO ADECUADO DE DESECHOS SÓLIDOS
Elaborado por: Licda. Lilian Guzmán, Lic. Raúl Hernández, Licda. Corina Marroquín, Licda. Vivian
Sánchez, Licda. Sofía Tobías, Licda. Isabel Fratti de Del Cid, Licda. Evelyn Rodas de Soto, Licda.
Lucrecia Casasola de Leiva, Licda. Bárbara Toledo, Lic. Fernando Andrade y Lic. Pedro Jayes.
FECHA DE ENTREGA: SEMANA DEL 23 AL 27 DE JULIO DE 2018
I. INTRODUCCIÓN
Los desechos sólidos conocidos comúnmente como basura son generados diariamente
en toda población. En nuestra ciudad se incrementa continuamente el volumen de
desechos del vertedero municipal de la zona 3 de la capital, lo que representa una grave
amenaza a la salud de la población y a la contaminación del medio ambiente. Se requiere
de la implementación de medidas urgentes con el fin de educar e instruir a la comunidad
acerca de su manejo y disposición adecuados. Esto contribuirá a mejorar el proceso de
recolección, separación y clasificación desde el origen, optimizando el aprovechamiento
de materiales reciclables y reduciendo las cantidades de desechos previo a su disposición
final.
Un aspecto fundamental para mejorar el proceso de disposición es la adecuada
separación de los diferentes tipos de desechos y utilización correcta de los contenedores
o basureros que los clasifican según el código de colores o simbología.
Este proyecto pretende concientizar, incentivar y fomentar el hábito del manejo adecuado
de los desechos sólidos en los estudiantes de primer año del curso de Química de la
Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de San Carlos de Guatemala así como
difusión de esta información en la comunidad para motivar su involucramiento en este
proceso.
II. PROBLEMA A RESOLVER
Descripción
Sabiendo que el ser humano contamina el medio ambiente, el futuro Médico y Cirujano
debe desarrollar diferentes actividades para comprender y concientizar a la comunidad
acerca de los efectos de los contaminantes en la salud.
3
Planteamiento
Es necesario explicar los efectos en la salud de los contaminantes ambientales.
III. COMPETENCIA
Explica los efectos de los contaminantes ambientales en la salud y el medio ambiente
para concientizar a diferentes sectores de la comunidad.
Competencia específica
Concientizar sobre la necesidad de identificar los residuos sólidos para clasificarlos y
desecharlos adecuadamente.
IV. CRITERIOS DE DESEMPEÑO
SABER HACER
1. Identifica los diferentes tipos de desechos sólidos.
2. Clasifica los desechos sólidos de acuerdo a su tipo para descartarlos en los
contenedores de basura correspondientes.
3. Presentar una propuesta sugiriendo la mejor forma de descartar los desechos sólidos.
4. Socializa con distintos grupos de la comunidad la información recopilada sobre la
contaminación ambiental y riesgos a la salud y al ambiente.
5. Elabora un informe final del proyecto educativo con todos los elementos requeridos.
SABER PENSAR
1. Busca información sobre los polímeros sintéticos utilizados en la fabricación de
artículos desechables.
2. Relaciona los efectos tóxicos en el ambiente y la salud causados por los polímeros
sintéticos utilizados en la fabricación de artículos desechables.
3. Conoce los procesos y las instituciones que se encargan del manejo de los desechos
sólidos.
4. Analiza la información obtenida a través de la revisión bibliográfica y encuestas.
SABER SER
1. Reconoce el problema de la contaminación ambiental y riesgos a la salud causada por
los desechos sólidos.
2. Concientiza a diferentes grupos de la población acerca de la importancia de la
clasificación de los desechos sólidos.
3. Valora la importancia de cuidar el medio ambiente.
4. Asume la responsabilidad del cuidado ambiental.
*La Guía para elaborar éste proyecto se obtendrá por separado.
4
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM
UNIDAD DIDÁCTICA DE QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 15
EVALUACION PRÁCTICA
DE LABORATORIO SEMANA 1 a 13
Elaborado por Lic. Fernando Andrade B., Licda. Corina Marroquín O.
I. INTRODUCCION
Esta actividad está diseñada para evaluar habilidades, destrezas y conocimientos adquiridos
durante la realización de las prácticas de laboratorio de las semanas 1 a la 13 del curso.
La prueba se ha diseñado de tal forma que las observaciones, medidas y procedimientos, a
evaluarse, se hagan lo más cercano a las condiciones en las que se llevaron a cabo las
actividades de laboratorio.
II. OBJETIVOS
1. Evaluar las habilidades y destrezas desarrolladas durante las prácticas efectuadas.
2. Identificar el material, equipo y pictogramas usados en los ensayos de laboratorio.
3. Reconocer cambios o manifestaciones que indiquen un cambio químico o reacción. 4. Identificar una mezcla homogénea de una heterogénea. 5. Comprobar el proceso de diálisis realizando pruebas químicas a un dializado. 6. Identificar una solución ácida de una básica utilizando indicadores químicos y papel pH. 7. Identificar un electrolito fuerte, débil y no electrolito. 8. Identificar una solución buffer a través de su capacidad de amortiguar el pH después de
agregar pequeñas cantidades de ácidos o bases. 9. Poner en práctica las normas de seguridad para llevar a cabo los procedimientos de
laboratorio.
III. MATERIALES APORTADOS POR LOS ESTUDIANTES
1. Lapicero 2. 1 o 2 hojas de papel mayordomo 3. 3 o 4 tubos de ensayo limpios y secos (puede usar los de su KIT) 4. Equipo de protección personal
5
IV. PROCEDIMIENTO
1. Al ingresar al laboratorio, el catedrático le asignará unaestación a la cuál usted debe dirigirse. En ella encontrará el temario correspondiente. NO inicie hasta que se le indique.
2. NO puede cambiar el temario NIel lugar asignado con otro estudiante, pues de lo contrario, les será anulada la prueba a los estudiantes involucrados.
3. Debe cerciorarse de colocar en el temario los datos que lo identifican (nombre, código académico, jornada en la que asiste a recibir su clase regularmente, número de salón.)
4. Cada estación está identificada con un color específico. 5. En la estación encontrará el material y equipo para que realice las observaciones,
procedimientos y/o ensayos solicitados. 6. Cada vez que abra un frasco de reactivo debe colocarle el tapón respectivo, NO
intercambie los tapones de un reactivo a otro. 7. Cerciórese de que los reactivos a utilizarse NO presenten turbidez o precipitados. 8. Si por accidente derrama algún reactivo, avísele a su profesor, continúe con el resto del
examen y espere a que el reactivo sea repuesto. 9. Debe dejar el material y equipo en el orden en que lo encontró. 10. Las respuestas deben ser escritas con lapicero y con letra clara y legible en los
espacios asignados. No debe usar hojas adicionales. 11. El material utilizado como papel pH, hisopos, papel mayordomo debe ser desechadoen
el lugar indicado y debe dejar limpia su área de trabajo. 12. Al finalizar debe entregar la hoja del temario con las respuestas a su profesor. 13. Al llevar a cabo los pasos anteriores, debe abandonar el salón. El momento de lavar sus
tubos y guardarlos, se le indicará. Por lo tanto NO debe quedarse en la puerta del salón, corredores o en los lavaderos dentro del laboratorio.
V. RECOMENDACIONES PARA ESTA PRUEBA
1. Estudiar y revisar los instructivos de las prácticas de laboratorio de la semana 1 a la 13, así como los datos, observaciones y resultados de las actividades y ensayos realizados que haya anotado.
2. NO ESTA PERMITIDO INGRESAR LAS PRACTICAS DE LABORATORIO A LA EVALUACIÓN.
3. Presentarse en el día y horario asignado con su bata de laboratorioy equipo de protección personal. La ropa y accesorios de vestir al presentarse a ésta prueba, deben estar de acuerdo con lo establecido en las normas dadas en la semana No.1.
4. Durante la prueba NO puede comunicarse con nadie, ni preguntar a su profesor, así como tampoco puede utilizar ningún aparato electrónico o de comunicación.
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA DE QUIMICA, PRIMER AÑO
PRÁCTICAS DE LABORATORIO 2018
SEMANA 16 PROPIEDADES GENERALES DE LOS COMPUESTOS ORGANICOS
Elaborada por: Licda. Bárbara Jannine Toledo Chaves
I. INTRODUCCIÓN La Química Orgánica es la rama de la química que estudia la composición, propiedades, usos, fuentes e incluso la función que tienen los compuestos orgánicos en las diferentes estructuras biológicas. Se consideran compuestos orgánicos aquellos que poseen al elemento carbono generalmente formando cadenas carbonadas, a las que se halla unido principalmente Hidrógeno, Oxígeno, Nitrógeno. La obtención de éstos compuestos puede ser de origen natural o artificial; dichos compuestos contienen como base enlaces covalentes carbono-carbono. Además puedenforman estructuras lineales, ramificadas y cíclicas. Las propiedades generales de los compuestos orgánicos dependen del tipo de enlace y de los átomos presentes. Las siguientes son características generales de dichos compuestos: a. Son solubles en solventes apolares e insolubles en agua, b. tienen densidad menor que la del agua (<1g/mL), c. tienen bajos puntos de fusión y ebullición, d. son Inflamables, e. no conducen la electricidad, f. a temperatura ambiente: existen en los tres estados físicos
En la práctica se realizaran ensayos, para observar de forma cualitativa y comparativa algunas de las características generales de los compuestos orgánicos e inorgánicos: solubilidad, densidad, punto de fusión, inflamabilidad, combustión y conductividad eléctrica.
II. OBJETIVOS 1. Comparar la solubilidad de compuestos orgánicos e inorgánicos, frente a un solvente
polar y uno no polar. 2. Comparar la densidad de algunos compuestos orgánicos e inorgánicos. 3. Determinar la densidad del aceite vegetal como compuesto orgánico 4. Comparar el punto de fusión de compuestos orgánicos e inorgánicos. 5. Realizar ensayos de inflamabilidad y combustión en compuestos orgánicos. 6. Comparar la conductividad eléctrica en un compuesto orgánico y otro inorgánico.
III. MATERIALES , EQUIPO Y REACTIVOS
a. Balanza, Mecheros de alcohol, b. cápsulas de porcelana .Pisetas con agua c. Aparatos para medir conductividad eléctrica d. Parafina solida rallada e. Gasolina f. Eter dietílico ( solvente no polar)
g. NaNO3 (sólido) h. NaCl (solido) i. NaCl 20% p/v, j. KMnO4 al 0.3% p/v. k. Solución alcohólica de I2( Tintura de yodo)
Material aportado por los estudiantes:
• Kit de laboratorio
• Equipo de protección personal.
• Etanol al 70% (frasco pequeño)*
• Botella pequeña con aceite de girasol, Maíz o canola *
• Fósforos
• 2 espatulitas plásticas (se usaran como espátulas para pesar los sólidos)
*Debe entregarlo al profesor, solo se necesita
1 por todo el grupo de laboratorio.
7
IV. PROCEDIMIENTO 1. SOLUBILIDAD: Los compuestos orgánicos cumplen con la regla general, “lo similar se disuelve en lo similar”, por lo tanto los compuestos polares se disuelven en solventes polares y los compuestos no polares se disuelven en solventes no polares. 1.1 Solubilidad según polaridad:
a. En una gradilla coloque 4 tubos de ensayo limpios y secos. b. Identifíquelos con los números 1, 2, 3 y 4. c. Proceda según el siguiente cuadro.
Tu
bo
Coloque
1 ml de
Solvente
AGREGUE
Agite, deje
reposar
1 min
Soluble /
insoluble
Tipo de
solvente
POLAR /
NO POLAR
Tipo de
solvente
ORGÁNICO/
INORGÁNICO
Tipo de
soluto
POLAR
NO
POLAR
IÓNICO
Tipo de
soluto:
ORGÁNICO/
INORGÁNICO
1
H2O
1 pizca de
NaCl
AGITE
2
H2O
10 GOTAS
de gasolina
AGITE
3
Eterdietílico
1 pizca de
NaCl
AGITE
4
Eterdietílico
10 GOTAS
de gasolina
AGITE
No llenar (debido a que no forman soluciones no se refiere a soluto y solvente) 1.2 Distribución de sustancias de diferente polaridad en una mezcla
a. Coloque dos tubos de ensayo en una gradilla y márquelos # 1 y # 2 b. Proceda de acuerdo al siguiente cuadro:
Insoluble Soluble
8
TU
BO
Coloque,
agite, deje
reposar
1 min.
El agua
ocupa la
parte
superior o
inferior?
Es la fase
polar o
apolar?
El éter
ocupa la
parte
superior o
inferior?
Es la fase
polar o
apolar?
Añada ,
agite
Deje
reposar
1 minuto
Se
distribuyó
en la fase
Polar o
no polar
Añada,agite
Deje
reposar
1minuto
Se
distribuyó
en la fase
Polar o
no polar
1
4mL de
H2O
+
2mL de
éter
2 gotas
solución
tintura
de I2
2gotas
KMnO4
0.3 % p/v
2
5 gotas
aceite
¼ cdta
de sal
Nota: En las células, se delimitan dos fases: La bicapa lipídica (no polar) de la membrana y el citoplasma acuoso (polar). El desplazamiento hacia dentro o afuera (medicamentos, biomoléculas) depende de la polaridad de las sustancias, respecto a las capas y barreras biológicas.Esto también se aplica a la barrera hemato-encefálica.
2. DENSIDAD: Los compuestos orgánicos presentan densidades generalmente menores que los compuestos inorgánicos. Por eso, cuando uno de los componentes es el agua flotan u ocupan la parte superior en una mezcla. Si se observa esto, se consideran menos densos que el agua (densidad < de 1g/ml), pero si se van al fondo u ocupan la parte inferior se consideran más densos que el agua (densidad > 1g/mL).
2.1 Comparación de la densidad de algunos compuestos orgánicos e inorgánicos
a. Coloque en la gradillados tubos de ensayo y márquelos # 1 y # 2 b. Proceda de acuerdo al siguiente cuadro
TU
BO
Tu
bo
COLOQUE
COMPUESTO
ORGÁNICO
AGREGUE
COMPUESTO
INORGÁNICO
2 mL
(medidos con
probeta)
¿QUIEN PRESENTA
MENOR DENSIDAD?
Compuesto Orgánico
ò Inorgánico
DENSIDAD TEÓRICA
(Investíguela)
1 1 mL de Aceite
de girasol
NaCl al 20 % p/v Aceite de girasol:
NaCl 20%p/v:
2 0.1 g de
Parafina sólida
NaClal 20% p/v Parafina sólida:
NaCl 20% p/v:
9
2.2 Determinación de la densidad del aceite vegetal
a. Pese una probeta de 10mL limpia, seca y vacía. (A)____________g b. Quite la probeta de la balanza y agréguele exactamente 5mL de aceite. c. Pese nuevamente la probeta (B) _____________g d. Reste el peso B-A ____________g e. Calcule la densidad (d=m/v) f. Complete el cuadro
Densidad determinada del aceite utilizado
Densidad teórica según el aceite utilizado (maíz, girasol, canola)
Densidad teórica del agua
Densidad del aceite en
comparación a la del agua. MAYOR O MENOR
3. PUNTO DE FUSION Muchos compuestos orgánicos son moléculas no polares con atracciones débiles entre moléculas por lo que generalmente presentan puntos de fusión más bajos que el de los compuestos inorgánicos.
3.1 Comparación entre el Punto de Fusión de un Compuesto Orgánico y uno Inorgánico
a. Utilice dos tubos de ensayo resistentes al calor y márquelos #1 y# 2. b. Continúe el procedimiento según el siguiente cuadro y anote lasobservaciones.
Tubo
No.
Colóquele: A-Caliente con el mechero los dos tubos al mismo
tiempo.
B- ¿Qué sustancia se funde primero?_________
C-Deje de calentar el tubo que contiene la sustancia que
se fundió primero.
D-Caliente por un minuto más el otro tubo y si el
compuesto no se funde asuma que tiene un punto de
fusión mayor. Llene el cuadro siguiente.
1 0.1 g de
parafina sólida
2 0.1 g de
NaNO3
Sustancia
Estado físico inmediatamente
después del calentamiento
Punto de fusión comparativo
mayor / menor
Punto de fusión teórico ( ° C )
(Investíguelo)
Clasifique la sustancia como
inorgánica / orgánica
Parafina sólida
NaNO3
10
4.INFLAMABILIDAD Y COMBUSTIÓN
Un material inflamable en presencia de oxígeno puede experimentar combustión. Esta es una reacción química de oxidación, en la que se desprende energía, en forma de calor y luz, manifestándose visualmente como fuego o llamas. Los compuestos orgánicos generalmente experimentan combustión y los inorgánicos generalmente no.
a. Utilice 3 cápsulas de porcelanas limpias y secas. b. Identifíquelas como 1, 2, 3 c. Continúe el procedimiento de acuerdo al siguiente cuadro:
Cáp
su
la
Agregue 15 gotas de
Encie
nd
a u
n f
osfo
ro y
acerq
ue
la lla
ma
a la c
ápsu
la.
¡PR
EC
AU
CIÓ
N!
Experimenta combustión
Si / No
Color de la llama
Desprende humo
Si / No
Deja residuo
carbonoso Si / No
Clasifíquela como Combustión completa /
incompleta.
1 Gasolina (orgánico)
2 Alcohol (orgánico)
3 ½ cdta de sal (NaCl)
*Combustión completa: llama azul y no deja residuo carbonoso ni desprende humo.
Combustión incompleta: llama amarilla-naranja, desprende humo, deja residuo carbonoso.
5. CONDUCTIVIDAD ELECTRICA: La mayoría de los compuestos orgánicos no son conductores de la electricidad debido a que no se disocian, en tanto los inorgánicos sí. a. Identifique dos beacker limpios. Marque 1 y 2. b. Al beacker No.1 colóquele 50-60 mL de alcohol al 70% v/v. c. Al No.2 colóquele 50-60 mL de agua y agréguele 1/2 cucharadita
de nitrato de sodio (NaNO3), agite hasta disolver. d. Conecte e introduzca las terminales del aparato de conductividad eléctrica dentro
del beacker No.1, observe y anote. e. Desconecte el aparato de conductividad, luego lave y seque las terminales.
¡Cuidado no las toque mientras están conectadas a la electricidad! f. Repita el procedimiento de los incisos d y e en el beacker No. 2.
Beacker Sustancia CONDUCE
ELECTRICIDAD SI / NO
Electrolito / No electrolito
Orgánico / inorgánico
1 Alcohol
2 NaNO3
Escriba la ecuación de Ionización del compuesto que se comportó como electrolito. Encierre con color rojo, el catión y en azul el anión generado.
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V-ANALISIS DE RESULTADOS VI- CONCLUSIONES VII-CUESTIONARIO 1- Enbase a los documentos usados en la práctica de la primera semana: “Lista
desustancias químicas” y “Accidentes en el laboratorio químico su prevención y atención”: Complete el siguiente cuadro. Sustancia Letra de
referencia
Significado
Primeros Auxilios
(escriba 3)
Prevención
( escriba 3)
Eterdietílico
Nitrato de
sodio
NaNO3
2- Explique por qué razón el punto de fusión y ebullición de los compuestos inorgánicos es
más alto que el de los orgánicos 3- La densidad de los compuestos tiene que ver con su solubilidad? SI / NO, EXPLIQUE 4- Entre uno de los componentes de la gasolina está el n-octano. Escriba la ecuación de la
combustión completa de éste componente.
5- Un niño de 2 años tomo accidentalmente Queroseno que su papa tenía en el garaje. Se
ingresa al hospital por problemas respiratorios. Por el examen físico y rayos X de tórax, se le diagnostica. “Neumonía bilateral por aspiración de Hidrocarburos” Investigue y enumere: Componentes del Queroseno Dos síntomas principales de ésta intoxicación.
VIII-BIBLIOGRAFÍA
1. Manual de prácticas de Laboratorio 2017 “Semana 16 Propiedades Generales de los
Compuestos Orgánicos”. Unidad didáctica Química, Facultad de Ciencias Médicas USAC.
2. Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta edición.
Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
12
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDACTICA DE QUIMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 17 PROPIEDADES QUÍMICAS DE HIDROCARBUROS
Elaborado por: Licda. Corina Marroquín Orellana
I. INTRODUCCIÓN Los hidrocarburos insaturados constituyen la familia de alquenos y alquinos, reciben su nombre por su capacidad de adicionar hidrógenos, por medio de reacciones de adición. Los alcanos y aromáticos, son menos reactivos y experimentan reacciones de sustitución, a veces con necesidad de aplicar calor ó LUV y usar catalíticos especiales.
En el laboratorio se realizarán las reacciones químicas de Halogenación, Test de Baeyer (oxidación), pruebas con H2SO4 en alcanos, alquenos y aromáticos, alquilación y nitración de un hidrocarburo aromático, se observarán las manifestaciones de cada reacción, el diferente grado de reactividad, lo cual ayudará a diferenciarlos entre ellos. II. OBJETIVOS
1. Identificar a alcanos, alquenos e hidrocarburos aromáticos a través de la observación de las manifestaciones que presentan en las reacciones químicas realizadas en ésta práctica.
2. Llevar a cabo reacciones que identifican a los hidrocarburos por su grado de reactividad.
3. Representar las reacciones realizadas en la práctica a través de las ecuaciones químicas respectivas.
III. MATERIAL Y REACTIVOS
1. Alcano (hexano) 2. Alqueno (2-hexeno) 3. Aromático (benceno) 4. Solución de I2 5. KMnO4 al 2% m/v. 6. H2SO4 concentrado
7.AlCl3 8.Cloroformo (CHCl3) 9.HNO3 concentrado Gradillas, estufa, olla para baño de María
MATERIALES APORTADOS POR
LOS ESTUDIANTES
- Kit de laboratorio
- 1 Paletita para agitar
café de McDonald´s
- Equipo de protección
personal.
13
IV. PROCEDIMIENTO
A. HALOGENACIÓN
Consiste en la sustitución de uno o más hidrógenos de un alcano o aromático por halógenos, o bien la adición de halógenos a un doble o triple enlace. En ésta práctica se usará I2, (yodo diatómico). El alqueno reaccionará en tanto que el alcano y el Aromático, no reaccionaran debido a que no proporcionaremos las condiciones necesarias para ésta reacción.
Ecuación general: el halógeno está representado por X = Cl2, Br2, I2, F2
Numere tres tubos, deben estar limpios y secos. Proceda según el cuadro.
TUBO COLOQUE
1 ml
AGREGUE UNA A UNA 3-4 GOTAS
DE SOLUCIÓN DE IODO,
AGITANDO DESPUÉS DE CADA
GOTA. OBSERVE
Manifestación (Decoloración)
SI / NO
Resultado ( + ) / ( - )
Elabore la ecuación de la reacción positiva
1 ALCANO (Hexano)
2 ALQUENO (2-Hexeno)
3 AROMÁTICO
(Benceno)
NOTA: Una decoloración (café a incoloro) indica que el yodo se adicionó a los carbonos dando un resultado positivo. La permanencia del color del reactivo I2 (café) indica resultado negativo.
Alqueno
con doble
enlace
Alqueno
sin doble
enlace
enlace
14
B. TEST DE BAEYER (OXIDACIÓN CON KMnO4 en frio)
El doble enlace, presente en el alqueno,se oxida, formando un glicol y obteniéndose entre otros productos MnO2, se manifiesta a través de un precipitado café. Los alcanos y aromáticos, dan la reacción negativa (permanece el color violeta del reactivo).
Ecuación general (no balanceada)
Siga el procedimiento indicado en el cuadro:
TU
BO
COLOQUE 1 ml
AG
RE
GU
E
2G
OT
AS
, D
E K
Mn
O4
al 2
%
m/v
AG
ITE
Y O
BS
ER
VE
MANIFESTACIÓN: (Precipitado café)
SI / NO
RESULTADO ( + ) / ( - )
Tipo de reacción
en caso de ser
positiva: adición /
sustitución
Elabore la ecuación de la reacción positiva
1 Alcano
(hexano)
2 Alqueno
( 2-hexeno)
3 Aromático (benceno)
NOTA: La manifestación del resultado positivo es un precipitado café. La permanencia del color púrpura, indica que el resultado es negativo. La formación de dos fases no significa reacción positiva. Las dos fases se deben a que el hidrocarburo es no polar y la solución de KMnO4 es polar.
C. ADICION DE H2SO4 CONCENTRADO
1. Con el alqueno: El H2SO4se adiciona al doble enlace dando los sulfatos ácidos de alquilo, la reacción se manifiesta con una coloración naranja-café (+).
2. Con el aromático (Benceno): se sustituye un hidrógeno por el grupo sulfónico. (–HSO3). Obteniéndose ácido bencensulfónico y como subproducto agua la reacción se manifiesta con una turbidez (+).
MnO2+ KOH + H2O
Precipitado café
15
Con el alcano, NO reacciona. Ecuaciones generales: a) Alqueno:
Sulfato ácido de alquilo (coloración naranja-café)
b) Benceno:
Siga el procedimiento indicado en el cuadro:
TU
BO
COLOQUE 1 ml
AG
RE
GU
E
5
GO
TA
S
DE
H2S
O4
co
nc
en
tra
do
,PR
EC
AU
CIÓ
N ,
el
ác
ido
pu
ed
e
ca
us
ar
qu
em
ad
ura
s. A
GIT
E Y
OB
SE
RV
E
MANIFESTACIÓN: (Color
anaranjado-café = alqueno. Turbidez
= aromático)
RESULTADO ( + ) / ( - )
Tipo de reacción en caso de ser
positiva: adición /
sustitución
Escriba la ecuación de la reacción positiva
1 Alcano
(hexano)
2 Alqueno
( 2-hexeno)
3 Aromático (benceno)
Recuerde que la formación de dos fases no indica reacción positiva.
D. ALQUILACIÓN (REACCIÓN DE FRIEDEL CRAFTS):
En la alquilación un grupo alquilo (R) sustituye a un hidrógeno del anillo
bencénico usando como catalizador, cloruro de aluminio anhidro (AlCl3).
Ecuación general.
+ RX + + HX
H AlCl3 anhidro
R
16
Siga el procedimiento indicado en el cuadro. Los tubos deben estar secos.
TUBO
COLOQUE 5
GOTAS DE:
Ag
reg
ar
15
go
tas d
e C
HC
l 3
a c
/un
o.
ME
ZC
LE
BIE
N.
Inc
lin
e
c/t
ub
o p
ara
hu
me
dec
er
su
s
pa
red
es
co
n e
l c
loro
form
o
Ag
reg
ar
un
a p
eq
ueñ
a
can
tid
ad
de
AlC
l 3an
hid
roco
n la p
ale
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de M
cD
on
als
a c
/tu
bo
po
r
la p
are
d h
um
ed
ecid
a T
AP
E
EL
tu
bo
.
MANIFESTACIÓN*
REACCIÓN
(+/ -)
1 Alcano
2 Aromático
*La manifestación de la reacción positiva es que las partículas del AlCl3impregnadas en la pared
del tubo de ensayo, adquieran coloración rojiza.
E. NITRACION En la nitración un grupo nitro (-NO2) sustituye a un hidrógeno del anillo
bencénico, requiriendo como catalítico al H2SO4. La reacción debe llevarse a cabo
a una temperatura de 50°-60° C.
Siga el procedimiento indicado en el cuadro:
TUBO COLOQUE1ml
AGREGAR
Resbalado por la pared del
tubo 10 gotas de HNO3 y
5 gotas H2SO4
conc.
PRECAUCION
AMBOS ACIDOS PUEDEN CAUSAR
QUEMADURAS
(Agitar suavemente)
Coloque en Baño
de María a 50-
60°C por 5 min.
Perciba el olor.
NO
DIRECTAMENTE.
Lleve los vapores
hacia su nariz
abanicándolos
con la mano.
MANIFESTACIÓN* REACCIÓN (+ / -)
1 ALCANO
2 AROMÁTICO
*Color amarillo y olor característico
+ HNO3 + H2O
H H2SO4
50°- 60°c
NO2
17
V. ANALISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO
1- Complete el siguiente cuadro
Reacción entre: Escriba la ecuación Cuál sería la
manifestación
3-etil-2-hepteno + Cl2
3-hexeno + KMnO4
2-buteno + H2SO4
2. ¿Qué tipo de reacción lleva a cabo el procedimiento de Halogenación de
alquenos ________________________________________________________
3 ¿Qué tipo de reacción es el test de Baeyer___________________________
4. La reacción de alquilación también se llama:________________________
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDACTICA QUIMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 18 IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA DESCONOCIDA No.1
Elaborado por: Licda. Lucrecia Casasola de Leiva
I. INTRODUCCION
La resolución de problemas, es el quehacer diario del profesional de las ciencias médicas,
para ello debe seguir pasos lógicos, ordenados y coherentes, basados en principios
científicos con apoyo tecnológico. Siguiendo esos pasos el Médico podrá diagnosticar y
dar el tratamiento adecuado a las patologías que presenten sus pacientes.
En esta práctica, Muestra Desconocida No.1, siguiendo los pasos lógicos y ordenados de
la marcha analítica, deberá identificar el Hidrocarburo (alcano, alqueno, aromático)
presente en su muestra. Para esto tiene como referencia las observaciones y anotaciones
de las reacciones y ensayos realizados en las prácticas anteriores por lo que al utilizar los
fundamentos teóricos y la interpretación adecuada de los resultados obtenidos logrará
identificar exitosamente la muestra desconocida que se le ha asignado. El reporte o
informe que presentará a su profesor será la evidencia del trabajo realizado.
II. OBJETIVOS
1. Seguir una marcha analítica para la identificación de una muestra desconocida.
2. Retroalimentar los conocimientos adquiridos en prácticas anteriores.
3. Establecer la importancia de las propiedades químicas en la identificación de una
muestra.
4. Identificar en una muestra desconocida, por medio de reacciones químicas, uno de los
siguientes Hidrocarburos: Saturado (alcano), Insaturado (alqueno) o aromático.
REACTIVOS Y MATERIALES 1. KMnO4 al 2% p/v
2. H2SO4 conc.
3. Gradilla para tubos de ensayo
Material aportado por los estudiantes
1. 3 tubos de ensayo 2. Pipeta de transferencia de 3ml 3. Marcador permanente de punta fina 4. Unas hojas de papel mayordomo
5. EQUIPO DE PROTECCIÓN PERSONAL
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PROCEDIMIENTO
1. El catedrático le proporcionará en un tubo de ensayo una muestra desconocida que
deberá identificar correctamente, este puede contener cualquier Hidrocarburo
estudiado previamente: hidrocarburo saturado, hidrocarburo insaturado, hidrocarburo
aromático.
2. Anote todos sus datos y los de la muestra que se le solicitan en la parte superior de la
hoja del reporte.
3. Separe la muestra en tres tubos de ensayo. Dos tubos serán para hacer las diferentes
reacciones y el tercero por si tiene que repetir.
4. Siga la dirección que le indica la marcha analítica. El primer resultado le indicará las
reacciones que debe realizar hasta llegar a identificar el hidrocarburo de su muestra.
5. Anote en la hoja de reporte que se le entregará sus resultados a lapicero, indicando
las reacciones realizadas y el hidrocarburo identificado. No tache ni utilice corrector.
6. Entregue el reporte a su profesor en el tiempo que él establezca.
RECOMENDACIONES PARA ESTA PRUEBA
1. La cristalería y material a utilizarse debe estar limpio y seco. Identifique sus tubos con
marcador permanente de punta fina para evitar que se confundan.
2. Cada reacción debe realizarla en diferente tubo y con muestra pura. NUNCA DEBE
REALIZAR DOS O MAS REACCIONES EN UN MISMO TUBO.
3. Su profesor le dará MUESTRA, UNA SOLA VEZ.
4. DEBE ESTUDIAR LAS PRÁCTICAS DE LABORATORIO anteriores para poder realizar
las reacciones químicas que le indique la marcha analítica.
5. Realice solo las reacciones químicas necesarias que le indica su marcha para identificar
la muestra.
6. RESPONDIENDA ÚNICAMENTElos incisos que correspondan a las pruebas que efectuó
para lograr identificar su muestra.
7. Una vez usted recibe su muestra NO puede abandonar el salón hasta que entregue su
reporte.
8. Esta marcha analítica es un EXAMEN PRACTICO,NO DEBE CONSULTAR CON NADIE.
9. Su área de trabajo debe quedar limpio y el material utilizado en su lugar después de
realizar la prueba.
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NOTA: SEPARE SU MUESTRA EN TRES TUBOS DE ENSAYO. CADA REACCIÓN SE REALIZA EN TUBO DIFERENTE.
Reacción con
Reacción con
Reacción con
MARCHA ANALITICA
MUESTRA
1 mL
KMnO4 al 2%
(2 gotas)
HIDROCARBURO
INSATURADO
HIDROCARBURO SATURADO Ó AROMATICO
H2SO4 concentrado
(10 gotas)
HIDROCARBURO
INSATURADO
HIDROCARBURO
AROMATICO
HIDROCARBURO
SATURADO
+ -
+ + -
H2SO4 concentrado
(10 gotas)
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MEDICAS-CUM UNIDAD DIDACTICA QUIMICA, PRIMER AÑO
PRACTICAS DE LABORATORIO 2018
SEMANA 19 y 20 PROPIEDADES FÍSICAS Y QUÍMICAS DE ALCOHOLES Y FENOLES
Elaborado por: Licda. Sofía Tobías de Rodríguez
I. INTRODUCCIÓN Los alcoholes son compuestos orgánicos que contienen el grupo hidroxilo (-OH) unido a una cadena carbonada, este grupo influye en las propiedades físicas y químicas, le proporciona polaridad a la molécula, así como la capacidad de formar puentes de Hidrógeno. Los alcoholes se pueden clasificar como primarios, secundarios y terciarios dependiendo a que carbono se encuentre unido el grupo hidroxilo (-OH). Las propiedades químicas de los alcoholes y algunas de las propiedades físicas dependerán si es primario, secundario o terciario. Los alcoholes son subproductos normales de la digestión y se encuentran como parte de estructuras más complejas en membranas y organelos celulares. Cuando el -OH se encuentra unido directamente a un anillo aromático, los compuestos se llaman fenoles y sus propiedades químicas son diferentes. Los éteres son compuestos que contienen el grupo funcional C-O-C y sufren pocas reacciones químicas, no poseen átomos de hidrógeno unidos al oxígeno siendo menos polares y menos solubles que los alcoholes isoméricos. En ésta práctica se observará el pH de alcoholes y solubilidad de alcoholes, fenoles y éteres. Así como las propiedades químicas de alcoholes y fenoles. Los procedimientos que se realizarán permitirán observar las manifestaciones que presentan los alcoholes primarios, secundarios y terciarios, cuando reaccionan con los diferentes reactivos lo que contribuirá a establecer las diferencias entre estos.
II. OBJETIVOS a) Observar las propiedades físicas de alcoholes, éteres y fenoles. b) Clasificar los alcoholes según la posición del grupo funcional. c) Identificar las propiedades químicas de alcoholes y fenoles. d) Analizar las propiedades químicas de alcoholes con las pruebas de Lucas, oxidación
con KMnO4 yde los fenoles con FeCl3. e) Identificar los alcoholes primarios, secundarios y terciarios por medio de sus
manifestaciones con la prueba de Lucas y KMnO4. III. MATERIALES Y REACTIVOS
-Gradilla -Hornilla elèctrica -Baño María -Papel pH -Tubos de ensayo con tapón para observar la solubilidad de : Etanol,1-Propanol,1-Butanol, 2-Butanol, 2-Metil-2-propanol, Fenol, Benceno y Éter di etílico
-Frascos goteros con: Etanol, 2-metil-2-propanol, Fenol, 1-butanol, 2-butanol. -KMnO4 al 3%, -Reactivo de Lucas -Solución de FeCl3
MATERIALES APORTADOS POR LOS
ESTUDIANTES
-Kit de laboratorio -1 tableta de acetaminofén (no aspirina) -Equipo de protección personal
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IV. PROCEDIMIENTO
1 PROPIEDADES FÍSICAS DE ALCOHOLES, FENOLES y ÉTERES.
A. MEDICIÓN DE pH a) Fundamento:
Los alcoholes son ácidos muy débiles por lo que al medirles su pH estos tienden a marcar casi neutro.
b) Procedimiento:
Siga el procedimiento con el siguiente cuadro y anote sus resultados.
Papel pH
Humedecerla con 1 gota de
Color del papel pH*
Valor del pH
según la escala
1 1-Butanol
2 2-Butanol
3 2-Metil-2-propanol
* El color del papel será entre anaranjado y amarillo
B. SOLUBILIDAD Se considera soluble en agua al compuesto cuando forma una sola fase.
a) Fundamento:
• Los alcoholes con estructuras de bajo peso molecular, son solubles en agua debido a la polaridad de la molécula y su capacidad para formar puentes de hidrógeno.
• La solubilidad disminuye al aumentar la longitud de la cadena carbonada.
• La solubilidad también depende de la posición en la cadena del radical –OH ó de la presencia de ramificaciones
• Para alcoholes de igual peso molecular, la solubilidad varía de acuerdo al grado de ramificación de la cadena (lo observará con los alcoholes de 4 átomos de carbono).
• La presencia del radical OH- en un anillo aromático (fenol), lo hace más soluble que el hidrocarburo del cuál deriva (benceno).
• La densidad aumenta a medida que aumenta la cadena carbonada (peso molecular), pero en general es menor que la del agua.
• Los éteres, debido a la ausencia de un hidrógeno unido al oxígeno, no pueden formar puentes de Hidrógeno de forma significativa entre ellos ni con el agua (como lo hacen los alcoholes), por lo que actúan como moléculas individuales y no “asociadas” como los alcoholes respectivos. Por esta razón, los éteres son más volátiles que los alcoholes, y son menos solubles en agua que éstos. Además, los éteres son menos densos que el agua, por lo que “flotan” en ella.
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b) Procedimiento: Observe cada uno de los siguientes tubos (NO LOS DESTAPE)y complete el siguiente cuadro:
2 PROPIEDADES QUÍMICAS DE ALCOHOLES Y FENOLES.
A. IDENTIFICACIÓN DEL FENOL a través de su reacción con el FeCl3.
a) Fundamento En esta reacción el Fe se une a grupos fenóxidos. Los iones fenóxido son aún más reactivos que los fenoles ya que tienen una carga negativa y reaccionan con el Fe+3para formar complejos coloreados. La presencia de una coloración VIOLETA, se interpreta como reacción positiva.
Tubo #
CONTIENE Forma 1 fase SI /NO
Soluble/Insoluble MAS O MENOS
DENSO QUE EL AGUA
2 ml de
H2O en
cada tubo
20 gotas de
1 Etanol
2 1-Propanol
3 1-Butanol
4 2-Metil-2-propanol
5 2-Butanol
6 Fenol
7 Benceno
8 Éter dietílico
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b) Procedimiento: Siga el procedimiento con el siguiente cuadro y anote sus resultados
TUBO AGREGAR 10 GOTAS
AGREGAR 1 GOTA DE
FeCl3
COLORACION RESULTADO
+/-
1 Etanol
2 2-Metil-2-propanol
3 Fenol
B. IDENTIFICACIÓN DE LA PRESENCIA DE FENOL EN ACETAMINOFÉN
Procedimiento:
COLOCAR EN UN VIDRIO
DE RELOJ AGREGAR
Presencia de Fenol en
acetaminofén
SI /NO
1 Tableta de acetaminofen
1 gota de FeCl3
- Espere 1 minuto a que se
humedezca.
- Observe la coloración que se
produce.
C. OXIDACIÓN DE ALCOHOLES con KMnO4,
a) Fundamento
La reacción se interpreta positiva, si aparece un color ó precipitado café debido a la formación de MnO2.
Ecuación no balanceada
b) Procedimiento
Tubo #
Agregar 20 gotas
Agregue 4 gotas KMnO4
3% y AGITE
Resultado + / -
Tiempo para que reaccione
Clasificación del alcohol 1º. 2º. 3º.
1 1-Butanol
2 2-Butanol
3 2-metil- 2-propanol
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D. REACCIÓN DE SUSTITUCIÓN PARA ALCOHOLES (HALOGENACIÓN)
Prueba de Lucas: a) Fundamento:
Se utiliza el Reactivo de Lucas (HClconc. y ZnCl2). Se sustituye el radical –OH del alcohol por el ion Cl- en presencia de ZnCl2 como catalítico, obteniéndose los cloruros de alquilo que son menos solubles que los alcoholes respectivos (estos producen la turbidez). Se interpreta positiva si se obtiene una turbidez en el fondo del tubo ya sea inmediatamente o después de calentar en baño María el tiempo indicado. El alcohol terciario da reacción inmediata, el secundario requiere calor adicional y más tiempo. El alcohol primario su reacción es muy lenta no se observa la turbidez. Para poder observar la turbidez, NOSE DEBE AGITAR LOS TUBOS pues desaparece al menor movimiento.
ECUACIONES GENERALES DE LA REACCION ALCOHOLES TERCIARIOS
ALCOHOLES SECUNDARIOS
ALCOHOLES PRIMARIOS
TURBIDEZ
INMEDIATA
TURBIDEZ 1-3’ LUEGO DE
COLOCAR EN BAÑO
MARÍA
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b) Procedimiento
Tubo #
Agregar 1 ml
Agregar 15 gotas de
REACTIVO DE LUCAS resbaladas
por las paredes del
tubo NO AGITE (y cuide de
no mover los tubos en lo siguiente)
Resultado + / -
(presencia de
turbidez)
Coloque en baño María.
60-70º C (el agua NO
debe estar en ebullición) Espere 3 minutos y
observe los tubos
Resultado + / -
(presencia de
turbidez)
Clasifica ción del alcohol 1º. 2º. 3º.
1 1-Butanol
2 2-Butanol
3 2-metil-
2-propanol
V. ANALISIS DE RESULTADOS VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO
1 ¿Qué prueba de las realizadas en el laboratorio utilizaría para diferenciar entre las siguientes parejas de compuestos?
Compuestos Prueba
¿Quién da la prueba positiva?
Manifestación
a. Fenol y Metanol
b. Etanol y 2-metil-2-butanol
d. Alcohol n-butílico y Alcohol sec-butìlico
2 ¿Cuál de los siguientes alcoholes es soluble en agua?
a. CH3CH2CH2CH2CH2CH2OH
¿Por Qué?
b.
c.
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3 ¿Cuál de los siguientes alcoholes se puede oxidar con KMnO4? ¿Qué compuesto formaría?
a. 2-metil-2-butanol b. Alcohol isopropìlico c. 2-metil-2-hexanol
4 La tableta de acetaminofén fue positiva para presencia de Fenol? SI___ NO___
¿Por qué?
5 En relación al acetaminofén: a. Escriba su estructura y encierre el fenol en un círculo rojo.
b. ¿Qué uso tiene como medicamento?
c. ¿Cómo funciona en el organismo?
VIII. BIBLIOGRAFÍA
• Jayes Reyes, Pedro.Práctica de laboratorio, Propiedades físicas y químicas de
alcoholes y fenoles, Unidad Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas,
Universidad de San Carlos de Guatemala, 2017.
• Timberlake, Karen. Química general, orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4a.
ed. México: Pearson Educación; 2013. 936 p.
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA DE QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICAS DE LABORATORIO 2018
SEMANA 21
IDENTIFICACIÓN DE LA FUNCIÓN CARBONILO Y DIFERENCIACIÓN DE ALDEHÍDOS Y CETONAS
Elaborada por: Lic. Fernando Andrade Barrios
I. INTRODUCCIÓN
La función carboniloes un átomo de carbono unido por doble enlace al oxígeno. Ésta
función se encuentra en dos familias de compuestos: Los aldehídos y cetonas, los cuales
se representan de la siguiente manera:
Los aldehídos poseen la función carbonilo terminal, mientras que las cetonas la tienen
dentro de la cadena, esto les confiere propiedades físicas y químicas similares.
PROPIEDADES FISICAS:
Ambos son compuestos polares con puntos de ebullición más altos que los no polares
(ejemplo hidrocarburos), de peso molecular comparables, pero menores que los alcoholes
correspondientes. Los aldehídos y cetonas de bajo peso molecular son solubles en agua,
esta solubilidad se pierde a medida que aumenta el peso molecular (aumento del número de
carbonos en la cadena) y por lo tanto solo se disuelven en solventes no polares.Los
aldehídos en su mayoría poseen olores desagradables e irritantes.
Una gran variedad de aldehídos y cetonas se han aislado a partir de plantas y animales; de
los cuáles los de peso molecular elevado, tienen olores fragantes o penetrantes.
Generalmente se les conoce por sus nombres comunes, que indican su fuente de origen
o cierta propiedad característica. Algunos aldehídos aromáticos sirven como agentes
saborizantes y otros aromatizantes. Ejemplos:benzaldehído
Grupo Carbonilo
R
Aldehídos
Cetonas
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La mayoría de los aldehídos y cetonas reaccionan con la 2.4 –dinitrofenilhidracina para formar 2,4-dinitrofenilhidrazonas, que son sólidos coloreados insolubles. El color de la 2,4-dinitrofenilhidrazona puede dar un índice del carácter del grupo carbonilo presente en el aldehído o la cetona. Las 2,4-dinitrofenilhidrazonas de grupos carbonilos no conjugados son AMARILLAS. Mientras que las del grupo carbonilo conjugado con un doble enlace carbono-carbono o con un anillo bencénico son ROJAS O ANARANJADAS.
Los aldehídos, reaccionan con agentes oxidantes como el KMnO4 y con el reactivo de Tollens (espejo de Plata) formando los ácidos carboxílicos correspondientes. En ésta práctica se efectuarán las reacciones:
a. Identificación de la función carbonilo con 2,4-DNFH. b. Oxidación con KMnO4. c. Ensayo de Tollens.
Dichas reacciones se llevarán a cabo con acetaldehído, propanona, infusión de canela, esencia de almendras y alcanfor. II. OBJETIVOS 1. Identificar el grupo carbonilo por medio de la reacción con 2,4-DNFH 2. Diferenciar entre los aldehídos y cetonas mediante reacciones de oxidación con KMnO4 y
la prueba de Tollens. 3. Escribir las ecuaciones que representan las reacciones efectuadas. III. MATERIALES Reactivos: 2,4-Dinitrofenilhidrazina KMnO4 al 0.2% AgNO3 al 1% NaOH al 20% NH4OH al 20% Acetaldehído al 2 % Glucosa al 3% Propanona (acetona) Alcohol etílico Ácido Acético Agua destilada Infusión de canela Solución de alcanfor al 50% p/v Extracto de almendra Equipo y Materiales: Estufa eléctrica y Baño de María Gradillas Pipetas de transferencia
*Material aportado por los
estudiantes:
• Kit de laboratorio.
• Equipo de proteccion personal
• Un frasco pequeño de acetona (propanona), se compra en farmacias. No traer quitaesmalte (entregárselo al profesor). Traer uno por todos los grupos del mismo día
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IV. PROCEDIMIENTO 1. IDENTIFICACIÓN DE LA FUNCIÓN CARBONILO: Los aldehídos y cetonas reaccionan con el reactivo de la 2,4-Dinitrofenilhidracina en una reacción de condensación, para producir 2,4-Dinitrofenilhidrazona formando un precipitado amarillo-naranja y como subproducto se obtiene agua.
Para identificar la función carbonilo proceda así:
Tome 8 tubos de ensayo, numérelos y proceda de la manera siguiente
Tubo
Colocar 10 gotas de 2,4-DNFH
Agregar 3 gotas de
Manifestación Resultado +/-
1 Agua
(control negativo)
2 Acetaldehido
3 Propanona
4 Infusión de canela
5 Extracto de almendra
6 Solución de Alcanfor
7 Alcohol etílico
8 Ácido Acético (CH3COOH)
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2. IDENTIFICACIÓN DE ALDEHÍDOS POR MEDIO DE REACCIONES DE OXIDACIÓN: Los aldehídos se oxidan con facilidad en condiciones suaves no así las cetonas, que son más resistentes a la oxidación (se necesita más concentración del agente oxidante), por lo que la concentración de KMnO4 usada en la práctica no provoca la oxidación en las cetonas. La manifestación es la formación de un precipitado color café que corresponde al Dióxido de manganeso (MnO2) 2.1. Oxidación por KMnO4: Tome 5 tubos de ensayo, numérelos y proceda de la manera siguiente:
Tubo No.
Coloque 10 gotas de
Agregue 5 gotas de
KMnO4 al 0.2% y
agite
Manifestación Resultado
+/-
1 Agua
(control negativo)
2 Acetaldehído
3 Propanona
4 Infusión de canela
5 Extracto de almendra
2.2. Prueba de Tollens: Es una prueba que se utiliza para diferenciar aldehído de cetonas, este reactivo contiene una solución de nitrato de plata en hidróxido de amonio (complejo de plata amoniacal) Ag(NH3)2OH. El ion Plata (Ag+) se reduce a plata metálica (Ag0) oxidando a los aldehídos hasta ácidos carboxílicos, las cetonas no reaccionan.
PRECIPITADO COLOR CAFE
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La plata metálica se deposita en el fondo y paredes del tubo formando el “Espejo de Plata”. Para efectuar la prueba proceda así: PREPARACIÓN DE REACTIVO TOLLENS:
1. En un tubo de ensayo limpio coloque 2mL de solución de AgNO3 al 1% 2. Agregue NaOH al 20%, gota a gota hasta que se forme un precipitado. 3. Luego agregue gota a gota y agitando la solución de NH4OH al 20%, hasta que
desaparezca el precipitado. 4. Rotule el tubo así “REACTIVO DE TOLLENS” y proceda así: 5. Rotule tres tubos de ensayo y agrégueles lo que se le indica a continuación:
PROCEDIMIENTO:
Tubo No.
Colocar en cada tubo 1 mL de
Reactivo de Tollens
Agregar 0.5 mL
Colocar en
Baño de Maria a 60°C
Manifestación Resultado +/-
1 Acetaldehído
2 Propanona
3 Glucosa 3%
V. ANÁLISIS DE RESULTADOS:
VI. CONCLUSIONES:
Reactivo de Tollens Espejo de plata
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VII. CUESTIONARIO 1. ¿Qué prueba de laboratorio de las realizadas en la práctica emplearía para diferenciar
entre las siguientes parejas de compuestos?
Compuestos Nombre de la prueba ¿Cuál de los
compuestos da la prueba (+)
Manifestación
Valeraldehído / butanona
Etanol/ dimetilcetona
3-pentanol / butanal
Isovaleraldehido /Ácido acético
Propanal / Propanona
2. Escriba las ecuaciones de las reacciones que se llevaron a cabo en los tubos 2 y 3 del
procedimiento 1 “Identificación del grupo carbonilo”
Tubo ECUACIÓN
2
3
3. Escriba las ecuaciones de las reacciones del acetaldehído con KMnO4 y Tollens
REACCIÓN ECUACIÓN
KMnO4
Tollens
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4. Llene el siguiente cuadro según el ejemplo:
REACCIÓN MANIFESTACION
COMPUESTO, GRUPO Ó
ÁTOMO IDENTIFICADO
Reacción de 2,4-DNFH Precipitado amarillo
naranja Grupo carbonilo
Oxidación KMnO4
Prueba de Tollens
VIII. BIBLIOGRAFÍA
3. Prácticas de Laboratorio 2017 “Semana 21 Identificación del grupo carbonilo”.
Unidad didáctica Química, Facultad de Ciencias Médicas USAC
4. Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la
vida. 4ta edición. Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDACTICA QUIMICA, PRIMER AÑO
PRACTICAS DE LABORATORIO 2018 SEMANA 22
ACIDOS CARBOXILICOS Y ESTERES Elaborado por: Isabel Fratti de del Cid
I. INTRODUCCIÓN: Los ácidos carboxílicos son compuestos caracterizados por la presencia del grupo carboxilo
(-COOH), unido a una cadena alifática o a un radical aromático.
Su comportamiento de ácido débil se debe a que se ioniza en forma reversible liberando H+,
pudiéndose calcular su Ka( constante de ionización de un ácido) de la forma que aprendió a
hacerlo en la semana 12. Como todo ácido reacciona con sustancias básicas,
experimentando reacciones de neutralización donde además de agua, se obtiene la sal
orgánica del ácido respectivo.
Otra reacción muy común de los ácidos carboxílicos (incluso en los seres vivos), es la esterificación. Para catalizar esta reacción, los seres vivos usan enzimas específicas. En el laboratorio usaremos como catalítico H2SO4 concentrado. II. OBJETIVOS: a-Determinar el pH y la [H+] de sustancias que contienen ácidos carboxílicos. b-Realizar ensayos de formación de sales y esterificación de los ácidos carboxílicos. c-Observar las manifestaciones de las reacciones de ácidos carboxílicos en la formación de sales y esterificación. d-Escribir las ecuaciones con las que se representan las reacciones de formación de sales y esterificación. III. MATERIALES (EQUIPO Y REACTIVOS) Baño de María Estufa eléctrica Papel pH Ácido acético concentrado NaHCO3 al 10 % p/v. H2SO4 concentrado Ácido salicílico en polvo Alcohol metílico Vinagre Piseta con agua Balanza Mortero y pistilo
MATERIALES APORTADOS POR LOS ESTUDIANTES
Kit de laboratorio Equipo de protección personal 1 limón 1 tableta de aspirina
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IV. PROCEDIMIENTO ENSAYO 1: DETERMINACION DE pH. Proceda de acuerdo al siguiente cuadro.
SUSTANCIA
AGREGUE
UNA GOTA
SOBRE UN
TROZO DE
PAPEL pH
(utilice un trozo
de papel pH
diferente para
cada
sustancia)respe
cto a la aspirina
vea nota al pie
del cuadro
COLO
R DEL
PAPEL
pH /
valor
numéri
co
Clasifíque
lo como
Acido,
Básico,
Neutro
Calcule valor de
[ H+]*
JUGO DE LIMÓN
VINAGRE
ACIDO ACÉTICO
ALCOHOL
METILICO
½ tableta aspirina**
*use el dato obtenido con el papel pH. Para cálculos use fórmulas vistas en semana12 **Pulverice la aspirina usando el mortero y pistilo añada 5 gotas de agua. Presione la tira de papel pH sobre ésta mezcla. Tome la lectura y anótelo. ENSAYO 2: FORMACION DE SALESCON NaHCO3
TU
BO
No
Coloque las siguientes
cantidades
AG
RE
GU
E 1
0 G
OT
AS
DE
N
aH
CO
3 a
l 1
0 %
p/v
Resultad
o
+ / -
Manifestación
1 1mL de ácido acético
2 1mL de agua + 10 gotas de
jugo de limón
3 1mL de agua + ½ pastilla de
aspirina *
*Pulverizarla antes con un mortero y pistilo, colocar polvo dentro del tubo y agitar. Obtendrá una suspensión. Observe y responda si en el tubo 3, quedó más o menos sedimento (sólido), después de añadir el NaHCO3. __________________________________________.
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ENSAYO 3: ESTERIFICACIÓN: Es una reacción de condensación entre un ácido carboxílico y un alcohol, usando un catalítico ácido y calor, formándose el éster + agua.
3.1 FORMACION DE SALICILATO DE METILO a) Coloque 0.5 gramos de ácido salicílico en un tubo de ensayo limpio y seco. b) Agregue 3 ml de alcohol metílico (Metanol). Agite para disolver el contenido. c) Agregue lentamente 5 gotas de H2SO4 (ácido sulfúrico) concentrado y agitar con cuidado, después cada gota. d) Colocar el tubo de ensayo en baño de María (entre 60 - 70°C) durante 5 minutos. e) Colocar en un beacker 20ml de agua tibia (30 - 40°C) Verter el contenido del tubo de ensayo. Con cuidado y siguiendo las indicaciones de su profesor perciba el olor. Se considera un resultado positivo, si se percibe un olor a “Cofal”, “Vicks” Llene el siguiente cuadro con la información obtenida del ensayo y de la ecuación.
Resultado: positivo / negativo
Manifestación con la que se comprobó La formación de producto
Fórmula del catalítico usado
Estructura química del producto principal. Encierre en líneas el grupo funcional que se formó.
V. ANÁLISIS DE RESULTADOS VI. CONCLUSIONES VII. CUESTIONARIO
1- Para el ensayo 2, complete el cuadro.
tubo
Fórmula del ácido carboxílico presente
Ecuación de la reacción de formación de sales con NaHCO3
1
3
Ácido Salicílico
Salicilato de metilo
calor
Alcohol metílico
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2-El benzoato de bencilo es un éster que se usa como medicamento para el tratamiento de la sarcoptiosis (sarna) y pediculosis (piojos). Escriba la ecuación que muestre la formación del benzoato de bencilo. De el nombre de los reactivos que deben usarse.
3- Llene la siguiente tabla: investigando lo que se le solicita
MEDICAMENTO Nombre del éster o ácido
carboxílico presente
Fórmula Mencione un uso que se le da al
medicamento
Cardioaspirina
Ungüento LEON
Benzan
4- Calcule cuántos gramos de salicilato de metilo se obtuvieron al poner a reaccionar 0.5 g de ácido salicílico en el ensayo 3. (Suponer que hay suficiente cantidad de alcohol metílico para reaccionar). Deje constancia de cálculos. 5- Explique por qué se observa menor cantidad de sedimento (solido) en el tubo 3, luego de la reacción con NaHCO3, en el ensayo 2. Razone en base a la solubilidad del ácido acetil salicílico y del acetilsalicilato de sodio (la sal formada en la reacción).
VIII. BIBLIOGRAFIA
Guzmán, Lilian. Manual de Practicas de laboratorio. Unidad Didáctica de Química, Facultad
de Ciencias Médicas, Universidad de San Carlos de Guatemala, 2017
Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta
edición. Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM
UNIDAD DIDACTICA DE QUIMICA, PRIMER AÑO
PRACTICAS DE LABORATORIO 2018
SEMANA 23
IDENTIFICACION DE UNA MUESTRA DESCONOCIDA No. 2
Elaborado por: Licda. Lilian Judith Guzmán Melgar
I. INTRODUCCIÓN
La marcha analítica es un proceso químico que identifica los componentes presentes
de una muestra química, mediante operaciones de separación combinadas con ensayos
de identificación. La muestra desconocida será proporcionada por su profesor, dicha
muestra pertenece a una de las siguientes familias de compuestosvistos en clase:
alcoholes, fenoles, aldehído, cetona o ácido carboxílico, guíese por las pruebas y
observaciones realizadas en las prácticas anteriores.
Durante la realización de la marcha analítica se analizarán las propiedades químicas
de los grupos funcionales posibles que presentan propiedades particulares, como se ha
visto en clase teórica y se ha experimentado en los ensayos de laboratorio previamente
realizados, que los conducirá a diferenciar el compuesto orgánico de la muestra
desconocida.
II. OBJETIVOS
1. Retroalimentar los conocimientos adquiridos tanto teóricos como prácticos proporcionados en clases anteriores.
2. Identificar una muestra desconocida, por medio de una marcha analítica, diferenciando entre: alcohol (primario, secundario o terciario), fenol, aldehído, cetona y ácido carboxílico.
3. Establecer la importancia de las propiedades químicas en la identificación de una muestra.
III. MATERIALES Y REACTIVOS
• Solución de NaHCO3 10% p/v
• 2,4-Dinitrofenilhidrazina (2,4-DNFH)
• Solución de KMnO4 al 0.2% p/v
• Reactivo de Lucas (HCl/ZnCl2)
• Solución FeCl3
• Gradilla para tubos de ensayo
• Baño de María
• Estufa eléctrica
• Papel pH
Material aportado por los
estudiantes*
• 4-5 Tubos de ensayo*
• Pipeta de transferencia de 3ml* NUEVA
• Pinza para tubo de ensayo*
• Marcador de punta fina permanente*para rotular sus tubos de trabajo
• Equipo de protección personal
40
IV. PROCEDIMIENTO
7. El catedrático le proporcionará en un tubo de ensayo una muestra desconocida que deberá identificar correctamente, este puede pertenecer a cualquier familia de compuestos orgánicos estudiados previamente: alcohol primario, alcohol secundario, alcohol terciario, acido carboxílico, aldehído o cetona.
8. Anote todos sus datos y los de la muestra que se le solicitan en la parte superior de la hoja del reporte.
9. Divida la muestra que se le entregó en las alícuotas de tubos de acuerdo al máximo de reacciones químicas de la ruta más larga de la marcha analítica. Guarde una de ellas que servirá para confirmar alguna prueba al final de este examen práctico.
10. Realice la primera reacción química que le indica la MARCHA ANALÍTICA (ver siguientes páginas), utilizando las cantidades de reactivo proporcionales según indica la práctica de laboratorio correspondiente.
11. Al obtener el primer resultado usted debe seguir la ruta según el resultado obtenido. Cada resultado de las reacciones químicas de esta marcha analítica lo ayudarán a diferenciar a su compuesto orgánico de otros diferentes, de manera que lo conducirá por una sola ruta hasta identificar el compuesto de su muestra desconocida.
12. Anote sus resultados a lapiceroen la hoja de reporte, indicando únicamente las reacciones establecidas en la marcha analítica, no debe realizar reacciones innecesarias. No tache ni utilice corrector.
13. Entregue el reporte a su profesor en el tiempo que el establezca.
V. RECOMENDACIONES PARA ESTA PRUEBA
10. Utilice cristalería y material limpio. 11. Identifique sus tubos de ensayo con el marcador permanente. 12. Utilice alícuotas de su muestra para cada reacción química. 13. NUNCA DEBE REALIZAR DOS O MAS REACCIONES EN UN MISMO TUBO. 14. El catedrático dará UNA MUESTRA y no dará más. 15. Realice solo las reacciones químicas necesarias para identificar la muestra. 16. Reporte solo las pruebas que efectuó para lograr identificar su muestra desconocida. 17. Esta marcha analítica es un EXAMEN PRACTICO, por lo tanto:
▪ NO DEBE CONSULTAR CON NADIE. ▪ NO DEBE PREGUNTAR A SU PROFESOR. ▪ NO PUEDE ABANDONAR EL SALÓN hasta que entregue su reporte. ▪ NO SE REPONDRA MUESTRA POR ERROR DE PROCEDIMIENTO
18. Su área de trabajo debe quedar limpia y el material utilizado en su lugar después de realizar la prueba.
VI. BIBLIOGRAFÍA: 1. Manual de prácticas de laboratorio 2017.. Unidad Didáctica de Química, Facultad de Ciencias
Médicas, Universidad de San Carlos de Guatemala, 2017
2. Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta
edición. Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
41
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM
UNIDAD DIDACTICA DE QUIMICA, PRIMER AÑO 2018
REACCIÓN CON:
(+) POSITIVO (-)NEGATIVO
ITIVO
Acido carboxílico Alcohol 1º,2º, ó 3º
NaHCO3
3 mL de reactivo + 5 gotas
muestramuestra
pH de la Muestra
1 gota de muestra a papel pH
Acido
carboxílico
Reactivode Lucas
(1 mL de muestra +15 gotas de reactivo)
Alcohol 3º. Alcohol 1º, 2º
Alcohol 2º. Alcohol 1º.
BAÑO MARÍA
ITIVO
TOMAR ALÍCUOTAS DE LA
MUESTRA EN LAS CANTIDADES
INDICADAS PARA
2,4DNFH
(3 gotas de muestra + 10 gotas de reactivo)
Acido carboxílico, Fenol ó
Alcohol 1º.,2º, ó 3º
FeCl3
(10 gotas de muestra +3 gotas de reactivo)
KMnO4
(10 gotas de muestra 5 gotas de reactivo)
Aldehído o Cetona
Fenol Acido carboxílico
ó alcohol
Aldehido Cetona
(+) POSITIVO (-)NEGATIVO
ITIVO
(+)POSITIVO (-)NEGATIVO
ITIVO
ROJO AMARILLO / NARANJA
(+)POSITIVO (-)NEGATIVO
ITIVO
(-)NEGATIVO
ITIVO
(+)POSITIVO
(+)POSITIVO
42
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS-CUM
UNIDAD DIDÁCTICA QUÍMICA- PRIMER AÑO
PRÁCTICAS DE LABORATORIO 2018
SEMANA 25 PROPIEDADES QUÍMICAS Y FÍSICAS DE CARBOHIDRATOS
Elaborado por: Lic. Raúl Hernández Mazariegos
I. INTRODUCCION:
Los carbohidratos son las biomoléculas más abundantes en la naturaleza y los más
utilizados por los seres humanos como fuente de energía. Químicamente son aldehídos
o cetonas polihidroxilados, entre los cuales se encuentran monosacáridos, disacárido,
y polisacárido (almidón, celulosa y glucógeno).
En cuanto a las características de los carbohidratos se puede observar que los de peso
molecular bajo (mono y disacáridos) son sólidos cristalinos, solubles en agua y tienen
poder edulcorante (endulzante) alto.Loscarbohidratos de peso molecular alto,
polisacáridos, son sólidos amorfos, la solubilidad se reduce notablemente y no presentan
sabor dulce, mantienen el aspecto de sólidos de color blanco y carecen de poder
reductor.
La principal función de los carbohidratos es suministrarle energía al cuerpo,
especialmente a los músculos, al cerebro y al sistema nervioso, luego de haber obtenido
la glucosa por medio de la hidrólisis. La enzima llamada amilasa, presente en la saliva,
ayuda a hidrolizar los carbohidratos como el almidón en glucosa. También se logra por
medio ácido y alcalino.
En éste laboratorio sedeterminarán algunas propiedades físicas como la solubilidad y
propiedades químicas como la reacción de Molisch y de Benedict.
II. OBJETIVOS
1. Observar la solubilidad de algunos carbohidratos. 2. Identificar los carbohidratos a través de sus propiedades químicas 3. Diferenciar los azúcares reductores de los no reductores.
.
III. MATERIALES Y REACTIVOS
1. Gradilla con tubos de ensayo conteniendo soluciones al 2% p/v de:
a) Glucosa b) Fructosa c) Lactosa d) Sacarosa e) Almidón
2. Frascos gotero con soluciones de: a) Glucosa b) Lactosa c) Sacarosa d) Suspensión de harina
Equipo y materiales 3. Baño de María 4. Estufa eléctrica 5. Gradillas 6. Papel pH 7. Piseta 8. Pipeta de transferencia (micropipeta)
43
Reactivos 9. Benedict 10. H2SO4 Concentrado
11. Solución de -Naftol
* MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES • Kit de laboratorio del grupo de trabajo.
• 10 ml de jugo de naranja natural
• Una cucharadita de harina de trigo
• Un trozo de algodón
• Un trozo de papel bond blanco (puede ser bond o
servilleta)
• Equipo de protección personal
IV. PROCEDIMIENTO
A. OBSERVACIÓN DE ALGUNAS PROPIEDADES FÍSICAS.
1. Observe los tubos de ensayoque contienen las soluciones al 2% p/v de varios carbohidratos. NO DESTAPE LOS TUBOS SOLAMENTE OBSERVELOS, agite los tubos, e indique si son solubles o insolubles.
2. Complete el siguiente cuadro.
B. REACCIÓN DE MOLISCH:
Fundamento Teórico: La reacción de Molisch es una reacción general para identificación
de carbohidratos a partir de 4 átomos de carbono.
Al reaccionar los carbohidratos con H2SO4 concentrado,presentan una deshidratación que
conduce a la formación de un anillo de furfural, el cualse condensa con el α-Naftol y se
forma una substancia de color púrpura o violeta (ésta se observará en un anillo colocado
en la interfase de los reactivos) que se conoce como derivado del furfural.
CARBOHIDRATO
Tubos con el carbohidrato
SOLUBLE / INSOLUBLE
Glucosa
Fructosa
Lactosa
Sacarosa
Almidón
44
Reacción General:
2 4(color púrpura)
carbohidrato + H SO anillo de furfural + -naftol derivado de furfural→ →
Procedimiento:
1. Numere 5 tubos de ensayo.
2. Utilice el frasco gotero de la solución de Glucosa al 2%, mida 1mL para el tubo 1.
3. Utilice el frasco gotero de la solución de Lactosa al 2%, mida 1mL para el tubo 2.
4. Mida 2 mL de jugo de naranja para el tubo 3.
5. Preparare una Suspensión de Harina: Añada a 4mL de agua, ¼ de espátula de harina,
agite, deje reposar por 5 minutos. Obtenga 2mL de sobrenadante con la pipeta de
transferencia (micropipeta) para el tubo 5.
6. Mida 2 mL de suspensión de harina para el tubo 4.
7. Coloque 2 mL de agua para el tubo 5
8. Proceda de acuerdo al siguiente cuadro:
Tubo No. Coloque 1mL
Añada
15
gotas
de
-
naftol y
agite
Resbalado
por las
paredes del
tubo
agregue 15
gotas de
H2SO4conc,
con
cuidado
NO AGITE
MANIFESTACIÓN
Vea nota*
RESULTADO
+ / -
Indique: CARBOHIDRATOO
NO CARBOHIDRATO
1 Glucosa 2% p/v
2 Lactosa 2% p/v
3 Jugo de naranja
4 Suspensión de
Harina
5 Agua como control
negativo
*Manifestación: la aparición de un anillo púrpura en la interfase es un resultado positivo.
C. IDENTIFICACIÓN DE LA PRESENCIA DE UN CARBOHIDRATO
Fundamento Teórico: Identificaremos con la reacción de Molisch la presencia de un
carbohidrato en algunos elementos de uso común, como una hoja de papel bond, una
servilleta o un algodón.
45
Procedimiento:
1. Coloque un trozo de papel blanco (bond o servilleta) en el vidrio de reloj y humedézcalo con unas gotas de agua de la piseta.
2. Colóquele 3 gotas de–naftol. 3. Deje caer en el centro 2 gotas de H2SO4 concentrado. Espere. La aparición de un color
violeta o marrón detecta la presencia de carbohidrato. 4. Repita el procedimiento anterior utilizando algodón.
Material Coloque un pedazo en el
vidrio de reloj
MANIFESTACIÓN
Vea nota*
RESULTADO
+ / -
Papel blanco Humedézcalo, añada 3 gotas de
–naftol y deje caer en el centro
2 gotas de H2SO4conc.
Algodón
*Manifestación: la aparición de un color púrpura es un resultado positivo.
D. REACCIÓN DE BENEDICT
Fundamento Teórico: La reacción de Benedict es utilizada para diferenciar azúcares
reductores de no reductores. Los azúcares reductores tendrán un grupo aldehído que
puede oxidarse mediante un agente oxidante como el reactivo de Benedict.
El reactivo de Benedict, es una solución alcalina de ion cúprico (Cu+2), de color azulque al
reaccionar con el azúcar reductor, éste se oxida y el ión Cu+2 se reduce a Cu+, formando
un precipitado rojo ladrillo de óxido de cobre (I).
Reacción general
2
2 (s)solución azul
precipitado rojo-ladrillo
carbohidrato + Cu carbohidrato oxidado + Cu O+ →
46
Procedimiento
1. Numere 3 tubos y proceda de acuerdo al siguiente cuadro.
Tubo
No. Coloque 2mL de
Añada 1 mL
de reactivo
de Benedict
y agite
Caliente en
baño de
María por 5
minutos.
Observe
MANIFESTACION
Vea nota*
RESULTADO
+ / -
Indique: AZUCAR
REDUCTOR
O AZUCAR
NO
REDUCTOR
1 Glucosa 2% p/v
2 Lactosa 2% p/v
3 Sacarosa 2% p/v
*Manifestación: la formación de un precipitado rojo ladrillo es un resultado positivo.
V. ANALISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO
1. Escriba la fórmula estructural del -naftol.
2. Explique por qué los mono y disacáridos son solubles en agua.
3. Sobre el almidón:
a) ¿Cuál es su solubilidad en agua fría?
b) ¿Cuál es la solubilidad de la amilosa en agua caliente?
c) ¿Cuál es la solubilidad de la amilopectina en agua caliente?
47
4. Investigue, ¿Qué carbohidratos contiene?
a) Jugo de naranja:
b) Harina:
c) Papel blanco:
d) Algodón:
VIII. BIBLIOGRAFÍA:
1. Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta
edición. Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
48
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 26
DETERMINACIÓN E HIDRÓLISIS QUÍMICA DE LA SACAROSA Y EL ALMIDÓN
Elaborado por: Lic. Raúl Hernández Mazariegos
I. INTRODUCCIÓN
El almidón es la molécula de reserva energética en las plantas por excelencia. Está
constituido por dos polímeros: La amilosa y la amilopectina, los cuales pueden separarse
por medios físicos o químicos. Debido a que muchos organismos superiores poseen las
enzimas necesarias para su degradación, este polímero puede ser convertido durante el
proceso de digestión en diferentes intermediarios metabólicos que generan energía. La
energía de estas moléculas se obtiene mediante la rotura de éstas a través del proceso
de hidrólisis, el cual se realiza con la presencia de enzimas específicas como la α-
amilasa, maltasa y α-1,6-glucosidasa o utilizando un medio ácido y calor.
Un polímero intermedio del almidón es la dextrina que se presenta como un sólido amorfo
color crema hasta marrón, soluble en agua fría e insoluble en alcohol. Se conocen tres
tipos de Dextrina en función de su reacción con el yodo: Amilodextrina, Eritrodextrina y
Acrodextrina.
En este laboratorio se realizará la hidrólisis del almidón y de la sacarosa por un medio
químico. Se identificará el almidón en algunos alimentos de uso cotidiano. Así como, se
formará el complejo yodo-almidón y se comprobará su reversibilidad.
II. OBJETIVOS
1. Realizar la hidrólisis de la sacarosa por medios químicos 2. Detectar a través de la reacción con Lugol, la presencia de almidón en diferentes
alimentos que se consumen diariamente. 3. Observar la pérdida de la estructura helicoidal de la amilosa por calentamiento y su
recuperación por enfriamiento. 4. Realizar la hidrólisis del almidón y detectar los productos intermedios de la misma a
través de ensayos usando las reacciones de Benedict y Lugol.
III. MATERIALES (REACTIVO Y EQUIPO):
Reactivos 3. Lugol 4. Benedict 5. HClconc. 6. NaOH al 20% p/v 7. Sacarosa al 2% p/v 8. Suspensión de almidón al 2%
Equipo y materiales 9. Baño de María 10. Erlenmeyer 11. Estufa eléctrica 12. Gradillas 13. Mechero de alcohol 14. Papel pH
15. Pipetas de 5 ml 16. Piseta 17. Succionador para
pipeta
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* MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES
• Kit de laboratorio del grupo de trabajo
• Equipo de protección personal
• Guante de cocina
• Un trozo de pan francés
• Una papa pequeña
• Pan francés
• Pechuga de pollo cocida
• Salchicha
• Tortilla
• ½ onza de pechuga de pollo cocida (sin sal ni consomé)
• 1 cucharadita de maicena (almidón)
IV. PROCEDIMIENTO
ENSAYO A: HIDROLISIS DEL ALMIDON, USANDO UN CATALITICO ACIDO Y
CALOR
Fundamento Teórico: El almidón es un azúcar no reductor que dará positivo para la
prueba de Lugol. Al hidrolizar el almidón en un medio ácido como HCl concentrado y
calentamiento, se descompondrá en polisacáridos intermedios, dextrinas, y finalmente en el
monosacárido, glucosa. Por lo que llegará a un azúcar reductor, que dará negativo para la
prueba de Lugol.
Etapas de la hidrólisis del almidón
Componente: Almidón→Amilodextrina→Eritrodextrina→Acrodextrina→Maltosa→Glucosa
Tiempo: 0’ 5’ 10’ 15’ 20’ 25’
Color con la
Prueba de
Lugol: Azul Morado Vino tinto Ámbar Amarillo Amarillo
Color con la
Prueba de
Benedict Celeste CelesteCelesteCeleste Rojo Ladrillo Rojo Ladrillo
En la presente práctica se realizarán dos series de seis tubos cada una para poder observar las etapas de la hidrólisis del almidón, como se muestra a continuación.
50
Instrucciones para realizar en ensayo A:
(SE SUGIERE REALIZAR 2 HIDRÓLISIS POR SALON)
1. Numere 12 tubos, formando dos series: Serie A: 1A, 2A, 3A, 4A, 5A, 6A; para realizar Prueba de Lugol
Serie B:1B, 2B, 3B, 4B, 5B, 6B; para realizar Prueba de Benedict
Procedimiento para hidrólisis:
2. En un erlenmeyer de 250 ml coloque 100 ml de agua (use agua del grifo) entre 60 a 70°C y agregue ½ cucharadita de maicena (almidón). Agite con la varilla de vidrio. Utilice el guante de cocina para manipular cuando el Erlenmeyer ya esté caliente. (Tome 4 mL de ésta mezcla y coloque 2 mL en cada uno de los tubos 1A y 1B serán los controles)
51
3. Con una pipeta con succionador, tome 2mL del almidón del erlenmeyer para el tubo 1A y 2 mL para el tubo 1B. a) Al tubo 1A agregue 3 a 4 gotas de Lugol. Debe observar un color azul con la presencia
de almidón. Este tubo será testigo positivo. b) Deje en la gradilla en espera el tubo 1B. Hasta que concluya la hidrólisis, le realizará la
prueba de Benedict los tubos 1B al 6B. “Espere”. 4. Añada 3 ml de HCl concentrado al almidón del erlenmeyer y agite suavemente.Con
precaución debido a que el HCl es una sustancia corrosiva. 5. Tape con el vidrio de reloj el erlenmeyer y colóquelo en la estufa a temperatura moderada. 6. Cuando empiece a hervir tome el tiempo y a los 5 minutos retire el vidrio de reloj con el
guante de cocina para no quemarse con PRECAUCIÒN tome con la pipeta 2 ml de la solución del Erlenmeyer para cada tubo, empezando con la pareja 2A y 2B, con cuidado.
7. Continúe midiendo el tiempo y repita el procedimiento anterior a cada 5 minutospara las siguientes parejas de tubos. Mantenga la temperatura en bajo o medio y agite constantemente, hasta que concluya la hidrólisis. a) Enfríe por 1 min y realice inmediatamente la prueba de Lugol para los tubos de la
serie A. Compare los colores que obtenga con los de las “Etapas de la hidrólisis” del fundamento teórico y anote su resultado en el cuadro de abajo.
b) Los tubos de la serie B esperan. 8. Al concluir la hidrólisis realice la Prueba de Benedict a la serie B:
a) Al tubo 1B coloque 1 ml de Benedict. b) Mida el pH, como estará ácido neutralice con NaOH al 20 % p/vlos tubos 2B a 6Bpara
que reaccione Benedicty luego agregue 1 ml de Benedict. c) Lleve todos los tubos a baño de maría por 5 min. d) Observará un color celeste con la presencia de almidón, azúcar no reductor, testigo
negativo y la manifestación de precipitado rojo ladrillo con la presencia de azúcar reductor.
9. Coloque los resultados en el siguiente cuadro.
52
HIDRÓLISIS DEL ALMIDON
PRUEBA DE LUGOL PRUEBA DE BENEDICT
TUBO MANIFESTACION
Color*
RESULTADO
+ / -
Componente de la
etapa de hidrólisis
detectado
TUBO MANIFESTACION
Color**
RESULTADO
+ / -
1 A 1 B
2 A 2 B
3 A 3 B
4 A 4 B
5 A 5 B
6 A 6 B
*Lugol (+) color azul, en presencia de almidón; Lugol (-) color amarillo, en ausencia de almidón;
**Benedict (+) precipitado rojo ladrillo, azúcar reductor; Benedict (-) solución celeste, azúcar no
reductor.
ENSAYO B: HIDROLISIS DE LA SACAROSA
Fundamento Teórico:La sacarosa es unazúcarno reductor, por lo que presentará una
reacción de Benedict negativa. Pero, si la sacarosa se hidroliza en medio ácido (HCl) y
calentamiento, se rompe el enlace glicosídico 1-2, y libera a sus dos monosacáridos
constituyentes, glucosa y fructosa, los cuales son azúcares reductores.
Procedimiento
1. Numere dos tubos de ensayo. 2. Tubo No. 1, contendrá la sacarosa SIN HIDROLIZAR, coloque 5 mL de Sacarosa al
2%p/v 3. Tubo No.2, contendrá la sacarosa HIDROLIZADA. Prepárela como sigue: Coloque 5 mL
de Sacarosa al 2% p/v, agregue 5 gotas de HCl concentrado con precaución. Lleve a Baño de María con agua hirviendo por 5 min.
4. Realice la Prueba de Benedict como se indica en el cuadro y anote sus resultados.
53
Tubo Coloque5 mL de PRUEBA DE BENEDICT MANIFESTACIÓN
RESULTADO
+ / _
1 Sacarosa
SIN HIDROLIZAR
Agregue 1 mL de Reactivo de Benedict.
Baño de María por 5 min.
2 Sacarosa
HIDROLIZADA
Neutralice con NaOH al 20%, compruebe
con papel pH. Agregue 1 mL de Reactivo
de Benedict. Baño de María por 5 min.
ENSAYO C: DETERMINACION DE ALMIDON EN LOS ALIMENTOS SOLICITADOS
Fundamento Teórico:El almidón forma con el yodo un color azul oscuro. El color es debido a la
absorción del yodo dentro de los espacios abiertos de las hélices de amilosa que constituye el
20 % del almidón. Las amilopectinas también presentes en el almidón, forman un color rojo a
púrpura con el yodo.
Con esta prueba se puede identificar el almidón en el pan y en la papa.
Procedimiento:
1. Corte un trozo de 2cm x lado de cada alimento: pan francés, papa, pechuga de pollo
cocida, salchicha y tortilla.
2. Colóquelos en el vidrio de reloj y deje caer en el centro una gota de Lugol.
3. La observación de un color azul-violeta detecta la presencia de almidón.
4. Con los resultados obtenidos, complete el siguiente cuadro:
ALIMENTO AÑADIR MANIFESTACIÓN RESULTADO +/-
Pan francés
2 a 3 gotas LUGOL
Papa
Pechuga de pollo
Salchicha
Tortilla
ENSAYO D: DETERMINACION DE LAESTRUCTURA HELICOIDAL DE LA AMILOSA POR EFECTO DE LA TEMPERATURA.
Fundamento Teórico: Al realizar la prueba del yodo a la amilosa, el componente del almidón de cadena lineal, forma hélices donde se juntan las moléculas de yodo, formando
54
un color azul oscuro a negro. Esta unión del yodo a la cadena es reversible, y por calentamiento desaparece el color, que al enfriarse reaparece. Estos cambios de color indicarán la modificación de la estructura de la amilosa de helicoidal a lineal o viceversa.
(a) Estructura esquemática del complejo de
yodo almidón. La cadena de amilosa
forma una hélice alrededor del yodo.
(b) Vista hacia abajo de la hélice de almidón
que muestra el yodo dentro de la hélice.
Procedimiento:
1. Coloque 3 mL de la suspensión de almidón al 2 % p/v en un tubo de ensayo.
2. Paso 1: Añada dos a tres gotas de Lugol. Este debe adquirir un color azul-morado.
3. Paso 2:Caliente el tubo en un mechero de alcohol, usando una pinza para tubo de
ensayo,(dirija la boca del tubo a un lugar donde no haya nadie, mueva el tubo sobre la
llama de izquierda a derecha), hasta que desaparezca la coloración adquirida.Trate de
que no hierva la mezcla de almidón.
4. Paso 3: Añada agua de chorro en un beacker y coloque el tubo de ensayo en el agua
para que se enfríe. Al enfriarse debe volver a establecer la estructura helicoidal y por lo
tanto aparecerá la coloración obtenida antes del calentamiento.
TEMPERATURA
ALMIDON CON LUGOL
Color
AMILOSA
Helicoidal / Cadena Lineal
Tubo con 3 mL de suspensión de almidón al 2% p/v
Paso 1 FRIO (al inicio)
Paso 2 CALIENTE
Paso 3 FRIO (en agua)
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V. ANALISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO
1. ¿Por qué la fructosa es un carbohidrato reductor?
2. ¿Cuál es el ion formado por el yodo cuando se combina el I2 con KI en el reactivo de lugol? Investigue en internet.
3. ¿Cuál es la función del ácido clorhídrico (HCl) en la hidrólisis del almidón?
4. ¿Cuál es el color que se obtiene cuando reacciona la amilopectina con Lugol?
VIII. BIBLIOGRAFÍA
1. Vivian Margarita Sánchez Garrido. Practica de laboratorio, Determinación e Hidrólisis química de la Sacarosa y el
Almidón. Unidad Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad de San Carlos de Guatemala, 2016
2. Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta edición. Pearson Educación de
México, S.A de C.V., México, 2013
3. Prueba de yodo:
✓ https://es.wikipedia.org/wiki/Prueba_del_yodo [08/01/16]
✓ http://knowledgepayback.blogspot.com/2012/04/iodimetric-iodometric-titrations.html?view=classic [08/01/16]
DEBE PREGUNTARLE A SU PROFESOR QUÉ ALIMENTOS LE TOCARÁ TRAER
PARA LA PRÁCTICA #27
56
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 27
PROPIEDADES DE LIPIDOS
Elaborado por: Licda. Evelyn Rodas Pernillo de Soto
I. INTRODUCCIÓN
Los lípidos son biomoléculas que varían en su estructura pero tienen en común la
característica de ser insolubles en agua y solubles en solventes apolares. Las grasas y
aceites están constituidas principalmente por triacilgliceroles que son ésteres de ácidos
grasos y glicerol.Las grasas son sólidas o semisólidas a temperatura ambiente y
generalmente provienen de fuentes animales. Los aceites son líquidos a temperatura
ambiente y se obtienen de fuentes vegetales. Los lípidos tienden a ser sólidos cuando
contienen mayor porcentaje de ácidos grasossaturados y líquidos cuando contienen mayor
porcentaje de ácidos grasos insaturados. En este laboratorio se observarán algunas
propiedades de grasas y aceites y secomprobará la presencia de éstos en algunos
alimentos.
II. OBJETIVOS
1. Determinar la solubilidad de grasas y aceites en un solvente polar (agua) y en un
solvente apolar.
2. Comparar la densidad de grasas y aceites con respecto al agua.
3. Determinar la presencia de insaturaciones en grasas y aceites con la prueba de
adiciónde yodo.
4. Verificar la presencia de lípidos en algunos alimentos de consumo diario.
III. MATERIALES (REACTIVO Y EQUIPO)
1 Gradilla con 2 series de tubos de ensayo conteniendo:
a) Aceite de maíz, aceite de oliva, margarina y mantequilla en agua
b) Aceite de maíz, aceite de oliva, margarina y mantequilla en cloroformo.
2 Agua 3 Solución de lípido saturado 4 Solución de lípido insaturado 5 Solución de yodo 6 Estufa
MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES
• Cuchillo y tabla pequeña para picar
• Kit de laboratorio del grupo de trabajo
• Equipo de protección personal necesario
• Guante de cocina
MATERIALES POR SALÓN: lo asignado a cada grupo
de trabajo en la práctica No. 26.
• Una torta de carne de por lo menos 20g de un restaurante de comida rápida. (SIN QUESO)
• Una porción de pollo frito con piel
• Una porción de papas fritas
• Una porción de frutas
• Una salchicha
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IV. PROCEDIMIENTO
ENSAYO 1: Determinación de algunas propiedades físicas de grasas y aceites
1. Tome la gradilla con las DOS SERIES de tubos:
2. PRIMERA SERIE: Tubos de ensayo con aceites y grasas en agua:
a) Sin destapar el tubo, observe la densidad aproximada. Si la grasa o aceite flota en
el agua, la densidad será menor que la del agua (< de 1g/mL), si se va al fondo, la
densidad será mayor (> de 1g/mL), repórtelo de ésta manera.
b) Sin destapar el tubo, observe la solubilidad en agua de los aceites y grasas.
3. SEGUNDA SERIE: Tubos de ensayo con aceites y grasas en cloroformo:
c) Sin destapar el tubo, observe la solubilidad en solvente apolar de los aceites y
grasas.
4. Anote sus observaciones en el siguiente cuadro.
ENSAYO 2: Reacción de adición de yodo (I2)
Esta prueba se utiliza para determinar la presencia de dobles enlaces en los ácidos
grasos de los triacilgliceroles de una grasa o aceite. La cantidad de yodo que se adicione
es directamente proporcional al grado de insaturación de una grasa o aceite..
Cuando se adiciona yodo a un lípido insaturado la manifestación observada en la reacción
positiva será decoloración (pérdida del color). Si al adicionar 1 o 2 gotas de yodo el color
permanece por lo menos un minuto como el color del “control negativo”, la reacciónserá
negativa e indica la presencia de lípidos saturados.
GRASA / ACEITE
SOLUBILIDAD EN AGUA
SOLUBLE / INSOLUBLE
DENSIDAD RESPECTO AL
AGUA
< de 1g/mL / > de 1g/mL
SOLUBILIDAD EN
CLOROFORMO
SOLUBLE / INSOLUBLE
Aceite de maíz
Aceite de oliva
Margarina
Mantequilla
58
Ejemplo de Adición de yodo a un triglicérido con ácidos grasos insaturado:
PROCEDA COMO INDICA EL SIGUIENTE CUADRO:
TUBO Colocar 1 ml
de:
Añada 2 gotas de solución de yodo,
en c/tubo, agite y
observe. (Si observa
decoloración, continúe
agregando gota a gota
hasta un máximo de 10
gotas)
No. DE GOTAS
AGREGADAS (un máximo de
10 gotas)
MANIFESTACIÓN Decoloración
(si no hay manifestación
colocar una línea)
DETECTÓ PRESENCIA DE DOBLES ENLACES
RESULTADO (+/-)
1
Control negativo
(se prepara con 1 mL de cloroformo más 2 gotas de solución de yodo)
2 Solución de
Lípido Insaturado
3 Solución de
Lípido Saturado
ENSAYO 3: Extracción y determinación cualitativa de lípidos presentes en alimentos
A.Extracción del lípido:
1. Tare un beaker y pese 20g del alimento asignado.
2. Proceda a cortarlo en pequeños trozos y colóquelo de nuevo en el beaker.
3. Agregue 100 mL de agua
4. Agitar con la varilla de vidrio, colocar el beaker sobre la estufa y llevarlo a ebullición
durante 5 minutos, agitando regularmente.
5. Retire de la estufa, deje enfriar y reposar por lo menos 10 minutos.
6. Con una pipeta de transferencia extraiga la capa grasosa y colóquela en un tubo de
ensayo. Si el alimento no liberó una capa grasosa indíquelo en los resultados como no
presenta.
59
B. Determinación cualitativa del lípido:
a. Observe los diferentes Beakers y compare la cantidad de grasa presente en cada
uno.
b. Anote los resultados en el siguiente cuadro:
ALIMENTO ¿Presenta lípidos según la
extracción?
SI / NO
¿Qué cantidad de lípidos presenta el
alimento?
Repórtelo según la escala*
Torta de Carne
Pollo frito con piel
Papas fritas
Fruta
Salchicha
*Escala:
- Nada + Muy poco ++ Poco +++ Regular ++++ Abundante
V. ANALISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES VII. CUESTIONARIO
1. Nombre el ácido omega-6 que reacciona con más moles de yodo (los estudiados en
clase):
2. Complete la siguiente ecuación:
CH2-O-CO-(CH2)7CH=CHCH2CH=CH-(CH2)4CH3 | CH-O-CO-(CH2)7CH=CHCH2CH=CH-(CH2)4CH3
| CH2- O-CO-(CH2)7CH=CHCH2CH=CH-(CH2)4CH3
+ 3H2 →
60
3. Lea las etiquetas de varios productos alimenticios que contengan grasas como
mantequilla, margarina, chocolates, etc., y complete:
Alimento empacado
Gramos de
Grasa Total
Por porción
Gramos de
grasa
Saturada por
porción
Valor Calórico de
la grasa por
porción
( 9 kcal/ gramo de
grasa)
% de Grasa
de una
porción
1. Mantequilla de
maní
15 2.5 135 *46.87%
2.
3.
4.
5.
6.
*Ejemplo:
* % grasa de una porción = 15 g de grasa x 100= 46.87%
32 g por porción
VIII. Bibliografía • Lucrecia Casasola de Leiva. Practica de laboratorio, Propiedades físicas de los lípidos. Unidad
Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad de San Carlos de Guatemala,
2017
• Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta edición.
Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
61
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA QUÍMICA, PRIMER AÑO
.
PRACTICA DE LABORATORIO 2017
SEMANA 28
EMULSIFICACIÓN Y SAPONIFICACIÓN DE GRASAS Y ACEITES
Elaborado por: Licda. Evelyn Rodas Pernillo de Soto
I. INTRODUCCIÓN
Algunos lípidos, tienen la característica de ser anfipáticos, es decir que tienen una región
polar y una no polar en su estructura. Esto les da la capacidad de emulsificarse, es decir
mezclarse con líquidos que normalmente no se mezclarían, como el agua. Además, por ser
anfipáticos, pueden actuar como agentes emulsificantes, que son aquellas sustancias que
disminuyen la tensión superficial entre dos fases inmiscibles para que de esa forma pueda
dispersarse una en la otra. Este proceso de emulsificación es importante ya que es el
utilizado en la digestión de las grasas de los alimentos. En el laboratorio podrá comprobar
el proceso de emulsificación utilizando yema de huevo y un detergente.
Las grasas y aceites son lípidos saponificables, es decir que es posible hidrolizar el enlace
éster con un medio alcalino como NaOH o KOH y producir glicerol y las sales de los ácidos
grasos (jabones). En el laboratorio procederá a saponificar un aceite y luego podrá
comprobar de una forma cualitativa y química la formación del jabón.
II. OBJETIVOS
1. Realizar un proceso de emulsificación, usando como agentes emulsificantes
componentes de la yema de huevo y detergente.
2. Efectuar un proceso de saponificación (hidrólisis alcalina) en una grasa o aceite.
3. Identificar los productos de la saponificación: las sales de los ácidos grasos y los ácidos
grasos libres.
III. MATERIALES (REACTIVO Y EQUIPO):
1 Aceite vegetal con pipeta de transferencia
2 NaOH al 20% p/v 3 HCl 0.2 M 4 Estufa eléctrica 5 Baño de María 6 Gradillas para tubos de ensayo 7 Pisetas con agua
Recipientes para recolectar claras de huevo
* MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES
• Kit de laboratorio del grupo de trabajo.
• Una cucharada de detergente líquido
• Una yema de huevo (por todo el grupo de laboratorio)
• 2 pipetas de transferencia de 3 ml
• Equipo de protección personal necesario.
62
IV. PROCEDIMIENTO
ENSAYO 1: Emulsificación de una grasa o aceite
La emulsificación es el proceso mediante el cual un líquido es dispersado en otro en forma
de pequeñas gotas. Como estos líquidos son inmiscibles o insolubles entre sí, se requiere
de un agente emulsificante que es una molécula anfipática que tiene un extremo afín al
agua (hidrofílico) y otro afín al aceite (hidrofóbico). Esto permite que el agua y el aceite se
dispersen casi completamente el uno en el otro, creando una emulsión estable, homogénea
y fluida.
Las moléculas de jabón y detergentes tienen dos extremos que sirven de puente entre las
moléculas de agua y las de grasa, estos dos extremos hacen que sea capaz el jabón y los
detergentes de romper la tensión superficial del agua y que una parte de ellos se unan a la
grasa y otra al agua por lo que se forma una sola fase homogénea.
1. Rotule tres tubos de ensayo como, 1, 2 y 3
2. Proceda como indica el siguiente cuadro y anote los resultados.
Tu
bo
Agregue a c / tubo:
5 mL de agua y 10
gotas de aceite
vegetal
¿Se separa la fase
aceitosa de la
acuosa?
SI/NO
Agregue 5 gotas
de:
¿Se separa la
fase aceitosa
de la acuosa?
SI /NO
¿Hay
emulsificación?*
SI/NO
1
AGITE vigorosamente
y deje reposar por 2
min.
Detergente,
agite
vigorosamente y
deje reposar 2 min
2
AGITE vigorosamente
y deje reposar por 2
min.
yema de huevo,
agite
vigorosamente y
deje reposar 2 min.
3
AGITE vigorosamente
y deje reposar por 2
min.
*se considera que hay emulsificación si no hay separación de las fases.
ENSAYO 2: SAPONIFICACIÓN O HIDRÓLISIS ALCALINA
Los enlaces éster, que unen al glicerol y los ácidos grasos, experimentan hidrólisis, liberando glicerol y las sales de los ácidos grasos (de sodio o potasio), las cuales se conocen como “Jabones”. El proceso de saponificación se verifica, al detectar las sales de los ácidos grasos (jabónes), las cuales forman espuma con el agua. Además, se puede comprobar la presencia de estas sales, acidificando el medio, para obtener ácidos grasos libres, los cuales forman una capa aceitosa en la superficie de la mezcla.
63
Ejemplo de saponificación de un triglicérido:
PROCEDIMIENTO:
1. Rotule tres tubos de ensayo como, 1, 2 y 3.
2. En el tubo No.1 coloque 10mL de aceite vegetal y 4 ml de solución de NaOH al 20%
3. Agite fuertemente y colóquelo en el baño de María a ebullición de 20 a 30 minutos.
Agite ocasionalmente
4. Retire el tubo y observará que se formaron tres fases o capas.
5. Con una pipeta de transferencia y con cuidado, succione la capa superior (aceite
inalterado) y descártela.
6. Con la misma pipeta de transferencia succione la capa intermedia semisólida (jabón) y
transfiera la mitad del contenido al tubo No.2 y la otra mitad al tubo No. 3. Guárdelas
para las pruebas a) y b)
7. La capa inferior se descarta.
a) PRUEBA PARA CONFIRMAR PRESENCIA DE JABON
TUBO Agregue 1 mL de
agua y agite
vigorosamente
MANIFESTACION *
(Espuma)
¿Se formó Jabón?
SI / NO
No. 2
(Jabón)
* La formación de espuma, confirma la presencia jabones o sales de los ácidos grasos.
b) PROCEDIMIENTO PARA OBTENER ACIDOS GRASOS LIBRES A PARTIR DE LAS SALES SÓDICAS DE LOS ÁCIDOS GRASOS:
Al jabón (sales sódicas de los ácidos grasos) obtenido en la saponificación, se les
agrega HCl, para obtener los ácidos grasos libres.
Reacción general: RCOO- + H+→ RCOOH
TUBO Agregue 2 mL de
HCl 0.2M y agite.
MANIFESTACION*
(Formación de capa
aceitosa)
¿Se formaron ácidos
grasos?
SI / NO
No. 3
(Jabón)
* La formación de una capa aceitosa en la superficie, indica la presencia de ácidos grasos libres, estos son insolubles en agua.
64
V. ANÁLISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO
1. Haga un esquema o dibujo que represente la emulsificación de una grasa o aceite:
2. Escriba la fórmula del jabón que se produce por la saponificación de la triestearina con KOH:
3. Escriba la fórmula del triacilglicerol a partir del cual se forman jabones de oleato de sodio:
4. ¿Por qué la yema de huevo y el detergente pueden actuar como agentes emulsificantes? y en el ensayo No. 1 ¿En cuál de los dos tubos obtuvo mejor acción emulsificante?
5. Investigue y resuma. ¿Cómo se lleva a cabo la emulsificación de las grasas en nuestro
organismo?
VIII. Bibliografía • Lucrecia Casasola de Leiva. Practica de laboratorio, Propiedades físicas de los lípidos. Unidad
Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad de San Carlos de Guatemala,
2017.
• Timberlake, Karen C. Química general, Orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4ta edición. Pearson Educación de México, S.A de C.V., México, 2013
65
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS UNIDAD DIDÁCTICA DE QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 29 PROPIEDADES FÍSICAS Y QUÍMICAS DE AMINOÁCIDOS Y PROTEÍNAS
Elaborado por Licda. Edda Sofía Tobías de Rodríguez
I. INTRODUCCIÓN
Las proteínas son macromoléculas biológicas, constituidas por α-aminoácidos unidos por enlaces peptídicos que intervienen en diversas funciones vitales esenciales, como el metabolismo, la contracción muscular o la respuesta inmunológica. Un aminoácido es una biomolécula que contiene un grupo amino (-NH2) y un grupo
carboxilo (-COOH), unidos a un carbono conocido como carbono . Los aminoácidos son compuestos sólidos, incoloros, cristalizables y de elevado punto de fusión. Además son solubles en agua, con actividad óptica y con un comportamiento anfótero. Los aminoácidos en soluciones acuosas como los entornos biológicos, existen como iones dipolares o zwitterión a pH cercanos a su punto isoeléctrico (pI). A pH más ácidos existen en forma catiónica y a pH más básicos predomina la forma aniónica. Siendo todas las proteínas compuestos formados por aminoácidos y unidos por enlaces peptídicos, presentan grandes variaciones en sus propiedades químicas y biológicas. Reflejan las propiedades químicas de los aminoácidos que contienen en su estructura. Muchas de las reacciones de color de las proteínas dependen de la presencia de un aminoácido en su molécula. En la presente práctica, se realizaran observaciones y ensayos para determinar las propiedades de algunos aminoácidos y proteínas y se usaran estos criterios para su clasificación.
II. OBJETIVOS 1. Observar algunas propiedades de los aminoácidos como solubilidad en agua, estado
físico, pH. 2. Utilizar la reacción de Biuret para detectar enlaces péptidos en sustancias de origen
biológico. 3. Utilizar la reacción de Ninhidrina para detectar aminoácidos libres y proteínas. 4. Detectar aminoácidos con anillo bencénico en proteínas utilizando la reacción
Xantoproteica. 5. Utilizar la reacción de Xantoproteica para clasificar a las proteínas como proteínas con
aminoácidos aromáticos o sin aminoácidos aromáticos. 6. Detectar la presencia de Azufre en algunos aminoácidos.
III. MATERIALES (REACTIVOS Y EQUIPO)
1. Gradillas 2. Mechero de alcohol 3. Piseta con agua desmineralizada 4. Hisopos 5. Papel pH 6. Solución de carbohidrato 7. Aminoácidos: Alanina, Ácido aspártico, arginina
(en tubo, rotulados asi: 1A, 2A y 3A) 8. Soluciones acuosas al 1% p/v de: alanina,
Ácido aspártico y Arginina (en tubo y rotulados asi: 1B, 2B y 3 B)
9. Sustancias que contienen Proteínas:
Albúmina de huevo al 10% p/v Colágeno al 3% p/v , leche descremada
10. Reactivos para reacciones de Biuret y Xantoproteica, Ninhidrina y Sulfuro: NaOH al 20% p/v
CuSO4 al 0.2% p/v
HNO3 concentrado
Acetato de Plomo II al 0.2%
66
IV. PROCEDIMIENTO 1. PROPIEDADES FÍSICAS DE LOS AMINOÁCIDOS
a. Para obtener los datos de las columnas A y B, observe los tubos 1A, 2A y 3 A y proceda a colocar sus resultados.
b. Para la columna C, deberá observar los tubos 1B, 2B y 3B, proceda a llenar la columna.
c. Columna D: destape los tubos 1B, 2B y 3B. Determine el pH en cada uno de ellos y coloque el resultado en el cuadro. Cierre los tubos y no confunda lo tapones.
Nombre del aminoácido
A Estado Físico
B Color
C Soluble en agua SI/NO
pI (Valor teórico
del punto isoeléctrico)
D pH
Valor numérico /
ácido, básico,
neutro
Alanina
6.01
Ácido Aspartico
2.77
Arginina
10.76
2. PROPIEDADES QUIMICAS
2.1Prueba de Biuret: Se utiliza para determinar la presencia de enlacespeptídicos presentes en péptidos y proteínas. El ión Cu+2 de color azul, forma un complejo violeta o morado en medio básico.
MATERIAL APORTADO POR EL ESTUDIANTE
Kit de laboratorio
Fósforos o encendedor
Equipo de Protección Personal
67
Siga el procedimiento que se le indica en el siguiente cuadro.
Tu
bo
Coloque 1 ml de: Agregue Agregue
Manifestación
( violeta o
morado)
Resultado
(+ / -)
Presencia de
enlace péptido
Si / No
1 Albúmina al 10%
5 gotas NaOH al
20% Agite
2 gotas de
CuSO4 al
0.2% Agite
2 Colágeno al 3%
3 Agua
4 Lípido (solución
clorofórmica)
5 Carbohidrato
6 Leche (descremada)
2.2 Reacción Xantoproteíca: Las proteínas que en su secuencia presentan aminoácidos con cadenas laterales con anillos aromáticos (Fen, Tir,Trp), experimentan nitración del anillo aromático al ser tratadas con HNO3 concentrado, calor y medio básico. Se obtienen precipitados blancos, que al calentarse se tornan amarillos y al añadir una base se tornan a compuestos anaranjados. La reacción debe evaluarse de forma inmediata ya que con el tiempo el color tiende a palidecer. Ecuación no completa de un aminoácido.
Proceda según el siguiente cuadro:
Tubo
Coloque 1ml de
-Con precaución Añada 5 gotas de HNO3conc.-Agite y caliente el tubo en un mechero de alcohol hasta ebullición.
En
fríe
y a
ñad
a d
e
10 a
15 g
ota
s d
e
Na
OH
al 2
0%
Manifestación Anaranjado
si / no
Resultado + / -
Proteína con aa
aromáticos Si /No
1 Albúmina al 10%
2 Colágeno
al 3%
68
2.3 Prueba de Ninhidrina: Esta prueba es positiva tanto para proteínas como para aminoácidos. La ninhidrina reacciona con todos los α-aminoácidos dando lugar a la formación de un complejo color purpura cuyo pH se encuentra entre 4 y 8. Solamente prolina e hidroxi-prolina dan lugar a complejos de color amarillo. En aquellos casos donde la prueba de Biuret es negativa y la de Ninhidrina es positiva, indica que no hay proteínas, pero si hay aminoácidos libres. Aplicación: Ésta prueba es comúnmente usada en química forense para detectar huellas dactilares, debida a que en dichas huellas quedan restos de aminoácidos de proteínas que pueden reaccionar dando el color característico. La reaccion ocurre en dos pasos.
a. Durante la primera reacción, se consumen dos equivalentes de Ninhidrina por cada aminoácido. El aminoácido se oxida, descarboxilándose y liberando amonìaco, mientras que uno de los equivalentes de Ninhidrina se reduce a Hidrindantina.
b. En el segundo paso la Hidrindantina formada y otro equivalente de Ninhidrina, reaccionan con el amonìaco, formando un complejo de color púrpura (Púrpura de Ruheman)
Proceda según el siguiente cuadro:
Tu
bo
Coloque 1 ml de:
Ajuste el pH (4-8)
Agregue
10 gotas de solución de
Ninhidrina al 0.2%
Agite
Coloque en
baño de marìa
en ebullición
durante 5
minutos
Resultado
(+ / -)
1 Albúmina al 10%
2 Colágeno al 3%
3 Agua
4
Carbohidrato
5
Leche
(descremada)
Ninhidrina Aminoácido Hidrindantina
Ninhidrina Hidrindantina Complejo color púrpura
69
2.4 Prueba de Sulfuro Es una prueba positiva para aminoácidos y proteínas que contienen azúfre. Al calentar el aminoácido en medio fuertemente alcalino, el azufre presente reacciona para formar sulfuros. Este sulfuro puede detectarse por la formación de un precipitado negro de sulfuro de plomo por adición de acetato de plomo.
R-SH + 2 NaOH → ROH + Na2S + H2O
Na2S + (CH3COO-)2 Pb → 2 CH3COONa + PbS
Tu
bo
Coloque 1 ml de:
Agregue 5 mL de
NaOH 20%
Agregue
10 gotas de solución de Acetato de Plomo II al 0.2%
Agite
Lleve
a
ebullición
(use
mechero
de alcohol)
-Resultado
(+ / -)
-Manifestación
1 Agua
2 Colágeno
3 Albúmina de
huevo al 10%
4 Leche
(descremada)
V. ANÁLISIS DE RESULTADOS
VI. CONCLUSIONES
VII. CUESTIONARIO 1. Elabore la estructura e indique el nombre de los aminoácidos que se pueden detectar
con la reacción Xantoproteíca. Encierre en un círculo el componente responsable de
dar la reacción positiva.
2. Se tienen dos proteínas con las siguientes secuencias repetitivas:
“A” Val-tir-ser-fen-leu- tre-trp-ala-gli-fen-met
“B” Cis-val-ser-gli-leu-ile-asp-met-ser-pro-arg
70
En base a las secuencias indique que reacciones darían + ó - y ¿por qué? Proteína Biuret
+ / -
Xantoproteica
+ / -
Sulfuro Ninhidrina ¿Por qué se obtienen los resultados
anteriores?
“A”
“B”
3. El compuesto responsable de la manifestación en la prueba de Sulfuro es:
4. Elabore las siguientes estructuras:
Alanina a pH 4 Alanina a pH 8
5. Elabore la estructura e indique el nombre de los aminoácidos que se pueden identificar
con la prueba de Sulfuro:
VIII. BIBLIOGRAFIA:
1. Fratti de Del Cid, Isabel. Práctica de laboratorio, Propiedades físicas y químicas de
alcoholes y fenoles, Unidad Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas,
Universidad de San Carlos de Guatemala, 2017.
2. Horton,H.et al. Principios de Bioquímica. 4ta. Ed. Pearson. México. 2008.
3. Timberlake, Karen. Química general, orgánica y biológica. Estructuras de la vida. 4a. ed. México: Pearson Educación; 2013. 936 p.
Nota: pregunte a su profesor la distribución de los materiales que los equipos de trabajo
deben llevar para la semana 30.
71
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS UNIDAD DIDÁCTICA DE QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 30
DESNATURALIZACIÓN DE PROTEÍNAS Y ACTIVIDAD ENZIMÁTICA Elaborado por Lucrecia Casasola de Leiva
I. INTRODUCCIÓN:
Las proteínas pueden desnaturalizarse cuando se alteran las interacciones entre los
aminoácidos de losgrupos Rque estabilizan sus estructuras secundaria, terciaria o
cuaternaria. Al desnaturalizarse se destruye su forma, precipitan como un coágulo, y
pierden su actividad biológica.
La desnaturalización puede ser causada por factores físicos como calor, agitación o bien
factores químicos comosustancias ácidas o básicas, ciertos compuestos orgánicos, iones de
metales pesados como mercurio y plomo.
Las enzimas son estructuras proteicas con efectos catalizadores como por ejemplo las
peptidasas que provocan la hidrólisis de los enlaces peptídicos de las proteínas, las
oxidasas pueden provocar la oxidación de compuestos.
Estas enzimas pueden estar presentes en algunos alimentos de consumo diario como la
piña que contiene la enzima bromelina (peptidasa) y la zanahoria que contiene una enzima
peroxidasa (oxidasa).
En esta práctica de laboratorio se observarála pérdida del efecto catalizador (desactivación)
de las enzimas bromelina y peroxidasa al ser desnaturalizadas por calentamiento, la pérdida
de la capacidad de coagulación o endurecimiento de la gelatina (colágeno) por efecto de su
hidrolisis provocada por una enzima y también observaremos la coagulación en forma de
precipitado de la clara de huevo (albúmina) al ser desnaturalizada por efecto de calor y
agentes químicos.
II. OBJETIVOS
1- Observar la acción enzimática de una peptidasa (bromelina de la piña) sobre el sustrato
gelatina (colágeno) que no se endurece yla de una oxidasa (peroxidasa de la zanahoria)
sobre el sustrato peróxido de hidrógeno (agua oxigenada H2O2) que se descompone en
agua e hidrógeno.
2- Provocar la desnaturalización (desactivación) de la enzima bromelina de la piña (peptidasa)
y de la peroxidasa de la zanahoria (oxidasa) por acción del calor.
3- Observar la pérdida de la acción enzimática (desactivación) de la bromelina sobre el
sustrato gelatina (no se endurece) y de la peroxidasa sobre el H2O2 (no se descompone).
4- Provocar la desnaturalización de la albúmina por acción del calor y de agentes químicos
(precipitación).
72
III. MATERIALES (REACTIVOS Y
EQUIPO)
1. Gradilla para tubos de ensayo 2. Erlenmeyer de 150 ó 250 ml 3. Termómetro 4. Mechero de alcohol 5. HCl conc. 6. Etanol absoluto 7. Pb(NO3)2 al 2% p/v 8. Hg(NO3)2 al 2% p/v
Nota: El jugo de piña debe ser natural (no envasado) recién exprimido, puede traerlo de su casa. IV. PROCEDIMIENTOS
1. ACTIVIDAD DE LA BROMELINA SOBRE LA GELATINA. a) Preparación de la gelatina: en un Erlenmeyer caliente 150mL de agua caliente,
disuelvael contenido de un sobrecito de gelatina sin sabor (aprox. contiene 7.5 g),
espere que se enfríe.
b) Jugo de la cáscara o pulpa de piña: en un beacker recolectarlo y pasarlo por el
colador.
c) Divida el jugo obtenido en 2 tubos de ensayo:
TUBO A: Preparación de la BROMELINA INACTIVA (jugo cocido).
Caliénte el tubo directamente en el mechero hasta ebullición.
TUBO B:BROMELINA ACTIVA(jugo crudo)Dejarlo sin calentar.
RESÉRVARLOS.
.
d) Preparación del sustrato (gelatina):numere 3 tubos de ensayo y agregue a cada uno 3
ml de la gelatina disuelta (debe estar aproximadamente a 3Oo C) y proceda de acuerdo
al siguiente cuadro:
*APORTADO POR LOS ESTUDIANTES 1. EL KIT DE LABORATORIO 2. EQUIPO DE PROTECCIÓN PERSONAL 3. Cáscara de piña o rodaja de piña cruda
(para obtener el jugo fresco) 4. Un trozo de zanahoria crudo 5. Un trozo de zanahoria cocido 6. Colador fino, pequeño de plástico 7. 6-8 cubos de Hielo** 8. 1 sobre de gelatina sin sabor ** 9. 1 frasco de agua oxigenada (peróxido de
hidrógeno H2O2)** 10. 2 claras de huevo**
TODOS EN EL LABORATORIO**
Ponerse de acuerdo, solo se necesita:
1 sobre de gelatina, 1 frasco de agua
oxigenada, 2 claras de huevo y el hielo.
73
Tubo 1 Tubo 2 Tubo 3
3 ml de gelatina +
5 gotas de jugo de piña crudo (enzima activa)
AGITAR
3 ml de gelatina +
5 gotas de jugo de piña cocido(enzima inactiva)
AGITAR
3 ml de gelatina
(control negativo)
• DEJAR EN REPOSO POR 5 MINUTOS
• LUEGOCOLOCAR LOS TUBOS EN HIELO POR 15 MINUTOS Y OBSERVAR.
e) OBSERVE Y ANOTE UNA X EN LOS CUADROS CORRESPONDIENTES
Tubo 1 TUBO 2 TUBO 3
Formación de gel (endurecimiento)
Enzima activa
Enzima inactiva
Proteína del sustrato hidrolizada
Enzima desnaturalizada
2. ACTIVIDAD DE LA PEROXIDASA SOBRE EL PERÓXIDO DE HIDROGENO (agua
oxigenada H2O2 )
Proceda conforme el siguiente cuadro:
Tubo
Coloque
3mL de
agua
oxigenada
Agregue
Se libera
gas (O2)
Si/No
Hay actividad
catalítica
Si/NO
La reacción es
Rápida o lenta
1 Control negativo
NO tieneenzima
2
Trozo de zanahoria
cruda.Enzima
activa
3
Trozo de zanahoria
cocida. Enzima
inactiva
74
3- DESNATURALIZACIÓN DEPROTEÍNAS Numere cinco tubos de ensayo y proceda según se indica en el siguiente cuadro.
Tubo
No.
Añada 2 mL de Albúmina (clara de
huevo) PURA
Agregue Manifestación
(coágulo blanco)
Desnaturalizacion (+ / -)
1 Calor con el mechero de alcohol
2 10 gotas de etanol absoluto
3 10 gotas de Pb(NO3)2
4 10 gotas de Hg(NO3)2
5 5 gotas de HClconc.
V. ANÁLISIS DE RESULTADOS:
VI. CONCLUSIONES:
VII. CUESTIONARIO
1. ¿Qué moléculas proteicas se desnaturalizaron durante la práctica y cuáles de sus
interacciones o enlaces se afectaron?
2. La gelatina con jugo de piña no se endureció por la siguiente razón:
a) El jugo de piña se calentó y la bromelina estaba activa
b) El jugo de piña estaba crudo y la bromelina se desnaturalizó
c) El colágeno de la gelatina se hidrolizó cuando se calentó
d) El jugo de piña estaba crudo y la proteasa activa hidrolizó el colágeno
e) Porque la gelatina se desnaturalizó
3. ¿Qué proteínas se hidrolizaron durante la práctica, cuáles de sus interacciones o
enlaces se alteraron y que niveles estructurales perdieron?
75
4. Escriba la ecuación de la descomposición del peróxido de hidrógeno con su catalítico
5. ¿Qué aminoácidos y que interacciones de la queratina se alteran en el alisado o rizado
permanentedel cabello?
VIII. BIBLIOGRAFÍA
1. Manual de Prácticas de Laboratorio. Unidad Didáctica de Química, Facultad de Ciencias Médicas. USAC.2016.
2. Timberlake, K. Química. Cuarta edición. Pearson. 2013.
76
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS, CUM UNIDAD DIDÁCTICA QUÍMICA, PRIMER AÑO
PRACTICA DE LABORATORIO 2018
SEMANA 31
IDENTIFICACIÓN DE UNA MUESTRA DESCONOCIDA No. 3
Elaborado por: Lic. Pedro Guillermo Jayes Reyes
INTRODUCCION
En ésta muestra desconocida cada estudiante deberá identificar a través de ensayos
químicos, alguna de las siguientes biomoléculas:
a. Carbohidrato (almidón o azúcar reductor o no reductor).
b. Lípido (saturado o insaturado).
c. Proteína (con aminoácidos aromáticos o sin aminoácidos aromáticos)
Para realizar esta identificación utilizará una marcha analítica que lo guiará por UNA SOLA
RUTA hasta identificar la muestra. Una marcha analítica consiste en una secuencia de
procesos químicos que selectivamente van separando las distintas especies químicas, en
este caso biomoléculas.
Es necesario que el estudiante reconozca las manifestaciones de las pruebas químicas o
alguna característica física que lo conducirá a diferenciar la biomolécula, y de esta manera
llegará a especificar la biomolécula de la muestra desconocida.
Al finalizar la marcha analítica, deberá entregar el informe de esta identificación, donde
reportará únicamente las pruebas químicas que realizó según la ruta que siguió. Siendo
éste un examen práctico individual, el estudiante debe seguir las reglas del mismo.
OBJETIVOS
1. Identificar una Biomolécula a través de pruebas químicas. 2. Seguir una marcha analítica para la identificación de la muestra desconocida. 3. Elaborar un informe con los resultados obtenidos.
REACTIVOS Y MATERIALES
a. CuSO4 al 0.2%, b. NaOH al 20% c. HNO3 Concentrado d. Lugol e. Solución de Yodo f. Reactivo de Benedict g. Estufa eléctrica h. Baño de María i. Mechero de alcohol j. Gradilla
* MATERIAL APORTADO POR LOS ESTUDIANTES
a. Tubos de ensayo limpios y secos (4 a 5) b. Pipeta de transferencia de 1mL o de 3mL c. Pinza para tubo de ensayo d. Marcador permanente o cinta adhesiva (masking
tape) e. Fósforos f. Equipo de protección personal
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PROCEDIMIENTO
Este es un examen NO DEBE consultar con nadie NI con su catedrático. Utilice tubos de
ensayo, limpios y secos.
1. El catedrático le proporcionará en un tubo de ensayo su muestra desconocida identificada
con números o letras.
2. La Marcha Analítica le servirá de guía para sus procedimientos.
3. Debe utilizar pequeñas cantidades de su muestra para realizar cada prueba, teniendo el
cuidado de dejar una porción en caso tenga que repetir alguna de las pruebas.
4. Utilice un tubo diferente para cada una de las reacciones que realizará. No debe hacer 2 o
más reacciones en el mismo tubo de ensayo.
5. Realice la primera reacción química que le indica la MARCHA ANALÍTICA, utilizando las
cantidades de reactivo que se le indican.
6. Al obtener el primer resultado, debe seguir la ruta que le indica la marcha. Debe continuar
por UNA SOLA RUTA hasta identificar la biomolécula.
7. Anote sus resultados a lapicero en la hoja de informe, INDIQUE ÚNICAMENTE LAS
REACCIONES REALIZADAS EN LA RUTA QUE SIGUIÓ EN LA MARCHA ANALÍTICA. No
tache ni utilice corrector.
8. Indique la biomolécula identificada como PROTEINA CON AMINOACIDOS AROMATICOS,
PROTEINA SIN AMINOACIDOS AROMATICOS, ALMIDON, AZUCAR REDUCTOR,
AZUCAR NO REDUCTOR, LIPIDO SATURADO O LIPIDO INSATURADO.
9. Entregue el informe a su catedrático en el tiempo establecido. Además deberá enseñarle los
tubos de ensayo con las pruebas efectuadas.
10. El área de trabajo debe quedar limpia y los reactivos y equipo utilizado en su lugar.
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MARCHA ANALITICA PARA LA MUESTRA DESCONOCIDA No.3
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