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MONITOREO FITOSANITARIO EN EL CULTIVO DE ARROZ EN COLOMBIA
CÓDIGO
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PROTOCOLO MONITOREO FITOSANITARIO EN EL CULTIVO DE ARROZ EN COLOMBIA
1. JUSTIFICACIÓN
Bajo los actuales criterios de producción sustentable, el manejo exitoso de las explotaciones agrícolas
se logra con una alta productividad a partir del manejo eficiente de los recursos de producción y con el
menor impacto ambiental o la mitigación de los efectos adversos causados por la actividad productiva;
estas acciones involucran distintas medidas a implementar desde el mismo momento en que se toma
la decisión de realizar un proceso productivo agrícola y para esto se requiere garantizar con certeza la
calidad fitosanitaria de los cultivos de arroz. Los agricultores arroceros en el país han registrado en
sus diferentes zonas de producción pérdidas en sus cosechas hasta del 70% por una interacción entre
factores biológicos, fisiópatos, factores iatrogénicos y factores genéticos, lo que hace que sea
necesario que se cuente con información real de la presión de plagas y enfermedades por zona.
Los problemas fitosanitarios no se presentan con la misma intensidad todos los años, puesto que la
variación en las condiciones del clima afectan el comportamiento tanto del cultivo como de los
enemigos biológicos, es por ello que una de las funciones más importantes de Fedearroz- FNA debe
consistir en evaluar el riesgo que representan los organismos dañinos durante el ciclo del cultivo de
arroz, para asi determinar la aplicación oportuna de medidas preventivas de protección del cultivo. El
concepto de monitoreo no abarca solamente la verificación de la etapa de desarrollo y la densidad de
población del enemigo biológico a través de muestreo. La estrategia para el monitoreo debe
comprender la inspección continua de el Clima, el Cultivo y el organismo dañino para tratar de
determinar con precisión los períodos en que se presentaran, las condiciones favorables para la
aparición de una plaga o enfermedad, incluyendo si es posible la utilización de los modelos de
simulación para llevar a cabo pronósticos del comportamiento del cultivo y la plaga, aprovechando los
reportes diarios de clima de las estaciones agroclimáticas disponibles en este momento.
De esta manera, el monitoreo proporcionara elementos de decisión sumamente importantes para el
diseño de los muestreos de campo, ajustando éstos a la verificación de predicciones realizadas
mediante algunos modelos planteados y a la medición efectiva y precisa en los períodos en que se
presenten condiciones de riesgo para el desarrollo de problemas fitosanitarios, lo cual permitira la
emisión de boletines sobre el riesgo fitosanitario a nivel semanal, quincenal o mensual, según se
requiera. (SIAFEG, 2011)
2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
1) Determinar los niveles de infestación de insectos plaga y artrópodos de importancia económica
en el cultivo del arroz.
2) Determinar los niveles de infección de patógenos de importancia económica en el cultivo en
diferentes etapas de desarrollo del cultivo del arroz.
3) Determinación de parasitoides y entomopatógenos y sus niveles en los campos de producción.
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4) Realizar correlaciones entre el comportamiento climático estacional y los niveles de infección o
infestación registradas para plagas y patógenos del cultivo del arroz en las zonas arroceras del
país
5) Producir un boletín semanal, quincenal, bimensual? sobre los niveles de infestación, presencia
o infección de las principales plagas del arroz por zonas de producción.
3. MATERIALES Y MÉTODOS
Se realizara un monitoreo sanitario de enfermedades, insectos plaga, parasitoides y
entomopatogenos.
MONITOREO DE ENFERMEDADES
Cualquier método de estimación debe tener un objetivo básico que permita a los investigadores
obtener resultados que puedan ser precisos, fácilmente reproducibles y comparables, descriptibles,
eficientes, rutinarios y costeables; el gasto de tiempo utilizado para desarrollar un sistema exitoso de
evaluación, bien vale la pena. La mayoría de los métodos utilizados para registrar incidencia y
severidad de la enfermedad, se basan en estimaciones de los síntomas de la enfermedad o en las
perdidas del rendimiento. En el caso de muchas enfermedades, su estudio intensivo ha permitido
comprender mejor el significado de los síntomas individuales y su importancia potencial en las
diferentes etapas del ciclo de vida del hospedero.
Se conoce una amplia gama de métodos de medición de la enfermedad que incluyen desde
inspecciones directas en el campo hasta el uso de sensores remotos; sin embargo no existe un
método consistente. Cualquier método seleccionado, debe permintir establecer una correlación entre
la intensidad de la enfermedad y la reducción del rendimiento del cultivo.
En cualquier evaluación, debe registrarse una información básica para cada enfermedad. En general
se debe tener información sobre:
Los lugares en donde la enfermedad generalmente ocurre bajo condiciones ambientales
normales
Tamaño de la muestra
Método de muestreo
Numero de repeticiones dependiendo de la variabilidad del patosistema
Etapa de crecimiento del cultivo
Órgano evaluado o plantas individuales evaluadas
Escalas de tiempo utilizadas en la evaluación
Tipo de escala de evaluación de la severidad de la enfermedad
Evaluador
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En la estimación de la incidencia o la severidad es importante determinar previamente el tipo de
muestreo o recorrido en el campo, el cual depende de factores como el tamaño y marco de siembra
de la plantación y los objetivos que persiga la investigación. Cualquiera que sea el método de
muestreo seleccionado, se recomienda no tomar muestras de los bordes de la plantación, evitar la
preferencia personal por las plantas o tejidos con mayor enfermedad y hacer un muestreo de un
numero determinado de plantas. Figura 1 (Achicano, 2000)
De acuerdo a lo anterior la propuesta de monitoreo fitosanitario en cuanto a enfermedades seria:
1. Las zonas arroceras donde se realizaría el monitoreo serian: zona centro: sub-zonas
productoras de influencia a la presencia de Técnicos de Fedearroz (Venadillo, Lerida, Armero,
Ambalema Tolima-Norte); (Alvarado, Piedras, Ibagué Meseta-Centro); (Espinal, Coello, Guamo -
Espinal); (Saldaña, Purificación, Prado, Natagaima, Tolimia-Sur); (Aipe, Villa Vieja Huila-Norte);
(Neiva, Palermo, Juncal Huila-Centro); (Campoalegre Huila-Sur). zona Llanos: sub-zonas (Meta:
Ariari, Vista hermosa, Castilla la nueva, Villavicencio, Puerto Lopez, Villanueva y el viento vichada;
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Casanare: Aguazul, Tauramena, Nunchia, San Luis de Palenque, Mani, El pauto, Pore, Trinidad).
Zona Caribe Humedo (¿????). Zona Caribe seco (¿???). Las enfermedades que se evaluaran se
observan en la Tabla 1.
ENFERMEDAD AGENTE CAUSAL ó VECTOR
Telemorfo (=Anamorfo)
Escaldado de la hoja Monographella albescens (=Microdochium oryzae;
Sin. Gerlachia-Rhynchosporim)
Añublo de la vaina Thanethoporus cucumeris (=Rhizoctonia solani)
Manchado del grano Bipolaris oryzae, Cercospora oryzae, Curvularia
lunata, Fusarium spp, Cladosporium spp, etc)
Virus Necrosis Rayada Arroz
“Entorchamiento”
Vector ( Polymyxa graminis)
Pudrición de la vaina Sarocladium oryzae
Cercosporiosis ( Mancha
estrecha)
Sphaerulina oryzina (=Cercospora sp)
Pudrición café de la vaina
(Crown Sheath Rot)
(Gaeumannomyces graminis ;Sin
Ophiobolus s.)
Virus Hoja Blanca Vector (Tagosodes orizicolus)
Enfermedades Bacteriales en
panicula
Burkorderia glumae, Burkorderia gladioli,
Pseudomonas fuscovaginae, Spseudomonas avenae
Anublo del arroz Magnaporthe grisea (=Pyricularia grisea)
Añublo del Arroz Panicula Magnaporthe grisea (=Pyricularia grisea)
Mancha Marron
(Helminthosporiosis)
Cochliobolus miyabeanus (=Bipolaris oryzae,
Drechslera oryzae)
Helminthosporium Panicula
(Sarna de las orejas)
(Bipolaris oryzae, Cercospora oryzae, Curvularia
lunata, Fusarium spp, Cladosporium spp,)
2. tamaño de la muestra: en cuanto a este punto me he estado asesorando por Danny el
estadístico de investigaciones económicas de Saldaña que puede ser similar a lo que
discutieron con Myriam cristina
Este punto se relacionaría con el número de fincas a monitorear o lotes a monitorear para ser
representativo de la sub-zona evaluada. El muestreo por grillas es un procedimiento similar a cuando
se muestrea un lote con marcos de X metros cuadrados, donde dentro del marco se hace muestreo de
plantas o se puede hacer censo. En este caso se cuadricula el lote en el número total de marcos
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posibles y luego se hace un muestreo aleatorio simple para saber cuántos marcos se tomaran y en
una forma aleatoria para lograr la representatividad. Ese es el ejemplo más sencillo de un muestreo
con grillas. Sin embargo ahora se puede considerar un todo la vereda como un lote y realizar marcos
imaginarios de un tamaño mayor (ejemplo 1 km cuadrado) y seleccionar un numero de grillas
aleatorias. Dentro de cada grilla se seleccionan fincas o lotes dependiendo de la practicidad y así
mismo dentro de los lotes se realiza un muestreo por marcos o por transeptos sistemáticos. Como ven
este muestreo es en dos etapas.
Como en nuestro caso vamos a realizar el muestreo por finca y se podría tener el número total de
fincas (dato que nos podría dar investigaciones económicas de los resultados del censo), debemos
definir el nivel de precisión de lo que se va a medir, ya que existen diferencias significativas en el
tamaño de las fincas. Y cada finca requiere un número de muestras en su lote dependiendo de su
tamaño. En todo caso se puede usar la fórmula del muestreo aleatorio simple para definir el número
de fincas:
(S*Z)^2 todo dividido por e^2
Donde S es la desviación estándar del parámetro que se va a medir, Z es el valor de la distribución
normal asociado al nivel de confianza (para un 95% se utiliza 1.96) y e es un error de estimación en
las mismas unidades del parámetro a medir. Si el parámetro evaluado es un porcentaje, la desviación
es la raíz cuadrada de P(1-P). y el error e también es un porcentaje (el cual se esta dispuesto a
asumir, 5%, 10%, etc). La estimación de la desviación es a priori con información anterior o por
suposición nuestra. Después de tener el tamaño de muestra n se multiplica por el peso de cada
vereda y así sabríamos cuantas fincas corresponden a cada vereda. Esta información la obtendría de
acuerdo a la población que serian los datos del censo. Adjunto un ejemplo del cálculo del tamaño de
la muestra
Cálculo del tamaño de la muestra
En este caso, por “tamaño de la muestra” se entiende el número de niños que deben incluirse
en la encuesta.
Etapa 1: Cálculo del tamaño de la muestra de base
El tamaño adecuado de la muestra para una encuesta relativa a la población está
determinado en gran medida por tres factores: i) prevalencia estimada de la variable
considerada (en este caso, la malnutrición crónica);ii) nivel deseado de fiabilidad; y iii) margen
de error aceptable.
El tamaño de la muestra para un diseño de encuesta basado en una muestra aleatoria simple,
puede calcularse mediante la siguiente fórmula.
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Fórmula:
n= t² x p(1-p)
m²
Descripción:
n = tamaño de la muestra requerido
t = nivel de fiabilidad de 95% (valor estándar de 1,96)
p = prevalencia estimada de la malnultrición en la zona del proyecto
m = margen de error de 5% (valor estándar de 0,05)
Ejemplo
En el proyecto de Al Haouz en Marruecos, se ha calculado que cerca del 30% (0,3) de los
niños de la zona del proyecto padecen de malnutrición crónica. Este dato se basa en
estadísticas nacionales sobre malnutrición en las zonas rurales. Utilizando los valores
estándar indicados supra se efectúa el cálculo siguiente:
Cálculo:
Calcul:
n= 1.96² x .3(1-.3)
.05²
n = 3.8416 x .21
.0025
n = .8068
.0025
n = 322.72 ~ 323
Una vez definido el tamaño de muestra de las fincas que se van a monitorear, se sugiere de acuerdo
de la zona de evaluación determinar un area determinada de muestreo de acuerdo al area promedio
del tamaño de lotes en las diferentes zonas. Ejemplo para la zona centro 2 has. zona llanos 5-10 has.
y hacer el muestreo en diagonal.
3. Metodo de muestreo. Se realiza un monitoreo de evaluación en campo y un muestreo
destructivo para la confirmación de síntomas en algunas enfermedades. En cuanto al tipo de
muestreo propongo realizarlo en diagonal, el cual es uno de los recomendados para muestreos de
areas superiores a una hectárea como se observa en la figura 1. (b) Esto pensando en facilitar el
monitoreo de insectos plaga teniendo en cuenta que algunos de estos se muestrean teniendo en
cuenta borde, intermedio y centro.
4. En cuanto al número de repeticiones se plantea hacer la evaluación de 100 plantas, dato que nos
permitirá al analizar la información determinar la incidencia. Igualmente en cada una de estas plantas
de determinara el porcentaje de tejido afectado; información que nos permite tener la severidad. Con
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la información obtenidad se determinara la intensidad de la enfermedad, el índice de infección de la
enfermedad y en algunos casos se podría determinar la curva de progreso de una enfermedad.
5. Etapa de crecimiento: sugiero realizar el monitoreo en cuatro estados de desarrollo: tablas anexas
Estado de plántula
Estado de inicio de macollamiento
Estado de Maximo macollamiento
Estado de Floración-maduración
6. En cuanto al órgano evaluado se realizaran las evaluaciones en estado en plántula como
plantas individuales, en los estados de inicio de macollamiento y máximo macollamiento se evaluara
la penúltima hoja, en el estado de floración- maduración se evaluaran plantas individuales.
7. En cuanto a las escalas de tiempo las evaluaciones: Estado de plantula 12 ddg, inicio
macollamiento 15-18ddg, máximo macollamiento 40-45 ddg, 70-85 ddg dependiendo de la localidad y
el ciclo de la variedad y el semestre que se evalue.
8. En cuanto al tipo de escala de evaluación de la severidad de la enfermedad se propone
trabajar con los porcentajes de area de tejido afectado. En otras enfermedad se evaluara la incidencia
mediante la determinación de un valor: (1) presencia (0) ausencia. Para esto se tendrán como guía
algunas escalas de evaluación estándar del IRRI y otros esquemas.
9. Evaluador. El evaluador debe estar capacitado en el reconocimiento de síntomas y signos en
campo y en caso tal de tener duda de la sintomatología debe apoyarse en el diagnostico de los
laboratorios de Fitopatologia de la zona
MONITOREO DE INSECTOS PLAGA Y ARTROPODOS
1) DETERMINACION DE LOS NIVELES POBLACIONALES DE SPINKI: En el estado de floración se
recolectarán por predio mediante la técnica de muestreo aleatorio simple sobre una cuadricula de 3x3 por lote un
total de 27 macollas principales (3/cuadricula) de arroz con tres vainas en campos de producción de arroz en
cada zona respectiva y que se encuentren entre las etapas de máximo macollamiento y embuchamiento; estas
serán introducidos en bolsas plástica y remitidas al Laboratorio de Fitosanidad de la zona para determinación del
nivel de presencia del ácaro del vaneamiento del arroz.
2) DETERMINACION DE LOS NIVELES POBLACIONALES DE BARRENADORES: Con una frecuencia de cada
60 días se evaluarán para cada sub-zona mediante la técnica del muestreo aleatorio simple un total de 20 sitios
de un tamaño de un marco de 50x50 cm en campos de producción de arroz en cada sub-zona respectiva y que
se encuentren en etapa de espigamiento; en cada sitio se determinaran el numero total de tallos y el número
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total de tallos afectados por individuos de Diatraea sp. o Rupella sp. para determinación del nivel de infestación
de la población de barrenadores del arroz.
3) DETERMINACION DE LOS NIVELES POBLACIONALES DE ARTROPODOS CONTROLADORES
BIOLOGICOS DE INSECTOS: Con una frecuencia de cada 60 días se evaluarán para cada su-zona mediante la
técnica de jameo un total de 20 sitios realizando 20 pases dobles de jama en campos de producción de arroz en
cada zona respectiva y que se encuentren entre las etapas de máximo macollamiento y embuchamiento; en
cada sito se determinará el nivel de presencia o número (frecuecia) de individuos de los siguientes grupos
conocidos como control biológico: Arañas predatoras (Oxyopes sp., Tetragnatha sp.), Coccinélidos predatores
(Coleomegilla sp., Cicloneda sp,, Hippodamia sp.), Hymenopteros predatores (Polistes sp.) y parasitoides
(Cardiochiles sp., Telenomus sp., Trichogramma sp., Haplogonatopus sp.), Hemipteros predatores (Zelus sp.),
Neuropteros predatores (Chrysopela sp.) y Dipteros parasitoides (Tachinidos
4) DETERMINACION DE LOS NIVELES DE PARASITISMO DE INSECTOS: Con una frecuencia de cada 60
días en cada sub-zona mediante la técnica muestreo aleatorio simple y en total de 20 sitios en lotes que se
encuentren entre las etapas de máximo macollamiento y embuchamiento se recolectarán los individuos plaga
parasitados por parasitoides y entomopatógenos encontrados en campo durante las evaluaciones deberán ser
recolectados de manera individual en viales con perlas de silicagel y remitos al Laboratorio de Fitosanidad del
arroz en Saldaña para la identificación del parasito o entomopatógeno.
REGISTROS AGROMETEREOLOGICOS
Se recolectara la información de las estaciones agrometeorologicas de la zona quincenalmente y serán
enviadas a la subgerencia técnica y al especialista de la zona como herramienta de apoyo a la elaboración del
informe y boletín fitosanitario.
REGISTRO RENDIMIENTO
En el formato de registro de monitoreo será complementado con el rendimiento en kilogramos por hectárea.
Esta información es útil para relacionar el rendimiento con los efectos climáticos, patológicos y con la
infestación de insectos plaga.
EMISION DE UN BOLETIN FITOSANITRIO
Con una frecuencia mensual se emitirá de forma concertada con los técnicos de cada región a partir del análisis
de los resultados del monitoreo y diagnósticos de laboratorio el status fitosanitario de la zona productora
haciendo una correlación con la información ambiental registrada por las estaciones meteorológicas y los
rendimientos de cultivo..
ANEXOS
Sistemas de Evaluación Estándar de arroz (SEE)
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ESCALDADO DE LA HOJA
Agente causal
Monographella albescens (Microdochium oryzae) (sinonimo Gerlachia oryzae,
Rynchosporium oryzae)
Síntomas
Las lesiones ocurren principalmente cerca de las puntas de las hojas, pero algunas veces
inician en el margen de la lámina y desarrolla áreas grandes elipsoides cercadas por bandas
estrechas marrón oscuro acompañadas por un halo marrón claro.
Estados de crecimiento de evaluación: Inicio de panicula, Estado pastoso
Escala (Área Foliar afectada)
0 No hay incidencia
1 Menos del 1% (Lesiones apicales)
3 1-5% (Lesiones apicales)
5 6-25% (Lesiones apicales y algunas marginales)
7 26-50% (Lesiones apicales marginales)
9 51-100% (Lesiones apicales y marginales)
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AÑUBLO DE LA VAINA
Agente causal
Thanethoporus cucumeris (Rhizoctonia solani)
Síntomas
Las lesiones verde- grisáceo pueden crecer y unirse con otras lesiones, sobre todo en las
vainas mas bajas de la hoja, pero de vez en cuando en las hojas.
NOTA: La altura de la lesión relativa es la altura media vertical de la más alta lesión en la
vaina de la hoja o expresado como porcentaje de la altura promedio de las plantas
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Escala (basada en la altura relativa de la lesión)
0 ninguna infección observada
1 lesiones limitadas por debajo del 20% de la altura de la planta
3 20-30%
5 31-45%
7 46-65%
9 Mas del 65%
MANCHADO DE GRANO
Agentes causales
Especies: Sarocladium, Bipolaris, Alternaria, Gerlachia, Fusarium, Phoma, Curvularia,
Trichoconiella, and Psuedomonas.
Síntomas
Oscurecimiento de las glumas de las espiguillas del color marrón al color negro incluyendo el
daño de las glumas causado por uno o mas patógenos. La intensidad se extiende de la
decoloración esporádica a la decoloración de la gluma entera.
Estados de crecimiento de evaluación: Estado pastoso - Grano maduro
Escala IRRI
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NOTA: La severidad de la decoloración del grano puede ser estimada por el contando de
granos con mas del 25 % de la superficie de la gluma afectada.
Escala (Granos con glumas seriamente decoloradas)
0 No hay incidencia
1 Menos del 1%
3 1-5%
5 6-25%
7 26-50%
9 51-100%
AÑUBLO DEL ARROZ
Agente causal
Magnaporthe grisea (Pyricularia oryzae)
Las lesiones generalmente inician cerca de la punta de la hoja, en los márgenes de la hoja o
en ambos, y se extiende hacia abajo hacia fuera de los bordes. Las lesiones jóvenes son de
verde pálido a verde grisáceo, mas adelante pasa de amarillo a gris. En variedades muy
susceptibles, las lesiones podrían extenderse a la lamina foliar entera y a la ligula de la vaina.
En germinación causa marchites o muerte de plantas.
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GRADO DESCRIPCION
0 Ningún tipo de lesión
1 Pequeñas manchas cafés del tamaño de la cabeza de un alfiler o manchas
marrones más grandes sin centro de esporulación.
2 Manchas necròticas grises, pequeña, casi redondas, o ligeramente alargadas,
de 1-2 mm de diámetro con un màrgen café
3 El tipo de lesión es la misma como en la escala 2, pero un significativo número
de lesiones están sobre las hojas superiores
4 Lesiones típicas susceptibles de añublo de 3 mm o más largo, infectando menos
del 4% del área de la hoja
5 4-10% del área foliar afectada con lesiones típicas de Piricularia
6 11- 25% del área foliar afectada con lesiones típicas de Piricularia
7 26 - 50% del área foliar afectada, con lesiones típicas dePiricularia
8 51 - 75% del área foliar afectada con lesiones típicas de Piricularia
9 Mas del 75% del área foliar afectada
Ref: Sistema de Evaluación Estándar para Arroz IRTP (IRRI)
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AÑUBLO DE LA PANICULA
Agente causa
Magnaporthe grisea (pyricularia oryzae)
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Sintomas
Se forma inicialmente una mancha de color pardo grisáceo que rodea luego la base de la
panicula.
NOTA: Se realiza la evaluación en masa de la incidencia de piricularia en cuello de la
panicula, se cuentan solamente el numero de paniculas con lesiones que cubren
completamente alrededor de el nudo, cuello o parte baja del eje de la panicula (síntomas tipo
7-9) según la tabla siguiente
Estados de crecimiento de evaluación: Estado pastoso - Grano maduro
ESCALA PARA INTENSIDAD DE PIRICULARIA EN LA PANICULA
Grado Descripción Valor relativo
de intensidad
0 Sin lesiones visibles 0
1 Lesiones en una pocas ramas secundarias y pedicelos 10
3 Lesiones en varias ramas secundarias o primarias 20
5 Infección parcial en el eje o base de la panicula 40
7 Infección total alrededor del eje o la base de la panícula
con más del 30% de granos llenos
70
9 Infección total alrededor de la base de la panicula o del
entrenudo mas alto, con menos de un 30% de granos
llenos
100
Ref: Evaluación de enfermedades de arroz. Sang-Won Ahn, Patólogo, programa
de Arroz, CIAT. 1983
MNACHA PARDA O HELMINTHOSPORIOSIS
Agente causal
Cochliobolus miyabeanus (Bipolaris oryzae, Drechslera oryzae).
Síntomas
Típicas manchas en la hoja, pequeñas, ovaladas o circulares y café oscuras. Las mayores
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lesiones habitualmente tienen el mismo color sobre los ojos pero tienen usualmente un color
pálido en los ojos, normalmente un centro gris. La mayoría de las manchas tienen un halo
amarillo claro alrededor del borde externo
Escala (Área Foliar Afectada)
1 No hay incidencia
2 Menos del 1%
3 1-3%
4 4-5%
5 11-15%
6 16-25%
7 26-50%
8 51-75%
9 76-100%
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BIBLIOGRAFIA
http://www.siafeg.com/Monitoreo/monitoreo.htm
International Rice research Institute – IRRI. 2002. Standard Evaluation System for rice (SES). 5 th ed.
Manila, Philippines. 82 pag.
ACHICANO, H. 2000. Fundamentos de la epidemiologia Agricola. Universidad Nacional de colombia.
Medellin, Colombia. 187 pag.
Madden, L., Hughes G., Van den Bosch, F. 2008. The study of plant disease epidemics. 2 edition. The
amerycan Phytopathological Society. Minnesota . USA. 411 pag.
OBSERVACIONES: Cualquier modificación por procedimiento local o sugerencia adicional, sobre la
metodología de muestreo o procesamiento hacerla saber para modificar, cambiar o eliminar.
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