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“Recomendaciones para el Manejo del Pulgón Amarillo del Sorgo en el Norte de Sinaloa”.
Importancia del Cultivo de Sorgo
*México produce aproximadamente 6,308,000 toneladas de sorgo, lo que lo
posiciona en el tercer lugar de producción del grano, solo detrás de Estados
Unidos y Nigeria. Sinaloa, es el tercer estado con mayor producción de este
cereal, con un volumen anual de 677,000 toneladas, lo que representa el 10.7
% de la producción nacional. La producción y calidad de este grano se ve
limitada por diferentes factores, entre los que se encuentran las enfermedades
y plagas.
• El sorgo es el cultivo de segunda importancia en P-V en Sinaloa.
• Su siembra está sujeta a la disponibilidad de agua para riego en P-V.
Cultivo de Sorgo (Sorghum vulgare)en Sinaloa
Origen y Movilización del Pulgón Amarillo del Sorgo (PAS)
• Originario de África, clasificado como Melanaphis sacchari (Zehntner)
• Se introdujo a Estados Unidos de América, de Texas se pasa a
Tamaulipas en septiembre de 2013.
• De Tamaulipas al resto del país.
• En Sinaloa se detectó por primera vez en sorgo de temporal en
Agosto de 2014, en el Municipio de Culiacán.
• En los Municipios de Ahome, El Fuerte y Choix, lo detectamos por
primera vez en Noviembre de 2014, en zacate Johnson (Sorghum halepense)
Movilización del PAS en los últimos años
Búsqueda del insecto plaga en los Municipios de Ahome, El Fuerte y Choix
Primer reporte de PAS en al Zona de Influencia de la Junta Local de Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte, (Ahome, El
Fuerte y Choix, Sinaloa) durante la primera semana de noviembre del 2014, en maleza y plantas “voluntarias de sorgo”
Detección positiva del “PAS”, en zacates y sorgo “voluntario”
Cuadro 1. Zacates y plantas voluntarias , con presencia de “PAS” (Positivo).
(Aclarando que también se muestreó Maíz y caña de azúcar, con saldo negativo)
Nombre común Nombre científico No. de sitios
muestreados
% de sitio con
presencia de PAS
Zacate johnson Sorghum halepense 852 12
Sorgo voluntario Sorghum vulgare 252 32
Zacate sudán Sorghum sudanense 40 35
Sorgo forrajero Sorghum bicolor 15 53
1159
Muestras de especímenes sospechosos de “PAS” enviados a la
Dra. Rebeca Peña Martínez
Investigadora emérita de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto Politécnico Nacional
No. de Ejemplares Morfotipos
Colector responsable Determinación
Hembra vivipara Aptera
Hembra vivipara alada
Hembra ovípara alada
Macho alado
Ninfas alatoides Otros
800 794 5 1 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorghi
200 195 5 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorghi
60 56 1 3 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorghi
700 682 3 4 1 10 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorghi
26 10 6 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorgui
Rhopalosiphum maidis (10)
800 795 5 JLSVVF Melanaphis sacchari/sorghi
2,586
Capacitación Curso de Pulgón Amarillo del Sorgo
el Jueves 26 de marzo de 2015
Dirigido a Productores y técnicos, con investigadores de Tamaulipas
Búsqueda del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios con cultivo de sorgo en la zona de influencia de la Junta
Local de Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 31 de enero del 2015.
Búsqueda del PAS en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 28 febrero del 2015.
Búsqueda y primera detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 15 de marzo del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 16 al 31 de Marzo del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 15 de abril del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 16 al 30 de abril del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 15 de mayo del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 16 al 31 de mayo del 2015.
Búsqueda y detección del “PAS” en cultivos comerciales de Sorgo
Monitoreo del PAS en predios de sorgo en la zona de influencia de la Junta Local de
Sanidad Vegetal del Valle del Fuerte (JLSVVF) del 1 al 30 de junio del 2015.
• Se corroboró a Melanaphis sacchari (Zehntner).
• De 2586 especímenes, tres hembras aladas vivíparas y 26 hembras
aladas ovíparas, dos machos alados y 13 ninfas alatoides .
• Presencia de formas Holocíclicas. (Peña, 2015).
En México la presencia de formas Holocíclicas (que alterna generaciones
sexuales y parterogenéticas), con ambos tipos de reproducción y además
monoécicas o monoicas, es decir sobre la misma planta hospedante.
Determinación Taxonómica y Formas del PAS
Análisis de los resultados de muestras enviadas a la Dra. Rebeca Peña Martínez (Investigadora I.P.N.)
• Se corroboró a Melanaphis sacchari (Zehntner).
• De 2586 especímenes, tres hembras aladas vivíparas y 26 hembras
aladas ovíparas, dos machos alados y 13 ninfas alatoides .
• Presencia de formas Holocíclicas. (Peña, 2015).
Los clones que están en México han desarrollado una forma de resistencia
que es la producción de huevos y esto debe estudiarse en campo y/o
laboratorio de una manera detallada”.
Determinación Taxonómica y Formas del PAS
Análisis de los resultados de muestras enviadas a la Dra. Rebeca Peña Martínez (Investigadora I.P.N.)
• Se corroboró a Melanaphis sacchari (Zehntner).
• De 2586 especímenes, tres hembras aladas vivíparas y 26 hembras
aladas ovíparas, dos machos alados y 13 ninfas alatoides .
• Presencia de formas Holocíclicas. (Peña, 2015).
El ciclo biológico holocíclico provee a esta especie de una mayor
capacidada de adaptación, lo cual en parte explica su exitosa biología y lo
convierte en una plaga de gran importancia.
Determinación Taxonómica y Formas del PAS
Análisis de los resultados de muestras enviadas a la Dra. Rebeca Peña Martínez (Investigadora I.P.N.)
• Se inspecciona la presencia de PAS por el margen del cultivo.
• Se ingresa al cultivo por el sitio donde se detecten plantas infestadas.
• Se inspeccionan plantas cada cuatro o cinco pasos dirigiéndose hacia el centro del
cultivo.
Técnica de Muestreo
• Plantas fuera de tipo (mezclas) por alguna razón son las primeras en infestarse con
PAS.
Técnica de muestreo del PAS
Evaluación de Insecticidas Biorracionales
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
24 h 48 h 96 h 120 h
Neem 5000 Biodie Agrosoap Plus Testigo
Figura 1. Porcentaje de mortalidad del PAS con insecticidas biorracionales evaluados.
(H = 27.2008; JI-Cuadrada(0.05) = 7.8147, (0.01) = 11.3449.)
Pruebas de efectividad biológica (Extraordinaria)
CONTROL GENÉTICO Y QUÍMICO DEL PULGÓN
AMARILLO EN EL CULTIVO DE SORGO
JUNTA LOCAL DE SANIDAD VEGETAL
DEL VALLE DEL FUERTE
Datos generales de los dos lotes de experimentación:
Actividades:
Piqueo: 30 de diciembre
Dos rastreo: 2 de enero
Marca: 5 de enero
Riego: 9 de enero
Aplicación de Faena: 13 de febrero
Escarificación y fertilización: 19 febrero
Siembra a mano 10 híbridos: 20 de febrero (Lote 1).
Siembra con maquinaria para evaluación de control químico: 23 de febrero (Lote 2).
Efectividad biológica de plaguicidas contra el pulgón amarillo
10 m
1 m
10 m
11 2 6 7 3 8 4 13 10 9 12 1 5 15 14
11 2 6 7 3 8 4 13 10 9 12 1 5 15 14
11 2 6 7 3 8 4 13 10 9 12 1 5 15 14
11 2 6 7 3 8 4 13 10 9 12 1 5 15 14
calle
calle
calle
DISEÑO EXPERIMENTAL:
BLOQUES
COMPLETAMENTE AL AZAR
SUPERFICIE: 0.36HAS
1. TESTIGO
2. CIANTRANILIPROLE (BENEVIA)
3. CIANTRANILIPROLE + TIAMETOXAM (MINECTO DUO)
4. TIAMETOXAM (ACTARA 25 WG)
5. IMIDACLOPRID (PICADOR)
6. CLOTIANIDIM (CLUTCH)
7. SULFOXACLOR (TORETTO)
8. IMIDACLOPRID + L. CYALOTRINA (TEMPANO)
9. IMIDACLOPRID + BETACYFLUTRINA (MURALLA MAX)
10. TIAMETOXAM + L. CYALOTRINA (ENGEO)
11. ACETAMIPRID (RESCATE 20 SP)
12. PIMETROZYNE (PLENUM 50 GS)
13. FLONICAMID (BELEAF)
14. SPIROMESIFEN OBERON 240 SC)
15. CLORPIRIFOS (LORSBAN 480 EM)
Ingrediente activo Nombre comercial Dosis/ ha Presentación Precio Unitario Precio/ha
Thiametoxam Actara 25WG 300 g 600 g 1,634.52 817.26
Imidacloprid Picador 150 g 500 g 600.00 180.00
Sulfoxaflor Toretto 70 ml 1.0 L 2,992.00 209.44
Clotianidin Clutch 150 g 500 g 1,953.58 586.07
Pimetrozine Plenum 50 GS 200 g 1.0 Kg 2,722.00 544.40
Flonicamid Beleaf 150 g 150 g 629.00 629.00
Acetamiprid Rescate 20 SP 150 g 1.0 Kg 1,879.38 281.90
Ciantraniliprol Benevia 100 ml 500 ml 1,189.00 237.80
Spiromesifen Oberon 240 SC 400 ml 1.0 L 2,023.00 809.20
Clorpirifos etil Lorsban 480 EM 1.0 L 1.0 L 250.00 250.00
Ciantraniliprol
Tiametoxam Minecto Duo 500 g 600 g 2,213.00 1,844.16
Thiametoxam +
L. Cyalotrina Engeo 300 ml 1.0 L 1,425.00 427.5
Imidacoprid +
Betaciflutrin Muralla Max 300 ml 250 ml 261.00 313.2
Imidacoprid+
L. Cyalotrina Tempano 300 g 300 g 300.00 300.00
Testigo Agua 4.5 L -- -- 0.00
Cuadro 2. Insecticidas evaluados contra el PAS.
Caracteristicas de los Insecticidas evaluados
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
48 h
Figura 2. Porcentaje de mortalidad del PAS con insecticidas sintéticos evaluados 48 h DAT.
(H = 29.8125; JI-Cuadrada(0.05) = 23.6848, (0.01) = 29.1413.
Evaluación de insecticidas sintéticos (Resultado a las 48 horas)
0
20
40
60
80
100 48 h 120 h
Figura 3. Porcentaje de mortalidad del PAS con insecticidas sintéticos evaluados 48 y
120 h DAT. ANVA 120 H (H = 17.3193; JI-Cuadrada(0.05) = 23.6848, (0.01) = 29.1413.
Comparativo de resultados a las 48 y 120 horas
Hipotesis de la relación Tiempo-Efecto
Insecticidas % Mort. $/ha
Thiametoxam 79.8 817.26
Imidacloprid 83.4 180.00
Sulfoxaflor 87.1 209.44
Clotianidin 91.5 586.07
Pymetrozine 85.0 544.4
Flonicamid 97.4 629.00
Acetamiprid 95.3 281.90
Ciantraniliprol 78.4 237.80
Spiromesifen 54.8 809.20
Clorpirifos etil 86.6 250.00
Ciantraniliprol + Thiametoxam 95.8 1,844.16
Thiametoxam + L. Cyalotrina 90.8 427.50
Imidacoprid + Betacyflutrina 94.3 313.20
Imidacoprid + L. Cyalotrina 90.8 300.00
Cuadro 3. Porcentaje de mortalidad del PAS y costo de insecticida/ha.
Relación Costo-Beneficio
Producto Dosis Aplicación
Comando (Imidacloprid) 333 ml/ha Avión
Corax (Imidacloprid+ L. cyhalotrina) 350 gr/ha Tractor
Benevia (Cyantraniliprole) 100 ml/ha Avión
Comando + Lamda C (Imidacropid + L. Cyhalotrina) 400 gr/ha+400gr/ha Avión
Rescate (Acetamiprid) 200 gr/ha Avión
Rescate (Acetamiprid) 200 gr/ha Tractor
Picus (Imidaclorid) 0.5 L/ha Avión
Admire (Imidacloprid) 0.5 L/ha Avión
Tempano (Imidacoprid + L. Cyhalotrina) 300 gr/ha Avión
Seguimiento en lotes comerciales de sorgo P.V. 20015
Efectividad de Insecticidas en Parcelas Comerciales
Cuadro 4. Insecticidas asperjados en parcelas comerciales contra el PAS.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
48 h 100 h
% d
e co
ntr
ol
Benevia
Tempano
Imidacloprid
Imidacloprid+Lamba Cialotrina
Rescate/tractor
Corax
Admire
Picus
Rescate/avion
Evaluación de resultados a las 48 y 100 horas, después de aplicación
Figura 4. Efectividad de insecticidas en parcelas comerciales de sorgo, 48 y 100 h
después de la aplicación.
EVALUACIÓN DE GENOTIPOS DE SORGO CONTRA
PULGÓN AMARILLO
1. DKS 2805 (DEKALB)
2. M 355 (MAJESTIC)
3. NK 180 (NK)
4. PIONEER 85G47 (PIONEER)
5. PIONEER 8641 (PIONEER)
6. DKS 26 (DEKALB)
7. M 550 (MAJESTIC)
8. NUS 490 (NUSEED)
9. NUS 550 (NUSEED)
10. M 340 (MAJESTIC)
DISEÑO EXPERIMENTAL:
BLOQUES COMPLETAMENTE AL AZAR
SUPERFICIE: 0.36HAS
10 m
10 m
1 4 10 8 9 5 3 2 6
4 10 3 9 5 8 1
5 1 3 8 10
5 8 10 9 4 1 3
1 m
7
2 6 7
6 2 4 7 9
2 6 7
calle
calle
calle
Figura 5. Número promedio de plantas infestadas por PAS en 10 genotipos de sorgo.
Evaluación de la Respuesta de Genotipos de Sorgo al PAS
0
10
20
30
40
50
60
70
1er MUESTREO 2do MUESTREO M. (floración) M. (llenado de grano)
• Es importante dejar claro que existen tres mecanismos
principales de la resistencia vegetal:
• 1. No preferencia o antixenósis, en la que el fitoparásito no acepte a la planta como
recurso o la aceptación es relativamente limitada.
• 2. Tolerancia, la que consiste en que la planta a pesar de que sufre un daño
determinado por la plaga es capaz de tener un desarrollo y rendimiento
relativamente normal.
• 3. Antibiósis, consiste en que la planta posee metabolitos secundarios que al ser
ingeridos por un insecto plaga provocan en él un efecto detrimental, que
generalmente se manifiesta en forma subletal (reducida capacidad de reproducción,
falla en alcanzar estados superiores de desarrollo, individuos deformes) que al final
pueden desencadenar en la muerte del individuo, e incluso se manifiesta en forma
aguda letal. Dichos mecanismos conforman la resistencia vegetal (la inmunidad es
otra cosa).
• Considerando las definiciones anteriores,
También se evaluó el porcentaje de fumagina en
el follaje y el rendimiento de cada uno de los
materiales, de tal manera que por lo pronto
sugerimos los materiales señalados.
• En cuanto a la posible tolerancia y/o resistencia genética de los distintos
híbridos de sorgo, al ataque y colonización del Pulgón Amarillo del Sorgo.
• Es importante aclarar que es necesario seguir validando estos y otros
materiales de sorgo, donde se conjuguen:
• 1.- Distintas fechas de siembra.
• 2.- Los lotes de evaluación deberán estar en diferentes regiones
productoras, por los diferentes microclimas que existen entre ellas.
• 3.-Incluso habrá que darle seguimiento en este aspecto, a los lotes
comerciales que se establezcan en el presente ciclo de P.V. 2016.
Eupeodes americanus (Wiedemann)
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Allograpta oblicua (Say)
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Hippodamia convergens Guérin-Méneville
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Cycloneda sanguinea (L.)
Scymnus sp.
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Coleomegilla maculata De Geer.
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Chrysoperla spp.
Chrysoperla rufilabris.
Chrysoperla comanche.
Chrysoperla carnea.
.
Chrysoperla externa.
Determinación taxonómica de especies de Chrysopa, presentes en el Valle del Fuerte
Por el Dr. Isabel López Arroyo (INIFAP); Colector: JLSVVF
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Ceraeochrysa claveri (Navás)
Hemerobius sp.
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Aphelinus maidis Timberlake
Monitoreo de enemigos naturales del PAS en siembras comerciales de sorgo
Lisiflebus testaceipes (Cresson)
CONTROL BIOLÓGICO INDUCIDO
página web:
www.sanidaddelvalledelfuerte.org.mx
DIVULGACION en la Página Web
Recomendaciones para el manejo del PAS en Sorgo
1.- Establecer el cultivo lo más temprano posible dentro de la fecha de siembra autorizada.
2.- Adoptar los resultados de evaluaciones de efectividad biológica y de resistencia vegetal de la JLSVVF u otras Instituciones.
3.-Continuar con este tipo de estudios de investigación, experimentación, validación, etc.
4.- Es importante realizar muestreos adecuados, en tiempo y forma.
5.- Aplicaciones anilladas ayudan a controlar adecuadamente la presencia de la plaga.
6.- Existe la posibilidad de utilizar insecticidas alternativos, como jabones y extractos vegetales.
7.- El insecticida a utilizar para el control del PAS se debe seleccionar, considerando la etapa de desarrollo del cultivo y la presencia
de enemigos naturales.
8.- Es necesario vigilar la correcta aplicación de insecticidas para lograr el mejor cubrimiento y control.
9.- Realizar estudios para determinar los enemigos naturales y su impacto sobre el PAS, para definir agentes de control biológico,
reproducirlos en laboratorio y liberarlos en campo.
10.-Destruir la soca de sorgo, inmediatamente después de cosechar.
11.-Implementar medidas para reducir en lo posible las hospederas silvestres y plantas voluntarias de sorgo, previo al inicio
de las siguientes temporadas de cultivo.
12.-Desestimular la siembra de sorgo de temporal en verano, ya que este año regalaron semilla, terminando en un fracaso.
Ámbito de competencia de las recomendaciones
1.- Acuerdos en Consejo Distrital (SAGARPA) Comité Hidráulico (CONAGUA)
Ejecutores: Juntas de Sanidad Vegetal y Módulos de Riego.
2.- Técnicos y Productores.
3.- Instituciones de investigación en general (INIFAP, Universidades, Juntas locales de Sanidad Vegetal, etc.
4.- Técnicos asesores de los Productores.
5.- Técnicos y Productores.
6.- Técnicos y Productores.
7.- Técnicos y Productores.
8.- Productores.
9.- La JLSVVF, además de Trichogramma y Chrysopa, produce y libera Catarinita rosada.
10.-Productores de sorgo.
11.- Comunidad agrícola en general.
12.-Gobierno Federal y Estatal (SAGARPA y SAGyP). Estimular otros cultivos, ejemplo maíces forrajeros, etc.
En nombre de la A.A.R.F.S. y la J.L.S.V.V.F.
Gracias por su atención