atlas de parasitología

ATLAS DE

PARASITOLOGIA

Asesores Especializados en Laboratorios S.A. de C.V.

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Taxonomía

Introducción

Galería de imágenes

Examen coproparasitoscopico

Índice alfabético

Créditos

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I

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INDICE ALFABETICO

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Acanthamoeba spp

Ancylostoma brasiliense

Ancylostoma duodenale

Anisakis spp.

Ascaris lumbricoides

Angiostrongylus cantonensis

Angiostrongylus costaricensis

Babesia sp

Balamuthia mandrillaris

Balantidium coli

Blastocystis sp

Brugia malayi

Capillaria philipinensis

Clonorchis sinensis

Chilomastix meslini

Cryptosporidium parvum

Cyclospora cayetanensis SalirMenú

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Dientamoeba fragilis

Diphyllobotrium latum

Dipylidium caninum

Dracunculus medinensis

Encephalitozoon spp

Echinococcus granulosus

Echinococcus multilocularis

Endolimax nana

Entamoeba coli

Entamoeba hartmanni

Entamoeba histolytica

Enterobius vermicularis

Enterocytozoon bieneusi

Enteromonas hominis

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Fasciola hepatica

Fasciolopsis buski

Giardia lamblia

Heterophyes heterophyes

Hymenolepis diminuta

Hymenolepis nana

Iodamoeba butschlii

Isospora belli

Leishmania braziliensis

Leishmania major

Leishmania mexicana

Leishmania donovani

Leishmania tropica

Loa loa

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Mansonella ozzardi

Mansonella perstans

Mansonella streptocerca

Metagonimus yokogawai

Naegleria fowleri

Nanophyetus salmincola

Necator americanus

Onchocerca volvulus

Opistorchis viverini

Plasmodium falciparum

Plasmodium malariae

Plasmodium ovale

Plasmodium vivax

Paragonimus westermanii

Pneumocystis cariniiSalir

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Retortamonas intestinalis

Sarcocystis sp

Septata intestinalis

Schistosoma haematobium

Schistosoma japonicum

Schistosoma mekongi

Schistosoma mansoni

Strongyloides stercoralis

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Taenia saginata

Taenia solium

Toxocara canis

Toxoplasma gondii

Trichinella spiralis

Trichomonas hominis

Trichuris trichiura

Trichomonas vaginalis

Trichostrongylus spp

Trypanosoma brucei gambiense

Trypanosoma brucei rhodesiense

Trypanosoma cruzi

Wuchereria bancroftiSalir

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CLASIFICACION TAXONOMICA

DE LOS PARASITOS

Parásitos protozoos

Parásitos Metazoos

Sarcomastigophoros

Ciliophoros

Apicomplexa

Helmintos

Platelmintos

Nematodos

Cestodos

TrematodosSalir

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principal

Entamoeba histolytica

Entamoeba coli

Entamoeba hartmanni

Endolimax nana

Iodamoeba butschlii

Naegleria fowleri

Acanthamoeba spp

Balamuthia mandrillaris

Giardia lamblia

Dientamoeba fragilis

Chilomastix meslini

Retortamonas intestinalis

Enteromonas hominis

Trichomonas hominis

Trichomonas vaginalis

Leishmania tropica

Leishmania major

Leishmania mexicana

Leishmania braziliensis

Leishmania donovani

Trypanosoma brucei gambiense

Trypanosoma brucei rhodesiense

Trypanosoma cruzi

Phylum: Sarcomastigophora

Subphylum:: Sarcodina Subphylum: Mastigophora

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Balantidium coli

Phylum: Ciliophora

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Plasmodium vivax

Plasmodium malariae

Plasmodium falciparum

Plasmodium ovale

Cryptosporidium parvum

Cyclospora cayetanensis

Toxoplasma gondii

Sarcocystis sp

Blastocystis sp

Isospora belli

Pneumocystis carinii

Encephalitozoon spp

Enterocytozoon bieneusi

Septata intestinalis

Babesia sp

Phylum: Apicomplexa

Subclase: Piroplasma Subclase: Coccidia Subclase: Microspora

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Ascaris lumbricoides

Enterobius vermicularis

Strongyloides stercoralis

Ancylostoma duodenale

Necator americanus

Trichostrongylus spp

Anisakis spp.

Toxocara canis

Mansonella ozzardi

Mansonella perstans

Mansonella streptocerca

Wuchereria bancrofti

Loa loa

Brugia malayi

Onchocerca volvulus

Dracunculus medinensis

Angiostrongylus cantonensis

Angiostrongylus costaricensis

Trichinella spiralis

Trichuris trichiura

Capillaria philipinensis

Phylum: Nematoda

Clase: AdenophoraClase: Secernentia

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Clonorchis sinensis

Fasciola hepatica

Fasciolopsis buski

Heterophyes heterophyes

Metagonimus yokogawai

Nanophyetus salmincola

Opistorchis viverini

Paragonimus westermanii

Schistosoma haematobium

Schistosoma japonicum

Schistosoma mekongi

Schistosoma mansoni

Diphyllobotrium latum

Dipylidium caninum

Echinococcus granulosus

Echinococcus multilocularis

Hymenolepis nana

Hymenolepis diminuta

Taenia saginata

Taenia solium

Phylum: Platelmintos

Clase: Cestoidea Clase: Trematoda

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El examen coproprasitoscopico es uno de los análisis para la detección

de parásitos más empleado en los laboratorios de análisis clínico,

existen para ello varios procedimientos para su realización, sin

embargo uno de los más empleados es el propuesto por la (NCCLS)

Este procedimiento de flotación sedimentación permite la separación

de quistes de protozoarios y huevos de helmintos de la materia fecal,

mediante el empleo de un líquido de alta densidad.

Los elementos parasitarios son recuperados en la película superficial

y los desechos permanecen en el fondo del tubo. Esta técnica deja una

preparación más limpia que los procedimientos de sedimentación; sin

embargo, la mayor parte de los huevos de helmintos no flotan; por lo

tanto no se observan por este método. Si se aumentará la densidad del

Sulfato de zinc pueden flotar, pero se distorsiona la morfología de los

organismos presentes y no se recomienda para el análisis de rutina, por

lo tanto, para asegurarse de la detección de todos los parásitos, se

debe de examinar la película superficial y el sedimento.

EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

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TECNICA DEL NCCLS PARA EL EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

1. Tamizar aproximadamente 1 g de materia fecal con solución salina (0.85%)

utilizando un frasco con malla y un agitador.

2. El material tamizado se recolecta en un tubo de 12 X 100 y se centrifuga

durante 10 minutos a 500 g.

3. Decantar el líquido sobrenadante.

4. Resuspender el sedimento con 1 o 2 mL de sulfato de Zinc.

5. Llevar el volumen con el sulfato de Zinc hasta 2 cm por debajo de la boca

del tubo.

6. Centrifugar 1 minuto a 500 g.

7. Dejar reposar durante 2 a 3 minutos.

8. Sin sacar los tubos de la centrifuga, tomar con una pipeta Pasteur una o dos

gotas de la película superficial o con un asa bacteriológica.

9. Colocar la muestra sobre el portaobjeto y añadir una gota de MIF o lugol.

10. Decantar el sobrenandante y con la misma pipeta Pasteur o con el asa, tomar

una muestra del sedimento y colocarla en un portaobjeto y añadir una gota

de MIF o lugol.

11. Observar al microscopio ambas preparaciones.

12. Informar lo observado en las preparaciones.Anterior

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Reactivos:

Solución acuosa de sulfato de Zinc: disolver 330 g de sulfato de zinc en

Aproximadamente 670 mL de agua destilada, ajustar la densidad a 1.2

cuando se trabaje con muestras fijadas en formol o 1.18 cuando se

trabaje con muestras frescas.

La densidad de la solución debe verificarse cuando menos una vez al mes.

Solución de lugol parasitológico:

Solución madre: Yodo metaloide 5 g

Yoduro de potasio 10 g

Disolver el yoduro de potasio en 20 mL de agua destilada, agregar el yodo

y disolver totalmente, aforar a 100 mL con agua destilada.

Solución de trabajo: solución madre: 1 volumen

agua destilada 3 volumenes

Solución yodoformolada de merthiolate (MIF):

Agua destilada 250 mL

Tintura merthiolate No. 99 200 mL

Formol 25 mL

Glicerina 5 mL

Mezclar perfectamente todos los componentes, la solución se conserva por

varios meses en frasco ámbar a resguardo de la luz.

Inmediatamente antes del empleo añadir 11.75 mL del reactivo más 0.75 mL

de solución madre de lugol.

GALERIA DE IMAGENES

Parásitos protozoos

Parásitos Metazoos

Sarcomastigophoros

Ciliophoros

Apicomplexa

Helmintos

Platelmintos

Nematodos

Cestodos

Trematodos

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Quiste de Entamoeba histolytica Trofozoito de Entamoeba histolytica

Quistes de Entamoeba histolytica

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