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BIOSEGURIDAD
EN
ODONTOLOGÍA
Doctor Pablo Emilio Correa Echeverri
Odontólogo CES
Cirujano Maxilofacial Universidad Javeriana
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CIRUGIA
QUIRÓFANO
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Protocolo quirúrgico
hospitalario
Líneas de demarcación:
Verde
Amarilla
Roja
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Ropa quirúrgica
Cirujano:
Pijama quirúrgica
Gorro
Mascarrilla
Polainas
Paciente:
Bata de cirugía
Gorro
Polainas
Campos accesorios o pañuelos
Campo Quirúrgico o de ojo
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Protocolo de asepsia
Cirugía oral
• Técnica aséptica
• Materiales estériles
• Pieza de mano, jeringa triple, perillas
• Campos quirúrgicos
• Instrumental estéril, no desinfectado
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Entidades
• OSHA: Administración en seguridad y
salud ocupacional
• OSAP: Organización para los
procedimientos de seguridad y asepsia
• CDC: Centro para el control y
prevención de enfermedades
• USAF dental investigation service
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Precauciones universales
Medidas diseñadas para prevenir la transmisión del VIH, VHB y otros patógenos transmitidos por sangre.
Deben ser usadas para atender a todos los pacientes dentales.
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Inmunización contra la hepatitis B
Todos los trabajadores de la salud
10 días luego de la contratación
Evaluación serológica 6 semanas a 6
meses luego de la tercera dosis
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Enjuague bucal
Antes de procedimientos para disminuir el
número de microorganísmos
Debe tener actividad residual que dure el
tiempo de la cita
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MÉTODOS DE
ESTERILIZACION
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AUTOCLAVE
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AUTOCLAVE VENTAJAS
• Rapidez al humedecer y calentar sólidos
• Buena penetración de textiles y ropa
• Fácil control de temperatura efectiva
• No hay residuos tóxicos
• Es económico
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AUTOCLAVE DESVENTAJAS
• El aire residual desciende la temperatura
• No esteriliza plásticos
• Requiere buena relación temperatura - tiempo
• Oxida el instrumental
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AUTOCLAVE RECOMENDACIONES
• Material lavado y seco
• Testicinta por dentro y por fuera (solo indica
calor)
• Marcar con fecha de vencimiento - Responsable
• Vencimiento: 8 días en papel
15 días en tela
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MONITOREO DE
ESTERILIZACIÓN
CONTROL BIOLÓGICO
Semanal
Tira de esporas bacilus subtilis (calor seco)
Stearotermophilus (vapor químico y autoclave)
Esporas de bacilos envasado en ampollas con
indicador de pH, se cultivan luego del ciclo de
control
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Control biológico
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MONITOREO DE
ESTERILIZACIÓN
CONTROL QUÍMICO
Testicinta
Tiene elemento químico de cambio rápido
Se utiliza en autoclave y calor seco
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Cinta testigo
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MONITOREO DE
ESTERILIZACIÓN
CONTROL FÍSICO
Observación y registro de los indicadores y
manómetros hasta alcanzar los niveles
adecuados
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MONITOREO DE
ESTERILIZACIÓN
OTRAS CONSIDERACIONES
Mantenimiento una vez al año
El vapor debe atravesar materiales porosos
Cajas perforadas
Empaques no muy apretados, ni envolturas densas
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Esterilización pieza de mano
Alta y baja velocidad, contrángulos y ángulos
Deben esterilizarse luego de cada paciente
Tener mínimo tres
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RAYOS IONIZANTES
Procesos industriales para materiales
pequeños
Rayos Gamma de fuentes de cobalto y
cesio
Efecto bactericida muy poderoso : hojas
de bisturí, guantes, jeringas, sondas, etc.
Vencimiento 1 a 5 años
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RAYOS IONIZANTES
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VAPORES DE FORMOL
Gas a temperatura ambiente
Amplio espectro, activo contra esporas
Pastillas de trioximetileno sublimación
Uso de material no calentable en recipiente hermético. 2 pastillas por un litro. 8 a 12 horas
Pastillas de papel con indicativo cromático que reacciona con los vapores
Líquido formaldehído evaporación
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VAPORES DE FORMOL
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STERRAD
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MÉTODOS DE
DESINFECCIÓN
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AGENTE DESINFECTANTE
CARACTERÍSTICAS
• Capaz de destruir microorganísmos patógenos incluyendo micobacterium tuberculoso y virus de la hepatitis
• No ser tóxico para los tejidos
• No dañar instrumental o materiales
• Uso simple eficaz y económico
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Glutaraldehído
• Nivel alto de actividad al 2% amplio espectro
• Esteriliza por inmersión de 3 a 10 horas
• Irrita piel, ojos, mucosas y tracto respiratorio
• Se inactiva por exceso de carga biológica,
exceso de agua, uso sin tapa, temperatura
mayor de 30º
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Glutaraldehído
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Glutaraldehído
Recomendaciones
• Usar guantes de caucho y mascarilla
• Uso por aspersión con careta puesta
• Recipiente con tapa (paredes duras)
• Almacenar en envase original
• Tiempo de contacto como desinfectante: 20 minutos
• Instrumental totalmente sumergido
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Glutaraldehído
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Alkazyme y Alkacide
Técnica de limpieza y
esterilización
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ALKAZYME
Limpiador enzimático
Limpia y descontamina
el instrumental
Hidroliza residuos
proteicos y fluidos
No requiere limpieza
previa
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Empleo alkazyme
4 litros de agua limpia (30 – 40ºC)
por bolsa de 20 grs. de alkacide, sin abrir
15 minutos
Enjuague en chorro de agua
Termina la desinfección
20 minutos para limpieza de superficies
Solución para 8 días
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ALKACIDE
Esterilizante a base
de glutaraldehído
potencializado en
frío
Desinfección en 15
minutos
Esterilización en 60
minutos
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Empleo Alkacide
Se diluye 60 ml de solución (3 dosis)
Por litro de agua
Luego se saca y se lava con agua estéril para
ser usado inmediatamente
Cambio del preparado cada 30 días
Para superficies se deja secar y ventilar 1 hora
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Hipoclorito de sodio
Ventajas
Desinfección de pisos, paredes, baños, mesas quirúrgicas, materiales de laboratorio, superficies de trabajo, líquidos de desecho, frutas y verduras.
Es económico
En diluciones de 500 a 10.000 ppm inactiva a los 10 minutos virus
a los 30 m. tiene amplio espectro
Desventajas
Inestable requiere
preparaciones frescas
Corrosivo y oxidante
Se inactiva por la luz, el
calor y la antigüedad
Irritante para la piel
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Hipoclorito de sodio
Fórmula de preparación
Volumen de litros a preparar x ppm
_______________________________ = cc
Concentración del producto x 10
Pisos y paredes: 8cc de hipoclorito al 6% para un
litro de solución a 500 ppm
Instrumental contaminado: 80cc de hipoclorito al
6% para un litro de solución a 5.000 ppm
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Ultrasonido
Por medio de un líquido: energía
eléctrica
energía sónica
Oscilación de cavidades microscópicas
Choques de alta intensidad
Destrucción de restos
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Ultrasonido
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Ultrasonido
Ventajas
• Llega a superficies de difícil acceso
• Limpia sin peligro superficies cortantes
• Mejora la efectividad del proceso
• Disminuye posibilidad de accidentes
• Fácil manejo, pequeño y sin ruido
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Ultrasonido
Uso adecuado
• Líquido hasta el nivel indicado
• 2 minutos de uso antes del instrumental
• Instrumental en la canasta no al fondo
• Usar guantes y gafas protectoras
• Se remueve canastilla o con pinzas
• Lavado y desinfección diaria del tanque
• Cambio diario de la solución
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PROCESO DE
DESINFECCIÓN
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CLASIFICACIÓN
Esterilizar Desinfectar
Elementos críticos Elementos no críticos
Instrumental cortante No penetran mucosas
En contacto con sangre pero expuestos a salpi-
caduras
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Recomendaciones
Hipoclorito:
Sillones odontológicos: 200 – 500 ppm
Mesas de trabajo : 200 ppm
Pisos paredes y ventanas : 500 ppm
Lámparas y equipos: forrados con bolsas plásticas
Elementos contaminados con sangre: 5000 ppm
Glutaraldehído:
Pieza de mano, contrángulo, scaler: 2% entre cada paciente
Llave del airotor: 2% 15-20 min.
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Recomendaciones Eyector desechable
Mangueras,piezas de mano,eyectores y jeringa triple: agua y jabón + glutaraldehido 2%
Escupidera: hipoclorito 5000ppm c/paciente
Pinza de transferencia: autoclave c/15 días con el frasco. Glutaraldehido 2% cambio 15 días.
Limas, tira nervios, léntulos: hipoclorito 5000 ppm 10 min. Luego lavar y autoclave.
Fresas: lavado y autoclave
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Recomendaciones
Jeringa triple: Hipoclorito 5000ppm – agua y jabón
drenaje 30 seg. Protector desechable
Guantes quirúrgicos: Desechables
Reutilizables hipoclorito 5000ppm – agua y jabón – entalcado – guantera – autoclave
Papel crepé, sulfito, kraft doble envoltura
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Recomendaciones
Bolsas plásticas:
Polietileno : doble termo sellado
Papel-poliéster de polipropileno termo sellado
Esterilidad 3 a 12 meses
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Recomendaciones
Agujas y jeringas:
No doblar ni enfundar
Descartar en guardián e incinerar
Piezas de mano:
Idealmente en autoclave
Purgar el agua y el aire por 30 seg.; limpiar con
glutaraldehído al 2%
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Recomendaciones
Evitar:
Alfombras, tapetes,cortinas pesadas o largas, plantas o techos falsos
Comer, beber, fumar o aplicar cosméticos en áreas de trabajo
Circular por áreas diferentes con elementos de protección puestos
Con guantes puestos tocar partes del cuerpo o manipular objetos diferentes al área de trabajo
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Recomendaciones
Se debe:
Cambiar blusa y mascarilla diariamente
Colocar envolturas en superficies de difícil desinfección
Utilizar guantes gruesos para desinfectar
Lavar con agua los aparatos y materiales de laboratorio + hipoclorito
Considerar a todos los pacientes como potencialmente contaminados
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Guantes
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Recomendaciones
No utilizar:- jabón de barra
- cepillo para las manos
- toalla de tela
- joyas, ni reloj
- escoba, mejor trapeadora húmeda
Uñas cortas y sin pintar
Limpieza de paredes de arriba hacia abajo
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Lavado de las manos
• Antes de ponerse los guantes
• Luego de quitárselos
• Al entrar en contacto con objetos o
superficies contaminadas
• Jabón común vs quirúrgico
• Llave de pedal
• 10 segundos bajo el chorro de agua
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Desinfectante Spray
Para sitios de difícil acceso
Etanol 79% y dimetil benzil amonio 0.1%
Elimina todos los agentes patógenos
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SI NO
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PACIENTE
SEROPOSITIVO
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Recomendaciones
• Planear el trabajo – materiales listos
• Citas largas y pocas
• Al principio o al final de la jornada
• Remisión no explícita
• No discriminar
• Obligación atenderlo
• Medidas de protección
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MUCHAS
GRACIAS !