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8/17/2019 Chepe Tema

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TEMA 8

Selección, recolección ytransporte de muestras

para examen microbiológico


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Tema 8. Selección, recolección y transporte de muestras para examen

microbiológico.

1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra

2. Identificación de la muestra3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

4. Volumen o tamaño de la muestra

5. Transporte de la muestra

6. Rechazo de las muestras


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• Siempre que sea posible, las muestras deben tomarse antes de iniciar laadministración de agentes antimicrobianos.


• El material debe ser tomadode los lugares donde sea másprobable encontrar elmicroorganismo responsablede la infección con la menor

contaminación externaposible.

• Debe tenerse en cuenta elestadío de la enfermedad enel que se recoge la muestra.

• Debe tomarse la muestra encantidad suficiente parapermitir un análisiscompleto.


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• Si la muestra la toma el propio paciente (orina,heces, esputo), debe ser instruido para que lo hagade manera correcta.

Orina

─ Orina de primera hora de la mañana

─ Lavado de la zona periuretral y perineal

─ Orina de chorro medio, recipiente, volumen

Heces ─ Recipiente adecuado

─ Cantidad de muestra


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Esputo

─ Primera hora de la mañana

─ Recipiente adecuado

─ Enjuagar la boca (gárgaras)

─ Expectoración profunda

o Fisioterapia respiratoria

Drenaje postural

Percusión torácica

o Uso de nebulizadores

─ Volumen mínimo de muestra

•

Las muestras deben colocarse en recipientes estériles para evitar riesgos alpaciente o al personal que las transporte.

• Deben tomarse las medidas oportunas para que las muestras sean remitidasrápidamente al laboratorio.


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Rotular correctamente el envase con la muestra

• Nombre del paciente

• Código de la muestra (código de barras,

número)

• Fecha y hora de la toma de muestra

• Tipo de muestra y pruebas solicitadas

• Indicar si el paciente está tomando antibióticos

• Concordancia con el volante de solicitud

• Otros datos de interés (viajes, etc.)

2. Identificación de la muestra


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3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

• Frascos de boca ancha (contenedores)

–

Orina

– Heces

– Esputo

– Punta del catéter

– Biopsias de tejidos


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• Hisopos o escobillones

o

Material de los escobillones

– Mango

• Rígido (madera, plástico)

• Flexible (metal)



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– Torunda

•

Algodón• Dacrón o rayón

• Alginato cálcico



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o Hisopos con medio de transporte

–

Stuart – Amies

– Cary-blair

– Hanks



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• Aguja y jeringa estériles

–

Aguja y jeringa estériles másfrasco con líquido

o Sangre

o LCR

– Aguja y jeringa estériles más

catéter

o Aspiración translaríngea



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• Otros

– Bolsa para recogida de orina

(recién nacidos)

– Papel adhesivo para recogida

de heces (parásitos)

– Endoscopia (broncoscopia)



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• Orina (urocultivo convencional 10-20 mL)

• Heces (2-15 mL; muestra equivalente al tamaño de una nuez)

• Sangre (para hemocultivo, 10-20 mL; 1-5 mL niños)

• Líquido cefalorraquídeo (1-3 mL)

• Esputo

• Líquidos pleural/pericárdico (1 ml virus; 5-15 ml bacterias)

• Líquido ascítico (5-15 mL)

• Líquido articular (1 mL)

• Tejidos y huesos (biopsia)

4. Volumen o tamaño de la muestra


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Objetivos del transporte

•Mantener la muestra a ser posible como en su estado original

• Que se produzca el mínimo deterioro

• Evitar condiciones adversas (calor, frío, desecación, cambios de presión, etc.)

Si el tiempo que va a transcurrirdesde la toma de muestras hasta

su inoculación es muy grande,

hay que utilizar un medio de

transporte

El objetivo del medio de transportees prolongar la viabilidad de los

microorganismos


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• Importancia del transporte rápido

– Muestras de orina

– Mycobacterium tuberculosis en esputo

– Muestras de heces

Shigella, Salmonella, Yersinia

Caldos de enriquecimiento


• Tiempo

– Máximo 2 horas a temperatura ambiente dentro del propio hospital


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• Temperatura

– Siembra inmediata: muestras con gonococos; LCR con presunciónde meningitis.

– Temperatura ambiente: fragmentos de pelo, piel y uñas para

aislamiento de hongos.

– Refrigeración: orina, 24 h; hisopos de garganta, 2-3 horas.

– Congelación: muestras de virus conservadas más de 24 horas;

muestras de heces para investigar toxina de Clostridium difficile.

–

Nunca refrigerar: hisopos de heridas para cultivo en anaerobiosis.

– Nunca congelar: muestra de sangre coagulada.



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• Medios de transporte

– Para bacterias

• Medio de Stuart

• Medio de Amies

•

Medio de Cary-Blair

– Específicos de gonococos

• Medios Transgrow

• Placas Jembec

– Para virus

• Medio de Hanks

Composición del medio de transporte Stuart

Cloruro sódico 3 g

Cloruro potásico 0,2 g

Fosfato disódico 1,15 gFosfato monopotásico 0,2 g

Tioglicolato sódico 1 g

Cloruro cálcico 10 g

Cloruro magnésico 10 g

Agar 4 g

Agua destilada 1 L

pH:7,3

Placa Jembec Hisopo


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• ¿Cuándo y dónde se realiza el rechazo de las muestras?

• Criterios generales para el rechazo de las muestras

– Identificación

– No se especifica el sitio anatómico/el análisis solicitado

– Transporte inadecuado

Temperatura inadecuada

Muestras abiertas/derramadas

Condiciones de anaerobiosis

Hisopos secos• Criterios particulares para las muestras de orina

• Criterios particulares para las muestras de esputo

6. Rechazo de las muestras

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