xii
DEDICATORIA
El presente trabajo investigativo se lo dedico principalmente a Dios, por ser quien
con su guía estuvo presente en mi caminar, por darme fuerzas y sabiduría para
continuar en este proyecto de vida.
A mi madre Lupe Becerra y a mi padre Jonny Ramos, por su amor, trabajo y
sacrificio en todos estos años, gracias a ustedes he logrado llegar hasta aquí.́
ERIKA DAYANA RAMOS BECERRA
xiii
DEDICATORIA
Dedico este trabajo principalmente a Dios, por haberme dado la vida y permitirme
el haber llegado hasta este momento tan importante de mi formación profesional.
A mi madre, por ser el pilar más importante y por demostrarme siempre su cariño y
apoyo incondicional sin importar nuestras diferencias de opiniones.
A mi padre, por su apoyo constante, por llenar mi vida con sus valiosos consejos.
ANGÉLICA UDEO T.
xiv
AGRADECIMIENTO
Quiero agradecer a Dios por todas sus bendiciones, a mis Padres que han sabido
darme su ejemplo de trabajo y honradez.
Quiero expresar mi más grande y sincero agradecimiento a mis tutoras en especial
a la Dra. Soraya García Larreta MSc, quienes estuvieron con nosotras durante
todo este proceso, gracias a su dirección, conocimiento, enseñanzas y
colaboración que permitieron el desarrollo de este trabajo.
A la Universidad de Guayaquil en especial a la Facultad de Ciencias Químicas por
ser la sede de todo el conocimiento adquirido en estos años.
ERIKA DAYANA RAMOS BECERRA
xv
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por brindarme la oportunidad de culminar esta meta propuesta,
por acompañarme durante todo el trayecto de mi vida y que gracias a Él
culminamos nuestro trabajo de titulación.
Agradezco a mis padres por ser los pilares fundamentales en mi vida, por el
esfuerzo, sacrificio y por los valores y principios que me han inculcado para que de
esta manera pueda alcanzar una de mis metas propuestas.
Mi más sincero y afectuoso agradecimiento a la Dra. Soraya García Larreta MSc,
de manera especial, quien estuvo con nosotras en todo el proceso de tesis, quien
con su conocimiento, enseñanza y colaboración permitió́ el desarrollo de este
trabajo.
ANGÉLICA UDEO T.
xvi
TABLA DE CONTENIDO
RESUMEN ........................................................................................................... xxii
ABSTRACT ......................................................................................................... xxiii
INTRODUCCIÓN .................................................................................................... 1
CAPITULO I PROBLEMA ...................................................................................... 3
I.1. Planteamiento y formulación del problema .................................................... 3
I.2. Justificación e importancia ............................................................................. 4
I.3. Hipótesis ........................................................................................................ 5
I.4. Objetivos ........................................................................................................ 6
I.4.1. Objetivo general ....................................................................................... 6
I.4.2. Objetivos específicos ............................................................................... 6
I.5. Operacionalización de variables .................................................................... 6
CAPITULO II MARCO TEÓRICO ......................................................................... 7
II.1. Antecedentes ................................................................................................ 7
II.2. Marco referencial ........................................................................................ 12
II.2.1. Jackfruit ................................................................................................ 12
II.2.2. Polifenoles totales ................................................................................. 21
II.2.3. Extractos ............................................................................................... 26
II.2.4. Métodos de determinación de polifenoles totales ................................. 27
CAPITULO III: MATERIALES Y METÓDOS ........................................................ 30
III.1. Tipo de investigación ................................................................................. 30
III.2. Etapas de la investigación ......................................................................... 30
III.3. Delimitación de la investigación ................................................................. 30
III.4. Criterios de inclusión y exclusión ............................................................... 31
III.4.1. Criterio de inclusión ............................................................................. 31
xvii
III.4.2. Criterio de exclusión ............................................................................ 31
III.5. Preparación de la muestra ......................................................................... 31
III.6. Materiales, reactivos y métodos ................................................................. 31
III.6.1. Reactivos ............................................................................................. 31
III.6.2. Materiales ............................................................................................ 32
III.6.3. Equipos ................................................................................................ 32
III.6.4 Métodos ................................................................................................ 32
CAPITULO IV RESULTADOS Y DISCUSIONES ............................................... 36
IV.1. Resultados ................................................................................................. 36
IV.1.1 Parámetros fisicoquímicos ................................................................... 36
IV.1.2 Polifenoles totales en extracto acuoso y metanólico ............................ 37
IV.1.3 Actividad antioxidante en extracto acuoso y metanólico ...................... 38
IV.4. Discusión ................................................................................................... 39
IV.4.1. Humedad y cenizas ............................................................................. 39
IV.4.2. Polifenoles Totales .............................................................................. 41
IV.4.3. Actividad Antioxidante ......................................................................... 44
CONCLUSIONES ................................................................................................. 47
RECOMENDACIONES ......................................................................................... 48
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ..................................................................... 49
GLOSARIO ........................................................................................................... 49
ANEXOS ............................................................................................................... 58
xviii
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla I: Operacionalización de variables ......................................................................... 6
Tabla II: Caracterización química, física y fisicoquímica de las semillas de jaca en
natural y germinadas ........................................................................................................... 7
Tabla III: Polifenoles Totales, flavonoides totales y capacidad antioxidante de
frutas subutilizadas. ............................................................................................................. 8
Tabla IV: Actividad de captación de DPPH ..................................................................... 8
Tabla V: Rendimiento de extracción, contenido total de fenol y flavonoides totales.
................................................................................................................................................ 9
Tabla VI: Capacidad antioxidante del Jackfruit. ............................................................. 9
Tabla VII: Porcentaje de inhibición de cristal de cáscara. .......................................... 10
Tabla VIII: Porcentaje de inhibición de la harina de las semillas de Jackfruit. ........ 11
Tabla IX: Contenido máximo de flavonoides y fenoles totales en los extractos
acuoso y etanólico. ............................................................................................................ 11
Tabla X: Producción de Jackfruit a nivel mundial. ....................................................... 15
Tabla XI: Clasificación taxonómica del Artocarpus heterophyllus Lam. ................... 17
Tabla XII: Composición química de Artocarpus heterophyllus Lam. ........................ 18
Tabla XIII: Composición nutricional del jackfruit ........................................................... 19
Tabla XIV: Cuadro de uso de diferentes partes de la planta. .................................... 20
Tabla XV: Clasificación de polifenoles y ejemplos de ellos. ...................................... 22
Tabla XVI: Resultados de Análisis de Humedad de la pulpa. ................................... 36
Tabla XVII: Resultados de Análisis de Cenizas Totales en la pulpa. ....................... 37
Tabla XVIII: Comparación de resultados de Polifenoles Totales en el extracto
acuoso de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la planta.
.............................................................................................................................................. 42
xix
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1: Fruto del jackfruit ................................................................................... 13
Figura 2 : Ubicación de las zonas de cultivo del Jackfruit en Ecuador. ................ 14
Figura 3: Producción de Jackfruit ......................................................................... 14
Figura 4: Árboles del Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.). ......................... 16
Figura 5: Vista interna Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.) ........................ 17
Figura 6: Cinnamtannin B1 ................................................................................... 21
Figura 7: Actividad Antioxidante sobre los Radicales Libres. ............................... 25
Figura 8: Mecanismo de acción del reactivo de Folin-Ciocalteu………………...28
xx
ÌNDICE DE ANEXOS
Anexo A Vista entera y pulpa del Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.) ....... 58
Anexo B Extractos acuoso y metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus
Lam. ...................................................................................................................... 58
Anexo C Análisis de cenizas de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. ....... 59
Anexo D Análisis de humedad de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. .... 59
Anexo E Análisis de Polifenoles Totales en extracto metanólico de la pulpa del
Artocarpus heterophyllus Lam. .............................................................................. 60
xxi
ÌNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1 Análisis comparativo de Polifenoles Totales en los extractos acuoso y
metanólico de la pulpa de Artocarpus heterophyllus Lam.¡Error! Marcador no
definido.
Gráfico 2 Análisis comparativo de la Actividad Antioxidante de los extractos
acuoso y metanólico de la pulpa de Artocarpus heterophyllus Lam. .............. ¡Error!
Marcador no definido.
Gráfico 3 Análisis comparativo de humedad en pulpa del Artocarpus
heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta............ ¡Error! Marcador no definido.
Gráfico 4 Análisis comparativo de cenizas en la pulpa del Artocarpus
heterophyllus Lam. y otros subproductos de la fruta.¡Error! Marcador no
definido.
Gráfico 5 Comparación de resultados de Polifenoles Totales en el extracto
metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la
planta. ...................................................................... ¡Error! Marcador no definido.
Gráfico 6 Comparación de la Actividad antioxidante en extracto metanólico de la
pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta ................ ¡Error!
Marcador no definido.
Gráfico 7 Análisis comparativo de la Actividad Antioxidante en el extracto acuoso
de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta. ...... ¡Error!
Marcador no definido.
xxii
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS
CARRERA EN QUÍMICA Y FARMACIA
``Polifenoles Totales y Actividad Antioxidante del extracto acuoso y
metanólico de la pulpa de Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.)``
Autores: Erika Ramos Angélica Udeo
Tutor: Dra, Q.F. Haydee Alvarado MSc.
RESUMEN
Los seres humanos están expuestos a muchos agentes externos e internos que producen
Radicales Libres, si no hay un control suficiente por parte de los antioxidantes, estos
pueden conducir a la oxidación de las biomoléculas. El Jackfruit o Jaca (Artocarpus
heterophyllus Lam.) es una fuente de carbohidratos, proteínas, almidón, calcio, vitaminas,
azúcares, ácidos grasos, y aminoácidos, con muchas propiedades nutritivas y
medicinales, posee en el Ecuador una superficie total sembrada de 6,000 hectáreas
aproximadamente. Es una fruta poco conocida y por ende poco estudiada en el país
desaprovechando todos sus beneficios, ante ello se procede a determinar la
concentración de Polifenoles Totales y la Actividad Antioxidante en la pulpa del Jackfruit,
las determinaciones se realizaron en extractos acuoso y metanólico, los mismos fueron
procesados y sometidos al método de Folin–Ciocalteu en el caso de Polifenoles Totales
obteniendo como resultado los valores de 0.008464% en el extracto acuoso y 0.5% para
el extracto metanólico. En el caso de la Actividad Antioxidante se procedió con el método
de DPPH obteniendo resultados de 367.14 mg/100g en el extracto acuoso y 625 mg/100g
en el extracto metanólico. La presencia de Polifenoles Totales en la Artocarpus
heterophyllus Lam. es más elevada en el extracto metanólico y es proporcional a la
actividad antioxidante del fruto estudiado.
Palabras claves: Actividad Antioxidante, Polifenoles Totales, Artocarpus
heterophyllus Lam.
xxiii
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS
CARRERA EN QUÍMICA Y FARMACIA
“Total Polyphenols and Antioxidant Activity of the asqueousand methanic
extract of Jackfruit pulp (Artocarpus heterophyllus Lam.)”
Authors: Erika Ramos Angélica Udeo
Tutor: Dra, Q.F. Haydee Alvarado MSc.
ABSTRACT
Humans are exposed to many external and internal agents that produce Free Radicals, if
there is insufficient control by antioxidants, they can lead to the oxidation of biomolecules.
Jackfruit or Jaca (Artocarpus heterophyllus Lam.) is a source of carbohydrates, proteins,
starch, calcium, vitamins, sugars, fatty acids, and amino acids, with many nutritional and
medicinal properties, in Ecuador has a total sown area of approximately 6,000 hectares. It
is a little known fruit and therefore little studied in the country wasting all its benefits,
before this we proceed to determine the concentration of Total Polyphenols and the
Antioxidant Activity in the pulp of Jackfruit, the determinations were made in aqueous and
methanolic extracts, the they were processed and submitted to the Folin-Ciocalteu method
in the case of Total Polyphenols, resulting in the values of 0.008464% in the aqueous
extract and 0.5% for the methanolic extract. In the case of the Antioxidant Activity, the
DPPH method was obtained, obtaining results of 367.14 mg / 100g in the aqueous extract
and 625 mg / 100g in the methanolic extract. The presence of Total Polyphenols in the
Artocarpus heterophyllus Lam. is higher in the methanolic extract and is proportional to the
antioxidant activity of the fruit studied.
Keywords: Antioxidant Activity, Total Polyphenols, Artocarpus heterophyllus Lam.
xxiv
LISTA DE ABREVIATURAS
PT: Polifenoles Totales
AA: Actividad Antioxidante
RL: Radicales Libres
ROS: Especies Reactivas de Oxígeno
BHT: ter-butil-hidroxi-tolueno
BHA: ter-butii-hidroxi-anisol
TBHQ: ter-butil-hidroxi-quinona
DPPH: 2,2-Difenil-1-Picrilhidrazilo
FC: Folin-Ciocalteu
TEAC: capacidad antioxidante equivalente al Trolox
ABTS: Ácido 2,2’-azinobis (3etilbenzotiazolín)-6-sulfónico
DMPD: dicloridrato de N,N-Dimetil-p-fenilendiamina
1
1
INTRODUCCIÓN
El Jackfruit o Jaca (Artocarpus heterophyllus Lam.) como se lo conoce en Norte
América es tradicionalmente originario de los bosques tropicales y subtropicales
principalmente del sur de Asia. En el Ecuador la producción de Jackfruit se
encuentran al noroccidente de Pichincha, en la zona de Santo Domingo, Quevedo
Manabí, Esmeraldas y Guayas en las zonas tropicales como Napo, Sucumbíos y
Orellana. La superficie total sembrada con jaca en Ecuador se calcula en 6,000
hectáreas (Jiménez, 2018).
La jaca es una fruta con un alto valor nutricional pero poco consumida en el país
(López, 2017), al tener poco tiempo insertada en el Ecuador se hace escasa la
información obtenida de la planta por esta razón es necesario realizar estudios de
su composición química y los efectos de la planta ya sembrados en el suelo y las
condiciones climáticas de este país.
Es importante conocer la planta ya que es un alimento inestimable presentando en
cada una de sus partes efectos funcionales y medicinales; como para el
tratamiento ayurvédico para Hiperglucemia y diabetes. Presenta lectinas en las
semillas con propiedades antifúngicas, mientras que los extractos metanólicos
crudos de la corteza de la raíz y los tallos han mostrado actividad antibacteriana
de amplio espectro. El bulbo crudo proporciona alrededor de 95 calorías y es una
buena fuente de antioxidantes y vitamina C, rica en vitamina B6, potasio, calcio, y
el hierro. (Swami & Kalse, 2018).
En el presente estudio se evaluó la Actividad Antioxidante y el contenido de
Polifenoles Totales de la pulpa del Jackfruit, cuya procedencia es la región Costa
2
2
Cantón Milagro. Los estudios que se realizaron para determinar la concentración
de Polifenoles Totales y su impacto en la Actividad Antioxidante se realizan en los
extractos acuoso y metanólico, las determinaciones se realizaron para Polifenoles
Totales por el método de Folin Ciocalteu y por el método de DPPH la Actividad
Antioxidante.
Se han realizado varios estudios en distintas partes de la planta del Artocarpus
heterophyllus Lam. en distintas zonas del mundo, por esta razón en el Ecuador es
necesario realizar este estudio.
3
3
CAPITULO I PROBLEMA
I.1. Planteamiento y formulación del problema
El bajo consumo de frutas y verduras está asociado a una mala salud y a un
mayor riesgo de enfermedades no transmisibles. Se estima que en 2017 unos 3,9
millones de muertes se debieron a un consumo inadecuado de frutas y verduras,
al no ingerirlas se está privando al organismo de una fuente rica de vitaminas,
minerales y fibra alimentaria; además, de fitoesteroles, flavonoides y otros
antioxidantes (OMS, 2019 ).
En la actualidad los seres humanos están expuestos a muchos agentes externos e
internos que producen la formación de Radicales Libres (RL), como el
metabolismo de los alimentos, la respiración celular y el ejercicio. Además, las
personas están inmersas en elementos del ambiente que crean Radicales Libres
como la producción industrial, tabaco, radiación, aditivos químicos y pesticidas. No
todos los radicales libres son peligrosos, como las células del sistema inmune que
crean RL para matar bacterias y virus, pero si no hay un control suficiente por
parte de los antioxidantes, estos pueden conducir a la oxidación de las
biomoléculas (Intriago & Rengiffo, 2014).
La excesiva oxidación de estas da lugar a diversos daños en el organismo, el
exceso de RL se relaciona con una mayor incidencia de diversas enfermedades
degenerativas como el cáncer, enfermedades cardiacas, inflamaciones, artritis,
disfunción cerebral, aceleración del envejecimiento entre otras (Intriago &
Rengiffo, 2014).
4
4
El consumo de la fruta es un pilar fundamental en la nutrición de todos los seres
humanos. Esta situación ha ido decreciendo en ciertos grupos de la población a
causa de los nuevos estilos de vida y el excesivo consumo de alimentos
procesados. El Ecuador es un país muy rico en el cultivo de diversos tipos de
frutas, que en su mayoría son desconocidas con muy poco consumo dentro de la
población (López, 2017).
La jaca es una fruta con un alto valor nutricional pero poco consumida en el país
(López, 2017), el Ecuador cuenta con unas 6000 hectáreas en las que se ha
estudiado de la planta su efecto normoglicemiante (Mera Villegas, Mendoza, &
Belén, 2018), realizando harina de sus semillas (Delgado Cedeño & Reyes
Noriega, 2015) entre otros; por ende es necesario realizar estudios de su
composición química como la determinación de Polifenoles Totales y su Actividad
Antioxidante.
Formulación del problema
¿De qué manera incide la concentración de Polifenoles Totales en la Actividad
Antioxidante de los extractos acuoso y metanólico de la pulpa de Artocarpus
heterophyllus Lam??
I.2. Justificación e importancia
El Artocarpus heterophyllus Lam. se consume en bruto o procesado en diferentes
productos. Contiene altos niveles de carbohidratos, proteínas, almidón, calcio,
vitaminas, azúcar libre (sacarosa), ácidos grasos, ácido elágico y aminoácidos
como arginina, cistina, histidina, leucina, lisina, metionina, tiamina y triptófano
(Swami & Kalse, 2018).
5
5
En el Ecuador se localiza en zonas tropicales del país como: Napo, Sucumbíos,
Orellana; sin embargo, tiene una gran adaptabilidad para su cultivo en nuestras
zonas templadas y subtropicales de Pichincha, Santo Domingo, Quevedo y en
algunas zonas de las provincias de Manabí y Esmeraldas (Cedeño & Noriega,
2015).
Es un alimento inestimable presentando en cada una de sus partes efectos
funcionales y medicinales. El extracto de agua caliente de las hojas maduras se
utiliza en el tratamiento ayurvédico para Hiperglucemia y diabetes. Presenta
lectinas en las semillas con propiedades antifúngicas, mientras que los extractos
metanólicos crudos de la corteza de la raíz y los tallos han mostrado actividad
antibacteriana de amplio espectro. El bulbo crudo proporciona alrededor de 95
calorías y es una buena fuente de antioxidantes y vitamina C, rica en vitamina B6,
potasio, calcio, y el hierro. (Swami & Kalse, 2018)
El conjunto de propiedades inigualables hace de la Jaca una fruta extraordinaria
por su aporte medicinal y características nutracéuticas la convierten en un
espécimen adecuado para estudiar su contenido de Polifenoles Totales y su
Actividad Antioxidante.
Por lo anteriormente expuesto, se debe completar el estudio químico de las partes
del Artocarpus heterophyllus Lam., iniciando con la presencia de Polifenoles
Totales y su efecto en la Actividad Antioxidante.
I.3. Hipótesis
El contenido de Polifenoles Totales presentes en los extractos acuoso y
metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. incide en la Actividad
Antioxidante.
6
6
I.4. Objetivos
I.4.1. Objetivo general
Determinar la concentración de Polifenoles Totales y Actividad Antioxidante de los
extractos acuoso y metanólico de la pulpa de Artocarpus heterophyllus Lam.
I.4.2. Objetivos específicos
Determinar los parámetros fisicoquímicos, humedad y cenizas totales.
Determinar la presencia de Polifenoles Totales en los extractos acuoso y
metanólico por el método de Folin-Ciocalteu.
Evaluar la Actividad Antioxidante por el método DDPH.
I.5. Operacionalización de variables
Tabla I: Operacionalización de variables
Fuente: Autoras
Variables Conceptualización Instrumentos Unidad de
medida
INDEPENDIENTE Polifenoles Totales
Metabolitos secundarios cuya actividad biológica está relacionada con su carácter
antioxidante, el cual se debe a su habilidad para quelar metales, inhibir la actividad de la enzima lipoxigenasa y actuar como captadores de radicales libres (García Martínez Eva, 2015).
Folin-Ciocalteu %
DEPENDIENTE Actividad
Antioxidante
Capacidad captadora de radicales libres (Leos, Rivas, & Garcia, 2016)
DPPH mg/g %
7
7
CAPITULO II MARCO TEÓRICO
II.1. Antecedentes
En la caracterización química, física y fisicoquímica realizada por (Leite, 2017)
sobre las semillas de jaca en estado natural y a su germinación, se encontró una
variación en cuando a su contenido de Ácido ascórbico, taninos y composición
fenólica, valores detallados a continuación.
Tabla II: Caracterización química, física y fisicoquímica de las semillas de jaca en natural y germinadas
Parámetro Semilla de Jaca
En natural Germinada
Ácido ascórbico (mg/100
g) 15,99 ± 0,02 5,22 ± 0,04
Taninos (g/100 g de
muestra) 0,12 ± 0,003 0,09 ± 0,005
Compuestos fenólicos
(g/100 g de muestra) 0,08 ± 0,003 0,06 ± 0,005
Fuente: (Leite, 2017)
En el estudio de (Shrikanta & Kumar, 2015) se investigó el contenido de
resveratrol y las propiedades antioxidantes de frutas subutilizadas como Jackfruit
(Artocarpus heterophyllus Lam.). Los extractos de etanol/agua (80:20 v/v) de
diferentes partes de muestras de fruta, incluida la piel, pulpa y semillas, se
analizaron mediante HPLC y MS para la cuantificación del resveratrol. También se
8
8
investigaron los Polifenoles Totales, los flavonoides, la actividad de eliminación de
DPPH y la capacidad antioxidante total.
Tabla III: Polifenoles Totales, flavonoides totales y capacidad antioxidante de frutas subutilizadas.
Fuente: (Shrikanta & Kumar, 2015)
En los extractos hidroetanólicos de semillas de Artocarpus heterophyllus Lam.
estudiadas por (Brindha Durairaj, 2018), se exhibió un importante DPPH
dependiente de la dosis en el cual se calculó el porcentaje de inhibición por
método de regresión lineal.
Tabla IV: Actividad de captación de DPPH
ACTIVIDAD DE CAPTACION DE DPPH
IC50 de Estándar 111.53 ± 0.02 μg / ml
Extracto de espermodermo 127.14 ± 0.005 μg / ml
Extracto de cotiledón 187.41 ± 1.47 μg / ml
Fuente: (Brindha Durairaj, 2018).
Piel Pulpa Semilla
Polifenoles
Totales
13.38 ± 0.29 mg GAE g- 1 1.27 mg GAE g- 1 (1.00 mg GAE g- 1
Flavonoides 7.50 ± 0.18 mg
CEg−1 peso seco
0,11 ± 0,03 mg
CEg−1 peso seco
0.61 ± 0.04 mg
CEg−1 peso seco
Capacidad antioxidante
1.32 ± 0.11 mM GAE g −1
de extracto
3.25 ± 0.25 mM GAE
g −1 de extracto
0.19 ± 0.00 mM GAE
g −1 de extracto
DPPH 0.43 ± 0.00 mg ml-1 11.45 ± 0.46 mg ml-1 6.07 ± 0.605 mg ml-1
9
9
(Sainiara Begum, 2018) evaluaron el rendimiento, contenido total de fenol y
flavonoides totales del extracto metanólico de las hojas de Artocarpus
heterophyllus Lam.
Tabla V: Rendimiento de extracción, contenido total de fenol y flavonoides totales.
Fuente: (Sainiara Begum, 2018)
En el estudio de (Cuadros, 2018), se evaluó el efecto del deshidratado sobre la
capacidad antioxidante de la pulpa de yaca (Artocarpus heterophyllus Lam.). La
pulpa fresca se sometió a tres tratamientos de deshidratado T1 (50 °C), T2 (60 °C)
y T3 (70 °C).
Tabla VI: Capacidad antioxidante del Jackfruit.
Capacidad antioxidante
Pulpa fresca 254.60 μmol Trolox Equiv/100 g muestra
Deshidratado T3 (70 °C). 893.30 μmol Trolox Equiv/100 g muestra,
Fuente: (Cuadros, 2018).
Rendimiento de extracción, contenido total de fenol y flavonoides totales
Extracto de la hoja Rendimiento (%) Contenido total de
fenol
Contenido total de
flavonoides
A. heterophyllus 14.47 0.34 ± 0.21 0.11 ± 0.02
10
10
(Repon Kumer Saha, 2016) compararon la actividad antioxidante DPPH, se utilizó
una solución estándar de ácido ascórbico, solución de muestra de cristal aislado
de cáscara.
Tabla VII: Porcentaje de inhibición de cristal de cáscara.
Fuente: (Repon Kumer Saha, 2016).
En las investigaciones de (Cedeño & Noriega, 2015) se recolectaron semillas de
Jackfruit y se sometieron a procesos térmicos y unitarios para la obtención de las
semillas secas a una temperatura de 45°C, además de calcular el porcentaje de
agua que perdieron las semillas (56%), también se calculó su poder antioxidante
mediante el método del inhibición del radical libre sintético DPPH dando un
porcentaje de inhibición de 20.53%.
Se realizaron tres muestras en concentraciones diferentes, de la harina de las
semillas de Jackfruit, mediante una evaluación in vitro de la Actividad Antioxidante:
Nombre de la muestra
Concentración (ug / ml)
Absorbancia
Promedio % de
inhibición ± SEM
IC 50 (ug / ml)
Blanco - 0.230 -
38.81 Ascórbico 1 10 0.222 03.62 ± 10.5
Ascórbico 2 20 0.176 23.47 ± 2.8
Ascórbico 3 30 0.142 38.26 ± 9.2
11
11
Tabla VIII: Porcentaje de inhibición de la harina de las semillas de Jackfruit.
Fuente: (Cedeño & Noriega, 2015).
En el estudio de (Escobar, 2018) obtuvieron diferentes extractos acuosos y
etanólico a partir de las hojas de Artocarpus heterophyllus Lam., (jackfruit), que
fueron colectadas en la Provincia de Pichincha y en la Provincia de Bolívar.
El contenido máximo de flavonoides y fenoles totales se muestra en la siguiente
tabla:
Tabla IX: Contenido máximo de flavonoides y fenoles totales en los extractos acuoso y etanólico.
FENOLES TOTALES FLAVONOIDES
BOLÍVAR (acuoso) 439,67 mg EAG/ml ET 84,806 mg EQ/ml ET
PICHINCHA (acuoso) 344,78 mg EAG/ml ET 41,63 mg EQ/ml ET
BOLIVAR (etanólico) 316,7 mg EAG/ml ET 71,95 mg EQ/ml ET
PICHINCHA (etanólico) 310,8 mg EAG/ml ET 30,42 mg EQ/ml ET
Fuente: (Escobar, 2018)
Solución de DPPH Concentración % inhibición
Prueba 1 2 ml 50µl 20,5309735 %
Prueba 2 2 ml 100µl 49,9051233%
Prueba 3 2 ml 200µl 59,347181%
12
12
II.2. Marco referencial
II.2.1. Jackfruit
El jackfruit o Jaca como se lo conoce en Norte América es tradicionalmente
originario de los bosques tropicales y subtropicales principalmente del sur de Asia
en donde es consumido como una fruta común. Posee gran adaptabilidad de
cultivo en el Ecuador especialmente en las zonas del noroccidente de Pichincha
que son templadas subtropicales en donde hasta ahora se ha mantenido a la fruta
como un producto silvestre de muy bajo consumo (Rueda & Yépez, 2014).
Es poco lo que se conoce de Jackfruit ya que no representa una demanda
significativa dentro del Ecuador; sin embargo, tiene una gran adaptabilidad para su
cultivo en zonas subtropicales y tiene un interesante potencial exportable para su
consumo como fruta entera o elaborada como pulpa y jugos concentrados (Rueda
& Yépez, 2014).
El Jackfruit contiene muchas vitaminas entre muchos otros nutrientes. Dentro de
una sola fruta puede contener de 100 a 500 semillas aproximadamente, cuando
madura, sin abrir, la jaca emite un fuerte olor desagradable, mientras que la pulpa
de la fruta abierta huele a piña y plátano. Pueden servirse fritos y se vende como
chips de jaca. El producto en conserva es más atractivo que la pulpa fresca y a
veces se llama "carne vegetal" (Jiménez, 2018).
En esta fruta “los bulbos maduros, cortados en rebanadas y envasados en jarabes
con adición de ácido cítrico y congelados, mantienen buen color, sabor y textura
por un año. Los bulbos maduros, fermentados y destilados, producen un potente
licor.” En Ecuador, en los lugares donde se encuentra mayormente cultivada esta
13
13
fruta es en Esmeralda, Santo Domingo y Manabí. La superficie total sembrada con
jaca en Ecuador se calcula en 6,000 hectáreas (Jiménez, 2018).
Figura 1: Fruto del jackfruit
Fuente: (Iñiguez, 2013)
II.2.1.1. Distribución geográfica
Los sitios en el Ecuador para la producción de Jackfruit se encuentran al
noroccidente de Pichincha, en la zona de Santo Domingo, Quevedo Manabí,
Esmeraldas y Guayas en las zonas tropicales como Napo, Sucumbíos y Orellana.
El Jackfruit no es considerado un cultivo de gran interés para la mayoría de los
planes gubernamentales de desarrollo agrícola a nivel mundial, por ello es poca la
información recopilada sobre las zonas de mayor producción; sin embargo, se
puede anotar de la información recabada que son los países asiáticos los de
mayor producción y consumo (Rueda & Yépez, 2014).
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Figura 3: Producción de Jackfruit
Fuente: (Iñiguez, 2013)
Las mejores zonas donde se asientan pequeños cultivos de Jackfruit en el país
son: noroccidente de Pichincha, Esmeraldas, Quevedo, Santo Domingo de los
Tsáchilas (Rueda & Yépez, 2014).
Figura 2 : Ubicación de las zonas de cultivo del Jackfruit en Ecuador
Fuente: (Rueda & Yépez, 2014).
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A nivel mundial las mejores zonas de producción para este cultivo se ubican en el
sur y sureste asiático de producción en volumen y hectáreas (Rueda & Yépez,
2014).
Tabla 1: Producción de Jackfruit a nivel mundial.
Fuente: (Rueda & Yépez, 2014)
II.2.1.2.Botánica morfológica
El Jackfruit es un árbol con una altura de 9-21m, las hojas son oblongadas,
ovaladas o elípticas; las hojas en las ramas maduras y más altas tienden a ser
ovaladas a diferencia de las más jóvenes que son generalmente oblongadas y
finas, estas pueden medir desde 2 cm cuando jóvenes hasta 25 cm de largo ya en
etapa madura y de ancho entre 2 cm y 12 cm. El pecíolo es de color verde oscuro
midiendo entre 1 cm y 5 cm. Las hojas son insertadas de forma alternada en
ramas horizontales. (Rueda & Yépez, 2014).
País Área / Ha Producción
Tonelada métrica
India 102.552 1.436.570
Bangladesh 24.958 257.360
Filipinas 13.286 67.500
Malasia 24186 1.126.284
Indonesia Desconocido 6.000.000
Nepal 1479 17.161
Tailandia Desconocido 450
Vietnam 23.790 Desconocido
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Figura 4: Árboles del Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.)
Fuente: (Iñiguez, 2013).
Todas las partes contienen un látex pegajoso blanco, ramas cortas y gruesas
flores emergen del tronco y las ramas grandes desde el suelo cubierto de base de
los árboles muy viejos. El árbol es monoico es decir posee flores masculinas que
nacen en racimos alargados 2 a 4 pulgadas (5-10cm) de largo, y los racimos de
flores femeninas son elípticas o redondeadas (Terán, Morillo, & Alvarado, 2014).
El fruto es el más grande de los árboles de frutos, llegando hasta 80 libras
(36 kg) de peso y hasta 36 pulgadas (90 cm) de largo y 20 pulgadas (50 cm) de
diámetro. La corteza o exterior del compuesto o fruta es de color verde o amarillo
compuesta por numerosas puntas como puntos de cono unidos espesos y
pegajosos, pared de color amarillo pálido o blanquecino. El interior consta de
grandes bombillas (periantos completamente desarrollados) de amarrillo, plátano
con sabor a carne y un núcleo central sustancial. Cada bombilla encierra una
superficie lisa, ovalada, de color marrón “semilla” (endocarpio) cubierto por una
delgada membrana blanca (exocarpio) (Terán, Morillo, & Alvarado, 2014)
17
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La semilla mide 2-4 cm de largo y de 1,25 a 2 cm de espesor, de color blanco y
fresco dentro. Puede haber 100 o 500 semillas en una sola fruta.
De la jaca existen infinidad de especies distribuidas principalmente en los países
orientales, donde se les encuentra en forma silvestre, siendo una de las de mayor
importancia Artocarpus heterophyllus Lam., cuya clasificación taxonómica que se
muestra en la tabla 11 de acuerdo con (Jiménez, 2018).
Tabla XI: Clasificación taxonómica del Artocarpus heterophyllus Lam.
Fuente: (Jiménez, 2018).
Reino Vegetal
Subreino Embriophyta
División Antophyta
Subdivisión Angiospermas
Clase Dicotiledoneas
Orden Urticales
Familia Moraceae
Género Artocarpus
Especie Heterophyllus Lam.
Figura 5: Vista interna Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.)
Fuente: (Terán, Morillo, & Alvarado, 2014).
18
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II.2.1.3. Composición química
La composición química de Artocarpus heterophyllus Lam. ha sido estudiada por
diversos autores como se presenta en la siguiente tabla:
Tabla 2: Composición química de Artocarpus heterophyllus Lam.
MOLECULA CONCENTRACION AUTORES
Ácido cítrico 0.13% fruto maduro
(Casa M. d., 2014)
Ácido málico 0.3 a 0.9% fruto maduro (Esquivel, Santiago, &
Guerrero, 2006)
Ácido fítico - 8.45±0.1 mg/g en semillas de jaca
integral
- 83.5±0.3 mg/g en semillas de jaca
descascarillada
(Rodríguez & Torres,
2006)
Sacarosa - 5% en fruto maduro
- 0.33-0.40% de fibra cruda
(Esquivel, Santiago, &
Guerrero, 2006)
Taninos - 0.3 ± 0.01mg/g en semillas de jaca
integral
- 0.1±0.02 mg/g en semillas de jaca
descascarillada
(Rodríguez & Torres,
2006)
Carotenoides -1449.24- 1484.23 mg/100g en jaca
deshidratada
(Jiménez, 2018)
0.36 mg de β-caroteno/100 g de
muestra, en la pulpa
(Cuadros, 2018).
Vitamina C
-101.11- 106.34 mg/100g en jaca
deshidratada
(Jiménez, 2018)
-18.30 mg/100g en conserva de jaca (Casa M. d., 2014)
57.30 mg ácido ascórbico/100 g de
muestra
(Cuadros, 2018).
Fuente: Autoras
19
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II.2.1.4. Valor nutricional
El contenido nutritivo de Artocarpus heterophyllus Lam. es importante, gracias a
que porta una gran cantidad de energía, proteína, carbohidratos y grasa,
principalmente.
Tabla XIII: Composición nutricional del Jackfruit
Fuente: (Rueda & Yépez, 2014)
Análisis nutricional basado en una porción diaria de 100 g
Composición Unid. Fruta Inmadura Fruta Madura Semilla
Agua (g) 76.2 - 8.2 72.0 - 94.0 51.0 -64.5
Proteína (g) 2.0 - 2.6 1.2 - 1.9 6.6 - 7.04
Grasas (g) 0.1 - 0.6 0.1 - 0.4 0.40 - 0.43
Carbohidratos (g) 9.4 - 11.5 16.0 - 25.4 25.8 - 38.4
Fibra (g) 2.6 - 3.6 1.0 - 1.5 1.0 - 1.5
Azúcar Total (g) - 20.6 -
Minerales totales (g) 0.9 0.87 - 0.9 0.9 - 1.2
Calcio (mg) 30.0 - 73.2 20.0 - 37.0 50.0
Magnesio (mg) - 27.0 54.0
Fósforo (mg) 20.0 - 57.2 38.0 - 41.0 38.0 - 97.0
Potasio (mg) 287 – 323 191 – 407 246
Sodio (mg) 3.0 - 35.0 2.0 - 41.0 63.2
Hierro (mg) 0.4 - 1.9 0.5 - 1.1 1.5
Vitamina A (IU) 30 175 – 540 oct-17
Tiamina (mg) 0.05 - 0.15 0.03 - 0.09 0.25
Riboflavina (mg) 0.05 - 0.2 0.05 - 0.4 0.11 - 0.3
Vitamina C (mg) 12.0 - 14.0 7.0 - 10.0 11.0
Energía (Kj) 50 – 210 88 – 410 133 – 139
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II.2.1.5. Usos
El principal uso económico es la fruta en sí, también se utilizan sus semillas, hojas
y tallo como fuentes medicinales. La pulpa es dulce y agradable usada como
postre o en salsa.
Tabla XIV: Cuadro de uso de diferentes partes de la planta.
Fuente: (Rueda & Yépez, 2014).
PARTE DE LA
PLANTA
USO
Raíces Su extracto es utilizado en tratamiento de
enfermedades de la piel, asma y problemas
estomacales.
Hojas Usadas en tratamientos de asma, desparasitación
estomacal, tratamiento para resequedad en
resquebrajaduras de pies.
Flores Detener hemorragias
Fruta La fruta madurada es utilizada como laxante
Semillas Son usadas en tratamientos de páncreas, alivia
deficiencias de vitamina A en el organismo y
tostadas son utilizadas como afrodisíaco.
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II.2.2. Polifenoles totales
Los compuestos fenólicos, denominados a veces inapropiadamente polifenoles,
son estructuras químicas formadas por un anillo aromático unido a uno o más
grupos hidroxilos, incluyéndose también derivados funcionales como ésteres, metil
ésteres, glicósidos, etc. Estos compuestos están distribuidos en todo el reino
vegetal (Cantero, 2009).
Existen varias clases y subclases de polifenoles que se definen en función del
número de anillos fenólicos que poseen y de los elementos estructurales que
presentan estos anillos. Los principales grupos de polifenoles son: ácidos fenólicos
(derivados del ácido hidroxibenzoico o del ácido hidroxicinámico), estílbenos,
lignanos, alcoholes fenólicos y flavonoides (Quiñonez, 2012).
Figura 6: Cinnamtannin B1
Fuente: (Database, 2019)
22
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Generalmente dan cuenta de la mayor parte de la Actividad Antioxidante de la
frutas y verduras, se clasifican en flavonoides y no flavonoides y estos
generalmente son divididos en taninos hidrolizables que son ésteres del Ácido
Gálico de glucosa y otros azúcares, fenilpropanoides como la lignina, flavonoles y
taninos condensados (Martínez A. C., 2015).
Tabla XV: Clasificación de Polifenoles y ejemplos de ellos.
Fuente: (Martínez, Segovia, & López, 2016)
Estructura química Tipo Ejemplo de Polifenol
C6 Fenol simple Eugenol
C6-C1 Ácido fenólico
Ácido benzoico
Ácido gálico
Ácido elágico
(C6-C1)n Taninos hidrolizables
C6-C2 Ácido fenil acético
C6-C3 Ácido hidroxicinámico
Cumarinas
Ácido cafeico
Ácido ferúlico
(C6-C3)2 Lignanos
C6-C1-C6 Benzofenonas
Xantonas
C6-C2-C6 Estilbenos Resveratrol
C6-C3-C6
Flavonoides
Chalconas
Antocianinas
Flavonoles
Flavonas
Flavononas
Isoflavonas
Flavonoles
(C6-C1-C6)n Proantocianinas
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Los polifenoles son fuertes antioxidantes que complementan y agregan a las
funciones de las vitaminas y enzimas antioxidantes como defensa contra el estrés
oxidativo causado por el exceso de Especies Reactivas de Oxígeno (ROS). Los
estudios también han demostrado que los diferentes subgrupos de polifenoles
pueden diferir significativamente en la estabilidad, biodisponibilidad y funciones
fisiológicas relacionadas con la salud humana (Tsao, 2010).
II.2.2.1. Actividad antioxidante
Los antioxidantes constituyen a un grupo de compuestos que pueden interactuar
con los radicales libres, inhiben o retrasan los procesos oxidativos, a través de un
mecanismo que suele conllevar su propia oxidación. Los suplementos
antioxidantes, o los alimentos que contienen antioxidantes, pueden ser usados
para reducir los daños oxidativos relacionados con la edad y diversas
enfermedades degenerativas como el cáncer, enfermedades cardiacas,
inflamaciones, artritis, disfunción cerebral, aceleración del envejecimiento entre
otras (Intriago & Rengiffo, 2014).
Los antioxidantes se dividen en dos categorías: sintéticos y naturales. En general
los antioxidantes sintéticos son compuestos de estructuras fenólicas con varios
grados de sustitución alquílica tales como: el ter-butil-hidroxi-tolueno (BHT), el ter-
butii-hidroxi-anisol (BHA) y la ter-butil-hidroxi-quinona (TBHQ), mientras que los
antioxidantes naturales pueden ser: compuestos fenólicos (tocoferoles,
flavonoides y ácidos fenólicos), compuestos nitrogenados (alcaloides, derivados
de la clorofila, aminoácidos y aminas) o carotenoides, así como el ácido ascórbico
(Martínez A. C., 2015).
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Mecanismo de acción de los antioxidantes:
• Previniendo la formación Especies Reactivas de Oxígeno (ROS).
• Interceptando el ataque de ROS.
• Secuestrando los metabolitos reactivos y convirtiéndolos en moléculas
menos reactivas.
• Facilitando la reparación del daño causado por ROS.
• Manteniendo un ambiente favorable para la actuación de otros
antioxidantes.
• Amplificando la resistencia de las dianas biológicas sensibles al ataque
de ROS (Martínez A. C., 2015).
II.2.2.2. Radicales libres
Los radicales libres son átomos o grupos de átomos que tienen un electrón
desapareado o libre por lo que son muy reactivos ya que tienden a captar un
electrón de moléculas estables con el fin de alcanzar su estabilidad
electroquímica. Una vez que el radical libre ha conseguido sustraer el electrón que
necesita, la molécula estable que se lo cede se convierte a su vez en un radical
libre por quedar con un electrón desapareado, iniciándose así una verdadera
reacción en cadena que destruye nuestras células. La vida media biológica del
radical libre es de microsegundos, pero tiene la capacidad de reaccionar con todo
lo que esté a su alrededor provocando un gran daño a moléculas, membranas
celulares y tejidos (Avello & Suwalsky, 2006).
Se sabe que los Radicales Libres desempeñan un doble papel, es decir, pueden
ser perjudiciales o beneficiosos para los sistemas vivos. Los efectos beneficiosos
tienden a ocurrir en concentraciones bajas o moderadas e implican su
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Figura 7: Actividad Antioxidante sobre los Radicales Libres
Fuente: (Aguirre J. A., 2012).
participación en diversos roles fisiológicos propios del cuerpo humano y en
numerosas vías de señalización celular (Avello & Suwalsky, 2006).
En la siguiente figura se describe brevemente la Acción Antioxidante en contra de
los Radicales Libres.
Mecanismo de acción:
Se basa en las estructuras de las moléculas
Rompimiento de cadenas, con la formación de radicales piróxilo o carboxilo
para prevenir la abstracción continua del hidrogeno
Descomposición de peróxidos por conversión a productos no radicales
como alcoholes (Aguirre J. A., 2012).
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II.2.3. Extractos
Los extractos son preparados concentrados de consistencia sólida, líquida o
intermedia, derivados generalmente de material vegetal desecado, se obtienen al
evaporar parcial o totalmente el disolvente en los líquidos extractivos de origen
vegetal. Los extractos según su consistencia y concentración de principio activo se
clasifican en: extractos fluidos, secos, blandos y los crioextractos (Carrión &
García, 2010).
II.2.3.1. Extractos fluidos
Los extractos fluidos son extractos de drogas que, con la concentración prescrita
de etanol, están preparados de forma que una parte de droga corresponde a una
parte o dos partes del extracto fluido; teniendo en cuenta que 85 partes de droga
seca corresponden a 100 partes de planta fresca. Por lo general los extractos
fluidos se obtienen por percolación (Voigt, 1982) .
II.2.3.2 Extractos secos
Los extractos secos son aquellos que tienen una consistencia seca y son
fácilmente pulverizables, se obtienen por evaporación del disolvente y desecación
del residuo. Los extractos secos no deben presentar un contenido de humedad
mayor del 5% (Voigt, 1982). Presentan una concentración muy superior de
principio activo que la droga original, son preparados bastante estables (aunque
en ocasiones resultan higroscópicos) y de fácil manipulación; como líquido
extractor se utiliza alcohol de diversa concentración y agua. Actualmente es
posible obtener extractos secos nebulizados que son más estables que los
tradicionales, por ser menos higroscópicos.
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II.2.3.3. Extractos blandos
Crioextractos
Se obtiene por molturación de la droga vegetal correctamente desecada, sometida
a condiciones de congelación (-196°C), mediante inyección de nitrógeno líquido,
de forma que los principios activos no se ven alterados por la acción del calor
desprendido en un proceso de molturación y que dependiendo de la droga vegetal,
puede llegar a ser hasta 70°C (Castillo & Martínez, 2007) Los crioextractos
resultan muy caros, pero son muy útiles para la obtención de proteínas y enzimas
de ciertas especies.
II.2.4. Métodos de determinación de polifenoles totales
II.2.4.1. Folin-Ciocalteu
La determinación del contenido total de compuestos fenólicos, utilizando el método
originalmente propuesto por Folin en 1927 y modificado por Singleton y Rossi, no
es considerada en sí una misma metodología para medir la actividad antioxidante,
a pesar de que su principio se basa en la capacidad redox de los polifenoles
(Londoño, 2017).
El ensayo Folin-Ciocalteu se utiliza como medida del contenido en compuestos
fenólicos totales en productos vegetales. Se basa en que los compuestos fenólicos
reaccionan con el reactivo de Folin-Ciocalteu, a pH básico, dando lugar a una
coloración azul susceptible de ser determinada espectrofotométricamente a 765
nm. Este reactivo contiene una mezcla de wolframato sódico y molibdato sódico
en ácido fosfórico y reacciona con los compuestos fenólicos presentes en la
muestra. El ácido fosfomolibdotúngstico (formado por las dos sales en el medio
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Figura 8: Mecanismo de acción del reactivo de Folin-Ciocalteu
Fuente: (Martínez, Segovia, & López, 2016).
ácido), de color amarillo, al ser reducido por los grupos fenólicos da lugar a un
complejo de color azul intenso, cuya intensidad es la que medimos para evaluar el
contenido en polifenoles (Martínez, Segovia, & López, 2016).
II.2.5. Métodos de determinación de actividad antioxidante
II.2.5.1. Método de DPPH
El método fue planteado por Brand-Williams. La molécula 1,1-difenil-2-picril-
hidrazilo (DPPH) se le conoce como un radical libre estable debido a la
deslocalización de un electrón desapareado sobre la molécula completa, por lo
cual la molécula no se dimeriza, como es el caso de la mayoría de los radicales
libres. La deslocalización del electrón también intensifica el color violeta intenso
típico del radical, el cual absorbe en metanol a 517nm. El cambio de color es
monitoreado espectrofotométricamente y es utilizado para la determinación de los
parámetros para las propiedades antioxidante (Ronquillo & Galarza, 2016).
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Método de decoloración del radical ABTS
Este método fue propuesto en 1993 por Miller y se basa en la capacidad
antioxidante del ABTS para capturar aniones radicales de larga vida. En la prueba
el ABTS es oxidado por radicales peróxidos, por persulfato de potasio, por
peróxido de hidrógeno, peroxidasa de rábano u otro oxidante hasta formar el
catión radical ABTS, el cual presenta un intenso color verde-azul, y en la medición
los compuestos con capacidad antioxidante reaccionan directamente
disminuyendo el color del catión radical ABTS. Los resultados obtenidos se
expresan como inhibición y se llevan a una concentración relativa de Trolox, por
ello el método se conoce como capacidad antioxidante equivalente al Trolox
(TEAC) (Aguirre, Andrade, & Díaz, 2015).
II.2.5.3. Método DMPD
Se determina la actividad antioxidante aplicando el método propuesto por
Fogliano. Este se basa en añadir 1 mL de la disolución de DMPD 100 mM a 100
mL de disolución tamponada con ácido acético/ acetato de sodio 0,1 M (pH 5,25).
Tras la adición de 0,2 mL de una disolución de cloruro férrico 0,05 M
(concentración final de 0,1 mM) se forman radicales cationes coloreados (DMPD).
Un mililitro de esta disolución se traslada a una cubeta midiéndose su
absorbancia, comprendida entre 0,90 (±0,1), a 506 nm. Se añade 50 µL de una
disolución patrón de antioxidante o de muestras diluidas y transcurridos diez
minutos (a 25ºC) se hace otra medida de absorbancia a 506 nm. La disolución
tamponada de acetato se utiliza como blanco de referencia. Los resultados se
expresan en TEAC, o sea, actividad equivalente a Trolox (en mM o µM) o bien en
VCEAC, actividad equivalente a vitamina C (mg/L o mg/100 g) (E. Marta
KuskoskiI, 2015).
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CAPITULO III: MATERIALES Y METÓDOS
III.1. Tipo de investigación
El presentes trabajo es de tipo explicativo con enfoque cualitativo – cuantitativo.
III.2. Etapas de la investigación
El mismo se realizará en dos etapas, estas se desplegarán de la siguiente
manera:
La primera etapa del progreso de la investigación constituye:
Recolección de la muestra
Selección de la muestra
Parámetros fisicoquímicos: Humedad y Cenizas Totales
Preparación de extractos
La segunda etapa la conforman:
Determinación de Polifenoles por el método Folin–Ciocalteu.
Determinación de Actividad Antioxidante por el método DPPH.
III.3. Delimitación de la investigación
La fruta de análisis fue adquirida en la provincia del Guayas cantón Milagro.
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31
III.4. Criterios de inclusión y exclusión
III.4.1. Criterio de inclusión
Fruta madura colgando en el tronco, 25-100 cm de largo, 20-25 cm de diámetro,
con corteza color marrón, pulpa que va del rojo al anaranjado, con un peso total
aproximado de entre 30 a 50 kilogramos.
III.4.2. Criterio de exclusión
Fruto inmaduro de color verde oscuro, que no se halla madurado en el árbol,
corteza que haya sufrido corte o atacada por insectos.
III.5. Preparación de la muestra
Vaciar la pulpa, retirar las semillas
Dejar secar la pulpa previo análisis.
III.6. Materiales, reactivos y métodos
III.6.1. Reactivos
Ácido Gálico
Metanol
Agua destilada
Reactivo de Folin-Ciocalteau
Carbonato sódico 7,5%
Fluoruro de sodio
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III.6.2. Materiales
Balanza analítica
Centrífuga
Agita tubos (vortex)
Matraces aforados de 25 mL y 10 mL
Vasos de precipitados de 50 mL
Pipetas de 1, 5 y 10 mL
Tubos de ensayo con tapón
Tubos de centrífuga
Cubetas de plástico de 3 mL para espectrofotometría
visible
III.6.3. Equipos
EQUIPOS MODELO
Estufa Linderg Blue
Espectrofotómetro SpectronicTM GENESYSTM
Mufla VULCAN A550
III.6.4 Métodos
Parámetros fisicoquímicos
Humedad Método MO-LSAIA-01.01
Cenizas Método MO-LSAIA-01.02
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Obtención de extractos
El material vegetal seco se procesó en un molino hasta obtener partículas finas, a
las cuales se les adicionaron 150 ml de una solución de metanol/cloroformo 2:1 y
se sometieron a extracción soxhlet durante 6 horas. El extracto obtenido se filtró
con un papel de Ref. 595, antes de secar el sobrenadante a presión reducida en
un rota-evaporador. El extracto se redisolvió en metanol al 90%. Con las fases
alcohólicas se obtuvieron los extractos metanólicos. Todos los extractos se
almacenaron a -10ºC en condiciones de oscuridad hasta la preparación de las
concentraciones de trabajo. (Bibiana Echavarría Z., 2009)
III.6.4.1. Determinación de polifenoles totales
La concentración de fenoles totales en los extractos fue medida por
espectrofotometría, basándose en una reacción colorimétrica de óxido-reducción.
El agente oxidante utilizado fue el reactivo de Folin-Ciocalteu (Bibiana Echavarría
Z., 2009).
Preparación de la muestra:
Cinco mg de extracto se disolvieron en 1 ml de agua destilada. Se llevó a 10 ml de
agua destilada y de esta solución se tomaron 100 µL para después completarse a
500 µL con agua destilada. Este procedimiento se realizó en el extracto metanólico
(Bibiana Echavarría Z., 2009).
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Preparación de la curva de calibración:
Para la curva de calibración se utilizó una solución estándar de ácido gálico
(SIGMA) (100 µg/ ml), de la cual se prepararon ocho concentraciones de 0.2 a 1.6
µg/ml con agua destilada.
Ensayo: A la solución estándar y a las muestras previamente preparadas se les
adicionaron 250 µL de reactivo de Folin-Ciocalteu 1N. Posteriormente se
adicionaron 1250 µL de Na2CO3 al 20% y se dejó reposar durante 2 horas. La
absorbancia fue medida a 760 nm. Los resultados fueron expresados en mg de
Ácido Gálico por g de extracto (mg GA/g extracto) (Bibiana Echavarría Z., 2009).
III.6.4.2. Determinación de Actividad Antioxidante
Para la determinación cuantitativa se utilizó el método del radical libre DPPH, el
cual reduce el radical 2,2-difenil-1-picrilhidracilo (DPPH) en la 2,2-difenil-1-pricril
hidrazina por la Acción Antioxidante de compuestos que contienen grupos -OH
que decoloran dicho reactivo (Bibiana Echavarría Z., 2009).
Inicialmente se hizo un ensayo en Cromatografía de Capa Fina (CCF) de cada una
las fracciones con el fin de realizar un análisis cualitativo antioxidante. Se
ensayaron mezclas de varios eluentes en diferentes proporciones, entre ellas
hexano/acetato de etilo y cloroformo/metanol, hasta encontrar el sistema que
reprodujera una mejor separación de los compuestos. Posteriormente se reveló
con una solución de DPPH al 0.2% en metanol (positivo: manchas amarillas sobre
fondo violeta) (Bibiana Echavarría Z., 2009).
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Preparación de la muestra:
Los extractos concentrados acuosos y metanólico se disolvieron en etanol grado
reactivo hasta obtener cinco concentraciones diferentes con valores de
absorbancia superiores a 0,3 (Bibiana Echavarría Z., 2009).
Preparación de la curva de calibración:
Para la curva de calibración se utilizó una solución estándar de BHT (butil
hidroxitolueno) (SIGMA) (200 µg/ml) de la cual se prepararon cinco
concentraciones de 0.5 a 7.5 µg/ml con etanol (Bibiana Echavarría Z., 2009).
Ensayo:
Se preparó una solución de DPPH (SIGMA) 0,2 mg/ml en etanol grado reactivo y a
1 ml de cada muestra se le adicionó 1 ml de la solución de DPPH preparada. La
absorbancia a 517 nm fue determinada en un espectrofotómetro ultravioleta visible
SpectronicTM GENESYSTM, exactamente 30 minutos después de iniciada la
reacción, y la decoloración fue comparada con una solución que contenía la
misma proporción 1:1 (v/v) de etanol y DPPH. Una solución de extracto y etanol en
la misma proporción 1:1 (v/v) sirvió como blanco de la muestra para corregir su
color (4, 18).
Los resultados fueron expresados como porcentaje de decoloración de DPPH
utilizando la siguiente expresión:
%Decoloración DPPH =1 Am − Abm
𝐷𝑃𝑃𝐻 100
Donde Am es la absorbancia de la mezcla de reacción (DPPH + extracto), Abm la
del blanco de muestra (extracto + agua), y ADPPH la absorbancia de la solución
de DPPH (Bibiana Echavarría Z., 2009).
36
36
CAPITULO IV RESULTADOS Y DISCUSIONES
Una vez finalizada la investigación se pudieron obtener los siguientes resultados:
IV.1. Resultados
IV.1.1 Parámetros fisicoquímicos
IV.1.1.1 Humedad y cenizas totales
En la tabla 16 y 17, se muestra los resultados del análisis físico y químico
realizado en la pulpa. Todos los análisis se hicieron por triplicado.
Tabla XVI: Resultados de Análisis de Humedad de la pulpa.
FRUTA UNIDADES RESULTADOS
Pulpa del Jackfruit
(Artocarpus
heterophyllus Lam.)
%
77.11
77.08
77.19
PROMEDIO 77.12
DES. ESTÁNDAR 0.046
Fuente: Autoras
37
37
Tabla XVII: Resultados de Análisis de Cenizas Totales en la pulpa.
FRUTA UNIDADES RESULTADOS
Pulpa del Jackfruit
(Artocarpus
heterophyllus Lam.)
%
3.49
3.52
3.53
PROMEDIO 3.51
DES. ESTÁNDAR 0.016
Fuente: Autoras
IV.1.2 Polifenoles Totales en extracto acuoso y metanólico
En la investigación sobre los Polifenoles Totales de la pulpa de jaca Artocarpus
heterophyllus Lam., se consiguió como resultado en el extracto acuoso
0,008464%, en cuanto al extracto metanólico se obtuvo un 0,5% siendo este
extracto el de mayor cantidad de Polifenoles.
Fuente: Autoras
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
1
0.008464 %
0.5 %
POLIFENOLES TOTALES
EXTRACTO ACUOSO EXTRACTO METANÓLICO
Gráfico 1: Análisis comparativo de Polifenoles Totales en los extractos acuoso y metanólico de la pulpa de Artocarpus heterophyllus Lam.
38
38
IV.1.3 Actividad Antioxidante en extracto acuoso y metanólico
Fuente: Autoras
En la gráfica presentada se observa la Actividad Antioxidante de la pulpa de jaca
Artocarpus heterophyllus Lam. el cual se obtuvo en el extracto acuoso 374,24
mg/100g, mientras que en extracto metanólico el resultado fue de 625 mg/100g
siendo este extracto el de mayor contenido de antioxidante.
0
100
200
300
400
500
600
700
EXTRACTO ACUOSO EXTRACTO METANÓLICO
374.24 mg/100g
625 mg/100g
ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE
Gráfico 2: Análisis comparativo de la Actividad Antioxidante de los extractos acuoso y metanólico de la pulpa de Artocarpus heterophyllus Lam.
39
39
IV.4. Discusión
IV.4.1. Humedad y cenizas
El porcentaje de humedad de la pulpa del Jackfruit del presente estudió es de
77.12% similar a lo reportado por (Simba, 2014) y (Villa, 2013) es de 77.58% y
74.23% respectivamente realizado en la pulpa fresca. Pero difiere con (Cedeño &
Noriega, 2015) cuyos resultados fueron de 8.6% el mismo que se realizó en la
harina del Jackfruit, a ello se debe este valor.
0,00%
10,00%
20,00%
30,00%
40,00%
50,00%
60,00%
70,00%
80,00%
PULPA (AUTORAS) PULPA (SIMBA, 2014)
PULPA (VILLA, 2013) HARINA DE JACKFRUIT (CEDEÑO & NORIEGA, 2015)
77,12% 77,58%74,23%
8,60%
Análisis de Humedad
Fuente: Autoras
Gráfico 3: Análisis comparativo de humedad en pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta.
40
40
El porcentaje de cenizas es de 3.51% en la pulpa fresca del presente estudio
resultó similar al realizado por (Simba, 2014) es de 3.39% seguido del valor
reportado por (Villa, 2013) que es de 2.25%. Pero difiere con el estudio realizado
por (Cedeño & Noriega, 2015) de 0.57% realizado en la harina de las semillas.
Esto indica que en el proceso de recolección y tratado de la muestra, así mismo
como las condiciones del suelo y de la fertilización van a depender mucho en el
contenido de cenizas totales.
0,00%
0,50%
1,00%
1,50%
2,00%
2,50%
3,00%
3,50%
4,00%
PULPA (AUTORAS) PULPA (SIMBA, 2014)
PULPA (VILLA, 2013)
HARINA DE JACKFRUIT (CEDEÑO &
NORIEGA, 2015)
3,51% 3,39%
2,25%
0,57%
Análisis de cenizas
Fuente: Autoras
Gráfico 4: Análisis comparativo de cenizas en la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otros subproductos de la fruta.
41
41
IV.4.2. Polifenoles Totales
Gráfico 5: Comparación de resultados de Polifenoles Totales en el extracto metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la
planta.
Fuente: Autoras
El contenido de Polifenoles Totales en el extracto metanólico de la pulpa es de
0.5% en el presente estudio de Artocarpus heterophyllus Lam. cosechado en la
Costa ecuatoriana, siendo similar a los valores encontrados en el estudio de
(Escobar, 2018) en el extracto etanólico de las hojas del Artocarpus heterophyllus
Lam. de la provincia de Bolívar y Pichincha siendo sus valores 0.03167% y
0.3108% respectivamente.
Pero difiere a los reportados por (Shrikanta & Kumar, 2015) realizado en el
extracto etanólico de la pulpa y semillas (0.000127% y 0.0001%) respectivamente.
Por otro lado, el valor reportado por (Leite, 2017) en las semillas de la misma
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
0,4
0,45
0,5
PULPA (AUTORAS)
HOJAS (ESCOBAR,
2018)
HOJAS (ESCOBAR,
2018)
PULPA SHRIKANTA & KUMAR, 2015)
SEMILLAS (SHRIKANTA & KUMAR, 2015)
SEMILLAS (LEITE, 2017)
0.5 %
0.03167 %
0.3108 %
0.000127 % 0.0001 % 0.000008 %
Polifenoles Totales en el extracto metanólico
42
42
especie fue de 0.000008% siendo estos extremadamente inferior a los valores
obtenidos en el presente estudio.
La diversidad de resultados de distintas autorías se debe a que los estudios se
realizaron en diferentes partes de la fruta situación que influye directamente en el
contenido de Polifenoles Totales.
En el extracto metanólico en pulpa del presente estudio mostró un mayor
contenido de Polifenoles Totales, seguido del extracto de las hojas y con un menor
resultado para el extracto de las semillas.
Tabla XVIII: Comparación de resultados de Polifenoles Totales en el extracto acuoso de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la planta.
POLIFENOLES
TOTALES
VALORES AUTORES
PULPA 0,0084g/100g (Autoras)
HOJA 439,67 mg GAE/ml (Escobar, 2018)
HOJA 344,78 mg GAE/ml (Escobar, 2018)
PIEL 13.38 ± 0.29 mg GAE g- 1 (Shrikanta & Kumar, 2015)
PULPA 1.27 mg GAE g- 1 (Shrikanta & Kumar, 2015)
SEMILLAS 1.00 mg GAE g- 1.
(Shrikanta & Kumar, 2015)
En cuanto al extracto acuoso (Escobar, 2018) analizó la hoja de Jackfruit en la
provincia de Bolívar, la cantidad de fenoles totales presentes fue de 439,67 mg
GAE/ml y Pichincha 344,78 mg GAE/ml. Difiriendo del extracto acuoso de la pulpa
del presente estudio donde el resultado fue de 0,0084g/100g. (Shrikanta & Kumar,
Fuente: Autoras
43
43
2015) Estudiaron extractos de etanol/agua (80:20 v/v) de diferentes partes de la
fruta, cuyos resultaron fueron para la piel 13.38 ± 0.29 mg GAE g-1, pulpa 1.27 mg
GAE g- 1 y la semilla 1.00 mg GAE g- 1.
La diversidad de valores es diferente ya que (Escobar, 2018) realizo una dilución y
los miligramos obtenidos están presentes en 1ml, resultando bajos, aún así el
contenido de Polifenoles en pulpa de jackfruit, en extracto acuoso, es igualmente
bajo, pues se obtuvo 0,0084g/100g. En contraparte los resultados obtenidos por
(Shrikanta & Kumar, 2015) en la piel de la misma especie reportados son más
elevados.
44
44
IV.4.3. Actividad Antioxidante
Gráfico 6: Comparación de la Actividad antioxidante en extracto metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta.
Fuente: Autoras
La actividad antioxidante analizada por el radical DPPH en esta investigación es
de 625 mg/100g en extracto metanólico de la pulpa, similar a lo encontrado en la
(prueba 3 - 200ul) de la harina de las semillas reportado por (Cedeño & Noriega,
2015) siendo sus valores 593.400mg/g. Aunque los valores que presentan
(Shrikanta & Kumar, 2015) en el extracto etanol/agua 80:20 de diferentes partes
de la fruta piel, pulpa y semillas (0.00043 mg/g, 0.01145 mg/g y 0.00607 mg/g)
respectivamente son relativamente más bajos en comparación a los resultados del
presente estudio. Estos datos indican que la distribución geográfica, temperatura
de almacenamiento y la parte de la fruta puede influir en los resultados.
0
100
200
300
400
500
600
700
PULPA (AUTORAS) HARINA DE SEMILLAS (CEDEÑO & NORIEGA, 2015)
PIEL (SHRIKANTA & KUMAR, 2015)
PULPA (SHRIKANTA & KUMAR, 2015)
SEMILLAS (SHRIKANTA & KUMAR, 2015)
625 mg/100g 593.4 mg/g.
0.00043 mg/g 0.01145 mg/g 0.00707 mg/g
Actividad Antioxidante en extracto metanólico
45
45
En el extracto metanólico de la pulpa del presente estudio mostró un mayor
contenido de Actividad Antioxidante, seguido de la harina de las semillas y con un
menor resultado para el extracto de las semillas.
El extracto metanólico presentó una mayor Actividad Antioxidante, al revisar la
composición química de la fruta se encontró moléculas con Actividad Antioxidante,
entre ellas taninos y ácido ascórbico (Jiménez, 2018) por ser más solubles en
disolventes orgánicos están presentes en el extracto a diferencia del extracto
acuoso.
0
50
100
150
200
250
300
350
400
PULPA (AUTORAS) ESPERMODERMO (BRINDHA DURAIRAJ,
2018)
COTILEDÓN (BRINDHA DURAIRAJ, 2018)
367.14 mg/100g
12.714 mg/100g 18.741 mg/100g
Actividad Antioxidante en extracto acuoso
Fuente: Autoras
Gráfico 7: Análisis comparativo de la Actividad Antioxidante en el extracto acuoso de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam. y otras partes de la fruta.
46
46
En el extracto acuoso del presente estudio se obtuvo como resultado 367.14
mg/100g de actividad antioxidante. El mismo que contrasta con el análisis del
extracto hidroetanólico de semillas de Artocarpus heterophyllus Lam. analizadas
por (Brindha Durairaj, 2018) , el mismo que indica 12,714 mg/100g en el
espermodermo y en el cotiledón 18, 741 mg/100g respectivamente. En el
extracto acuoso de la pulpa es donde mayormente se presenta la actividad
comparada con el cotiledón y el espermodermo.
Finalmente, en los extractos estudiados se verificó que el extracto metanólico
presentó mayor Actividad Antioxidante que el extracto acuoso de la pulpa del
Artocarpus heterophyllus Lam.
47
47
CONCLUSIONES
1. El Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam) cosechado en la Costa
Ecuatoriana presentó una humedad de 77.1% y el contenido cenizas totales
de 3.49%.
2. La presencia de Polifenoles Totales aplicando el método Folin–Ciocalteu
evidencio una concentración de 0.008464% en el extracto acuoso y de
0.5% en el extracto metanólico.
3. La Actividad Antioxidante se valoró por el método DPPH, para el que se
presentó valores como 367.14 mg/100g en el extracto acuoso y de 625
mg/100g para el extracto metanólico.
4. El contenido de Polifenoles Totales y Actividad Antioxidante en la pulpa
(Artocarpus heterophyllus Lam) resultó más elevado en el extracto
metanólico al contrario de los resultados obtenidos en el extracto acuoso
para los dos análisis.
48
48
RECOMENDACIONES
Realizar el mismo estudio de Polifenoles Totales y Actividad Antioxidante
en los extractos; acetona, acetonitrilo u otro solventes polares.
Identificar cada uno de los Polifenoles que le dan Actividad Antioxidante a la
pulpa del Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.).
Realizar un tamizaje fitoquímico de los diferentes extractos.
49
49
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GLOSARIO
Ácido elágico: El ácido elágico (AE), es un elagitanino presente en el
metabolismo secundario de los vegetales, su principal característica es su
capacidad antimicrobiana, antioxidante, antimutagénica, anticarcinogénica y
antiviral (Francisco, y otros, 2010).
Ácido fítico: es un antioxidante que se encuentra en la capa externa de las
semillas de algunas plantas como las legumbres, los cereales integrales y los
frutos secos (Veganos, 2015)
Ácido gálico: El ácido gálico es un polifenol y pertenece precisamente al grupo de
taninos hidrolizables. Esto quiere decir que es de fácil obtención porque es una
molécula simple, es un anillo fenólico y gracias a la funcionalidad que tienen los
grupos hidroxilos en su estructura, le confiere algunas características especiales
(Banda, 2017).
Ácido hidroxicinámicos: Los ácidos hidroxicinámicos son un grupo de
compuestos presentes en la pared celular vegetal, cuyos principales
representantes son el ácido ferúlico, p-cumárico, cafeico y sinápico, de los cuales
el ácido ferúlico y p-cumárico son los de mayor abundancia en la naturaleza
(Mardones, 2016)
Antifúngicos: Los antifúngicos o antimicóticos son moléculas que ayudan a
luchar contra los hongos inhibiendo su desarrollo. Las infecciones fúngicas pueden
ser superficiales o sistémicas (Valdés, 2016).
Actividad Antioxidante: La actividad antioxidante es la capacidad de una
sustancia para inhibir la degradación oxidativa de tal manera que un antioxidante
actúa, principalmente, gracias a su capacidad para reaccionar con radicales libres
y, por lo tanto, recibe el nombre de antioxidante terminador de cadena (Julian
Londoño Londoño, 2012).
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Bulbo: son unos órganos subterráneos que desarrollan algunas plantas, que se
ocupan de almacenar los nutrientes como reserva, para ser utilizados en la
brotación de nuevos tallos durante sus épocas de brotación y crecimiento
(Armada, 2017).
Cotiledón: se denomina cotiledón a las hojas primordiales de las plantas con
flores (fanerógamas) y que se desarrollan con la germinación de la semilla, donde
forman la primera hoja del embrión (Sánchez, 2019)
Espectrofotómetro: Un espectrofotómetro es un instrumento utilizado para
determinar a qué longitud de onda la muestra absorbe la luz y la intensidad de la
absorción. Aunque varían en el diseño, todos los espectrofotómetros consisten en
una fuente de luz, un selector de longitud de onda, un contenedor transparente en
el cual se deposita la muestra, un detector de luz y el medidor. (Sosa & Sánchez,
2004).
Espermodermo: tegumento propio de la semilla, es la película que cubre
exteriormente (Edwuars, 1825).
Hiperglucemia: La hiperglucemia es el término técnico que utilizamos para
referirnos a los altos niveles de azúcar en la sangre. El alto nivel de glucemia
aparece cuando el organismo no cuenta con la suficiente cantidad de insulina o
cuando la cantidad de insulina es muy escasa. La hiperglucemia también se
presenta cuando el organismo no puede utilizar la insulina adecuadamente
(American Diabetes Association , 2015).
Las ERO: según su propio nombre, presentan una reactividad más alta que el
oxígeno molecular. Algunas de ellas pueden ser radicales libres, es decir,
moléculas o fragmentos moleculares que contienen uno o más electrones
desapareados en orbitales atómicos o moleculares (Julian Londoño Londoño,
2012).
Mufla: Un horno que puede generar elevadas temperaturas y sirve para calentar
materiales que son sometidos a distintos procesos de tratamiento térmico. Estos
hornos muflas son utilizados en varias aplicaciones; así, en la metalurgia, secado
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y calcinación de precipitados, ensayos de flamabilidad a alta temperatura,
aleaciones de metal, templado, ensayos de fundición y otras que necesitan de un
tratamiento por calor. (VIZCAÍNO, 2015)
Metabolitos secundarios: Moléculas orgánicas que no parecen tener una función
directa en procesos fotosintéticos, respiratorios, asimilación de nutrientes,
transporte de solutos o síntesis de proteínas, carbohidratos o lípidos (Adolfo &
Elena, 2009).
Nutracéuticos: Los nutracéuticos son productos provenientes de alimentos cuyas
características nutricionales y funcionales proporcionan beneficios contribuyendo a
mejorar la salud y por tanto reducir el riesgo de padecer enfermedades; pueden ir
acompañados por otros componentes activos o nutrientes exógenos como
vitaminas, minerales, antioxidantes, ácidos grasos, etc. (Badío, 2016)
Oxidación: Es el grado de oxidación de un átomo, el cual se genera en procesos
celulares internos, que conllevan la aparición de enfermedades. (Marta, Salvador,
Rey, Marcela, & Claudia, 2015).
Polifenoles: Los polifenoles son compuestos de origen vegetal con potentes
propiedades antioxidantes que se encuentran en muchas frutas y verduras como
las moras, el aceite de oliva, frijol de soya, los arándanos y las uvas (Geosalud,
2015)
Resveratrol: Es un antioxidante que se encuentra en varias plantas y
especialmente en la piel de las uvas rojas, las grosellas, las moras y los
cacahuetes (Farmaciameritxell, 2011)
Tratamiento adyuvédico: Son los tratamientos que incluyen medicinas herbales,
meditación y yoga, masaje y aceites esenciales. El objetivo de todas estas
terapias es restaurar el equilibrio de la persona (Santiago, 2014).
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Anexo A Vista entera y pulpa del Jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.)
Anexo B Extractos acuoso y metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam.
ANEXOS
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Anexo C Análisis de cenizas de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam.
Anexo D Análisis de humedad de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam.
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Anexo E Análisis de Polifenoles Totales en extracto metanólico de la pulpa del Artocarpus heterophyllus Lam.