I) L ’EPIDIDYME
II) LE SPERME
III) LE SPERMOGRAMME
TRANSIT EXTRA-TESTICULAIRE
DES SPERMATOZOIDES
I) L’EPIDIDYME - Plan
A) GénéralitésB) Rôles de l’épididyme
– Transport– Résorption– Maturation– Barrière hémato - épididymaire
C) Régulation de l’épididyme– Hormonale– Neurologique
des spz
A) Généralités
Anatomie de l ’épididyme
• Macroscopie : tête - corps - queue• Microscopie :
– Canal de 5m, pelotonné– Histologie :
• Epithélium prismatique simple• Evolution de la tête vers la queue
– la hauteur des cellules diminue– les microvillosités disparaissent– La musculeuse s’épaissit
Histologie
B) Rôles de l ’épididyme
• Transport
• Résorption
• Maturation
• Barrière hémato-épididymaire
Transport (10-15 js)
Testicules
Cônes efférents
Tête épid.
Corps épid.
Queue épid.
Secrétion du liquide testiculaire par les C. de Sertoli
Résorption du liquide testiculaire
Flux liquidien
Contractions péristaltiques spontanées
Contractions continues
Contractions péristaltiques induites
Stockage
Ejaculation
Cils vibratiles
Résorption
• Liquidienne– 99% du « fluide spermatique » (=liquide du Rete
Testis)
hyperconcentration des spermatozoïdes et des électrolytes
• Cellulaire : phagocytose des spermatozoïdes morts ou anormaux (Spermiophages)
Résorption-Sécrétiondes protéines
Maturation des spermatozoïdes
• Développement d ’une mobilité progressive
• Maturation nucléaire
• Acquisition d ’une capacité de reconnaissance et de fixation à l ’ovocyte
• Modification morphologique
Maturation des spermatozoïdes(Bélier)
• Fécondation
• 2%
• 34%
• 79%
• « Mortalité »embryonnaire
• 100%
• 64%
• 10%
Tête
Corps
Queue
Anastomose épididymo-déférentielle
Maturation des spermatozoides(Homme)
Anastomoses épididymo-déférentielles
Grossesses après FIV
Haute 54
6 (11%)
Moyenne 28 11 (39%)
Basse 9 6 (66%)
SCHOYSMAN 1986
Maturation des spermatozoïdes : Développement de la mobilité
• Testicule rares frémissants
• Tête épid. 10% mobiles sur place
• Corps épid. 40% mouvement circulaire
• Queue épid. 60% mouvement progressif
• pH intracellulaire diminue: tête queue
• Diminution du Ca++ intracellulaire
• Augmentation de l ’AMP cyclique intra Caire
• Rôle des protéines: carnitine, α glucosidase
• oxydation des radicaux thiols des résidus cystéine des protéines de la pièce intermédiaire : rigidification des fibres denses
Maturation des spermatozoïdes : Développement de la mobilité
Reconnaissance - Fixation à l ’ovocyte
• Modifications membranaires– Composition en lipides membranaires
– Protéines d ’origine épididymaire qui s’intègrent sur la membrane spermatique et permettent la fixation à la zone Pellucide
– Masquage de ces protéines par les aminoglycanes dans la queue épididymaire(décapacitation = quiescence).
Maturation des spermatozoides :
Maturation nucléaire
• Stabilisation de la condensation de la chromatine:– oxydation des radicaux thiols SH des protamines (riches en cystéines) en ponts disulfure S-S
• Rôle dans la fragmentation de l’ADN et la « mortalité » embryonnaire?
Maturation des spermatozoides :
Protamines
cystéine
Oxydation des fonctions thiols = formation de ponts disulfure
Modification morphologique
• Disparition des gouttelettes cytoplasmiques
Maturation des spermatozoïdes :
Barrière hémato-épididymaire
• Isolement des spz : «Sanctuaire »– Protection (Antigènes, toxines, radicaux libres,
pathogènes…)
– Rupture conséquences immunologiques : auto-immunisation
C) Régulation de l ’épididyme
• Contrôle hormonal
• Contrôle neurologique
Contrôle hormonal
Contrôle hormonal
• Testostérone produite par les cellules de Leydig
• Androgen Binding Protein (ABP) produite par les cellules de Sertoli
• Fortes concentrations de T-ABP dans la tête de l ’épididyme, diminution ensuite
Contrôle neurologique de l ’épididyme
• Système sympathique et parasympathique
• Responsable du péristaltisme spontané dans l’épididyme transport
• Rôle sur les secrétions épididymairesmaturation
Contrôle neurologique de l ’épididyme
• Dénervation chez le rat : in vivo – contrôle 85% d ’implantation (J9)
– dénervé 3% d ’implantation (J9)DIMINUTION DU NOMBRE ET DE LA MOBILITE
• Dénervation chez le rat : in vitro– contrôle 89% fécond(J1) 78% implantation (J9)
– dénervé 76% fécond(J1) 28% implantation (J9) AUGMENTATION DE LA MORTALITE EMBRYONNAIRE
RICKER 1997
Conclusion I)
• Rôle physiologique très important
• Détail des interactions protéiques mal connu
• Anomalie accessible au médecin :– Obstruction du tractus génital
• examen clinique ++
• Spermogramme ++
• biochimie séminale +/-
II) LE SPERME
•Composition
•Biochimie
Le tractus génital mâle
• Epididymes
• Conduits déférents
• Urètre
• Glandes annexes– Vésicules séminales
– Prostate
– Glande bulbo-urétrale
Anatomie reproductive masculineAnatomie reproductive masculine
Prostate
Vessie
Pubis
UretrePenis
Glande bulbo-uretraleEpididyme (2)
Conduit déférent (2) Canal éjaculateur (2)
Testis (2)
Vésicules séminales
(2)
Composition
• Milieu hétérogène, mélange de secrétions (de fractions => « Éjaculât fractionné »)– 1ère fraction: Glande de Cooper, Prostate
• 30% vol, rares spermatozoïdes
– 2ème fraction: épididyme et déférent• 10% vol, Nombreux spermatozoïdes
– 3ème fraction: Vésicules séminales• 60% vol : peu de spermatozoïdes
Vésicules séminales
• Organes pairs à structure glandulaire
• La sécrétion vésiculaire s’accumule dans la lumière et sera expulsée lors de l’éjaculation. Elle contribue à l’essentiel du volume spermatique.
• Nombreuses substances : électrolytes, protéines (séminogéline), Fructose +++
La prostate
• Organe musculo-glandulaire
• Maintien de la continence urinaire et émission du sperme lors de l’éjaculation– 2 sphincters : lisse (vésical) et strié (prostatique)
• Sécrétion glandulaire constituant le reste du volume spermatique – Acide citrique, phosphatase acide, spermine,
spermidine, ions Zn, Mg
Biochimie du plasma séminal
• Sperme = Milieu hétérogène
• Centrifugation = spz + plasma séminal
• Marqueurs spécifiques– Epididyme
– Vésicules séminales
– Prostate
Exploration d’une obstruction sur le tractus génital
Biochimie séminale
• Marqueurs spécifiques, sur spermogramme à 5 js d’abstinence– Epididyme α glucosidase,
carnitine
– Vésicules séminales Fructose
– Prostate Citrate
III) LE SPERMOGRAMME
• Paramètres étudiés
• Interprétation
Facteurs de variation
• Délai de l ’abstinence (éjaculation)
• Qualité de l ’éjaculation
• Saisons
• Maladie
• Chaleur
• Variations inexpliquées
Spermogramme et abstinence
• Délai d ’abstinence1 jour 7 jours
• volume 2,1+0,1 4,6+0,3 p<0,01
• Num/ml 87+14 111+10 p<0,05
• Num/ejac 195+36 530+62 p<0,01
• Mobilité 60+ 3,4 47+3,3 p<0,01
• Cytologie 55+2,2 59+3,1 N.S
Le Lannou 1986
Variabilité intra individuelle
• 1er prélèvement à 50x106/ml
• 2ème prélèvement entre 25 et 110x106/ml
Schwartz 1979
SPIRA 1980
Variabilité inter - individuelle
Au laboratoire
• Analyse du sperme liquéfié 30 min à 37°C– Numération
– Mobilité
– Motilité
– Morphologie
– Biochimie séminale sur plasma séminal
Mobilité - Motilité
Morphologie
Spermogramme « normal »
• Volume 2-5ml
• Numération 20-250 Millions/ml
• Mobilité > 50%
• Motilité : paramètres cinétiques normaux
• Formes normales > 45%
• Valeurs valables pour 3 à 5 js d’abstinence
Spermogrammes « anormaux »
• Azoospermie Absence de spz
• Cryptozoospermie Rares spz ( < 0,1 M/mL)
• Oligospermie Num < 20 Millions/ml
• Asthénospermie Mobilité < 40%
• Tératospermie F.Normales < 40%
Azoospermie : attention…
• Différence entre Production intratesticulaireet Excrétion spermatique:
30 à 50% de pertes !!– résorption épididymaire: 20 à 30%
– pertes urinaires: 2 à 10%
– dysfonction éjaculatoire: variable
Donc… en pratique
• Il faut répéter au moins 2 fois le spermogramme en cas d’anomalie avec 3 mois d’intervalle– Variabilité naturelle– Cas des Azoospermies
• dans environ 10 à 15 % des cas : Présence de spermatozoïdes
• Une azoospermie vérifiée ne signifie pas l’absence de production testiculaire
Conclusion III)Ses paramètres dépendent de nombreux facteurs:
• Facteurs physiologiques – Délai d ’abstinence (éjaculation)– Qualité de l ’éjaculation– Saisons
• Facteurs pathologiques– Fièvre– Amaigrissement– TTT– toxiques (tabac, alcool, cannabis)– ATCD génital– ATCD familial
• Inexpliqués
