Aus dem Institut für Tierernährung
der Tierärztlichen Hochschule Hannover
Kurz- und langfristige Effekte der Fütterung von Trockenschnitzelexpandat auf die metabolischen Reaktionen und die Leistungsfähigkeit
beim arbeitenden Pferd
INAUGURAL-DISSERTATION Zur Erlangung des Grades einer
DOKTORIN DER VETERINÄRMEDIZIN (Dr. med. vet.)
durch die Tierärztliche Hochschule Hannover
Vorgelegt von JUDITH MÖHRER
aus Aachen
Hannover 2003
Wissenschaftliche Betreuung: Univ.-Prof. Dr. M. Coenen
1. Gutachter: Univ.-Prof. Dr. M. Coenen
2. Gutachter: Univ.-Prof. Dr. P. Stadler
Tag der mündlichen Prüfung: 26.5.2003
FX
Inhaltsverzeichnis
INHALTSVERZEICHNIS
I. EINLEITUNG.......................................................................................................... 13
II. SCHRIFTTUM....................................................................................................... 15
1. Grundlagen des Energiestoffwechsels........................................................................ 15
1.1. Allgemeines 15
1.2. Anaerobe Phosphorylation 17
1.2.1. Myokinasereaktion 17
1.2.2. Kreatinkinasereaktion 17
1.2.3. Glykolyse 18
1.3. Aerobe (oxidative) Phosphorylation 18
2. Regulation des Energiestoffwechsels durch Insulin.................................................... 19
2.1. Insulin 19
2.1.1. Biosynthese und Sekretion 19
2.1.2. Wirkung von Insulin 20
2.1.3. Belastungsbedingte Veränderungen 20
3. Reaktionen des Energiestoffwechsels......................................................................... 21
3.1. Reaktion des Energiestoffwechsels auf Belastung 21
3.1.1. Herzfrequenz 21
3.1.2. Glukose 22
3.1.3. Laktat 24
3.1.4. Freie Fettsäuren 26
3.2. Nutritive Konzepte zur Beeinflussung des Energiestoffwechsels
während einer Belastung 28
3.2.1. Langfristige nutritive Konzepte 28
3.2.1.1. Kohlenhydrate 28
3.2.1.2. Fett 29
3.2.1.3. Protein 31
Inhaltsverzeichnis
3.2.2. Nutritive Eingriffe unmittelbar vor einer Belastung 31
3.3. Reaktion des Energiestoffwechsels auf die Gabe von Trockenschnitzeln 34
3.3.1. Gabe von Trockenschnitzeln unter Erhaltungsbedingungen 34
3.3.2. Gabe von Trockenschnitzeln vor einer Belastung 35
4. Abschließende Betrachtung........................................................................................ 36
III. MATERIAL UND METHODEN......................................................................... 38
1. Versuchsziel.............................................................................................................. 38
2. Versuchsdesign.......................................................................................................... 38
3. Versuchstiere............................................................................................................. 39
4. Fütterung................................................................................................................... 40
5. Versuchsdurchführung............................................................................................... 46
5.1. Vorbereitung 46
5.2. Versuchsdurchführung 46
5.2.1. Stufentest 46
5.2.2. Blutprobenentnahme während der Stufentests 48
5.2.3. Trainingsphasen 48
5.2.3.1. Dauerbelastung 49
5.2.3.2. Intervallbelastung in der ersten Trainingsperiode 49
5.2.3.3. Intervallbelastung in der zweiten Trainingsperiode 49
5.2.4. Blutprobenentnahme während der Trainingsphasen 49
6. Messungen................................................................................................................. 52
6.1. Körpergewicht und Schweißverluste 52
6.2. Körperinnentemperatur 53
6.3. Herzfrequenz 53
6.4. Außentemperatur 53
7. Blutprobenentnahme.................................................................................................. 53
7.1. Stufentest und Intervallbelastung 53
7.2. Dauerbelastung 55
Inhaltsverzeichnis
8. Analyse biochemischer und endokrinologischer Parameter........................................ 55
8.1. Insulin 55
8.2. Glukose 56
8.3. Laktat 56
8.4. Freie Fettsäuren 57
8.5. Gesamteiweiß 58
8.6. Natrium und Kalium 58
8.7. Chlorid 59
9. Statistische Methoden............................................................................................... 60
10. Darstellung der Ergebnisse...................................................................................... 61
10.1. Stufentests 61
10.2. Trainingsbelastungen 61
IV. ERGEBNISSE...................................................................................................... 63
1. Allgemeine Beobachtungen....................................................................................... 63
1.1. Akzeptanz der Futtermittel 63
1.2. Gewichtsentwicklung 63
1.3. Körpertemperatur und Schweißverlust 63
2. Herzfrequenz............................................................................................................. 67
2.1. Stufentest 67
2.2. Trainingsbelastungen 68
2.2.1. Dauerbelastung 68
2.2.2. Intervallbelastung 70
3. Gesamteiweiß............................................................................................................ 72
3.1. Stufentest 72
3.2. Trainingsbelastungen 74
3.2.1. Dauerbelastung 74
3.2.2. Intervallbelastung 75
Inhaltsverzeichnis
4. Insulin........................................................................................................................ 77
4.1. Stufentest 77
4.2. Trainingsbelastungen 79
4.2.1. Dauerbelastung 79
4.2.2. Intervallbelastung 80
5. Glukose..................................................................................................................... 82
5.1. Stufentest 82
5.2. Trainingsbelastungen 83
5.2.1. Dauerbelastung 83
5.2.2. Intervallbelastung 85
6. Laktat........................................................................................................................ 88
6.1. Stufentest 88
6.2. Trainingsbelastungen 90
6.2.1. Dauerbelastung 90
6.2.2. Intervallbelastung 91
7. Freie Fettsäuren......................................................................................................... 93
7.1. Stufentest 93
7.2. Trainingsbelastungen 95
7.2.1. Dauerbelastung 95
7.2.2. Intervallbelastung 96
8. Sonstige Parameter ................................................................................................... 99
8.1. Natrium 99
8.1.1. Stufentest 99
8.1.2. Trainingsbelastungen 100
8.1.2.1. Dauerbelastung 100
8.1.2.2. Intervallbelastung 100
8.2. Kalium 101
8.2.1. Stufentest 101
8.2.2. Trainingsbelastungen 101
8.2.2.1. Dauerbelastung 101
8.2.2.2. Intervallbelastung 103
Inhaltsverzeichnis
8.3. Chlorid 104
8.3.1. Stufentest 104
8.3.2. Trainingsbelastungen 104
8.3.2.1. Dauerbelastung 104
8.3.2.2. Intervallbelastung 104
9. Zusammenfassung der Ergebnisse ............................................................................ 106
V. DISKUSSION......................................................................................................... 107
1. Kritik der Methoden.................................................................................................. 107
1.1. Durchführung der Versuche 107
1.2. Versuchspferde, Fütterung, Haltung 109
1.3. Auswahl der Parameter und Untersuchungsmethoden 111
2. Diskussion der Ergebnisse......................................................................................... 113
3. Abschließende Betrachtung....................................................................................... 131
VI. ZUSAMMENFASSUNG..................................................................................... 133
VII. SUMMARY........................................................................................................ 136
VIII. LITERATURVERZEICHNIS......................................................................... 139
IX. TABELLENANHANG........................................................................................ 156
Abkürzungsverzeichnis
Neben den allgemein üblichen Abkürzungen für chemische Elemente und Verbindungen
sowie Einheiten wurden folgende spezielle Kurzformen verwendet:
Ca++ ionisiertes Calcium
DB Dauerbelastung
DE verdauliche Energie (digestible energy)
FFS freie Fettsäuren
Glu Glukose
Gr. Gruppe
HF Herzfrequenz
IB Intervallbelastung
Ins Insulin
KF Kraftfutter
KG Körpergewicht
KT Körpertemperatur
Lak Laktat
MW Mittelwert
n Anzahl
NfE stickstofffreie Extraktstoffe
Ra Rohasche
Rfa Rohfaser
Rfe Rohfett
(v)Rp (verdauliches) Rohprotein
SD Standardabweichung
ST Stufentest
TPP Gesamteiweiß (total plasma protein)
TS Trockensubstanz
TSE Trockenschnitzelexpandat
uS ursprüngliche Substanz
I. Einleitung
I. Einleitung
Trockenschnitzel sind die zerkleinerten Reste des nach der Entzuckerung verbleibenden,
getrockneten Rübenmarks (FADEL 1999). Sie sind fett-, protein- und stärkearm (LINDBERG
und KARLSSON 2001), rohfaser- und pektinreich und haben einen hohen Energiegehalt
(MEYER und COENEN 2002).
Im Unterschied zum enzymatischen Abbau der Stärke im Dünndarm, der bei einer
Getreidefütterung vor allem Glukose als energiereiches Substrat zur Verfügung stellt, werden
die in den Trockenschnitzeln enthaltenen Pektine unter Freisetzung von flüchtigen Fettsäuren
im Dickdarm fermentiert (LINDBERG und JACOBSSON 1992).
Die unterschiedliche Bereitstellung von energiereichen Substraten bedingt möglicherweise
eine Beeinflussung des Energiestoffwechsels unter Ruhe- und Belastungsbedingungen.
Die Fütterung von Trockenschnitzeln wurde bislang vorwiegend bei Pferden im
Erhaltungsstoffwechsel oder mit geringen Leistungen praktiziert, wobei die empfohlene
Tageshöchstmenge für Pferde bei 2 kg uS pro Tag liegt (MEYER und COENEN 2002).
Allerdings bieten sich auch in der Sportpferdefütterung interessante Perspektiven der
Trockenschnitzelfütterung, da aufgrund des hohen Pektingehaltes eine positive Beeinflussung
der Dickdarmflora sowie, bei einem vergleichbaren Energiegehalt wie Hafer, eine erhöhte
Stickstoffbindung zu erwarten ist (LINDBERG und JACOBSSON 1992). Darüber hinaus
wird gleichzeitig die zum Teil kritisch hohe Stärkezufuhr in der Sportpferdefütterung, die im
Verdacht steht, ein prädisponierender Faktor für gastrointestinale und muskuläre
Erkrankungen wie zum Beispiel Kolik (KIENZLE et al. 1994), Magenulzera (BEYER 1998)
oder das Tying-up-Syndrom (VALBERG 1998) zu sein, minimiert.
Die geringere Stärkeaufnahme nach einer Trockenschnitzelfütterung im Vergleich zu einer
stärkereichen Kraftfutter- oder Getreidemahlzeit wird unter Ruhebedingungen durch
niedrigere Glukose- und Insulinkonzentrationen beim Pferd dokumentiert (LINDBERG und
KARLSSON 2001).
13
I. Einleitung
14
Unter Belastungsbedingungen konnten beim Pferd allerdings keine Unterschiede sowohl in
der Glukosereaktion als auch für die Parameter Herzfrequenz und Laktat bei
Trockenschnitzelfütterung (Austausch von ~ 1,2 kg Kraftfutter) im Vergleich zur
Kontrollgruppe festgestellt werden (CRANDELL et al. 1999).
Auch KARLSSON et al. (2002) fanden beim Pferd während eines submaximalen
standardisierten Belastungstests nach Trockenschnitzelfütterung weder Unterschiede in der
Glukose- noch in der Insulinreaktion.
Aufgrund der bislang vorliegenden Ergebnisse wird vermutet, dass der Einsatz von
Trockenschnitzeln beim Pferd keine nachteiligen Effekte auf die Energiebereitstellung und
Leistungsfähigkeit besitzt. Allerdings liegen bisher keine Studien vor, in denen große Mengen
Trockenschnitzelexpandat an Sportpferde verfüttert wurden.
Ziel dieser Untersuchung ist es, den Einsatz von Trockenschnitzeln auf die metabolischen
Reaktionen und die Leistungsfähigkeit beim arbeitenden Pferd zu überprüfen. Dabei werden
sowohl kurz- als auch langfristige Effekte berücksichtigt.
II. Schrifttum
II. Schrifttum
1. Grundlagen des Energiestoffwechsels
1.1. Allgemeines
Jede muskuläre Tätigkeit erfordert Energie.
Die bedeutsamsten energieliefernden Substrate für den Muskel sind Kohlenhydrate und Fette,
Protein wird nur begrenzt (bis 15 %) zur Energielieferung herangezogen (LAWRENCE
1998).
Der Energiebedarf der arbeitenden Muskulatur steigt je nach Arbeitsintensität stark an
(PAGAN und HINTZ 1986).
In der Tabelle 1 sind die verfügbaren Energievorräte beim Pferd dargestellt.
Tabelle 1: Verfügbarkeit der Energievorräte bei einem 500 kg schweren Pferd
(McMIKEN 1983)
Energie
Energiedepots KJ kcal
ATP
Kreatinphosphat
Glykogen
Fette
38
188
75.300
640.000
9
45
17.998
152.889
Die für die Muskelkontraktion unmittelbar nutzbare Energie wird in Form von
Adenosintriphosphat (ATP) bereitgestellt. Dieses wird durch das Enzym Myosin-ATPase
15
II. Schrifttum
hydrolisiert und es entstehen Adenosindiphosphat (ADP), freies Phosphat (P) und kinetische
Energie.
ATP + H2O Myosin-ATPase ADP + P + Energie
Die im ruhenden Muskel verfügbare ATP-Menge ist mit 22 - 28 mmol/kg Trockenmuskulatur
sehr gering (SNOW et al. 1985; VALBERG und ESSÉN-GUSTAVSSON 1987). Sie reicht in
Ruhe für drei Minuten (HOLLMANN und HETTINGER 1990), bei maximaler Belastung für
eine Sekunde (ÅSTRAND und ROHDAHL 1986). Daher muss ATP kontinuierlich aus seinen
Spaltprodukten ADP und P resynthetisiert werden. Dazu kann sowohl die aerobe (oxidative)
als auch die anaerobe Phosphorylation genutzt werden (McMIKEN 1983; SNOW 1991).
Bei jeder Belastung werden sowohl die aerobe als auch die anaerobe Phosphorylation zur
Energiegewinnung eingesetzt. Es hängt jedoch von der Art der Belastung ab, mit welchen
prozentualen Anteilen an der gesamten Energiebereitstellung aerobe und anaerobe
Energiegewinnung ablaufen (SNOW 1991).
Wird schnell viel Energie benötigt, so kann diese nur durch anaerobe Stoffwechselwege und
unter Entstehung von Laktat gewonnen werden (McMIKEN 1983). Im Vergleich dazu stellt
die aerobe Glykolyse nur sehr langsam Energie zur Verfügung. Bei schnellen und
kurzzeitigen Belastungen wird mehr Laktat produziert als bei Langzeitbelastungen. Das
Arbeit/Zeit-Verhältnis beeinflusst den ATP-Verbrauch, die Art der ATP-Resynthese und die
Laktataufnahme in die Muskulatur (LINDNER 1997).
Während bei kurzen Distanzen und hohen Geschwindigkeiten der überwiegende Anteil der
Energie aus der anaeroben Phosphorylation gewonnen wird, ist die aerobe Phosphorylation
für alle längeren und schwereren Belastungen substanziell (Abbildung 1).
So konnten TYLER et al. (1996) zeigen, dass bei Pferden nach einer einminütigen Belastung
bei maximaler Geschwindigkeit mehr als 70 % des Energiebedarfs durch die aerobe
Energiegewinnung gedeckt wurde.
16
II. Schrifttum
Abbildung 1: Prozentuale Anteile der aeroben und anaeroben Energiebereitstellung während
verschiedener Belastungen beim Pferd (nach HODGSON und ROSE 1994)
0102030405060708090
100
400m 1000m 1600m 3200m 1600m 2400m 2. Tag 80 kmGalopprennen Trabrennen Military Distanz
Ene
rgie
verb
rauc
h (%
)
aerobanaerob
1.2. Anaerobe Phosphorylation
1.2.1. Myokinasereaktion
Die Myokinasereaktion, die über den gesamten Belastungszeitraum das Verhältnis von ATP
zu ADP aufrecht erhält (McMIKEN 1983), ist eine schnell ablaufende, energiegewinnende
Reaktion, bei der aus zwei Molekülen ADP unter Zuhilfenahme des Enzyms Myokinase ein
Molekül ATP gewonnen wird.
2 ADP Myokinase ATP + AMP
1.2.2. Kreatinkinasereaktion
Der Kreatinkinasereaktion, welche vor allem während der Anfangsphase intensiver
Belastungen von Bedeutung ist (SNOW 1991), stellt mit dem Kreatinphosphat ein
17
II. Schrifttum
Phosphatspeicher zur Verfügung, der laut HARRIS et al. (1987) beim Pferd eine
durchschnittliche Kreatinphosphatkonzentration von 58,4 - 62,2 mmol/kg Trockenmuskulatur
aufweist.
Das Kreatinphosphat wird mit ADP durch das Enzym Kreatinkinase katalysiert.
Kreatinphosphat + ADP Kreatinkinase Kreatin + ATP
1.2.3. Glykolyse
Bei der anaerob ablaufenden Glykolyse wird zur Energiebereitstellung Glykogen, die
Speicherform von Glukose, unter Freisetzung von ATP zu Laktat abgebaut. Dieser
Energiegewinnungsprozess läuft an, wenn durch die Myokinase- und Kreatinkinasereaktion
während intensiver Belastung nicht genug ATP resynthetisiert werden kann (McMIKEN
1983). Er wird durch die Verfügbarkeit der Substrate begrenzt.
Beim anaeroben Abbau von einem Mol Glukose entstehen zwei Mol ATP, zwei Mol Laktat
und oxidiertes Nikotinamid-adenin-dinukleotid (NAD+).
C6-Körper (Glukose) diverse Enzyme 2 C3-Körper (Laktat) + 2 ATP + NAD+
1.3. Aerobe (oxidative) Phosphorylation
Die oxidative Phosphorylation ist eine aerob ablaufende Glykolyse, deren Endprodukte
Pyruvat, ATP und reduziertes Nikotinamid-adenin-dinukleotid (NADH + H+) sind. Aufgrund
der Anwesenheit von Sauerstoff wird das Pyruvat über Acetyl-CoA im Citratzyklus oxidiert
und gewinnt in der Atmungskette der Mitochondrien pro Mol Glukose 36 Mol ATP
(HOLLMANN und HETTINGER 1990; LAWRENCE 1998).
C6-Körper (Glukose) diverse Enzyme 2 C3-Körper (Pyruvat) + 2 ATP + NADH+H+
Pyruvat Pyruvatdehydrogenase Acetyl-CoA Citratzyklus NADH+H+ Atmungskette Energie
18
II. Schrifttum
2. Regulation des Energiestoffwechsels durch Insulin
Adrenalin, Noradrenalin, Kortisol, Glukagon und Insulin sind für die Regulation eines
erhöhten Energiebedarfs unter körperlicher Belastung verantwortlich (WEICKER und
STROBEL 1994; WASSERMAN 1995; GEOR et al. 2000).
Hier soll jedoch nur auf die Regulation des Energiestoffwechsels durch Insulin eingegangen
werden.
2.1. Insulin
2.1.1. Biosynthese und Sekretion
Die Synthese des Insulins erfolgt in den β-Zellen des endokrinen Pankreas. An den
Polysomen des rauen endoplasmatischen Retikulums entsteht aus Präproinsulin, das selbst
keine regulierende Wirkung hat, durch enzymatische Abspaltung von Peptidresten das
stoffwechselaktive Insulin (DÖCKE 1994). Insulin ist ein Polypeptid, welches aus zwei
Aminosäureketten aufgebaut ist. Diese Aminosäureketten sind über zwei Disulfidbrücken
miteinander verbunden und werden so in ihrer räumlichen Struktur stabilisiert (STEINER
1978).
Ein Anstieg des Plasmaglukosespiegels über seinen Referenzbereich ist beim Monogastrier
der wichtigste Stimulus für die Sekretion von Insulin (RASMUSSEN et al. 1990). Beim Pferd
vermögen auch kurzkettige Fettsäuren die Insulinausschüttung zu fördern (ARGENZIO und
HINTZ 1971). Selbst psychische und sensorische Reize können einen Anstieg des
Insulinspiegels auslösen.
Die Sekretion von Insulin als Reaktion auf einen der genannten Reize kann innerhalb von
Minuten nach der Stimulation erfolgen (GIRAUDET et al. 1994).
19
II. Schrifttum
2.1.2. Wirkung von Insulin
Die wesentliche Wirkung des Insulins im Gesamtorganismus ist die Senkung des
Blutglukosespiegels, entweder durch eine erhöhte Aufnahme von Glukose in die Zelle oder
durch eine erhöhte Verwertung von Glukose in der Zelle (FISCHER 1994).
Im Einzelnen wirkt Insulin auf die Zellmembranpermeabilität, wodurch vor allem Glukose,
aber auch Amino- und Fettsäuren in die Zelle aufgenommen werden (WEICKER und
STROBEL 1994), und auf den Kohlenhydratstoffwechsel, was dazu führt, dass Glukose über
die Stoffwechselwege Glykolyse, Pentosephosphatweg und Glykogensynthese stärker
verwertet wird (FISCHER 1994). Des Weiteren kommt es unter Insulineinfluss zu einer
Steigerung des Proteinstoffwechsels und zu einer Beeinflussung des Lipidstoffwechsels,
woraus eine Senkung des Fettsäurespiegels im Blut resultiert.
2.1.3. Belastungsbedingte Veränderungen
Die basale Insulinkonzentration im Plasma wird beim Pferd nach zwölfstündigem Fasten mit
Werten zwischen 1,6 und 12,1 µU/ml angegeben (GLADE et al. 1984; FREESTONE et al.
1992; GIRAUDET et al. 1994).
Während der Belastung kommt es beim Pferd zu einem Abfall der Insulinkonzentration im
Plasma (DYBDAL et al. 1980; LUCKE und HALL 1980 c; SNOW und ROSE 1981;
CHURCH et al. 1987; FREESTONE et al. 1991).
Dies wird unter anderem durch einen belastungsbedingten Anstieg von Katecholaminen
verursacht, die hemmend auf die Insulinsekretion wirken (WEICKER und STROBEL 1994).
Nach Belastungsende kommt es innerhalb weniger Minuten zu einem Rückgang der
Katecholaminwerte auf das Ausgangsniveau (SNOW et al. 1992; VALBERG et al. 1993;
COENEN et al. 2000).
Als Folge dessen steigt innerhalb der ersten 30 Minuten nach dem Ende der Belastung auch
die Insulinkonzentration im Plasma an (ARANA et al. 1988; FREESTONE et al. 1991).
20
II. Schrifttum
3. Reaktionen des Energiestoffwechsels
3.1. Reaktionen des Energiestoffwechsels auf Belastung
3.1.1. Herzfrequenz
Unter Ruhebedingungen liegt die Herzfrequenz von Warmblutpferden bei 28 - 40 Schlägen
pro Minute (PHYSICK-SHEARD 1985).
Die Höhe von Temperatur und Luftfeuchtigkeit, das Alter und der Trainingszustand der
Pferde sowie die Dauer und Intensität einer Belastung sind Faktoren, welche die
Veränderungen der Herzfrequenz bei körperlicher Arbeit beeinflussen (ART und LEKEUX
1995; GEOR et al. 1996). Aus diesem Grund bietet sich die Pulsfrequenzaufzeichnung
während der Belastung als einfach zu erfassende Kenngröße zur wissenschaftlich objektiven
Beurteilung der Leistungsfähigkeit von Sportpferden an (GYSIN et al. 1987).
Während einer submaximalen Belastung verläuft die Herzfrequenz linear zur
Geschwindigkeit (COUROUCÉ 1998).
Bei Ausdauerbelastungen wird zu Belastungsbeginn ein schneller Herzfrequenzanstieg
beobachtet, der bei gleichbleibender Geschwindigkeit nach zwei bis drei Minuten ein Plateau
(Steady-state) von 65 - 100 Schlägen pro Minute erreicht (ROSE und SAMPSON 1982;
SLOET VAN OLDRUITENBORGH-OOSTERBAAN et al. 1991).
Maximale Belastungen führen zu Herzfrequenzen von bis zu 240 Schlägen pro Minute
(EVANS und ROSE 1988 b und c; SNOW 1990).
COENEN (2002) stellte bei der Auswertung von standardisierten Stufenbelastungstests fest,
dass die Herzfrequenz in Abhängigkeit zur steigenden Geschwindigkeit ansteigt und in einem
Plateau gipfelt.
PERSSON (1983) und MUŇOZ et al. (1998) beschreiben eine positive Korrelation zwischen
Herzfrequenz und Plasmalaktatgehalt während der Belastung. Im Gegensatz dazu stellte
LINDNER (2001) eine solche Beziehung nicht fest.
21
II. Schrifttum
Trainierte Pferde haben in bezug auf die Geschwindigkeit eine geringere Herzschlagfrequenz
als untrainierte Pferde (PÖSÖ et al. 1987; HARKINS et al. 1993).
THOMAS et al. (1983) beobachteten nach einer Trainingsdauer von fünf bzw. zehn Wochen
auf dem Laufband eine Abnahme der Herzfrequenz.
Auch GOTTLIEB-VEDI et al. (1995) berichten von einer signifikanten Herzfrequenzsenkung
bei Pferden nach einem vierwöchigen Laufbandtraining. Die Autoren nennen das
trainingsbedingt erhöhte Blutvolumen als Ursache für diese Veränderung.
Im Gegensatz dazu stellten weder CHROBOK (2000), noch ROSE et al. (1983) einen
signifikanten Unterschied zwischen der Herzfrequenz vor und nach einem sechs- bzw.
siebenwöchigen Training fest.
Laut EATON et al. (1999) kommt es nach einem vierwöchigen Training sogar zu einer
Erhöhung der Herzfrequenz.
Übereinstimmung besteht allerdings darin, dass die maximale Herzfrequenz sich durch
Trainingseinflüsse nicht verändert (ROSE et al. 1983; EVANS und ROSE 1988 c; ART und
LEKEUX 1993).
Nach Beendigung einer Belastung kommt es zu einer schnellen Normalisierung der
Herzfrequenz (EVANS und ROSE 1988 b und d). ROSE et al. (1983) sowie SEEHERMAN
und MORRIS (1990 b) beschreiben zum Beispiel einen Rückgang der Herzfrequenz um 50 %
innerhalb der ersten Minute nach Belastungsende.
3.1.2. Glukose
Die basale Glukosekonzentration im Plasma wird beim Pferd nach zwölfstündigem Fasten mit
Werten zwischen 3,1 und 6,1 mmol/l angegeben (EIKMEYER 1982; GLADE et al. 1984;
GIRAUDET et al. 1994; GROFF et al. 2001; BOTHE et al. 2001).
Die Höhe der im Blut zirkulierenden Glukose ist abhängig vom Gleichgewicht zwischen der
Glukoseaufnahme in die arbeitende Muskulatur und der hepatischen Glykogenolyse- bzw.
Glukoneogeneserate (ART und LEKEUX 1995).
22
II. Schrifttum
Der Glukoseverbrauch ist abhängig von der Belastungsdauer und der Belastungsintensität,
daher sind die Angaben über den Glukosemetabolismus während einer Belastung beim Pferd
sehr unterschiedlich.
SNOW et al. (1982) beschreiben, dass in der Anfangsphase einer submaximalen Belastung
bei steigender Plasmaglukosekonzentration die Glukosemobilisation größer ist als die
Glukoseutilisation. Entleerte Leberglykogenspeicher sowie eine verstärkte Glukoseaufnahme
in die Muskulatur bei entleerten Muskelglykogenspeichern bedingen sinkende
Plasmaglukosespiegel gegen Ende einer Belastung.
In einer Untersuchung von VALBERG et al. (1989) wurde bei einer
Laufbandgeschwindigkeit von 5 m/s über einen Zeitraum von 55 Minuten zunächst ein Abfall
der Glukosekonzentration festgestellt, gefolgt von einem Anstieg über die gemessenen
Ausgangswerte nach 30 Minuten.
Laut einer Studie von LAWRENCE (1998) unterbleibt zu Beginn einer submaximalen
Belastung eine Verminderung der Blutglukosekonzentration trotz eines erhöhten
Glukosebedarfs beim Pferd, da die hepatische Glukosebereitstellung den muskulären Bedarf
decken kann.
GEOR et al. (2000) beobachteten einen Anstieg der Plasmaglukosekonzentration während
eines submaximalen Belastungstests. Das anschließend durchgeführte sechswöchige Training
führte zu signifikant niedrigeren Glukosewerten während und nach einem zweiten,
identischen Belastungstest.
Nach Beendigung einer submaximalen Belastung steigt die Plasmaglukosekonzentration
weiter an (VALBERG et al. 1989).
Bei Ausdauerbelastungen (40 - 210 km) kommt es im Allgemeinen zu einem deutlichen
Abfall der Plasmaglukosekonzentration (DYBDAL et al. 1980; LUCKE und HALL 1980 b
und c; SNOW et al. 1982; GROSSKOPF et al. 1983; HAMBITZER et al. 1987).
SLOET VAN OLDRUITENBORGH-OOSTERBAAN et al. (1991) berichten von einem
Anstieg der Glukosekonzentration in der ersten Hälfte eines Distanzrittes mit einer
Gesamtstrecke von 80 - 100 km, dem sich in der zweiten Hälfte ein Glukoseabfall anschloss.
23
II. Schrifttum
Im Gegensatz dazu stellten SNOW und ROSE (1981) keine signifikanten Änderungen der
Glukosekonzentration während eines Ausdauerrittes von 80 km fest.
Nach Beendigung einer Ausdauerbelastung (80 km) kam es zu einem Anstieg der
Glukosekonzentration (SNOW und ROSE 1981). Auch LUCKE und HALL (1980 a und c)
beobachteten einen Anstieg der Plasmaglukosekonzentration nach Distanzritten über 42 und
80 km.
Bei maximalen Belastungen wie zum Beispiel Galopprennen steigt die Konzentration der
Glukose im Plasma an (JUDSON et al. 1983; SNOW et al. 1983; PÖSÖ et al. 1987;
FREESTONE et al. 1991).
In einer Untersuchung von REYNOLDS et al. (1993) wurde ebenfalls festgestellt, dass die
Glukosekonzentration bei Pferden während eines Quarter Horse-Rennens anstieg. Dieselben
Pferde zeigten bei einem langsameren Ritt einen weitaus geringeren Konzentrationsanstieg.
CHROBOK (2000) beschreibt einen Plasmaglukoseanstieg während eines
Stufenbelastungstests auf dem Laufband, den zweijährige Traber im Anschluss an ein
sechswöchiges Training absolvierten. Dabei stieg die Glukosekonzentration von einem
Ruhewert von 4,4 mmol/l auf einen Wert von 6,4 mmol/l vor Trainingsbeginn, nach
Trainingsende dagegen auf 7,4 mmol/l.
In einer Studie von FREESTONE et al. (1991) stiegen nach einer Belastung (1000 m) im
maximalen Galopp die Glukosewerte auch noch in der 30. Minute nach Beendigung der
Belastung. Ein solcher Anstieg der Glukosekonzentration wurde auch bis zur 15. Minute der
Erholungsphase nach einer Kurzzeitbelastung von LAWRENCE et al. (1995) beschrieben; im
weiteren Verlauf der 90-minütigen Regenerationsphase fielen die Plasmaglukosewerte ab,
erreichten aber nicht die vor der Belastung ermittelten Ausgangswerte.
3.1.3. Laktat
Die basale Laktatkonzentration im Plasma wird beim Pferd mit Werten zwischen 0,5 und 1,5
mmol/l angegeben (LINDNER 1997).
24
II. Schrifttum
Es besteht eine positive Korrelation zwischen der Laktatkonzentration und der
Laufgeschwindigkeit (PÖSÖ et al. 1993; GUHL et al. 1996; LINDNER 1997).
Mit steigender Belastungsintensität wird, nach zunächst mäßigem Laktatanstieg, ein
Schwellenwert erreicht, an dem die Laktatkonzentration exponentiell ansteigt. Dieser Punkt,
der gewöhnlich bei 2 - 4 mmol/l liegt, wird als „anaerobe Schwelle“ (OBLA = onset of blood
lactate accumulation) bezeichnet (HODGSON und ROSE 1994; SNOW und VALBERG
1994). SEEHERMAN und MORRIS (1990 b) stellten im Gegensatz dazu einen linearen
Anstieg der Laktatkonzentration fest, der in einem steilen Anstieg kurz vor der totalen
Erschöpfung gipfelte. Diese abrupte Veränderung der Laktatkurve wird von KRONFELD
(2001) als Strukturbruch bezeichnet.
Die Erhöhung des Blutlaktatwertes ist aber nicht nur von der Belastungsdauer und -intensität,
sondern auch von der Fitness des Pferdes abhängig (MILLER-GRABER et al. 1991; SNOW
1991; LINDNER 1997).
Die Blutlaktatbestimmung wird während einer standardisierten Belastung zur Ermittlung der
Arbeitsintensität, Fitness oder des Belastungspotentials eingesetzt (PERSSON 1983;
SEEHERMAN und MORRIS 1990 b). Dies rechtfertigen JONES und CAMPBELL (1982)
damit, dass Laktat als Indikator des anaeroben Stoffwechsels die Sauerstoffunterversorgung
der Mitochondrien während einer Belastung anzeigt.
Nach extremen Sprintbelastungen können maximale Laktatwerte bis zu 30 mmol/l gemessen
werden (SNOW et al. 1983; SNOW et al. 1985).
Ausdauerbelastungen führen im Allgemeinen zu einer Laktatkonzentration von 2 - 7 mmol/l
(LUCKE und HALL 1980 b und c; GROSSKOPF et al. 1983). DESMECHT et al. (1996)
beobachteten nach einem Distanzritt über 44 km eine Plasmalaktatkonzentration von 0,5
mmol/l.
Gezieltes Training verbessert durch eine Adaptation des Respirations- und
Herzkreislaufsystems die O2-Aufnahme und -Transportkapazität. Durch diese gesteigerte
aerobe Energiebereitstellung wird die anaerob-laktizide Energiegewinnung weniger stark
25
II. Schrifttum
gefordert (LINDNER 1997). POWERS und HOWLEY (1994) führen die geringere
Laktatakkumulation bei trainierten Athleten nicht auf eine verminderte Laktatproduktion,
sondern auf eine erhöhte Laktatumsetzungsrate zurück.
Im Vergleich der Blutlaktat-Geschwindigkeitskurven von trainierten und von untrainierten
Pferden zeigt sich eine deutliche Rechtsverschiebung der Kurven der trainierten Tiere
(COUROUCÉ 1998). Untersuchungen von RAINGER et al. (1994), EVANS et al. (1995),
LINDNER (1997) und SCHULZ (2000) bestätigen diese Veränderungen der Laktatkurven.
BRUIN et al. (1994) stellten in einer 272 Tage dauernden Studie beim Pferd fest, dass nur in
den ersten vier Wochen des Trainings eine Rechtsverschiebung der Blutlaktat-
Geschwindigkeitskurve erfolgte; trotz individueller Trainingsanpassung in der achten
Trainingswoche konnte keine weitere Trainingsverbesserung beobachtet werden.
Die Geschwindigkeit des Laktatabbaus ist abhängig von der Bewegungsart in der
anschließenden Erholungsphase. Wird in diesem Zeitraum eine leichte Arbeit durchgeführt,
sinken die Blutlaktatwerte schneller ab als bei muskulärer Inaktivität (MARLIN et al. 1987;
KRZYWANEK 1988; LINDNER 1997).
Je nach Laufintensität wird die höchste Laktatkonzentration nicht unmittelbar nach der
Belastung gemessen, sondern 5-10 Minuten nach Belastungsende (KRZYWANEK 1988;
LINDNER 1994; SEEHERMAN und MORRIS 1990 b).
3.1.4. Freie Fettsäuren
Die Konzentration der freien Fettsäuren im Plasma wird beim Pferd unter Ruhebedingungen
mit Werten zwischen 20 und 500 µmol/l angegeben (LUCKE und HALL 1980 a und b,
ORME et al. 1994; HYYPPÄ et al. 1997).
Die freien Fettsäuren, die bei körperlicher Aktivität in der Muskulatur oxidiert werden,
stammen aus den Triglyceridspeichern in der Muskulatur und von zirkulierenden
Triglyceriden oder freien Fettsäuren im Blut. Zur Metabolisierung in der Muskulatur werden
26
II. Schrifttum
hauptsächlich die freien Fettsäuren aus dem Plasma herangezogen (HOLLMANN und
HETTINGER 1990; LAWRENCE 1998).
Durch eine Erhöhung der Katecholamin- und Kortisolkonzentration und einen Abfall des
Insulinspiegels bei Belastung wird die vermehrte Freisetzung von freien Fettsäuren aus dem
Depotfettgewebe stimuliert (SNOW et al. 1992; GEOR et al. 2000).
Der prozentuale Anteil der freien Fettsäuren an der Energiebereitstellung steigt mit
zunehmender Belastungsdauer (LAWRENCE 1998).
Nach einer kurzen, submaximalen Belastung stellten weder VALBERG et al. (1989) noch
ZIMMERMAN et al. (1992) eine Konzentrationsänderung der freien Fettsäuren im Plasma
fest.
Ausdauerbelastungen führen zu einem Anstieg der freien Fettsäuren. VALBERG et al. (1989)
berichten von einem signifikanten Konzentrationsanstieg nach einer halbstündigen
Trabbelastung. Bei Distanzritten mit einer Länge von bis zu 100 km steigt die Konzentration
der freien Fettsäuren auf Werte über 2000 µmol/l an (HALL et al. 1982; SLOET VAN
OLDRUITENBORGH-OOSTERBAAN et al. 1991).
ZIMMERMANN et al. (1992) konnten nach zehn Minuten einer intensiven Galoppbelastung
einen signifikanten Anstieg der freien Fettsäuren im Plasma messen. Sie schließen daraus,
dass sowohl die Belastungsdauer als auch die Belastungsintensität mit dem Fettstoffwechsel
positiv korrelieren.
In einer Studie von CHROBOK (2000) lag bei zweijährigen Trabern nach einem
sechswöchigen Training die Anfangskonzentration der freien Fettsäuren bei einem Stufentest
mit 218 µmol/l deutlich unter der Konzentration bei Trainingsbeginn (363 µmol/l). Die Werte
in der letzten Stufe des Belastungstests waren mit 345 µmol/l nach dem Training höher als
sechs Wochen zuvor (317 µmol/l).
27
II. Schrifttum
HODGSON und ROSE (1994) betonen, dass man die Konzentrationsänderungen der freien
Fettsäuren während einer Belastung kritisch bewerten muss, da eine Konzentrationserhöhung
nicht zwangsläufig eine gesteigerte Utilisation in der Muskulatur reflektiert.
3.2. Nutritive Konzepte zur Beeinflussung des Energiestoffwechsels während einer Belastung
Kurzfristige nutritive Maßnahmen vor einer Belastung haben zum Ziel, schnell zusätzliche
Energiereserven bereitzustellen. Langfristige nutritive Konzepte sollen darüber hinaus auch
eine dauerhafte Energiebereitstellung gewährleisten und die Regeneration der Pferde nach
einer Belastung sicherstellen.
3.2.1. Langfristige nutritive Konzepte
3.2.1.1. Kohlenhydrate
In einer Studie von SNOW et al. (1987) wurden die Effekte von drei unterschiedlichen Diäten
auf die Glykogenrepletion nach einer standardisierten Belastung untersucht. Über einen
Zeitraum von drei Tagen nach der Belastung fütterten die Autoren vier Pferden Heu (≈ 86,7
MJ/Tag), Heu und Hafer (≈ 135,7 MJ/Tag) oder eine Heu/Hafer-Kombination mit
zusätzlicher Infusion von 450 g Glukose pro Tag (≈ 142,4 MJ/Tag). Nach 28 Stunden
Erholungszeit wurden bei der Verabreichung von mittleren oder hohen Kohlenhydratmengen
(Heu/Hafer und Heu/Hafer/Glukose) 90 % und bei der Fütterung von Heu 70 % der
Glykogengehalte im Vergleich zum Ausgangswert vor Belastung wieder aufgefüllt.
ELLIS et al. (2002) fütterten trainierten Pferden isoenergetisch identische Diäten, die sich
anteilig (100:0 → 50:50) aus Heu und Kraftfutter zusammensetzten. Nach drei Wochen
stellten sie fest, dass die Pferde bei reiner Heufütterung aufgrund der vermehrten
Dickdarmfüllung mehr Gewicht zugenommen hatten als die Pferde, die sowohl Heu als auch
Kraftfutter aufgenommen hatten. Bei einem anschließenden Belastungstest mit einer
submaximalen Belastung lag die Herzfrequenz der Kraftfutter-Gruppe deutlich unter der der
Heu-Gruppe.
28
II. Schrifttum
Der tägliche Austausch von 0,5 kg, 1 kg oder 1,5 kg Hafer (Gesamtration: 2,7 kg Hafer, 0,6
kg Trockenschnitzel und 6 kg Heu) mit den entsprechenden Mengen an Gerstensirup führte
laut JANSSON et al. (2002) im Vergleich zur Kontrollgruppe nach einem Testzeitraum von
21 Tagen zu einer Erhöhung der Herzfrequenz während einer submaximalen Belastung.
Allerdings gab es sowohl bei submaximaler als auch bei maximaler Belastung keinen
Unterschied in der Glukose- und Insulinreaktion. Die Autoren beobachteten einen Abfall des
Glykogenverbrauchs, welcher umgekehrt proportional zur Kohlenhydratsupplementierung
war.
Eine Langzeitstudie über 390 Tage, in der Pferden sowohl ein fettreiches als auch ein
stärkereiches Futter verabreicht wurden, ergab unter Erhaltungsbedingungen (Stall und
Weidegang) weder negative Effekte durch die Diäten noch behandlungsbedingte Effekte
(ZEYNER et al. 2002).
3.2.1.2. Fett
Die Fütterung fettreicher Diäten vor einer Belastung ist laut HAMBLETON et al. (1980) eine
sichere und effiziente Methode, um zusätzliche Energie bereitzustellen. Die Arbeitsgruppe
ersetzte Getreide isoenergetisch durch Sojaöl in unterschiedlichen Dosierungen (4 – 16 % der
Gesamtration) und stellte bei einem nach drei Wochen durchgeführten submaximalen
Belastungstest einen Zusammenhang zwischen steigendem Fettgehalt der Mahlzeit und einer
Erhöhung der Plasmaglukosekonzentration fest. Ebenso stellten sich mit steigenden
Fettgehalten in der Ration leicht erhöhte Leberglykogenwerte ein.
Die Untersuchungen von PAGAN et al. (1987) demonstrieren, dass sowohl fett- als auch
proteinreiche Futtermittel bei Belastung weniger gute Energieträger sind als die eigentlich als
Kontrollfutter eingesetzten, stärkereichen Pellets. Es wurden über einen Zeitraum von vier
Wochen drei isoenergetisch vergleichbare Diäten mit unterschiedlichen Protein- und
Fettanteilen an der Gesamtration gefüttert (Kontrollfutter mit 12 % Rohprotein, proteinreiches
Futter mit 20 % Rohprotein und fettreiches Futter mit 11 % Rohprotein und 15 % Fett). Die
29
II. Schrifttum
Muskel- und Leberglykogenkonzentrationen nach einer moderaten Belastung lagen in der
Kontrollgruppe signifikant höher als in den Versuchsgruppen.
HARKINS et al. (1992) gaben einer Gruppe von 15 Pferden in den ersten drei Wochen ihrer
Studie eine fettarme Diät (2 % Fett). Dieselben Tiere erhielten als Kontrollgruppe, ebenfalls
über drei Wochen, im weiteren Verlauf des Versuchs eine fettreiche Diät (12 % Fett). Jeweils
im Anschluss an die unterschiedlichen Fütterungsregimes wurde ein Galopprennen über 1600
Meter absolviert. Die fettsupplementierten Pferde starteten mit höheren
Muskelglykogenwerten in das Rennen, der Glykogenverbrauch unterschied sich jedoch nicht
von dem der Pferde der Kontrollgruppe, die 2,5 Sekunden länger für die Strecke benötigten.
PAGAN et al. (1995) fütterten eine Gruppe von Pferden über acht Monate täglich mit 3,7 kg
Hafer, eine andere über den selben Zeitraum mit 3 kg Hafer und 340 g Sojaöl. Beide Gruppen
erhielten täglich etwa 6,8 kg Heu. Identische Mahlzeiten wurden den Pferden in der Studie
von DUREN et al. (1999) gegeben, allerdings betrug der Testzeitraum nur einen Monat.
Übereinstimmend beobachteten die Autoren, dass die belastungsbedingten Veränderungen der
Plasmalaktatkonzentration bei einem standardisierten Belastungstest auf dem Laufband nicht
von der Art der Fütterung beeinflusst wurden.
Die Effekte auf die Plasmalaktatbildung bei Belastung nach fettreicher Fütterung sind
abhängig von der Art der Belastung. So beobachteten SLOET VAN OLDRUITENBORGH-
OOSTERBAAN et al. (2002) nach der vierwöchigen Fütterung einer fettreichen Diät (11,8 %
Fett in der Gesamtration) im Vergleich zu einer fettarmen, aber isoenergetisch identischen
Fütterung niedrigere Laktatwerte bei submaximaler Belastung, wohingegen eine maximale
Belastung nach fettreicher Fütterung zu erhöhten oder gleichbleibenden Plasmalaktatwerten
führte (DUREN et al. 1999).
PAGAN et al. (2002) berichten von einer um mehr als 30 % erniedrigten Glukosemobilisation
während einer submaximalen Belastung nach einer zehnwöchigen fettreichen Fütterung
(Gesamtfettgehalt 29 %) im Vergleich zu einer fettarmen Diät (isoenergetisches Kontrollfutter
mit 7 % Fett).
30
II. Schrifttum
DUNNETT et al. (2002) verglichen eine fettarme Diät (Fettgehalt 3 %) mit einer fettreichen
Fütterung (isoenergetischer Austausch auf 20 % Fett in der Gesamtration). Nach einer
Fütterungsdauer von insgesamt zehn Wochen wurde sowohl bei einer submaximalen als auch
bei einer moderaten Belastung auf dem Laufband eine Erhöhung der freien Fettsäuren im
Plasma beobachtet.
3.1.2.3. Protein
Die tägliche Gabe von 1741 g Protein über einen Zeitraum von zwei Wochen im Vergleich zu
einer proteinärmeren Diät mit nur 863 g Protein (isoenergetisch ähnliche Rationen) führte in
einer Studie von MILLER-GRABER et al. (1991) weder zu einer Verbesserung der Parameter
Laktat und freie Fettsäuren im Vergleich zur Kontrollgruppe, noch zu einer
fütterungsbedingten Veränderung der Muskel- und Leberglykogenwerte.
STANIAR et al. (2001) ersetzten eine Diät mit 14 % Rohproteinanteil und 22 % Sojaschrot
isoenergetisch durch eine proteinarme Fütterung (9 % Rohprotein und 3 % Soja, zusätzlich
0,6 % Lysin und 0,4 % Threonin). Diese beiden Fütterungsregimes wurden über 14 Monate
bei Fohlen und Jährlingen in Weidehaltung erprobt. Es gab keine Unterschiede im Wachstum
zwischen den beiden Gruppen.
3.2.2. Nutritive Eingriffe unmittelbar vor einer Belastung
In einer Studie von LAWRENCE et al. (1993) wurden vier Pferde drei Stunden vor einer
standardisierten Belastung mit einem, zwei oder drei Kilogramm Mais gefüttert. Als
Kontrollgruppe fungierten Pferde, die zwölf Stunden gefastet hatten. Bei den mit Mais
gefütterten Tieren kam es während der Belastung zu einem Abfall der Plasmaglukosewerte
von 6,5 auf 4,5 mmol/l. Die Glukosekonzentrationen der Kontrollgruppe blieben konstant bei
etwa 5 mmol/l. Bei diesen Pferden wurde jedoch nach dem Ende der Belastung eine Depletion
der Glykogenspeicher festgestellt. Die Werte der freien Fettsäuren stiegen in der
Kontrollgruppe während der Belastung auf dreifach höhere Werte im Vergleich zu den
Versuchsgruppen. Die Plasmalaktatkonzentrationen stiegen während der Belastung an, es
31
II. Schrifttum
konnte jedoch kein Unterschied zwischen den Gruppen festgestellt werden. Die Autoren
kommen zu dem Schluss, dass nicht die Menge des vor einer Belastung gefütterten Getreides
für die Energiebereitstellung relevant ist, sondern ob überhaupt eine kohlenhydratreiche
Fütterung vor Belastung stattfindet.
LAWRENCE et al. (1995) fütterten Pferde eine oder drei Stunden vor einer standardisierten
Belastung mit 1 kg Mais. Die Pferde der Kontrollgruppe fasteten fünf bzw. zwölf Stunden vor
Beginn der Belastung.
Die Plasmaglukosewerte der kurz vor der Belastung gefütterten Tiere lagen bei
Belastungsbeginn deutlich über denen der Kontrollgruppe, fielen aber schon während der
Aufwärmphase ab und lagen ab diesem Zeitpunkt mit den nach Belastungsbeginn
angestiegenen Werten der Kontrollgruppe gleich auf. Die Plasmainsulinkonzentrationen der
Versuchsgruppe zeigten einen ähnlichen Verlauf, blieben aber über den gesamten Verlauf der
Belastung deutlich über denen der Kontrollgruppe.
Obwohl die verschiedenen Zeitpunkte der Fütterung deutlich unterschiedliche Glukose- und
Insulinreaktionen während der Belastung hervorriefen, konnte keine fütterungsbedingte
Veränderung der Belastungsparameter Laktat und Herzfrequenz festgestellt werden.
Die Werte der freien Fettsäuren im Plasma waren in der Kontrollgruppe fast doppelt so hoch
wie die der kurz vor Belastung gefütterten Tiere.
Bei einer Studie von STULL und RODIEK (1995) wurden mit Mais oder Heu gefütterte
Pferde eine bzw. vier Stunden nach der Aufnahme der energetisch identischen Rationen einer
submaximalen Belastung unterzogen. Als Kontrollgruppe fungierten ungefütterte Tiere. Die
Plasmaglukosekonzentration der mit Mais gefütterten Pferde lag eine Stunde nach Fütterung
mit etwa 7 mmol/l deutlich über den Ausgangswerten von 4,5 mmol/l. Die postprandialen
Glukosewerte der beiden anderen Gruppen blieben im Bereich der Werte vor der Belastung
(4,5 mmol/l). Nach vier Stunden hatten die Glukosewerte aller Tiere die Ausgangswerte
wieder erreicht. Bei beiden Zeitprotokollen kam es während der Belastung zu einem Abfall
der Plasmaglukose in der mit Mais gefütterten Gruppe.
32
II. Schrifttum
Zwischen den Laktatwerten der unterschiedlichen Fütterungsarten wurde kein signifikanter
Unterschied gefunden, tendenziell stiegen sie bei der Belastung eine Stunde nach Fütterung
aber weniger stark an als bei der Belastung vier Stunden nach Fütterung.
PAGAN et al. (1995) und DUREN et al. (1999) beschäftigten sich mit der Gabe fett- und
stärkereicher Rationen drei, acht und zwölf Stunden vor einer Belastung. Übereinstimmend
berichten sie von einer behandlungsunabhängig erhöhten Herzfrequenz bei einer Belastung,
die drei Stunden nach Fütterung erfolgte. Ebenfalls herrscht Einigkeit bei der Beobachtung,
dass die belastungsbedingten Veränderungen der Plasmalaktatkonzentration weder vom
Zeitpunkt noch von der Art der Fütterung beeinflusst werden.
Beide Autoren stellten in den Gruppen der drei Stunden vor der Belastung gefütterten Pferde
einen höheren Glukosewert vor der Belastung fest, der aber während der Belastung unter die
Werte der anderen Gruppen abfiel. DUREN et al. (1999) können auch die von PAGAN et al.
(1995) beobachteten niedrigeren Insulinwerte der fettsubstituierten Tiere verifizieren, stellen
aber im Gegensatz zu ihnen keine daraus resultierende Hypoglykämie der Tiere dieser Gruppe
während der Belastung fest.
Für PAGAN und HARRIS (1999) war von Interesse, inwieweit sich die zeitliche Abfolge
einer kombinierten Heu- und Haferfütterung vor einer Belastung auf diese auswirkt. Das
Ergebnis mehrerer im Rahmen dieser Studie durchgeführter Experimente ist, dass eine
zusätzliche, zeitlich vor der Haferfütterung stattfindendende Gabe von Heu keine Änderung
der belastungsbedingt abfallenden Glukosekurve nach Haferfütterung bewirkt, obwohl sie den
postprandialen Glukosepeak einer Haferfütterung in Ruhe unterdrücken kann. Findet die Gabe
von Heu nach der Haferfütterung statt, bleibt dieser Effekt auch in Ruhe aus.
In einer Studie von JOSE-CUNILLERAS et al. (2002) wurden Pferde drei Stunden nach einer
isoenergetisch identischen Fütterung mit Mais oder Heu bzw. nach einem 18-stündigen Fasten
auf dem Laufband bei moderater Geschwindigkeit für 60 Minuten belastet. Sowohl die Mais-
als auch die Heufütterung führten zu einem Abfall der Glukosekonzentration bei Belastung.
Die Autoren stellten eine 60-prozentige Erhöhung der Plasmainsulinkonzentration nach der
Fütterung mit Heu fest. Die Konzentration der freien Fettsäuren im Plasma war bei den mit
33
II. Schrifttum
Mais gefütterten Tieren sowohl postprandial als auch nach der Belastung niedriger als in den
anderen beiden Gruppen. Die Pferde der Mais- und Kontrollgruppe hatten höhere
Muskelglykogenwerte als die Tiere der Heugruppe, der Glykogenverbrauch unterschied sich
jedoch nicht innerhalb der einzelnen Gruppen. Die Autoren befürworten eine
kohlenhydratreiche Fütterung zwei Stunden vor einer moderaten Belastung, da die exogen
zugeführte Glukose ein zusätzliches energielieferndes Substrat darstellt.
BICHMANN (Dissertation in Vorbereitung) fütterte 300 g Fruktose oder Glukose in Form
eines pelletierten Mischfutters direkt vor einer Ausdauerbelastung von 30 km auf dem
Laufband. Im Vergleich mit der Kontrollgruppe konnten keine Veränderungen der Parameter
Plasmaglukose, Plasmainsulin, Laktat und Herzfrequenz festgestellt werden.
3.3. Reaktion des Energiestoffwechsels auf die Gabe von Trockenschnitzeln
3.3.1. Gabe von Trockenschnitzeln unter Erhaltungsbedingungen
Trockenschnitzel sind die zerkleinerten Reste des nach der Entzuckerung verbleibenden,
getrockneten Rübenmarks (BECKER und NEHRING 1967; FADEL 1999).
Sie weisen im Vergleich zu Hafer vermehrt Pektine (MEYER und COENEN 2002),
wesentlich weniger Stärke (LINDBERG und KARLSSON 2001), aber mehr Rohfaser auf
(BACH KNUDSEN 1997). Trockenschnitzel enthalten mit jeweils ~ 240 g/kg TS die fast
dreifache Menge der in Hafer vorkommenden Gerüstsubstanzen Rohzellulose und Pentosane
(jeweils ~ 90 g/kg TS). Lignin liegt mit ~ 55 g/kg TS in beiden Futtermitteln gleich auf
(BECKER und NEHRING 1967).
Trockenschnitzel werden beim Pferd vor allem im Dickdarm fermentiert (LINDBERG und
JACOBSSON 1992). Als energiereiche Substrate entstehen dabei flüchtige Fettsäuren.
Tabelle 2 zeigt die Nährstoffzusammensetzung von Trockenschnitzeln im Vergleich zu Hafer.
34
II. Schrifttum
Tabelle 2: Zusammensetzung von Trockenschnitzeln und Hafer nach DLG-Tabelle
Ra Rp Rfe Rfa Nfe Ca P Na Cl
FUTTERMITTEL TS
(g/kg uS)
DE
(MJ/kg TS) (g/kg TS)
Trockenschnitzel 900 13,11 56 100 9 206 629 7,5 1,1 2,4 1,2
Hafer 880 13,09 33 123 52 113 679 1,2 3,6 0,2 1,0
TS = Trockensubstanz, DE = verdauliche Energie, Ra = Rohasche, Rp = Rohprotein, Rfe =
Rohfett, Rfa = Rohfaser, Nfe = stickstofffreie Extraktstoffe
Trockenschnitzel sollten vor der Verfütterung eingeweicht werden, um dem Risiko von
Schlundverstopfungen vorzubeugen (MEYER 1987). Im Gegensatz dazu beobachteten
HARRIS und RODIEK (1993) keine Probleme bei der Verfütterung von trockenen, losen
Schnitzeln an Pferde in einer anteiligen Menge von 45 % der Tagesration.
Laut LINDBERG und JACOBSSON (1992) stellt die Trockenschnitzelfütterung eine
interessante Perspektive zur stärkereichen Fütterung dar. Sie beobachteten bei einem
Austausch von 30 % Gerste gegen Trockenschnitzel eine erhöhte fäkale Stickstoffabgabe und
eine forcierte mikrobielle Aktivität im Kot. Die Autoren weisen darauf hin, dass die
Absorption des mikrobiell fixierten Proteins aus dem Dickdarm möglicherweise
eingeschränkt sein könnte.
CRANDELL et al. (1999) verglichen die Glukose- und Insulinreaktion nach Fütterung von
drei unterschiedlichen Diäten. 15 % der Energie der stärkereichen Kontrolldiät wurde
entweder durch Sojaöl oder durch Trockenschnitzel ersetzt. Sowohl die postprandialen
Plasmaglukose- als auch die Plasmainsulinkonzentrationen in Ruhe lagen bei der fettreichen
Diät deutlich unter den Werten der beiden anderen Diäten.
Im Gegensatz dazu berichten LINDBERG und KARLSSON (2001) von deutlich niedrigeren
Plasmaglukose- und Insulinwerten nach einer Fütterung von Trockenschnitzeln im Vergleich
zu einer stärkereichen Haferfütterung. Hierbei wurden etwa 60 % des Hafers isoenergetisch
durch Trockenschnitzel ersetzt.
35
II. Schrifttum
In einer Studie von KARLSSON et al. (2002), bei der etwa 45 % des täglich aufgenommenen
Hafers durch melassierte Trockenschnitzel isoenergetisch ersetzt wurde, gab es keine
signifikanten Unterschiede in der postprandialen Glukosereaktion. Tendenziell wurden sofort
nach der Nahrungsaufnahme höhere Plasmaglukosekonzentrationen in der Trockenschnitzel-
Gruppe festgestellt, die aber nach der 30. Minute postprandial leicht unter die Werte der mit
Hafer gefütterten Tiere absanken. Die Plasmainsulinwerte stiegen in beiden Gruppen nach der
Fütterung deutlich über die jeweiligen präprandialen Werte an. Dabei lagen die
Konzentrationen des Insulins bei Hafer-Fütterung durchgehend über denen der
Trockenschnitzelgruppe.
3.3.2. Gabe von Trockenschnitzeln vor einer Belastung
CRANDELL et al. (1999) fütterten über einen Zeitraum von fünf Wochen drei
unterschiedliche Diäten. 15 % der Energie der stärkereichen Kraftfutterdiät wurde
isoenergetisch durch Trockenschnitzel ersetzt. Die Pferde wurden dreimal wöchentlich auf
dem Laufband bei submaximaler Belastung trainiert und danach einem Stufenbelastungstest
unterzogen. Während der Belastung konnten weder Unterschiede in der Glukose- noch in der
Insulinreaktion festgestellt werden. Auch die Parameter Herzfrequenz und Laktat stellten sich
ohne Differenzen zwischen den beiden Gruppen dar.
In einer Studie von KARLSSON et al. (2002) wurde trainierten Pferden über einen Zeitraum
von drei Wochen entweder eine Heu/Hafer- oder eine Heu/Hafer/Trockenschnitzel-Diät
gefüttert. In der Trockenschnitzelgruppe wurden 45,3 % des Hafers isoenergetisch durch
melassierte Trockenschnitzel (38,9 %) und Biertreber (6,4 %) ersetzt. Während des
Versuchszeitraums erfolgte keine weitere Trainingsbelastung. Allerdings wurden zwei
submaximale Stufenbelastungstests im Abstand von einer Woche durchgeführt.
Im Verlauf dieser standardisierten Belastungstests konnten keine Unterschiede der Glukose-
und Insulinreaktionen sowie der Herzfrequenz zwischen den beiden Gruppen festgestellt
werden. Es zeigte sich jedoch in der Hafergruppe ein signifikant höherer Laktatpeak während
der Belastung als in der Gruppe der mit Trockenschnitzeln gefütterten Pferde. Dies erklären
die Autoren damit, dass durch die Dickdarmfermentation der Trockenschnitzel mehr
36
II. Schrifttum
37
kurzkettige Fettsäuren produziert werden, die dann zur Energiegewinnung genutzt werden
können.
4. Abschließende Betrachtung
Trockenschnitzel bieten aufgrund ihrer Zusammensetzung und Verträglichkeit eine
interessante Alternative zu der in der Sportpferdefütterung üblichen Getreidefütterung.
Die bislang durchgeführten Studien weisen konträre Ergebnisse bezüglich der Einflussnahme
von Trockenschnitzeln auf den Energiestoffwechsel auf, so dass weitere Untersuchungen zum
Einsatz von Trockenschnitzeln bei arbeitenden Pferden erforderlich sind.
In der vorliegenden Studie sollen die Effekte des isoenergetischen Austauschs von 65 % eines
pelletierten Mischfutters durch melassiertes Trockenschnitzelexpandat auf die metabolischen
Reaktionen und die Leistungsfähigkeit bei Sportpferden überprüft werden, dabei werden
sowohl kurz- als auch langfristige Effekte berücksichtigt.
III. Material und Methoden
III. Material und Methoden
1. Versuchsziel
In dieser Studie soll der Einsatz von melassiertem Trockenschnitzelexpandat als Futtermittel
im isoenergetischen Austausch zu einem kommerziellen Mischfutter bei Sportpferden
untersucht werden. Das Ziel der vorliegenden Arbeit ist es, sowohl die kurz- als auch die
langfristigen Effekte der Trockenschnitzelexpandat-Fütterung auf die Leistungsfähigkeit und
metabolischen Reaktionen zu überprüfen.
2. Versuchsdesign
Sechs Pferde standen für die Durchführung des Versuchs zur Verfügung.
Die Pferde wurden, nachdem sie eine fünfwöchige Adaptationsphase absolviert hatten, nach
einem standardisierten Protokoll auf dem Laufband belastet. Das Training setzte sich aus zwei
etwa fünfwöchigen Trainingsperioden zusammen. Eine Trainingsperiode bestand aus jeweils
acht Dauer- und Intervallbelastungen, also insgesamt 16 Trainingseinheiten. Die Pferde
wurden jeden zweiten Tag auf dem Laufband trainiert, dabei wechselten sich Dauer- und
Intervallbelastung ab.
Zu Beginn und am Ende jeder Trainingsperiode wurde ein Stufentest durchgeführt, um den
Leistungs- und Trainingszustand zu erfassen.
Die dabei ermittelten Parameter waren Körpergewicht, Körperinnentemperatur,
Schweißverlust, Herzfrequenz, Gesamteiweiß, Insulin, Glukose, Laktat, freie Fettsäuren,
Natrium, Kalium und Chlorid.
Die beiden Trainingsperioden waren im Kreuzdesign angeordnet, das heißt, dass eine Gruppe
(Gruppe A, n = 3) mit der Kraftfutter-, die andere (Gruppe B, n = 3) mit der
Trockenschnitzelration begann. Nach der ersten Trainingsperiode wechselten die Pferde der
beiden Gruppen auf das jeweils andere Fütterungsregime.
Tabelle 3 dokumentiert den Fütterungsablauf.
38
III. Material und Methoden
Tabelle 3: Fütterungsablauf (Fütterung während der Adaptation der Pferde an das
Laufband = Ko, Fütterung von Kraftfutter = KF, isoenergetische Substitution
von 65% der Kraftfutterration durch Trockenschnitzelexpandat = TSE)
Pferd Gruppe Vorbereitung Trainingsperiode1 Trainingsperiode 2
I A Ko KF TSE
II A Ko KF TSE
III B Ko TSE KF
IV B Ko TSE KF
V B Ko TSE KF
VI A Ko KF TSE
Ko = Fütterung der Kontrollration (Heu, Trockenschnitzelexpandat und Kraftfutter), um eine
Adaptation der Pferde an die beiden Testvarianten (KF und TSE) zu verhindern
3. Versuchstiere
Es standen sechs Traber (vier Stuten und zwei Wallache) im Alter von zwei bis vier Jahren
zur Verfügung.
Das mittlere Körpergewicht der Pferde betrug zu Versuchsbeginn 406 ± 41 kg.
In Tabelle 4 sind Alter und Geschlecht der Pferde zusammengestellt.
Tabelle 4: Alter und Geschlecht der Versuchspferde
PFERD ALTER (Jahre) GESCHLECHT
I 2 Stute
II 2 Stute
III 2 Wallach
IV 2 Stute
V 2 Stute
VI 4 Wallach
39
III. Material und Methoden
Die Pferde wurden in einem geschlossenen Stall in Einzelboxen auf Stroh gehalten. Es wurde
ihnen täglich für mehrere Stunden der Zugang zu einem Sandpaddock ermöglicht.
Die Pferde I, II, III, V und VI waren über die gesamte Versuchsphase klinisch gesund, Pferd
IV musste aufgrund einer Lahmheit am Ende der zweiten Trainingsperiode aus dem Versuch
genommen werden.
4. Fütterung
Die Pferde wurden entsprechend den Angaben zum Energie- und Proteinbedarf für mittlere
Arbeit am noch wachsenden Pferd gefüttert. Bei den mit Trockenschnitzeln gefütterten Tieren
wurde 65 % der verdaulichen Energie, die aus dem Kraftfutter stammt, durch
Trockenschnitzelexpandat ersetzt. Die Pferde bekamen in Toto 2,5 ± 0,2 kg
Trockenschnitzelexpandat täglich, das entspricht einem Anteil von 38 ± 1,8 % an der
Gesamtration.
In Abbildung 2 sind die Versuchsrationen dargestellt, Tabelle 5 dokumentiert die
Zusammensetzung der Futtermittel.
Die Gesamtration wurde auf drei Mahlzeiten aufgeteilt. Gefüttert wurde um 7°° Uhr
(Kraftfutter/Heu bzw. Trockenschnitzelexpandat/Heu), 13°° Uhr (Kraftfutter) und 18°° Uhr
(Kraftfutter/Heu bzw. Trockenschnitzelexpandat/Heu). Das Trockenschnitzelexpandat wurde
mindestens eine Stunde vor Verfütterung in einem Verhältnis von 1:4 mit Wasser versetzt.
Trinkwasser stand über den gesamten Versuchszeitraum ad libitum zur Verfügung.
An den Testtagen wurden die Pferde drei Stunden vor der Belastung je nach Fütterungsregime
ausschließlich mit Trockenschnitzelexpandat respektive Kraftfutter gefüttert.
In den Tabellen 6 und 7 werden die Mengen und Nährstoffzusammensetzungen der
Futtermittel dargestellt. Die Bedarfsberechnungen wurden nach den Angaben der Gesellschaft
für Ernährungsphysiologie der Haustiere von 1994 durchgeführt.
40
III. Material und Methoden
TS-Aufnahme (kg) isoenergetisch
9 8 70 ± 5,5 MJ DE 71 ± 6,3 MJ DE 7
6 TSE 5
4 KF 3
2
1 Heu 0
Kraftfutterregime Trockenschnitzelregime
4,0 ± 0,3
3,6 ± 0,4
2,2 ± 0,1
1,2 ± 0,1
3,7 ± 0,3
Abbildung 2: Zusammensetzung (in kg) und isoenergetischer Vergleich (in MJ DE) der
Futterrationen während des Versuchszeitraums
(KF = Kraftfutter, TSE = Trockenschnitzelexpandat)
Tabelle 5: Zusammensetzung der Futtermittel
ZUSAMMENSETZUNG Kraftfutter TSE Heu
TS (g/kg uS) 898 895 886
DE (MJ/kg TS)* 11,4 13,2 8
Ra 89 47 61
Rp 128 85 113
Rfe 36 8,3 19,6
Rfa 165 154 326
Nfe
(g/kg TS)
582 705,7 480
TSE = Trockenschnitzelexpandat, TS = Trockensubstanz, DE* = verdauliche Energie
(kalkuliert), Ra = Rohasche, Rp = Rohprotein, Rfe = Rohfett, Rfa = Rohfaser, Nfe =
stickstofffreie Extraktstoffe
41
III. Material und Methoden
Tabelle 6: Menge des Futterangebots sowie Nährstoffzusammensetzung der verabreichten
Futtermittel (pro Tag und Tier) während der ersten Trainingsperiode
Pferd I vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 3,5 3,1 25,6 154 13 7 5 4 30 48
Kraftfutter# 4 3,5 40,4 304 48 20 8 12 - 28
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 7,64 6,8 67 499 61 28 13 32 54 78
BEDARF* 65 326 18 11 8 22 52 26
Pferd II vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4 3,6 29,2 176 15 8 5 5 34 55
Kraftfutter# 4,3 3,8 43,4 327 52 22 9 13 - 30
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 8,44 7,5 74 544 67 30 14 33 58 87
BEDARF* 73 367 21 12 9 26 60 30
Pferd III vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,7 4,2 34,3 207 17 9 6 6 40 64
Kraftfutter# 1,7 1,5 17,2 129 20 9 3 5 - 12
TSE 2,6 2,3 30,7 133 17 1 3 2 2 31
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 9,14 8,2 84 511 55 20 13 28 66 109
BEDARF* 82 588 25 14 10 29 69 35
42
III. Material und Methoden
Pferd IV
vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 3,6 3,2 26,3 158 13 7 5 4 31 49
Kraftfutter# 1,4 1,2 14,1 106 17 7 3 4 - 10
TSE 2,3 2,1 27,1 118 15 1 3 1 2 27
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 7,44 6,7 69 424 46 16 11 25 57 88
BEDARF* 68 340 19 11 8 23 55 28
Pferd V vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,3 3,9 31,4 189 16 9 6 5 37 59
Kraftfutter# 1,6 1,4 16,2 122 19 8 3 5 - 11
TSE 2,6 2,3 30,7 133 17 1 3 2 2 31
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 8,64 7,7 80 485 53 19 12 27 63 103
BEDARF* 78 392 23 13 9 28 65 33
Pferd VI vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,5 4,0 32,9 198 17 9 6 6 38 62
Kraftfutter# 4,8 4,2 48,5 365 58 24 10 14 - 34
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 9,44 8,4 83 604 75 34 16 35 63 97
BEDARF* 81 575 24 14 10 29 67 35
* (nach GEH 1994); # (Rohnährstoffe laut Deklaration)
43
III. Material und Methoden
Tabelle 7: Menge des Futterangebots sowie Nährstoffzusammensetzung der verabreichten
Futtermittel (pro Tag und Tier) während der zweiten Trainingsperiode
Pferd IV Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ)
vRp
(g) (g)
Heu 3,7 3,3 27,0 163 14 7 5 5 31 51
Kraftfutter# 4,1 3,6 41,4 312 49 21 8 12 - 29
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 7,94 7,1 70 516 63 29 13 32 56 81
BEDARF* 68 341 19 11 8 23 55 28
Pferd V vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,4 4,0 32,1 194 16 9 6 5 37 60
Kraftfutter# 4,6 4,0 46,5 350 55 23 9 14 - 32
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 9,14 8,1 80 584 72 32 15 34 62 95
BEDARF* 79 394 23 13 10 28 66 33
Pferd VI vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,5 4,0 32,9 198 17 9 6 6 38 62
Kraftfutter# 1,6 1,4 16,2 122 19 8 3 5 - 11
TSE 2,6 2,3 30,7 133 17 1 3 2 2 31
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 8,84 7,9 81 494 53 19 13 27 65 106
BEDARF* 80 401 23 14 10 29 67 34
44
III. Material und Methoden
Pferd I
vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 3,6 3,2 26,3 158 13 7 5 4 31 49
Kraftfutter# 1,3 1,1 13,1 99 16 7 3 4 - 9
TSE 2,3 2,1 27,1 118 15 1 3 1 2 27
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 7,34 6,6 68 416 44 16 11 25 57 88
BEDARF* 67 334 19 11 8 25 54 27
Pferd II vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,3 3,9 31,4 189 16 9 6 5 37 59
Kraftfutter# 1,6 1,4 16,2 122 19 8 3 5 - 11
TSE 2,5 2,2 29,5 128 17 1 3 2 2 30
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 8,54 7,6 79 480 52 19 12 27 63 102
BEDARF* 77 387 22 13 9 27 64 32
Pferd III vRp Ca P Mg Na Cl K FUTTER uS
(kg)
TS
(kg)
DE
(MJ) (g)
Heu 4,6 4,1 33,6 202 17 9 6 6 39 63
Kraftfutter# 4,8 4,2 48,5 365 58 24 10 14 - 34
Sojaextraktionsschrot 0,1 0,1 1,5 41 0,3 1 0,3 0,1 0,1 2
Viehsalz 0,04 - - - - - - 15 24 -
SUMME 9,54 8,5 84 608 75 34 16 35 64 99
BEDARF* 82 409 24 14 10 29 69 35
* (nach GEH 1994); # (Rohnährstoffe laut Deklaration)
45
III. Material und Methoden
5. Versuchsdurchführung
5.1. Vorbereitung
Fünf Wochen vor Beginn des Trainings wurden die Pferde an das Hochgeschwindigkeits-
Laufband (Mustang 2200, Fa. Kagra AG, Fahrwangen, Schweiz) gewöhnt.
Das Laufband befand sich im Freien, es war überdacht und von drei Seiten windgeschützt.
Jede Belastung während der Vorbereitungszeit wurde auf dem Laufband bei einer Steigung
von 3 % gelaufen.
In Tabelle 8 ist die fünfwöchige Adaptationsphase der Pferde an das Laufband
wiedergegeben.
5.2. Versuchsdurchführung
5.2.1. Stufentest
Der gesamte Stufentest wurde bei einer Steigung von 3% auf dem Laufband gelaufen.
Insgesamt wurden drei Stufentests durchgeführt, der erste vor Beginn der ersten
Trainingsperiode (ST1), der zweite zwischen den beiden Trainingsperioden (ST2) und der
dritte im Anschluss an die zweite Trainingsperiode (ST3).
Vor Beginn des Stufentests erfolgte eine fünfzehnminütige Aufwärmphase (warm up: 10 min
bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s).
Der Stufentest bestand aus jeweils sechs Belastungsstufen à 4 Minuten. Die erste Stufe wurde
bei 5 m/s gelaufen, bei jeder weiteren Stufe wurde die Geschwindigkeit um 1 m/s gesteigert.
Die letzte Stufe hatte somit eine Geschwindigkeit von 10 m/s.
46
III. Material und Methoden
Tabelle 8: Adaptation der Pferde an das Laufband im Rahmen der Versuchsvorbereitung
Tag Belastung Tag Belastung
1-3 10 min bei 1,6 m/s
4-6 10 min bei 1,6 m/s
2 min bei 4 m/s
5 min bei 1,6 m/s
7 Ruhetag
22-24 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 6 m/s
2 min bei 7 m/s
2 min bei 8 m/s
10 min bei 1,6 m/s 8-10 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 1,6 m/s
11-13 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 1,6 m/s
14 Ruhetag
25-27 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 6 m/s
2 min bei 7 m/s
2 min bei 8 m/s
2 min bei 9 m/s
10 min bei 1,6 m/s
28 Ruhetag
15-17 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 6 m/s
5 min bei 1,6 m/s
18-20 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 6 m/s
2 min bei 7 m/s
5 min bei 1,6 m/s
29-31 10 min bei 1,6 m/s
5 min bei 4 m/s
5 min bei 5 m/s
5 min bei 6 m/s
2 min bei 7 m/s
2 min bei 8 m/s
2 min bei 9 m/s
2 min bei 10 m/s
10 min bei 1,6 m/s
21 Ruhetag
32-35 Paddock
47
III. Material und Methoden
5.2.2. Blutprobenentnahme während der Stufentests
Jeweils eine Minute vor Beendigung einer Stufe (und ebenfalls eine Minute vor Ende des
warm up) wurde während der Belastung über einen Venenverweilkatheter Blut gewonnen.
Tabelle 9 beinhaltet die Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen sowie die Verteilung der
Untersuchungsparameter.
Tabelle 9: Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen und der Erhebungen der Werte für die
Untersuchungsparameter während der Stufentests
Abschnitt KT HF TPP Ins Glu Lak FFS Na K Cl KG
Stall X X
warm up X X X X X X X X X
5 m/s* X X X X X X X X X
6 m/s* X X X X X X X X X
7 m/s* X X X X X X X X X
8 m/s* X X X X X X X X X
9 m/s* X X X X X X X X X
10 m/s* X X X X X X X X X X
Stall X X
KT = Körpertemperatur, HF = Herzfrequenz, TPP = Gesamteiweiß, Ins = Insulin, Glu =
Glukose, Lak = Laktat, FFS = freie Fettsäuren, KG = Körpergewicht
warm up = 10 min bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s
* Stufendauer je 4 Minuten
5.2.3. Trainingsphasen
Alle Trainingsbelastungen wurden bei einer Steigung von 3% auf dem Laufband absolviert.
48
III. Material und Methoden
Die beiden Trainingsphasen hatten jeweils eine Dauer von 32 Tagen, in denen jedes Pferd 16
Trainingsläufe zu absolvieren hatte. Trainiert wurde jeden zweiten Tag; die
Trainingseinheiten setzten sich abwechselnd aus Dauer- und Intervallbelastungen zusammen.
5.2.3.1. Dauerbelastung
Vor Beginn der Dauerbelastung erfolgte eine fünfzehnminütige Aufwärmphase (warm up: 10
min bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s).
Die Dauerbelastung wurde bei einer konstanten Geschwindigkeit von 5 m/s für 45 min
durchgeführt.
Eine zehnminütige Auslaufphase (cool down: 10 min bei 1,6 m/sec) schloss sich an.
5.2.3.2. Intervallbelastung in der ersten Trainingsperiode
Vor Beginn der Intervallbelastung erfolgte eine fünfzehnminütige Aufwärmphase (warm up:
10 min bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s).
Die Intervallbelastung bestand aus vier Stufen: Schritt I, Galopp I, Schritt II und Galopp II.
Beide Schrittphasen waren 10 min lang und wurden bei einer Geschwindigkeit von 1,6 m/sec,
die einminütigen Galoppphasen bei einer Geschwindigkeit von 9 m/s gelaufen.
Darauf folgte das cool down (10 min bei 1,6 m/s).
5.2.3.3. Intervallbelastung in der zweiten Trainingsperiode
Die Galoppphasen wurden im Rahmen einer Trainingsanpassung in der zweiten
Trainingsperiode von einer Minute auf zwei Minuten Laufzeit erhöht, das übrige
Trainingsprotokoll war identisch mit dem der ersten Trainingsperiode.
5.2.4. Blutprobenentnahme während der Trainingsphasen
Bei der ersten und letzten Dauerbelastung der ersten Trainingsperiode (DB1/DB2) und der
letzten Dauerbelastung der zweiten Trainingsperiode (DB4) wurden Blutproben genommen.
49
III. Material und Methoden
Die Werte der letzten Dauerbelastung der ersten Trainingsperiode wurden denen der ersten
Dauerbelastung der zweiten Trainingsperiode gleichgesetzt (DB2 = DB3).
Bei der jeweils ersten und letzten Intervallbelastung der ersten und zweiten Trainingsperiode
wurden ebenfalls Blutproben genommen (IB1 - IB4).
In Abbildung 3 sind Versuchsaufbau und Blutprobenentnahmen dargestellt.
Gr. A: KF Gr. A: TSE Gr. B: TSE Gr. B: KF
ST1* ST2* ST3*
DB1* IB1* DB2* IB2* IB3* DB4* IB4*
DB IB DB IB DB IB DB IB DB IB DB IB DB DB IB DB IB DB IB DB IB DB IB DB IB
Tag 10 20 30 40 50 60
ST1-3*: Stufentest 1-3 mit Blutprobenentnahme
DB: Dauerbelastung
DB1-4*: Dauerbelastungen mit Blutprobenentnahme
IB: Intervallbelastung
IB1-4*: Intervallbelastung mit Blutprobenentnahme
Abbildung 3: Zeitpunkte der Blutprobenentnahme während der gesamten Versuchsphase
(Abstand zwischen den Strichen = zwei Tage)
Die Blutprobenentnahmen während der Dauerbelastung erfolgten über ein Vacutainer-System
unmittelbar nach der Aufwärmphase, nach Beendigung der 45-minütigen Belastung und nach
der Erholungsphase.
Die Blutproben von Pferd III wurden über einen Venenverweilkatheter gewonnen.
In Tabelle 10 sind die Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen und die Verteilung der
untersuchten Parameter dargestellt.
50
III. Material und Methoden
Tabelle 10: Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen und der Erhebungen der Werte für die
Untersuchungsparameter während der Dauerbelastungen
Abschnitt KT HF TPP Ins Glu Lak FFS Na K Cl KG
Stall X X
warm up X X X X X X X X X
DB X X X X X X X X X X
Ende X X X X X X X X X X
Stall X
KT = Körpertemperatur, HF = Herzfrequenz, TPP = Gesamteiweiß, Ins = Insulin, Glu =
Glukose, Lak = Laktat, FFS = freie Fettsäuren, KG = Körpergewicht
warm up = 10 min bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s
DB = Dauerbelastung (45 min bei 5 m/s)
Bei den Intervallbelastungen wurde jeweils 30 Sekunden vor Ende einer Stufe (inklusive
warm up und cool down) über einen Venenverweilkatheter Blut gewonnen.
In Tabelle 11 werden die Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen sowie die Verteilung der
Untersuchungsparameter dargestellt.
51
III. Material und Methoden
Tabelle 11: Zeitpunkte der Blutprobenentnahmen und der Erhebungen der Werte für die
Untersuchungsparameter während der Intervallbelastungen
Abschnitt KT HF TPP Ins Glu Lak FFS Na K Cl KG
Stall X X
warm up X X X X X X X X X
Schritt I* X X X X X X X X X
Galopp I# X X X X X X X X X
Schritt II* X X X X X X X X X
Galopp II# X X X X X X X X X X
Ende X X X X X X X X X X
Stall X
KT = Körpertemperatur, HF = Herzfrequenz, TPP = Gesamteiweiß, Ins = Insulin, Glu =
Glukose, Lak = Laktat, FFS = freie Fettsäuren, KG = Körpergewicht
warm up = 10 min bei 1,6 m/s und 5 min bei 4 m/s
* Schrittphasen: 1,6 m/s, 10 min # Galoppphasen: 9 m/s, 1-2 min
6. Messungen
6.1. Körpergewicht (kg) und Schweißverlust (kg)
Die Pferde wurden vor und nach jeder betesteten Belastung auf einer fest installierten
Viehwaage (Maximum = 600 kg, Minimum = 25 kg, Messintervall = 0,2 kg, Fa. Blitzer
GmbH, Hildesheim) gewogen.
Der zwischenzeitlich anfallende Kot wurde gesammelt, gewogen und das Körpergewicht nach
der Belastung entsprechend dieser Kotmenge korrigiert. Der durch die Belastung entstandene
Körperschweiß wurde vor dem Wiegen mit einem Schweißmesser entfernt.
Die Differenz des Körpergewichts vor der Belastung und des korrigierten Körpergewichts
nach der Belastung ergab den Schweißverlust während der Belastung.
52
III. Material und Methoden
6.2. Körperinnentemperatur (°C)
Die Messung der Körperinnentemperatur erfolgte rektal mit einem digitalen
Fieberthermometer (Scala®, MicroLife Medical Science Asia Ltd., Fa. Scala Electr. GmbH,
Stahnsdorf).
6.3. Herzfrequenz (Schläge/min)
Die Herzfrequenz wurde mittels Herzfrequenzmesser (Polar®, Fa. Polar Elektro GmbH, Groß
Gerau) telemetrisch und kontinuierlich während der gesamten beprobten Belastung gemessen.
Zwei Elektroden wurden auf der linken Brustseite fixiert, eine in Schulter-, die andere in
Herzhöhe. Alle 15 Sekunden wurde ein Signal an den Empfänger gesendet und dort
gespeichert. Der Empfänger war, ebenfalls an der linken Brustseite, mit einem Gurt zwischen
den Elektroden befestigt. Die Daten wurden anschließend über ein Interface zur Auswertung
in einen Computer übertragen.
6.4. Außentemperatur (°C)
Die Außentemperatur wurde zu Beginn jeder Belastung von einem handelsüblichen
Außenthermometer abgelesen.
7. Blutprobenentnahme
7.1. Stufentest und Intervallbelastung
Die Blutprobenentnahme erfolgte über einen Venenverweilkatheter, der 30-40 Minuten vor
der Belastung geschoben wurde.
Nach Lokalanästhesie mit 1 ml Hostacain (Hostacain ad us. vet.®, Art. Nr. H160-2, Fa.
Hoechst Veterinär GmbH, Unterschleißheim) und Rasur und Desinfektion der Haut wurde der
Venenverweilkatheter (Cavafix® Certo® mit Splittocan® 355, Art. Nr. 04173554, Fa. B. Braun
53
III. Material und Methoden
Melsungen AG, Melsungen) mit entfernbarer Punktionskanüle in das obere Drittel der
angestauten linken Vena jugularis externa vorgeschoben. In dieser Position wurde er mittels
eines Einzelknopfheftes (mit Supramid® EP4, Art. Nr. 99E25, Fa. Comed, Hoeselt) an der
Haut fixiert.
Es wurden ein Verlängerungskatheter (Polyethylen Verlängerungskatheter Lectro-Cath®, Art.
Nr. 1159.05, Fa. Vygon, Ecouen, Frankreich) und ein Zwei-Wege-Hahn (Absperrhahn Luer-
Lock®, Art. Nr. 872.10, Fa. Vygon, Ecouen, Frankreich) an dessen Ende angeschlossen.
Die Blutentnahme erfolgte durch Öffnen des Zwei-Wege-Hahns, Spülen des Katheters mit 5
ml isotonischer Kochsalzlösung (Isotonische Natriumchloridlösung ad us. vet.®, Art. Nr.
1409.99.99, Fa. Delta Select GmbH, Pfullingen), Aufziehen und Verwerfen von 10 ml Blut in
eine 10 ml Einmalspritze (Norm-Ject Luer Einmalspritze®, Art. Nr. 4100.00V0, Fa. Henke
Sass Wolf GmbH, Tuttlingen) und Aufziehen von Blut mittels Monovetten®. Danach wurde
mit 10 ml isotonischer Kochsalzlösung gespült und der Absperrhahn verschlossen.
Sofort nach der Belastung wurde der Venenverweilkatheter entfernt.
Es wurden 9 ml Monovetten® mit EDTA (Monovette® 9 ml KE mit 1,6 mg EDTA/ml Blut,
Art. Nr. 02.267.001, Fa. Sarstedt, Nümbrecht) bzw. Lithium-Heparin (Monovette® 9 ml
Lithium-Heparin 15 I.E. Heparin/ml Blut, Art. Nr. 02.267.013, Fa. Sarstedt, Nümbrecht) als
Antikoagulanz verwendet.
Zur Plasmagewinnung wurden die Monovetten® bis zum Ende der Belastung gekühlt und
sofort anschließend bei 3000 g für 10 Minuten zentrifugiert. Das Plasma wurde abpipettiert
und in 2 ml Eppendorfgefäßen (Reagiergefäß 2 ml PP®, Art. Nr. 72689, Fa. Sarstedt,
Nümbrecht) bei –20 °C bis zur weiteren Untersuchung eingefroren.
7.2. Dauerbelastung
Die Blutprobenentnahme während der Dauerbelastungen erfolgte über ein Vacutainer-System
(Vacutainer Systems Precision GlideTM, Art. Nr. 360215, Fa. Becton Dickinson AG, Basel,
Schweiz).
54
III. Material und Methoden
8. Analyse biochemischer und endokrinologischer Parameter
Tabelle 12: Analyse der untersuchten Parameter
Parameter Substrat Material Methode
Insulin
Glukose
Laktat
freie Fettsäuren
Gesamteiweiß
Natrium, Kalium
Chlorid
Plasma
Plasma
Vollblut
Plasma
Plasma
Vollblut
Plasma
Lithium-Heparin
Lithium-Heparin
Lithium-Heparin
EDTA
Lithium-Heparin
Lithium-Heparin
Lithium-Heparin
RIA
enzymatisch
enzymatisch
enzymatisch
Refraktometrie
ionensensitiv
coulometrische Titration
EDTA = Äthylendiamintetraessigsäure, RIA = Radioimmunassay
8.1. Insulin (µU/ml)
Die quantitative Bestimmung des Insulins im Plasma erfolgte mit einem Festphasen-
Radioimmunoassay (Insulin-RIA, Fa. DPC).
200 µl Plasma und 1000 µl radioaktiv markiertes Insulin wurden in mit Anti-Insulin-
Antikörper beschichtete Polypropylenröhrchen pipettiert und für 24 Stunden bei
Raumtemperatur inkubiert. Das ungebundene Insulin wurde nach der Inkubationszeit, in der
es nach Konkurrenz des Insulins der Probe mit dem radioaktiv markierten Insulin um die
begrenzte Zahl der Bindungsstellen zu einem dynamischen Gleichgewicht gekommen war,
durch Dekantieren entfernt.
Die Menge des gebundenen Insulins wurde im Gamma-Counter gemessen und mittels Logit-
Log-Darstellung ausgewertet.
Bei der Logit-Log-Darstellung wurde von den Doppelwerten der Standards eine
Mittelwertberechnung durchgeführt und diese um die Zählrate der unspezifischen Bindungen
korrigiert. Im Verhältnis zur Negativkontrolle wurde aus den Mittelwerten die prozentuale
Bindungsrate jeder einzelnen Standardkonzentration berechnet. Die Reaktionsrate der
Negativkontrolle wurde gleich 100 % gesetzt, die prozentuale Bindung gegen die
55
III. Material und Methoden
Konzentration jeder Standardlösung auf Logit-Log-Papier aufgetragen und als Gerade
eingezeichnet. Aus dieser Standardkurve konnten anschließend die Konzentrationen der
Proben extrapoliert werden.
8.2. Glukose (mmol/l)
Die enzymatische Bestimmung der Plasmaglukose erfolgte mit der Testkombination Gluco-
quant® Glucose/HK (Fa. Roche Diagnostics GmbH, Art. Nr. 1447513, Mannheim).
Vor dem Test wurde 0,1 ml Plasma zur Enteiweißung mit 1,0 ml Perchlorsäure (0,33 mol/l)
versetzt und zentrifugiert. 0,1 ml Überstand wurde zur Gehaltsbestimmung eingesetzt, mit 2
ml der Probenlösung gemischt und in eine Küvette (1 cm Schichtdicke) überführt. Nach 5 - 10
Minuten wurde die Extinktion der Probe gegen den Reagenzien-Leerwert (2 ml
Reagenzlösung und 0,1 ml Perchlorsäure) photometrisch (UV-1602, UV-Visible
Spectrometer, Fa. Shimadzu) gemessen.
Folgendes Testprinzip liegt der Reaktion zugrunde:
Glukose wird in der durch Hexokinase katalysierten enzymatischen Reaktion unter der
Zugabe von ATP zu Glukose-6-Phosphat (G-6-P) phosphoryliert. Durch das Enzym Glukose-
6-Phosphat-Dehydrogenase wird G-6-P in Gegenwart von NADP+ in Glukonat-6-Phosphat
überführt. Das aus NADP+ entstandene NADPH +H+ ist äquivalent der Menge des G-6-P und
somit auch der in der Probe enthaltenen Glukosekonzentration und wird als Messgröße im
Photometer gemessen.
8.3. Laktat (mmol/l)
Die Laktatbestimmung erfolgte mit einem Accusport-Gerät, das ursprünglich für den
Humanbereich entwickelt wurde. Die Übertragbarkeit auf das Pferd wurde in den
Untersuchungen von EVANS und GOLLAND (1996), LINDNER (1996) und
WILLIAMSON et al. (1996) überprüft und nachgewiesen.
56
III. Material und Methoden
Zur Bestimmung des Laktatgehaltes wurde sofort nach der Entnahme einer Probe die
vorgeschriebene Menge Vollblut für das Accusport-Gerät (Accutrend® Lactate, Art. Nr.
3012522, Fa. Boehringer, Mannheim) entnommen und die Laktatmessung durchgeführt.
Das Meßsystem bestand aus einem Reflektionsphotometer und Trägerstreifen mit
aufgebrachtem Enzymsystem (BM-Lactate®, Art. Nr. 3012654, Fa. Roche, Auckland,
Neuseeland).
Zur quantitativen Laktatbestimmung wurden 20 µl heparinisiertes Vollblut auf den
Teststreifen gegeben und in das Gerät eingeführt.
Das Blut drang durch ein Schutznetz in ein Glasfaservlies, welches die Erythrozyten
zurückhielt. So gelangte nur Plasma in den Nachweisfilm. Der Laktatgehalt wurde dort über
eine Laktatoxidase-Mediator-Farbreaktion reflexionsphotometrisch bestimmt. Die
Plasmalaktatkonzentration wurde mit einem geräteinternen Algorithmus auf Vollblut
umgerechnet.
60 Sekunden nach Einführen des Teststreifens erschien die Vollblutlaktatkonzentration im
Display des Accusport-Gerätes.
8.4. Freie Fettsäuren (µmol/l)
Die enzymatische Bestimmung der Konzentration der freien Fettsäuren im Plasma wurde mit
dem NEFA C-Farbtest® (Art. Nr. 994-75409, Wako Chemicals GmbH, Neuss) durchgeführt.
Dazu wurden 50 µl Plasma mit 1000 µl Farbreagenzlösung A gemischt, 10 Minuten bei 37 °C
inkubiert und im Anschluss mit 2000 µl Farbreagenzlösung B versetzt. Dies wurde erneut für
10 Minuten bei 37 °C inkubiert und in eine Küvette (Schichtdicke 1 cm) überführt. Die
Extinktion der Probe wurde mit Hilfe einer Standardlösung im Spektralphotometer (Cobas
Mira Plus®, Fa. Roche, Mannheim) gegen den Reagenzienleerwert (Farbreagenzlösungen mit
50 µl destilliertem Wasser) gemessen.
Folgendes Testprinzip liegt der Bestimmung zu Grunde:
Die freien Fettsäuren reagieren unter Zugabe von Acyl-CoA-Synthetase und ATP mit
CoenzymA-SH zu Acyl-CoA. Dieses wiederum wird in Anwesenheit von O2 und bei Zugabe
von Acyl-CoA-Oxidase zu 2,3-trans-Enoyl-CoA und H2O2. 2 H2O2 oxidiert mit 4-
57
III. Material und Methoden
Aminophenazon und MEHA (3-Methyl-N-ethyl-N-β-hydroxyethyl-anilin) unter
Zuhilfenahme von Peroxidase zu Chinonimin-Farbstoff und Wasser. Die Intensität des roten
Chinonimin-Farbstoffes ist proportional der Konzentration unveresterter Fettsäuren in der
Probe und ist somit die Messgröße im Photometer.
8.5. Gesamteiweiß (g/dl)
Die Plasmakonzentration des Gesamteiweißes wurde sofort nach der Zentrifugation der
Proben durchgeführt. Die Messung erfolgte mit einem Refraktometer (Fa. Chemical).
Das zugrundeliegende Prinzip ist die Bestimmung des Brechungsindex von Substanzen.
8.6. Natrium und Kalium
Natrium und Kalium wurden gleich nach der Probenentnahme mit einem AVL Electrolyte
Analyzer® (Art. Nr. 988-4, AVL Medical Instruments, Graz, Österreich) im Vollblut
gemessen. Dazu wurden 500 µl Vollblut über eine Nadel in die Messkammer des AVL-
Gerätes eingesaugt und eine Minute später die Ergebnisse im Display angezeigt.
Folgendes Messprinzip liegt der Analyse zu Grunde:
Das Messprinzip der ionenselektiven Elektroden beruht auf einer Wechselwirkung der
freibeweglichen Ionen in einer Probe mit dem aktiven Sensormaterial.
Die ionenselektive Membran trennt die Probe mit unbekannter Elektrolytkonzentration von
einer Elektrodenfüllflüssigkeit, deren Elektrolytkonzentration bekannt ist. Die Membran ist so
aufgebaut, dass sie spezifisch mit einem Typ der in der Probe enthaltenen Ionen reagieren
kann. Dabei wirkt die Membran als Ionenaustauscher und reagiert auf die Bindung des
jeweiligen Ions mit einer Änderung des Membranpotenzials, das sich in der Grenzschicht
zwischen Probe und Membran bildet.
Da die Konzentration der Elektrodenflüssigkeit bekannt ist, kann somit das Potenzial an
dieser Membranseite bestimmt werden. Unbekannt hingegen ist das Potenzial an der
58
III. Material und Methoden
Probenseite. Um die Potenzialdifferenz bestimmen zu können, bedarf es einer galvanischen
Messkette, wie sie mit Hilfe einer Kalomelektrode aufgebaut wird.
Die galvanische Kette wird einerseits durch die Kalomelektrode, das Referenzelektrolyt und
die „offene Brücke“ und andererseits über die Membran, das Innenelektrolyt und die
Ableiterelektrode über die Messprobe geschlossen.
Das elektrochemische Potenzial, das sich an der Membran der aktiven Elektrode aufgrund der
unterschiedlichen Ionenkonzentration des Innenelektrolyts und der Messprobe einstellt, wird
dem Differenzeingang eines Verstärkers zugeführt. Der zweite Verstärkereingang ist mit der
Kalomelektrode verbunden.
Das von der Kalomelektrode abgeleitete Potenzial ist, unabhängig von der Probe, konstant, so
dass die Potenzialdifferenz an den Eingängen des Verstärkers der Ionenkonzentration in der
Probe proportional ist. Diese Potenzialdifferenz wird verstärkt, um eine größere Auflösung zu
erreichen.
Das verstärkte Elektrodensignal wird als Elektrodenspannung bezeichnet.
Aus einer Eichgeraden, die durch eine Zweipunktkalibrierung festgelegt wird, kann die
gemessene Elektrodenspannungsdifferenz der zur Probe gehörenden Ionenkonzentration
zugeordnet werden.
Ionisiertes Calcium wurde mit der Formel
Ca++ (pH = 7,4) = Ca++ x 10x ∆pH (∆pH = 7,4 – measured pH)
pH-korrigiert.
8.7. Chlorid (mmol/l)
Die Bestimmung von Chlorid im Plasma erfolgte mit dem Chlorid-Analysator 925® der Firma
Corning. Von jeder Probe wurde eine Dreifachbestimmung durchgeführt.
Folgendes Messprinzip liegt zu Grunde:
Der Chlorid-Analysator arbeitet nach dem Prinzip der Fällungstitration. Zwei Generator-
Silberelektroden tauchen in ein mit Säurepuffer gefülltes Behältnis. Nach Zugabe der Probe
wird die Titration gestartet. Hierbei sorgt ein konstanter Strom zwischen den Silberelektroden
59
III. Material und Methoden
für die Abgabe einer konstanten Menge an Silberionen in die vorgelegte Lösung
(Coulombsches Prinzip). Diese Ionen fällen vorhandene Chloridionen aus der Lösung aus.
Durch einen Kolloid-Stabilisator wird das Silberchlorid in Suspension gehalten. Sind alle
Chloridionen gefällt, wird die Titration gestoppt.
9. Statistische Methoden
Die statistische Auswertung der Versuche erfolgte mit Hilfe des Statistikprogramms
STATISTIKA (Edition 1997) und Excel (Office 2000).
Folgende statistische Methoden wurden angewendet:
- Bestimmung des arithmetischen Mittelwerts (MW) bei der Zusammenfassung von
Einzelwerten
- Berechnung der Standardabweichung (SD) als Maß der Streuung
- mehrfaktorielle Varianzanalyse mit Messwiederholung für die Faktoren Test, Zeitpunkt und
Behandlung für den Vergleich der Varianz der Werte
- bei signifikanten Effekten der Least Significant Difference-Test als post-hoc-Test
Mittelwerte und Standardabweichungen wurden im Text und in den Tabellen als MW ± SD
angegeben.
Signifikante Unterschiede (p < 0,05) zwischen einzelnen Werten wurden in den Tabellen mit
unterschiedlichen Buchstaben gekennzeichnet. Dabei beziehen sich kursiv gedruckte
Kleinbuchstaben auf Zeiteffekte, Test- und Fütterungseffekte wurden nicht festgestellt.
60
III. Material und Methoden
10. Darstellung der Ergebnisse
10.1. Stufentests
Die bei den Stufentests erzielten Ergebnisse der Parameter Herzfrequenz, Insulin, Glukose,
Laktat, freie Fettsäuren und Gesamteiweiß wurden unter Berücksichtigung statistisch
signifikanter Differenzen in tabellarischer Form (MW ± SD) zusammengefasst. Zusätzlich
erfolgte zur Übersicht eine grafische Darstellung der Mittelwerte.
Dabei wurden bei den Parametern Herzfrequenz, Glukose, Laktat und Gesamteiweiß die
Zeitpunkte S bis S6 (4 bis 10 m/s) berücksichtigt. Die tabellarischen und grafischen
Darstellungen der Parameter Insulin und freie Fettsäuren umfassen nur die jeweiligen
Eckdaten (Belastungsbeginn und letzte Belastungsstufe).
Für die Ergebnisse der Parameter Natrium, Kalium und Chlorid wurde wegen fehlender
Testwerte vor allem in den letzten Trainingsbelastungen (Defekt des Messgerätes) in den
entsprechenden Tabellen auf eine Einteilung in Gruppe A und B verzichtet.
Die von den einzelnen Pferden in den verschiedenen Stufentests zu allen Messzeitpunkten
erzielten Ergebnisse sämtlicher Parameter sind in den Anhangstabellen des Kapitels IX
dargestellt.
10.2. Trainingsbelastungen
Die bei den Trainingsbelastungen (Dauer- und Intervallbelastung) erzielten Ergebnisse der
Parameter Herzfrequenz, Insulin, Glukose, Laktat, freie Fettsäuren und Gesamteiweiß wurden
unter Berücksichtigung statistisch signifikanter Differenzen in tabellarischer Form (MW ±
SD) zusammengefasst. Zusätzlich erfolgte für die Intervallbelastungen eine grafische
Darstellung der Mittelwerte.
Bei der Dauerbelastung wurden die Zeitpunkte Start, Dauerbelastung und Ende berücksichtigt
(Start = 4 m/s, Dauerbelastung = 5 m/s, Ende = 1,6 m/s).
61
III. Material und Methoden
Die Darstellung der Intervallbelastung umfasste die Zeitpunkte Start, Schritt I, Galopp I,
Schritt II, Galopp II und Ende (Start = 4 m/s, Schritt = 1,6 m/s, Galopp = 9 m/s, Ende = 1,6
m/s).
Die Ergebnisse der Parameter Natrium, Kalium und Chlorid wurden aufgrund der fehlenden
Messwerte (siehe 10.1.) ohne eine Unterteilung in Gruppe A und Gruppe B tabellarisch
zusammengefasst.
Die von den einzelnen Pferden in den verschiedenen Trainingsbelastungen zu allen
Messzeitpunkten erzielten Ergebnisse sämtlicher Parameter sind in den Anhangstabellen des
Kapitels IX dargestellt.
62
IV. Ergebnisse
IV. Ergebnisse
1. Allgemeine Beobachtungen
1.1. Akzeptanz der Futtermittel
Die Kraftfuttermahlzeiten wurden von allen Pferden zügig und vollständig aufgefressen.
Auch das eingeweichte Trockenschnitzelexpandat wurde von allen Versuchspferden gut
akzeptiert.
Zwei Versuchstiere (Pferd II und Pferd V) fraßen regelmäßig zuerst einen Teil des zu den
Mahlzeiten gereichten Heus, bevor sie mit der Aufnahme des Trockenschnitzelexpandats
begannen.
1.2. Gewichtsentwicklung
Das mittlere Körpergewicht der Pferde betrug zu Versuchsbeginn 406 ± 41 kg und nach der
etwa elfwöchigen Gesamttrainingsperiode 421 ± 56 kg.
Die Gewichtsentwicklung der beiden Versuchsgruppen über den Versuchszeitraum ist Tabelle
13 und Abbildung 4 zu entnehmen.
1.3. Körperinnentemperatur und Schweißverluste
Die Körperinnentemperatur der Pferde der Gruppe A stieg während der drei Stufentests von
37,6 ± 0,2 °C auf 41,4 ± 0,5 °C bei 10 m/s (p < 0,05) und war etwa zehn Minuten nach der
Belastung mit 41,3 ± 0,4 °C kaum abgesunken. Die Pferde der Gruppe B starteten mit einer
vergleichbaren Körperinnentemperatur (37,6 ± 0,1 °C) und wiesen bei der höchsten
Belastungsstufe eine Körperinnentemperatur von 41,2 ± 0,4 °C auf (p < 0,05), die ebenfalls
innerhalb der ersten zehn Minuten nach dem Ende der Belastung nur mäßig absank (41,0 ±
0,5 °C).
63
IV. Ergebnisse
Tabelle 13: Körpergewicht der beiden Versuchsgruppen (kg, MW ± SD) über den
gesamten Versuchszeitraum
Körpergewicht (kg)
Zeitpunkt Versuchsgruppe Pferde
25.02. 03.04. 13.05.
Kontrolle Kraftfutter TSE
Gruppe A n = 3 399,0a
± 46,3
408,3ab
± 45,2
414,2b
± 39,7
Kontrolle TSE Kraftfutter
Gruppe B n = 3 411,8a
± 43,7
419,6ab
± 43,6
426,6b
± 49,9
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb der
Versuchszeit (p < 0,05)
Kontrolle = Fütterung während der Vorbereitungszeit, TSE = Trockenschnitzelexpandat
0
2
4
6
8
10
1. Trainingsperiode 2. Trainingsperiode
Zeitpunkt
Gew
icht
sdiff
eren
z (k
g)
Gr. AGr. B
KF TSE TSE KF
Abbildung 4: Mittlere Körpergewichtsdifferenzen (kg) der beiden Versuchsgruppen während
der zwei Trainingsperioden (KF = Kraftfutter, TSE = Trockenschnitzel)
64
IV. Ergebnisse
Die 45-minütige Trabphase der Dauerbelastung führte bei Gruppe A zu einer mit p < 0,05
signifikanten Erhöhung der Körperinnentemperatur von 37,7 ± 0,2 °C (Gruppe B: 37,5 ± 0,3
°C) auf 39,6 ± 0,3 °C (Gruppe B: 39,5 ± 0,3 °C, p < 0,05), in der Erholungsphase sanken die
Werte auf 39,0 ± 0,2 °C (Gruppe B: 38,9 ± 0,3 °C) ab. Dieser Abfall konnte statistisch mit p <
0,05 abgesichert werden.
Bei den Intervallbelastungen starteten beide Gruppen mit einer Körperinnentemperatur von
37,6 ± 0,3 °C. Diese erhöhte sich im Lauf der Belastung auf 38,8 ± 0,4 °C (Gruppe A, p <
0,05) respektive 38,9 ± 0,3 °C (Gruppe B, p < 0,05) und lag nach Erholungsphase mit 38,6 ±
0,4 °C für beide Gruppen gleich auf.
Fütterungs- und testbedingte Effekte konnten varianzanalytisch nicht abgesichert werden.
Die Schweißverluste der Pferde während der drei Stufentests lagen bei 8,30 ± 1,35 kg. Im
Rahmen der drei Dauerbelastungen verloren die Pferde 6,34 ± 1,59 kg Schweiß, und die vier
Intervallbelastungen führten zu einem Schweißverlust von 3,52 ± 0,58 kg. Es konnten
varianzanalytisch keine Effekte festgestellt werden (siehe Tabellen 14 bis 16).
Tabelle 14: Schweißverluste (kg, MW ± SD) während der drei Stufentests
Schweißverluste (kg)
Zeitpunkt Versuchsgruppe Pferde
ST1 (25.02.) ST2 (03.04.) ST3 (13.05.)*
Kontrolle Kraftfutter TSE
Gruppe A n = 3 7,12a
± 0,97
8,65a
± 0,78
8,45a
± 0,59
Kontrolle TSE Kraftfutter
12,1 Gruppe B n = 3
(n = 2)*
7,15a
± 1,56
8,74a
± 1,43 7,20
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb der
Versuchszeit (p < 0,05)
TSE = Trockenschnitzelexpandat, ST1-3 = Stufentests 1-3
* Pferd IV war zu diesem Zeitpunkt verletzungsbedingt ausgeschieden
65
IV. Ergebnisse
Tabelle 15: Schweißverluste (kg, MW ± SD) während der drei Dauerbelastungen
Schweißverluste (kg)
Zeitpunkt Versuchsgruppe Pferde
DB1 (28.02.) DB2 (28.03.) DB3 (07.05.)*
Kontrolle Kraftfutter TSE
Gruppe A n = 3 4,75a
± 0,57
6,05a
± 0,74
7,35a
± 2,20
Kontrolle TSE Kraftfutter
7,40 Gruppe B n = 3
(n = 2)*
6,24a
± 1,59
6,59a
± 1,47 6,70
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb der
Versuchszeit (p < 0,05)
TSE = Trockenschnitzelexpandat, DB1-3 = Dauerbelastung 1-3
* Pferd IV war zu diesem Zeitpunkt verletzungsbedingt ausgeschieden
Tabelle 16: Schweißverluste (kg, MW ± SD) während der vier Intervallbelastungen
Schweißverluste (kg)
Zeitpunkt Versuchsgruppe Pferde
IB1 (02.03.) IB2 (30.03.) IB3 (07.04.) IB4 (05.05.)*
Kontrolle Kraftfutter TSE TSE
Gruppe A n = 3 2,95a
± 0,71
3,44a
± 0,36
3,92a
± 0,63
2,94a
± 0,71
Kontrolle TSE Kraftfutter Kraftfutter
4,00 Gruppe B n = 3
(n = 2)*
4,10a
± 1,14
3,02a
± 0,40
3,87a
± 0,71 3,80
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb der
Versuchszeit (p < 0,05)
TSE = Trockenschnitzelexpandat, IB 1-4 = Intervallbelastung 1-4
* Pferd IV war zu diesem Zeitpunkt verletzungsbedingt ausgeschieden
66
IV. Ergebnisse
2. Herzfrequenz
2.1. Stufentest
Die Herzfrequenz stieg mit zunehmender Laufgeschwindigkeit in den drei Stufentests linear
an (p < 0,05). Abbildung 5 zeigt die Zunahme der Herzfrequenz während der drei
durchgeführten Stufentests bei Gruppe A und Gruppe B.
bbildung 5: Verlauf der Herzfrequenz (Schläge/Minute) während Stufentest 1 (ST1, n =
ei Gruppe A stieg die Herzfrequenz im Durchschnitt von 120 ± 6 Schlägen pro Minute bei
erzfrequenzen beider
Versuchsgruppen in den drei Stufentests angegeben.
0
50
100
150
200
250
Geschwindigkeit (m/s)
Her
zfre
quen
z (S
chlä
ge p
ro M
inut
e)
Gr. A KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
ST1 ST2 ST3
50
100
150
200
250
50
100
150
200
250
4 5 6 7 8 9 10 4 5 6 7 8 9 104 5 6 7 8 9 10
A
3/3), Stufentest 2 (ST2, n = 3/3) und Stufentest 3 (ST3, n = 3/2)
B
Belastungsbeginn auf 204 ± 5 Schläge pro Minute bei Belastungsende (p < 0,05). Gruppe B
konnte eine durchschnittliche Erhöhung von 113 ± 7 Schlägen pro Minute bei 1,6 m/s auf 203
± 2 Schläge pro Minute bei 10 m/s verzeichnen (p < 0,05). Es konnten keine signifikanten,
fütterungsbedingten Unterschiede der Herzfrequenz festgestellt werden.
In Tabelle 17 sind die Mittelwerte und Standardabweichungen der H
67
IV. Ergebnisse
Tabelle 17: Herzfrequenz (Schläge pro Minute, MW ± SD) während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Herzfrequenz (Schläge pro Minute)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1
Gruppe A: Ko n = 3 1
± 5
1
± 3
1
± 7
1
± 12
1
± 7
1 f
± 12
2
± 12
19a 34b 52c 67d 82e 94 08g
Gruppe B: Ko n = 3 114a
± 5
130b
± 7
148c
± 2
165d
± 11
177e
± 13
190f
± 11
205g
± 12
Stufentest 2
Gruppe A: KF n = 3 ± 4 ± 4 ± 5 ± 7 ± 6 ± 8 ± 11
120a 133b 147c 166d 177d 191e 205f
Gruppe B: TSE n = 3 110a
± 2
125b
± 3
138c
± 6
159d
± 12
170d
± 12
184e
± 17
202f
± 19
Stufentest 3
121a 132a 149b 157b 172c 185d 199e
115 138 145 147 154 166 186 Gruppe B: KF n = 2
115 130 147 169 190 200 215
Gruppe A: TSE n = 3 ± 2 ± 7 ± 11 ± 6 ± 4 ± 8 ± 10
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
gen
2.2. Trainingsbelastun
bei allen Pferden nach dem Start der Dauerbelastung im Vergleich
um Stufentest mäßig an und sank nach deren Beendigung stark ab (p < 0,05).
2.2.1. Dauerbelastung
Die Herzfrequenz stieg
z
68
IV. Ergebnisse
Gruppe A startete mit einer durchschnittlichen Herzfrequenz von 116 ± 4 Schlägen pro
Minute in die Dauerbelastungen, Gruppe B mit einer Herzfrequenz von 110 ± 3 Schlägen pro
belastung 1,
Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
Minute)
Minute. Während der Belastung stieg die Herzfrequenz auf 138 ± 6 Schläge pro Minute bei
Gruppe A (p < 0,05), Gruppe B erreichte eine durchschnittliche maximale Herzfrequenz von
133 ± 4 Schlägen pro Minute (p < 0,05). Es konnten varianzanalytisch keine
Fütterungseffekte eruiert werden, die Zeiteffekte sind in Tabelle 18 dargestellt.
Tabelle 18: Herzfrequenz (Schläge pro Minute, MW ± SD) während Dauer
Herzfrequenz (Schläge pro
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
1,6 4 5
Dauerbelastu
18a 44b 77c
Gruppe B: Ko n = 3 112a
± 10
133b
± 5
71c
± 2
Dauerbelastung
116a 35b 76c
Gruppe B: TSE n = 3 110a
± 9
137b
± 3
73c
± 2
Dauerbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 1
± 7
1
± 8 ± 5
12a 35b 80c
105 128 78 Gruppe B: KF n = 2
108 130 74
in Zeit alb
ng 1
Gruppe A: Ko n = 3 1
± 9
1
± 6 ± 9
2
Gruppe A: KF n = 3 ± 5
1
± 5 ± 3
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) einer Zeile: effekte innerh einer
Belastung (p < 0,05)
69
IV. Ergebnisse
2.2.2. Intervallbelastung
Bei der Intervallbelastung stieg die Herzfrequenz in den Galoppphasen auf maximal 208
nd fiel in den Schrittphasen auf unter 100 Schläge pro Minute ab.
bbildung 6 zeigt den Verlauf der Herzfrequenz beider Versuchsgruppen während der vier
abgesicherten
Schläge pro Minute an u
A
Intervallbelastungen.
240
) Gr. B K
240240 240
Abbildung 6: Verlauf der Herzfrequenz (Schläge/Minute) während Intervallbelastung 1 (IB1,
n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3), Intervallbelastung 3 (IB3, n = 3/3)
und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
Geschwindigkeit (m/s)
Her
zfre
quen
z (S
chlä
ge p
ro M
in
IB1 IB2 IB3 IB4
41,6
91,6
91,6 4 9 9 4 9 9 4 9 9
180
150
120
90
60
180
150
120
90
180
150
120
90
180
150
120
90
1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6
Gr. A Koo
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
Gr. A TSEGr. B KF
210210210ute
210
Es konnten statistisch keine Fütterungs- und Testeffekte nachgewiesen werden. Die statistisch
Zeiteffekte sind in der Tabelle 19 aufgelistet.
70
IV. Ergebnisse
Tabelle 19: Herzfrequenz (Schläge pro Minute, MW ± SD) während Intervallbelastung 1,
tervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und Intervallbelastung 4 In
Herzfrequenz (Schläge pro Minute)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko 121a
± 4
65b
± 4
203c
± 8
81d n = 3
± 2
202c 83d
± 3 ± 3
± 4 ± 4 ± 8 ± 5 ± 4 ± 7
Gruppe A: KF n = 3 116a
± 4
69b
± 6
197c
± 10
87d
± 9
204c
± 8
85d
± 10
± 8 ± 17 ± 8 ± 11 ± 16 ± 15
Gruppe A: TSE n = 3 119a
± 6
79b
± 12
204c
± 3
91d
± 9
202c
± 1
93d
± 9
± 6 ± 7 ± 11 ± 4 ± 10 ± 11
Gruppe A: TSE n = 3 110a
± 4
77b
± 8
197c
± 6
92d
± 2
197c
± 6
80b
± 8
103 66 194 94 197 94
ben iv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Gruppe B: Ko n = 3 112a 63b 205c 88d 208c 87d
Intervallbelastung 2
Gruppe B: TSE n = 3 111a 75b 196c 93d 205c 94d
Intervallbelastung 3
Gruppe B: KF n = 3 112a 75b 202c 98d 196c 87e
Intervallbelastung 4
113 96 185 90 185 83 Gruppe B: KF n = 2
Unterschiedliche Kleinbuchsta (kurs
Belastung (p < 0,05)
71
IV. Ergebnisse
3. Gesamteiweiß
3.1. Stufentest
während der drei Stufentests ein Anstieg der Gesamteiweißkonzentration
Plasma festgestellt werden (p < 0,05, siehe Abbildung 7).
estzeitpunkten über den Werten der Gruppe B. Dies ließ sich jedoch statistisch nicht mit p <
bestätigt werd
Insgesamt konnte
im
Abbildung 7: Gesamteiweißkonzentrationen (g/dl) im Plasma während Stufentest 1 (ST1, n =
3/3), Stufentest 2 (ST2, n = 3/3) und Stufentest 3 (ST3, n = 3/2)
ie Gesamteiweißkonzentration der Gruppe A lag während des zweiten Stufentests bei allen
5
5,5
Geschwindigkeit (m/s)
Ges
amte
iwei
ß im
Pla
s
ST1 ST2 ST3
5,5 5,5
4 5 6 7 8 9 10 4 5 6 7 8 9 10 4 5 6 7 8 9 10
6
6,5
D
T
0,05 nachweisen. Auch in den anderen beiden Stufentests konnten keine Fütterungseffekte
en (siehe Tabelle 20).
ma
(/d
l)
Gruppe B Ko Gruppe B TSE Gruppe B KF
6
6,5
6
6,5Gruppe A Ko Gruppe A KF Gruppe A TSE
g
72
IV. Ergebnisse
Tabelle 20: Gesamteiweißkonzentrationen (g/dl, MW± SD) im Plasma während Stufentest
1, Stufentest 2 und Stufentest 3
Gesamteiweiß (g/dl)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1
Gruppe A: Ko n = 3 5,4a
± 0,5
5,5ab 5,7b 5,8b
± 0,4
5,8bc
± 0,4
5,9bc
± 0,3
6,2d
± 0,6 ± 0,4 ± 0,2
K,6abc 5,6ab 5,8b
a a ab ab bc
a ab bc bc
a ab a ac c
5,5 5,6 5,8 5,9 5,8 5,5 5,7 Gruppe B: KF n = 2
5,4 5,4 5,6 5,8 5,9 6,0 6,3
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
Gruppe B: o n = 3 5,5a
± 0,6
5,5a
± 0,6
5
± 0,5 ± 0,4 ± 0,3
6,0bc
± 0,2
6,0bc
± 0,3
Stufentest 2
Gruppe A: KF n = 3 5,7
± 0,5
5,8a
± 0,5
5,8
± 0,4
5,9
± 0,3
5,9
± 0,3
6,1b
± 0,3
6,3
± 0,5
Gruppe B: TSE n = 3 5,3
± 0,2
5,6
± 0,3
5,6b
± 0,2
5,7b
± 0,2
5,9
± 0,1
5,9
± 0,2
6,0c
± 0,1
Stufentest 3
Gruppe A: TSE n = 3 5,6
± 0,6
5,4
± 0,6
5,6
± 0,6
5,7a
± 0,6
5,9
± 0,5
5,9
± 0,5
6,1c
± 0,5
73
IV. Ergebnisse
3.2. Trainingsbelastungen
.2.1. Dauerbelastung
sgesamt wurden während der drei Dauerbelastungen für beide Gruppen nur moderate
teiweißgehaltes im Plasma festgestellt (siehe Tabelle 21).
iweißkonzentration (g/dl, MW± SD) im Plasma während
Dauerbelastung 1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
3
In
Veränderungen des Gesam
Tabelle 21: Gesamte
Gesamteiweiß (g/dl)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 1,6
g 1 Dauerbelastun
Gruppe A: Ko n = 3 5,6a 5,7a
± 0,6
5,6a
± 0,6 ± 0,3
Gruppe B: Ko 5,6a
± 0,4 ± 0,4
5,3b
± 0,4 n = 3
5,4ab
Dauerbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 5,5a
± 0,2
5,7a
± 0,2
5,5a
± 0,2
Gruppe B: TSE a
n = 3 5,6a
± 0,5
5,7
± 0,5
5,4a
± 0,2
Dauerbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 5,6ab
± 0,2
5,8a
± 0,2
5,4b
± 0,1
5,3 5,6 5,2 Gruppe B: KF n = 2
5,0 5,7 5,5
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
74
IV. Ergebnisse
3.2.2. Intervallbelastung
Die Gesamteiweißkonzentration der be Versuchsgru stieg wäh der
Galoppphasen an (p < 0,05) und fiel während Schrittphasen er ab (p < 0,05
über denen der Gruppe B. Statistisch ließen sich diese Unterschiede jedoch nicht mit p < 0,05
bestätigen (siehe Abbildung 8 und Tabelle 22).
iden ppen rend
der wied ).
Abbildung 8: Gesamteiweißkonzentrationen (g/dl) im Plasma während Intervallbelastung 1
(IB1, n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3), Intervallbelastung 3 (IB3, n
= 3/3) und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
Gruppe A startete im Vergleich zur Gruppe B mit höheren Werten in die ersten drei
Intervallbelastungen (Gruppe A: ~ 5,75 g/dl, Gruppe B: < 5,5 g/dl). Auch lagen die
Gesamteiweißkonzentrationen sowohl in den Galopp- als auch in den Schrittphasen zum Teil
5
5,25
5,5
5,25
5,5
5,25
5,5
5,25
5,5
Geschwindigkeit (m/s)
Ges
am
IB1 IB2 IB3 IB4
4 91,6 1,6 1,69 4 91,6 1,6 1,69 4 91,6 1,6 1,69 4 91,6 1,6 1,69
5,75
6
6,25
6,5
5,75
6
6,25
6,5
5,75
6
6,25
6,5
5,75
eiw
eiß
im P
las
6
6,25
6,5Gr.A KoGr. B Ko
Gr.A KFGr. B TSE
Gr.A TSEGr. B KF
Gr.A TSEGr. B KF
tm
a (g
/dl)
75
IV. Ergebnisse
Tabelle 22: Gesamteiweißkonzentrationen (g/dl, MW± SD) im Plasma während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Gesamteiweiß (g/dl)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 5,8a
± 0,2
5,3b
± 0,3
6,0a
± 0,3
5,4b
± 0,5
6,0a
± 0,2
5,3b
± 0,5
5,5a Ko n = 3
± 0,4
5,4ac
± 0,6
6,0b
± 0,6
5,2c
± 0,4
5,8ab
± 0,6
5,2c
± 0,4 Gruppe B:
Intervallbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 5 a
± 0,3
b
± 0,2
6 c
± 0,1
b
± 0,2
5 ab
± 0,6
5 bd
± 0,1
,8 5,5 ,1 5,5 ,7 ,4
a b a a
± 0,4 ± 0,3 ± 0,2 ± 0,3 ± 0,3 ± 0,3
Gruppe A: TSE n = 3 5,4ac
± 0,2
5,2a
± 0,3
6,0b
± 0,2
5,3ac
± 0,3
6,0b
± 0
5,5c
± 0,1
5,6 5,2 6,0 5,3 6,0 5,2
aben siv) in er Ze Zeitef e inne b eine
elastung (p < 0
Gruppe B: TSE n = 3 5,3a
± 0,1
5,2a
± 0,2
6,0b
± 0,4
5,4a
± 0,2
5,8b
± 0,3
5,3a
± 0,1
Intervallbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 5,8
± 0,3
5,6a
± 0,3
6,3
± 0,1
5,6
± 0,4
6,1b
± 0,3
5,7
± 0,4
Gruppe B: KF n = 3 5,6a 5,3b 5,9c 5,4ab 5,8ac 5,4ab
Intervallbelastung 4
5,1 5,1 5,6 4,8 5,8 4,8 Gruppe B: KF n = 2
Unterschiedliche Kleinbuchst (kur ein ile: fekt rhal r
B ,05)
76
IV. Ergebnisse
4. Insulin
4.1. Stufentest
Pl fiel i erlauf einzeln tufent mit p < 0,05
signifikant ab. Abbildung 9 zeigt die Insulinwerte der Gruppen A und B bei den drei
Stufentests jeweils zu Belastungsbeginn und am Belastungsende.
Die Insulinkonzentration im asma m V der en S ests
Abbildung 9: Insulinkonzentrationen (µU/ml) bei Belastungsbeginn und Belastungsende
während Stufentest 1 (ST1, n = 3/3), Stufentest 2 (ST2, n = 3/3) und Stufentest
3 (ST3, n = 3/2)
Bei Gruppe A sank die Plasmainsulinkonzentration von durchschnittlich 4,5 ± 1,6 µU/ml vor
den Stufentests auf 0,4 ± 0,4 µU/ml bei 10 m/s (p < 0,05). Einen vergleichbaren Abfall gab es
bei Gruppe B, dort fiel die Insulinkonzentration von 5,4 ± 1,4 µU/ml bei Belastungsbeginn
auf 0,2 ± 0,1 µU/ml bei Belastungsende (p < 0,05).
0
1
4 10 4 10 4 10
Geschwindigkeit (m/s)
1 1
ST1 ST2 ST3
2
3
4
5
6
7
Insu
lin im
Pla
sma
(µU
/ml)
Gr. A KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
6
7
6
7
2
5
2
3
4
5
3
4
77
IV. Ergebnisse
Tabelle 23 zeigt die Plasmainsulinkonzentrationen der beiden Versuchsgruppen am Anfang
e der drei Stufentests. Fütterungs- und testbedingte Effekte konnten und am End
varianzanalytisch nicht abgesichert werden.
l)
Tabelle 23: Insulinkonzentrationen (µU/ml, MW ± SD) im Plasma während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Insulin (µU/m
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 10
Stufentest 1
Gruppe A: K n = 3 ± 0,5 ± 0,1
o3,4a 0,1b
Gruppe B: Ko n = 3 6,2a 0,2b
± 0,2 ± 3,1
,9 ,1
a b
4,9 0,1
Belastung (p < 0,
Stufentest 2
Gruppe A: KF n = 3 3 a
± 1,0
0 b
± 0,1
Gruppe B: TSE n = 3 5,8a
± 2,4
0,1b
± 0,1
Stufentest 3
Gruppe A: TSE n = 3 6,1
± 3,1
0,8
± 1,2
3,1 0,2 Gruppe B: KF n = 2
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
05)
78
IV. Ergebnisse
4.2. Trainingsbelastungen
4.2.1. Dauerbelastung
elastung 1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
Insulin (µU/ml)
Tabelle 24: Insulinkonzentrationen (µU/ml, MW ± SD) im Plasma während
Dauerb
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 1,6
Dauerbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 5,8a
± 3,9
4,7a
± 2,8
8,3b
± 1,6
Gruppe B: K n = 3 4,1a
± 1,2
4,0a
± 2,3
7,7b o
± 4,2
Dauerbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 ± 1,2
4,9a 7,4a
± 3,3
5,9a
± 0,2
Gruppe B: TSE n = 3 4
± 2,3
5
± 1,8 ± 2,5
,7a ,5a 6,2a
Dauerbelastung
6,8a
± 1,1
4,9b
± 1,9
8,3a
± 2,6
1,3 6,0 9,3 Gruppe B: KF n = 2
2,6 3,3 5,0
Unterschiedliche Kleinb ben (kursiv) einer Zeile: effekte inner einer
Belastung (p < 0,05)
Bei der ersten Dauerbelastung kam es in beiden Gruppen, nach konstanten Werten während
einem deutlichen Anstieg der Plasmainsulinkonzentration nach dem Ende
der Dauerbelastung (p < 0,05). Während der zweiten Dauerbelastung stiegen die Werte der
uchsta in Zeit halb
der Belastung, zu
3
Gruppe A: TSE n = 3
79
IV. Ergebnisse
Gruppe B sowohl bei der Belastung als a n der Erholun ase an, wohi n die
Plasmainsulinkonzentrationen der Grupp während d lastung fie iese
Veränderungen ließen sich jedoch statistisch ht mit p < 0,05 absichern. Die Insulinwerte
zeigten nd der dritt auerbelastung en Abfall wä d der
Belastung (p < 0,05), wohingegen sowohl Gruppe A als auch Gruppe B einen mit p < 0,05
signifikanten Anstieg in der Erholungsphase aufweisen konnten (siehe Tabelle 24).
4.2.2. Intervallbelastung
Abbildung 10 und Tabelle 25 zeigen die Veränderungen der Insulinkonzentration während der
vier durchgeführten Intervallbelastungen im Vergleich der Gruppen A und B.
Abbildung 10: Verlauf der Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während
Intervallbelastung 1 (IB1, n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3),
Intervallbelastung 3 (IB3, n = 3/3) und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
uch i gsph ngege
e A er Be len. D
nic
der Gruppe A währe en D ein hren
Geschwindigkeit (m/s)
4 9 9 4 9 9 4 9 9 4 9 9
Gr. A TSE
6
4
0
6
4
6
4
6
4
IB1 IB2 IB3 IB4
1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6
Gr. A KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF Gr. B KF
10
8
10
8
10
8
10
8
Ins
lin
2 2 2 2
u i
Pm
µU/m
l)a
(la
sm
80
IV. Ergebnisse
Tabelle 25: Insulinkonzentration (µU/ml, MW ± SD) im Plasma während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Insulin (µU/ml)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 4,6a
± 3,3
4,1ad
± 4,8
3,1abd
± 4,3
6,6acd
± 5,1
3,5abd
± 4,0
7,3ac
± 2,0
Gruppe B: Ko n = 3 5,0a
± 3,6
3,5ab
± 0,7
2,1b
± 0,6
4,6ab
± 1,7
2,3ab
± 1,7
4,5ab
± 0,8
Intervallbelastung 2
KF n = 3 3,2ab 3,2ab 1,6a 4,0ab 1,7a 5,6b
Gruppe A: ± 1,6 ± 2,6 ± 1,6 ± 1,4 ± 0,8 ± 2,4
5,3a
± 1,3
3,9abd
± 1,3
1,4b
± 1,3
8,1cd
± 3,6
3,5abd
± 2,7
6,1d
± 1Gruppe B: TSE n = 3
,8
Intervallbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 3,8a
± 1,4
2,9ab
± 1,3
0,6b
± 0,3
5,1a
± 1,5
2,7ab
± 1,4
5,9ac
± 1,3
a
KF n = 3 4,4
± 0,8
5,1a 1,5b
,5
6,9ac
± 5,3
2,4ab
± 1,9
6,6ac
± 1,7 Gruppe B:
± 1,1 ± 0
,9a 1,7a ,3a ,6bc ,2a 5,2c
3,2 2,4 0,1 2,7 0,3 4,8 Gruppe B: KF n = 2
3,3 2,2 0,5 12,2 5,6 7,4
ben iv) in er Z Zeitef inne eine
Intervallbelastung 4
Gruppe A: TSE n = 3 2 c
± 1,9 ± 0,9
0
± 0,2
6
± 3,3
2
± 0,9 ± 1,5
Unterschiedliche Kleinbuchsta (kurs ein eile: fekte rhalb r
Belastung (p < 0,05)
81
IV. Ergebnisse
D zentration der Versuchspferde fiel in den Galoppphasen auf unter 4
µU/ml ab (p < 0,05) und stieg Schr en au ximal 8,1 µU/ml an (p < 0,05). Die
W pe n in Schr en z il d übe Werten der
Gruppe A, diese Unterschiede konnten jedoch varianzanalytisch nicht bestätigt werden.
5. Glukose
5.1. Stufentest
ie Plasmainsulinkon
in den ittphas f ma
erte der Grup B lage den ittphas um Te eutlich r den
Plasma g wäh der je igen S tests m
10
9
Die Glukosekonzentration im stie rend weil tufen it p < 0,05
signifikant an. Abbildung 11 zeigt den Anstieg der Plasmaglukosekonzentration während
Stufentest 1, Stufentest 2 und Stufentest 3 vergleichend für beide Versuchsgruppen.
Abbildung 11: Verlauf der Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während Stufentest 1
(ST1, n = 3/3), Stufentest 2 (ST2, n = 3/3) und Stufentest 3 (ST3, n = 3/2)
Geschwindigkeit (m/s)
Gr. A KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
ST1 ST2 ST34 5 6 7 8 9 10 4 5 6 7 8 9 104 5 6 7 8 9 10
1
10
9
7
8
0
2
34
1
7
2
3
1
10
9
7
5
2
34
Glu
kose
im P
lasm
a (m
mol
/l)
8 8
5
6
5
6
4
6
82
IV. Ergebnisse
Gruppe A wies eine durchschnittliche Anfangsglukosekonzentration von 4,4 ± 0,5 mmol/l
auf, Gruppe B hingegen startete mit Werten von 4,8 ± 0,3 mmol/l. Die Werte bei 10 m/s lagen
im Durchschnitt für Gruppe A bei 6,7 ± 1,4 mmol/l, für Gruppe B bei 8,9 ± 0,6 mmol/l.
Bei den letzten drei Geschwindigkeitsstufen des dritten Stufentests lagen die Werte der
Gruppe B deutlich über denen der Gruppe A, allerdings befanden sich zu diesem Zeitpunkt
nur noch zwei Pferde in Gruppe B. Pferd IV, welches in den ersten beiden Stufentests mit
vergleichsweise niedrigen Glukosewerten aufgefallen war, war verletzungsbedingt
ausgeschieden.
In Tabelle 26 sind die Plasmaglukosekonzentrationen der zwei Versuchsgruppen während
Stufentest 1, Stufentest 2 und Stufentest 3 aufgelistet.
5.2. Trainingsbelastungen
5.2.1. Dauerbelastung
Die Glukosekonzentration im Plasma der Gruppe B stieg generell während der
Abfall statistis
ei der ersten Dauerbelastung fielen Anstieg und Abfall der Glukosekonzentrationen im
d der
Dauerbelastung an (p < 0,05) und sank in der Erholungsphase wieder ab; allerdings war dieser
ch nicht mit p < 0,05 abzusichern (siehe Tabelle 27).
B
Plasma von Gruppe A und Gruppe B annähernd identisch aus. Die
Plasmaglukosekonzentrationen der Gruppe A bei den beiden letzten Dauerbelastungen
blieben sowohl während der Belastung als auch in der Erholungsphase konstant. Währen
dritten Dauerbelastung war dieser unterschiedliche Verlauf zwischen der Gruppe A (TSE) und
der Gruppe B (KF) besonders auffällig. Wie schon unter 4.1. erwähnt, war zu diesem
Zeitpunkt das Pferd mit den moderatesten Glukosewerten der Gruppe B aus dem Test
ausgeschieden.
83
IV. Ergebnisse
Tabelle 26: Glukosekonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Plasma während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Glukose (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1
4,9a
± 0,3
5,0a
± 0,4
5,0a
± 0,3
4,9a
± 0,7
5,8ab
± 1,0
6,6b
± 1,1
8,1c
± 1,4
4,7a
± 0,8
4,9a
± 0,9
5a
± 0,7
5,4a
± 0,9
7,3b
± 1,6
7,4b
± 1,5
8,6b
± 2,1
Stufentest 2
Gruppe A: Ko n = 3
Gruppe B: Ko n = 3
Gruppe A: KF n = 3 4,1ac
± 1,0
3,8a
± 1,6
4,2ac
± 0,9
5,3c
± 1,7
5,6bc
± 0,8
6,4bc
± 0,2
6,2bc
± 0,9
Gruppe B: TSE n = 3 5,1a
± 0,6
4,8ab
± 0,8
5,0a
± 1,0
4,8a
± 0,8
6,1ac
± 1,8
7,1c
± 2,0
8,4d
± 1,7
Stufentest 3
Gruppe A: TS4,6
± 1,0
3,7
± 0,1
4,3
± 0,5
4,0
± 0,9
4,3
± 1,4
5,1
± 1,8
5,7
± 2,2 E n = 3
abc ab a a a ac c
4,4 4,2 4,4 4,8 6,0 6,8 8,8 Gruppe B: KF n = 2
5,2 5,0 5,3 5,0 7,4 8,0 10,1
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
84
IV. Ergebnisse
Tabelle 27: Glukosekonzentrationen ol/l, MW D) Pl
Dauerbelastung er ng Da ast
Glukose (mmol/l)
(mm ± S im asma während
1, Dau belastu 2 und uerbel ung 3
e
Dauerbelastung 1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd
4 5 1,6
Gruppe A: Ko n = 3 4,5a
± 0,4
6,1b
± 0,3
5,5b
± 0,4
Gruppe B: Ko n = 3 4,5a
± 0,5
6,2b
± 0,6
5,6b
± 0,4
Dauerbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 5,2a
± 0,6
5,2a
± 1,1
5,3a
± 0,2
Gruppe B: TSE n = 3 4,6a
± 0,3
5,9b
± 1,1
5,5ab
± 0,7
Dauerbelastung 3
4,5a 4,9a Gruppe A: TSE n = 3
± 0,6 ± 0,8
4,9a
± 0,3
4,8
in Ze halb
Belastung (p < 0,05
Plasma
Intervallbelastunge
6,8 6,8 Gruppe B: KF n = 2
4,8 6,1 5,7
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) einer Zeile: iteffekte inner einer
)
5.2.2. Intervallbelastung
Der Verlauf der Glukosekonzentration im der Gruppen A und B während der vier
n ist in Abbildung 12 dargestellt.
85
IV. Ergebnisse
86
Abbildung 12: Verlauf der Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während
Intervallbelastung 1 (IB1, n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3),
Intervallbelastung 3 (IB3, n = 3/3) und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
Die Glukosewerte stiegen im Verlauf der Intervallbelastungen auf über 5,4 mmol/l an (p <
0,05) und fielen erst nach der zweiten Galoppphase wieder ab.
Obwohl die Glukosekonzentrationen der Gruppe B zum Teil über denen der Gruppe A lagen,
konnten statistisch keine Fütterungseffekte abgesichert werden (siehe Tabelle 28).
3,5
4
5
5,5
6,5
7
7,5
eit (m/s)
ose
im P
lasm
a (m
mol
/l)
6
Gr. SEF
A T E B KF
6
5,
7
7,
4,5
Glu
k 4,5 4,5 4,5
Geschwindigk
IB1 IB2 IB3 IB4
A KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TGr. B K
Gr. SGr.
4
5
5,5
6,5
7
7,5
4
5
5
6
6,5
5
4
5
5,5
6
6,5
7
7,5
4 9 9 4 9 9 4 9 9 4 9 91,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6
IV. Ergebnisse
Tabelle 28: Glukosekonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Plasma während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Glukose (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 4,6ab
± 0,3
4,4a
± 0,6
4,8ab
± 0,9
5,4b
± 0,7
5,4b
± 0,8
5,4b
± 0,6
Gruppe B: Ko n = 3 4,4a
± 0,9
4,2a
± 1,2
4,5a
± 1,0
5,4b
± 0,9
6,4c
± 1,9
6,2bc
± 1,0
Intervallbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 4,6a
± 0,3
4,6a
± 0,9
4,8a
± 0,8
5,1a
± 0,3
6,1b
± 1,0
5,2ab
± 0,7
Gruppe B: TSE n = 3 4,4a
± 1,2
4,3a
± 0,8
5,0a
± 0,9
6,2b
± 0,7
6,6b
± 0,9
6,1b
± 0,4
tung 3 Intervallbelas
Gruppe A: KF n = 3 4,9a
± 0,9
4,8a
± 0,7
5,7a
± 1,2
5,7a
± 0,9
5,8a
± 0,5
5,3a
± 0,2
Gruppe B: TSE n = 3 5,0ac
± 0,8
5,0a
± 0,4
6,0
± 0,9
6,5
± 1,0
5,9ab
± 0,6
6,1b
± 0,5
b b
3,8 3,7 a 5,0 6,3 c 6,3 c 5,8 bc
Belastung (p < 0,05)
Intervallbelastung 4
Gruppe A: TSE n = 3 a
± 0,2 ± 0,5
b
± 0,6 ± 1,1 ± 1,7 ± 1,9
4,2 4,9 5,3 6,0 5,8 5,2 Gruppe B: KF n = 2
4,5 4,6 5,3 6,5 6,9 5,7
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
87
IV. Ergebnisse
6. Laktat
6.1. Stufentest
I drei ntes es elast ginn um Belastungsende zu
einer exponentiellen Zunahme der Laktatkonzentratio
z de atku er be ersu ppen rgle
Abbildung 13: Verlauf der Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während Stufentest 1
(ST1, n = 3/3), Stufentest 2 (ST2, n = 3/3) und Stufentest 3 (ST3, n = 3/2)
Die Laktatkonzentration zu Belastungsbeginn lag bei Gruppe A bei durchschnittlich 1,1 ± 0,2
mmol/l, bei Gruppe B bei 1,3 ± 0,3 mmol/l. In beiden Versuchsgruppen war ein
vergleichbarer Anstieg der Laktatwerte während der Belastung zu verzeichnen; bei Gruppe A
stieg die Laktatkonzentration bis zum Belastungsende auf 13,5 ± 2,1 mmol/l (p < 0,05), bei
Gruppe B betrug sie zu diesem Zeitpunkt 15,7 ± 2,8 mmol/l (p < 0,05).
Der Unterschied zwischen den Laktatkonzentrationen der letzten Stufe des dritten Stufentests
(Gruppe A: 12,3 ± 2,5 mmol/l, Gruppe B: 18,5 ± 1,5 mmol/l) war statistisch nicht mit p <
m Verlauf der Stufe ts kam von B ungsbe bis z
n im Vollblut (p < 0,05). Abbildung 13
eigt die Verläufe r Lakt rven d iden V chsgru im Ve ich.
Gr. B o18
20
18 Gr. B TS B KF
Geschwindigkeit (m/s)
Gr. A Ko K
2
20
14
16
10
12
0
4
68
2
14
16
10
12
4
68
2
20
18
14
16
10
12
4
68
Gr. A KFE
Gr. A TSEGr.
6 7 8 9 10ST1 ST2 ST3
4 5 6 7 8 9 104 5 6 7 8 9 10
Lak
tat i
m V
ollb
lut (
mm
ol/l)
4 5
88
IV. Ergebnisse
0,05 abzusichern. Wie schon im Kapitel Glukose erwähnt, war Pferd IV, welches über den
vorangegangenen Testzeitraum moderate Laktatwerte gehabt hatte, zu diesem Zeitpunkt der
Studie verletzungsbedingt aus dem Versuch ausgeschieden.
In Tabelle 29 sind die Laktatkonzentrationen der zwei Versuchsgruppen aufgelistet.
Tabelle 29: Laktatkonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Laktat (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1
1,3a 1,6ab 2,5ab 3,8b 5,9bc 9,9d 14,5e Gruppe A: Ko n = 3
± 0,3 ± 0,3 ± 1,0 ± 1,4 ± 2,5 ± 4,0 ± 4,4
Gruppe B: Ko1,5
n = 3 1,6a
± 0,2
1,7a
± 0,2
2,4a
± 0,2
3,7a
± 0,5
6,6b
± 1,0
9,9c
± 1,5
16,3d
±
Stufentest 2
Gruppe A: KF n = 3 1,0a
± 0,1
1,0a
± 0,2
1,3a
± 0,3
1,8a
± 1,1
4,2b
± 1,5
6,9c
± 2,6
11,4d
± 3,1
Gruppe B: TSE n = 3 1,1a
± 0,1
1,3a
± 0,2
1,3a
± 0,4
2,8a
± 1,3
4,9b
± 2,3
8,7c
± 3,9
14,4d
± 5
Stufentest 3
Gruppe A: TSE n = 3 a
± 0,1
a
± 0,3
a
± 0,3
ab
± 0,8
b
± 0,9
c
± 1,9
d
± 2,5
1,0 1,1 1,5 2,5 4,3 7,2 12,3
1,1 1,4 2,0 3,0 5,0 10,7 17,4 Gruppe B: KF n = 2
1,3 1,1 1,6 4,1 6,3 11,7 19,5
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
89
IV. Ergebnisse
6.2. Trainingsbelastungen
6.2.1. Dauerbelastung
Tabelle 30: Laktatkonzentra n l/l, MW ± ) Vol w
auer ng uer ng Da ast
Laktat (mmol/l)
tione (mmo SD im lblut ährend
D belastu 1, Da belastu 2 und uerbel ung 3
1,4
ruppe B: Ko± 0,3 ± 0,3 ± 0,2
ruppe A: KF n 1
Geschwindigkeit Behandlung Pferde
4 5 1,6
Dauerbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 ab
± 0,3
1,7a
± 0,2
1,3b
± 0,2
G n = 3 1,6a 1,7a 1,6a
Dauerbelastung 2
G = 3 1,3a
± 0,5
1,7b
± 0,3
,5ab
± 0,3
Gruppe B: TSE n = 3 1,6 1,6 1,4 a
± 0,5
a
± 0,3
a
± 0,4
Dauerbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 1,4a
± 0,5
2,0b
± 0,7
1,6ab
± 0,8
1,0 1,6 1,1 Gruppe B: KF n = 2
1,0 1,5 1,4
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
elastung (p < 0,05)
In der Grupp rell während der
elastung von 1,4 ± 0,5 mmol/l auf 1,9 ± 0,2 mmol/l an und sanken nach Belastungsende
etwa auf das Ursprungsniveau ab. Dies ließ sich jedoch statistisch nur für den Anstieg der
B
e A stiegen die Laktatkonzentrationen im Vollblut gene
B
90
IV. Ergebnisse
letzten beiden Dauerbelastungen, sowie für den Abfall von Dauerbelastung 1 absichern (p <
0,05). Die Laktatwerte der Gruppe B blieben bis auf den belastungsbedingten Anstieg bei der
tung, der statistisch mit p < 0,05 bestätigt werden konnte, konstant. Die
Laktatkonzentrationen der Gruppe A währe
sszeitrau r denen de ppe B. Statistisch ließ sich jedoch kein
signifikanter Unterschied zwischen den Fütterungsregimes eruie iehe Tabelle
6.2.2. Intervallbelastung
r Laktatk tration im Plasma der Gruppen A und B während der vier
Intervallbelastungen ist in Abbildung 14 und Tabelle 31 dargestellt.
Abbildung 14: Verlauf der Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während
Intervallbelastung 1 (IB1, n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3),
Intervallbelastung 3 (IB3, n = 3/3) und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
dritten Dauerbelas
nd der dritten Dauerbelastung lagen während des
kompletten Me ms übe r Gru
ren (s 30).
Der Verlauf de onzen
10
12
lut (
Gr. B K
10 10
0
2
4
6
8
Geschwindigkei
mm
ol/l)
Gr. A Koo
2
4
6
8
12
2
4
6
8
12
2
4
6
8
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
Gr. A TSEGr. B KF
4 9 9 4 9 9 4 9 9 4 9 9
t (m/s)
L
1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6
IB1 IB2 IB3 IB4
akta
t im
Vol
lb
91
IV. Ergebnisse
Tabelle 31: Laktatkonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während
Laktat (mmol/l)
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 1,4a
± 0,3
1,2a
± 0,2
7,6b
± 0,7
2,9a
± 1,2
7,7b
± 0,6
2,6a
± 0,7
Gruppe B: Ko n = 3 1,4a
± 0,4
1,2a
± 0,2
9,0b
± 3,4
5,1c
± 3,0
9,9b
± 3,3
4,3c
± 1,6
Intervallbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 1,7a
± 0,2
1,3a
± 0,2
7,7b
± 2,1
3,5a
± 1,0
7,9b
± 1,9
3,0a
± 1,0
Gruppe B: TSE n = 3 1,5a
± 0,5
1,3a
± 0,5
9,1b
± 3,5
6,1c
± 3,0
8,9b
± 3,1
3,7d
± 1,7
Intervallbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 ± 0,3 ± 0,1 ± 4,5 ± 1,6 ± 1,6 ± 0,8
n = 3 a a b c b c
1,2a 0,9a 10,8b 4,3c 7,0d 2,4ac
Gruppe B: KF0,9
± 0,1
0,8
± 0
10,3
± 0,3
3,8
± 0,7
8,2
± 3,0
3,3
± 1,4
Intervallbelastung 4
Gruppe A: TSE n = 3 1,1a
± 0,1
0,9a
± 0
8,6b
± 0,8
3,1a
± 0,1
6,3c
± 0,9
2,5a
± 0,8
1,1 n = 2
1,0 11,8 4,0 7,2 3,3 Gruppe B: KF
0,8 0,5 9,8 3,9 10,6 4,1
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (k Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
ursiv) in einer
92
IV. Ergebnisse
In den Galoppphasen nahm die Laktatkonzentration im Vollblut mit p < 0,05 signifikant zu,
es wurden durchschnittlich We n 8,7 mmo eicht n Sch asen s
ikan fall akta ntrat uf W die d 3 l
lagen (p < 0,05). Obwohl die W der G B teilweise höher waren, als die der Gruppe
7. Freie Fettsäuren
7.1. Stufentest
rte vo ± 6,6 l/l err . In de rittph kam e
zu einem signif ten Ab der L tkonze ionen a erte, bei run mmol/
erte ruppe
A, konnten varianzanalytisch keine Fütterungseffekte gefunden werden.
Abbildung 15 zeigt die Konzentrationen der freien Fettsäuren der Gruppen A und B bei den
drei Stufentests jeweils zu Belastungsbeginn und -ende.
Abbildung 15: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma bei Belastungsbeginn
und Belastungsende während Stufentest 1 (ST1, n = 3/3), Stufentest 2 (ST2, n
= 3/3) und Stufentest 3 (ST3, n = 3/2)
4 10 4 10 4 10
Geschwindigkeit (m/s)
Frei
e Fe
ttsä
uren
im P
lasm
a (µ
mol
/l) Gr. A KoGr. B Ko
ST1 ST2 ST3
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
0
180
150
120
90
60
30
180
150
120
90
60
30
180
150
120
90
60
30
93
IV. Ergebnisse
Tabelle 32: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l, MW ± SD) im Plasma während
Stufentest 1, Stufentest 2 und Stufentest 3
Freie Fettsäuren (µmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 10
Stufentest 1
Gruppe A: Ko n = 3 142,5a
± 106,8
178,0a
± 27,0
Gruppe B: Ko n = 3 145,1a
± 73,8
156,7a
± 40,7
Stufentest 2
Gruppe A: KF n = 3 49,8a
± 20,6
151,2b
± 98,8
Gruppe B: TSE n = 3 91,9a
± 15,2
120,5a
± 38,8
Stufentest 3
Gruppe A: TSE n = 3 62,7a
± 31,3
161,0b
± 27,8
58,3 156,0 Gruppe B: KF n = 2
24,3 58,3
he Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
0,05)
Unterschiedlic
Belastung (p <
106,8 µmol/l v bei 10 m/s. Ebenfalls einen Anstieg
ab es bei Gruppe B, dort stieg die Konzentration von 145,1 ± 73,8 µmol/l bei
Belastungsbeginn auf 156,7 ± 4 sende. Statistisch konnten diese
en nicht mit p < 0,05 bestätigt werden.
Bei Gruppe A stieg die Konzentration der freien Fettsäuren im ersten Stufentest von 142,5 ±
or den Stufentests auf 178,0 ± 27,0 µmol/l
g
0,7 µmol/l bei Belastung
Veränderung
94
IV. Ergebnisse
Im Vergleich mit Stufentest 1 lagen die Werte beider Gruppen während der beiden letzten
Stufentests niedriger. Gruppe A startete mit 56,5 ± 6,7 µmol/l und erreichte Konzentrationen
8 µmol/l 05), bei Gruppe n Anstieg von 66,6 mol/l auf
113,3 ± 62,1 µmol/l zu verzeichnen. Dieser konnte statistisch nicht abgesichert werden. Es
est- noch ungseffekte eruiert (siehe Tabelle 32).
sbelastungen
von 156,2 ± 92, (p < 0, B war ei ± 25,3 µ
wurden weder T Fütter
7.2. Training
sma stie beider G
allen drei Da
Belastungsbegin 4,4 ± i Bela 5). W
7.2.1. Dauerbelastung
Die Konzentration der freien Fettsäuren im Pla g bei den Pferden ruppen in
uerbelastungen während der Belastung signifikant an (siehe Tabelle 33).
Bei Gruppe A stieg die Konzentration der freien Fettsäuren belastungsbedingt von
durchschnittlich 66,7 ± 52,3 µmol/l auf 742,4 ± 102,1 µmol/l an (p < 0,05). Ebenfalls einen
Anstieg gab es bei Gruppe B, dort stiegen die Werte von 150,0 ± 48,3 µmol/l bei
n auf 82 60,9 µmol/l be stungsende (p < 0,0 ährend der
e B lagen während der zweiten Dauerbelastung über denen der Gruppe
. Dies ließ sich statistisch nicht mit p < 0,05 bestätigen.
Erholungsphase blieben die Konzentrationen der freien Fettsäuren konstant.
Die Werte der Grupp
A
95
IV. Ergebnisse
Tabelle 33: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l, MW ± SD) im Plasma während
astung 1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3 Dauerbel
Freie Fettsäuren (µmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 5 1,6
Dauerbelastung 1
119,0a
± 89,9
828,4b
± 178,3
856,0b
± 136,3
101,7a 856,0b
Gruppe A: Ko n = 3
Gruppe B: Ko n = 3 981,7b
± 44,7 ± 199,0 ± 21,5
Dauerbelastung 2
Gruppe A: KF n = 3 34,5a
± 7,8
640,7b
± 170,0
533,4b
± 126,4
Gruppe B: TSE n = 3 159,8a
± 135,6
853,7b
± 314,5
796,0b
± 227,9
Dauerbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 46,5a
± 2,5
757,4b
± 84,8
829,7b
± 81,1
336,0 1024,2 895,6 Gruppe B: KF n = 2
39,3 503,4 609,6
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
7.2.2. Intervallbelastung
Die Konzentration der freien Fettsäuren im Plasma stieg in den Schrittphasen bei beiden
180,7 bis 3 ol/l an (p < 0,05), wohingegen sie in den Galoppabschnitten
0 µmol/l sank (p < 0,05). In Abbildung 16 und Tabelle 34 sind die
Konzentrationen der freien Fettsäuren von Gruppe A und B im Vergleich zu sehen.
Gruppen auf 51,0 µm
auf 62,9 bis 157,
96
IV. Ergebnisse
Während der ersten Intervallbelastung konnten in der Gruppe B nach dem warm up und in der
ersten Schrittphase höhere freie Fettsäuren beobachte als in de A.
Diese Effekte konnten varianzanalytisch jedoch nicht mit p < 0 sichert we
Abbildung 16: Verlauf der Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während
Intervallbelastung 1 (IB1, n = 3/3), Intervallbelastung 2 (IB2, n = 3/3),
Intervallbelastung 3 (IB3, n = 3/3) und Intervallbelastung 4 (IB4, n = 3/2)
-Werte t werden r Gruppe
,05 abge rden.
150äu
200
ren
i
350
mol
/
400
as
Gr. A. B KF
100
150
350
100
150
250
300
350
100
150
2
350
50
100
250
300
Frei
e Fe
tts
m P
lm
a (µ
l)
KoGr. B Ko
Gr. A KFGr. B TSE
Gr. A TSEGr. B KF
Gr. A TSEGr
200
250
300
400
200
400
200
50
300
400
1,6 1,6 1,6IB1 IB2 IB3 IB4
Geschwindigkeit (m/s)
1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,6 1,64 9 9 4 9 9 4 9 9 4 9 9
97
IV. Ergebnisse
Tabelle 34: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l, MW ± SD) im Plasma während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Freie Fettsäuren (µmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1
Gruppe A: Ko n = 3 70,8a
± 13,9
180,7bd
± 39,6
73,7a
± 20,5
223,0b
± 106
157,0abd
± 55,3
285,0bc
± 47,2
Gruppe B: Ko n = 3 165,5a
± 194,1
279,0b
± 168,2
93,0acd
± 64,7
216,9abd
± 127,2
134,8ad
± 86,7
258,7ab
± 73,2
Intervallbelastung 2
KF n = 3 72,9a 190,7b 83,6a 215,0bc 100,3ab 219,0bc
Gruppe A: ± 31,7 ± 85,2 ± 25,9 ± 73,9 ± 36,4 ± 84,5
E n = 3 95,9a
± 45,8
232,7b
± 154,2
94,5a
± 42,7
184,7ab
± 94,3
85,5c
± 34,2
274,7b
± 17Gruppe B: TS
7,3
Intervallbelastung 3
Gruppe A: TSE n = 3 138,5a
± 119,5
282,4b
± 202,5
67,1a
± 20,0
277,7b
± 139,6
84,9a
± 14,3
352,7b
± 116,8
Gruppe B: KF n = 3 71,9a
± 24,8
234,0b
± 84,2
62,9a
± 24,8
256,4b
± 72,6
77,5a
± 31,8
306,7b
± 68,8
Intervallbelastung 4
Gruppe A: TSE n = 3 96,2a
± 36,5
248,4b
± 118,5
77,1a
± 27,5
348,4c
± 111,7
90,5a
± 30,0
351,0c
± 58,4
130,5 387,6 108,0 346,5 103,7 341,7 Gruppe B: KF n = 2
43,1 121,2 42,1 198,8 52,9 170,2
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
elastung (p < 0,05)
B
98
IV. Ergebnisse
8. Sonstige Parameter
atrium, Kalium und Chlorid wurde aufgrund fehlender Testwerte
insbesondere während der letz nin ng die ng e
st h ne rüf r ngs n
vorgenommen.
m en
8.1. Natrium
Für die Parameter N
en Trai gsbelastu en auf Einteilu in Grupp A und B
verzichtet und atistisc nur ei Überp ung de belastu bedingte Effekte
Diese können den nachfolgenden Tabellen entnom en werd .
entests m es j eils vo Belast sbeginn bis zum
Belastungsende zu einer Zunahm
konzen tionen
aufgeliste
tratione mol/l, ± SD Vollb während tufentes
1, Stufe
8.1.1. Stufentest
Im Verlauf der drei Stuf ka ew m ung
e der Natriumkonzentration im Vollblut (p < 0,05). In
Tabelle 35 sind die Natrium tra der Versuchspferde während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3 t.
Tabelle 35: Natriumkonzen n (m MW ) im lut S t
ntest 2 und Stufentest 3
Natrium (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1 n = 6 136,9 137,7 138,4 138,9 139,8 139,0 142,4 ab
± 1,66
a
± 1,79
abc
± 0,87
ac
± 0,8
c
± 0,62
ac
± 1,73
d
± 1,72
Stufentest 2 n = 6 137,4a
± 1,18
139,6b
± 1,19
138,6ab
± 1,75
138,5ab
± 2,21
141,4c
± 1,37
141,4c
± 3,13
143,1c
± 1,93
Stufentest 3 n = 5 133,4a 134,8a 134,7a 135,0ab 135,1ab 136,7b 139,1c
± 1,21 ± 1,57 ± 1,78 ± 1,84 ± 2,15 ± 1,66 ± 2,64
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
99
IV. Ergebnisse
8.1.2. Trainingsbelastungen
8.1.2.1. Dauerbelastung
Während der drei Dauerbelastungen konnte ein konstanter Verlauf der Natriumkonzentration
Vollblut analysiert werden (Tabelle 36).
abelle 36: Natriumkonzentration (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während
im
T
Dauerbelastung 1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
Natrium (mmol/l)
Test Pferde Geschwindigkeit (m/s)
4 5 1,6
Dauerbelastung 1 n = 6 135,9a
± 1,
136,2a 135,8a
11 ± 0,84 ± 1,16
Dauerbelastung 2 n = 6 136,5a 136,4a
± 0,89
136,5a
± 0,57 ± 0,85 a 131,1a
Unterschiedliche K h k in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
8.1.2.2. Intervallbelastung
Generell war ein Anstieg der Natriumkonzentra
gskonzentrationen bestimmt werden konnten (Tabelle 37).
leinbuc staben ( ursiv)
tionen während der Galoppabschnitte der vier
Dauerbelastung 3 n = 5 132,3
± 2,87 ± 1,10
132,5a
± 2,64
Intervallbelastungen zu beobachten, wohingegen während der Schrittphasen wieder
annähernd die Ausgan
100
IV. Ergebnisse
Tabelle 37: Natriumkonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
Natrium (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1 n136,3a
± 0,94
136,2a
± 1,03 ± 2,18 ,01
,1b
± 2,23
135,5a
0,55 = 6
141,7b 136,1a 141
± 1 ±
Intervallbelastung 2 n136,8a
± 1,53
143,0b
± 2,82
a
2
141,6
± 1,90
,0a
,61 = 6
137,7a
± 5,12
136,0
± 1,0
b 136
± 1
Intervallbelastung 3 n135,4a
± 1,07
140,5b
± 0,90
a
9
139,2
± 1,55
,7a
,73 = 6
135,1a
± 1,30
134,5
± 1,4
b 134
± 1
Intervallbelastung 4 n135,8a
± 3,37
138,8b
± 5,30
a
2
138,6
± 3,60
,0a
,90 = 5
135,6a
± 3,05
135,7
± 4,0
b 136
± 3
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
8.2. Kalium
8.2.1. Stufentest
Mit Zunahme der Geschwindigkeit in den drei Stufentests stiegen auch die
aliumkonzentrationen der Versuchstiere stetig an (p < 0,05; siehe Tabelle 38).
.2.2. Trainingsbelastungen
Während die im Vollblut bei den Versuchspferden während der
elastung konstant blieb, sank sie bei den beiden ersten Dauerbelastungen während der
K
8
8.2.2.1. Dauerbelastung
Kaliumkonzentration
B
101
IV. Ergebnisse
Tabelle 38: Kaliumkonzentrationen ) im Vollblut während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Kalium (mmol/l)
(mmol/l, MW ± SD
4,79a b cd e
5,04a ab c d
4,83a b cd e
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1 n = 6
± 0,27
5,04
± 0,16
5,12b
± 0,18
5,16bc
± 0,17
5,31c
± 0,17
5,46
± 0,20
5,90
± 0,33
Stufentest 2 n = 6
± 0,23
5,15
± 0,17
5,22b
± 0,12
5,29b
± 0,20
5,47c
± 0,17
5,58
± 0,07
5,95
± 0,26
Stufentest 3 n = 5
± 0,14
5,08
± 0,15
5,14bc
± 0,15
5,20bc
± 0,10
5,27c
± 0,13
5,39
± 0,13
5,76
± 0,31
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
Tabelle 39: Kaliumkonzentration (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während
Dauerbelastung 1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
Kalium (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 5 1,6
Dauerbelastung 1 n = 6 4,62a
± 0,12
4,63a
± 0,19
4,21b
± 0,14
Dauerbelastung 2 n = 6 4,64a
± 0,20
4,69a
± 0,49
4,24b
± 0,09
Dauerbelastung 3 n = 5 4,45
± 0,40
4,54
± 0,59
4,35
± 0,52
a ab b
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
102
IV. Ergebnisse
Erholungsphase ab (p < 0,05). Die statistisch abgesicherten Zeiteffekte sind der Tabelle 39 zu
entnehmen.
vallbela
r Interv as k b S as ei bf
Kaliumkonzentrationen im Vollblut (p < 0,05), die Galoppabschnitte führten zu einem
esiche stieg der Kaliumwerte (siehe Tabelle 40).
Tabelle 40: Kaliumkonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Vollblut während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelastung 4
8.2.2.2. Inter stung
Während de allbel tungen am es ei den chrittph en zu nem A all der
statistisch abg rten An
Kalium (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1 n = 6 4,92a
± 0,26
4,64b
± 0,12
6,61c
± 0,51
4,37d
± 0,12
6,35e
± 0,25
4,34d
± 0,15
Intervallbelastung 2 n = 6 4,95a
± 0,19
b
± 0,20
6,69c
± 0,43
b
± 0,18
6,34d
± 0,25
3b
± 0,18
4,49 4,36 4,3
4,50 4,22 4,1
4,50 4,29 4,3
Intervallbelastung 3 n = 6 4,65a
± 0,15
a
± 0,32
6,17b
± 0,19
c
± 0,13
5,79d
± 0,24
9c
± 0,14
Intervallbelastung 4 n = 5 4,92a
± 0,09
b
± 0,17
5,85c
± 0,57
b
± 0,17
5,84c
± 0,18
4b
± 0,14
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
elastung (p < 0,05) B
103
IV. Ergebnisse
8.3. Chlorid
ährend der drei Stufentests sank die Chloridkonzentration im Plasma der Versuchspferde
Tabelle 41).
.3.2. Trainingsbelastungen
1. Dauerbelastung
atio las r V tiere fiel bei allen drei Dauerbelastungen
während der Belastung ab (p < 0, hre eh ge ng bli
konstant (siehe Tabelle 42).
8.3.2.2. Intervallbelastung
Die Veränderungen der Pla orid trationen der Pferde während der
Int ela In ela un all g
8.3.1. Stufentest
W
von > 100 mmol/l vor der Belastung auf < 99 mmol/l nach der letzten Belastungsstufe (siehe
8
8.3.2.
Die Chloridkonzentr n im P ma de ersuchs
05). Wä nd der z nminüti n Erholu sphase eben sie
smachl konzen
Intervallbelastung 1, ervallb stung 2, tervallb stung 3 d Interv belastun 4, sowie
die statistische Auswertung der Zeiteffekte sind in Tabelle 43 aufgelistet.
104
IV. Ergebnisse
Tabelle 41: Chloridkonzentrationen (mmol/l, MW ± SD) im Plasma während Stufentest 1,
Stufentest 2 und Stufentest 3
Chlorid (mmol/l)
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 5 6 7 8 9 10
Stufentest 1 n = 6 101,4a
± 1,23
102,9b
± 1,38
102,2ab
± 1,52
101,2a
± 1,81
101,1ac
± 1,40
100,4c
± 0,80
98,82d
± 1,30
Stufentest 2 n = 6 101,3ab
± 2,39
101,8a
± 2,93
100,5b
± 2,89
100,0bc
± 2,89
99,35c
± 2,05
98,56cd
± 2,12
98,14d
± 2,52
Stufentest 3 n = 5 100,0abc
± 1,36
101,0a
± 1,59
100,9a
± 1,51
100,0abc
± 1,50
99,80b
± 1,43
99,30bc
± 1,40
98,66cd
± 2,12
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
elastung (p < 0,05)
Chlorid (mmol/l)
B
Tabelle 42: Chloridkonzentration (mmol/l, MW ± SD) im Plasma während Dauerbelastung
1, Dauerbelastung 2 und Dauerbelastung 3
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferde
4 5 1,6
Dauerbelastung 1 n = 6 102,0a
± 1,07
99,34b
± 1,98
98,68b
± 1,44
Dauerbelastung 2 n = 6 102,1a
± 1,88
98,92b
± 1,56
98,61b
± 1,28
Dauerbelastung 3 n = 5 99,44a
± 1,68
96,83b
± 1,00
98,63b
± 1,19
Unterschiedliche Kleinbuchstaben (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
0,05) Belastung (p <
105
IV. Ergebnisse
Tabelle 43: Chloridkonzentrationen (mmol/l, Plasma während
Intervallbelastung 1, Intervallbelastung 2, Intervallbelastung 3 und
Intervallbelast
Chlorid (mmol/l)
MW ± SD) im
ung 4
e
a a b ab b b
Geschwindigkeit (m/s) Test Pferd
4 1,6 9 1,6 9 1,6
Intervallbelastung 1 n = 6102,0
± 1,36
102,3
± 1,72
100,7
± 1,73
101,3
± 1,52
100,7
± 1,59
100,6
± 2,08
Intervallbelastung 2 ab a ab b bc abc
n = 6 101,3
± 1,25
101,9
± 1,64
101,3
± 2,05
100,8
± 0,93
99,90
± 2,42
100,7
± 1,72
Intervallbelastung 3 n = 6 100,5
± 2,98
100,9
± 2,44
98,91
± 3,
100,6 99,55 99,64 a ac b
03
a
± 2,46
ab
± 3,21
ab
± 2,76
Intervallbelastung 4 n = 5 100,5a
± 1,5
100,3ab 99,63ab
2,79
99,38ab
± 1,65
99,27b
± 1,66
99,18b
± 1,15 7 ± 1,58 ±
Unterschiedliche Kleinb n (kursiv) in einer Zeile: Zeiteffekte innerhalb einer
Belastung (p < 0,05)
9. Zusammenfassung der Ergebnisse
Sowohl der Stufentest, als auch die be ainingsbela (Dauerbe und
wiesen len geteste metern die jeweils erwarteten statistischen
ten weder statistisch abgesicherte Fütterungseffekte innerhalb eines
ests, noch Testeffekte innerhalb der einzelnen Gruppen festgestellt werden. Dies gilt sowohl
r die einzelnen Testparameter, als auch für jeden Zeitpunkt der Untersuchung.
uchstabe
iden Tr stungen lastung
Intervallbelastung) bei al ten Para
Zeiteffekte innerhalb der einzelnen Belastungen auf.
Darüber hinaus konn
T
fü
106
V. Diskussion
V. Diskussion
Ziel dieser Untersuchung war es, den Einsatz von Trockenschnitzeln auf die metabolischen
Reaktionen und die Leistungsfähigkeit bei arbeitenden Pferden im mittleren Leistungsbereich
zu überprüfen.
Aufgrund der bislang vorliegenden Ergebnisse wird vermutet, dass Trockenschnitzel beim
Sportpferd keine nachteiligen Effekte auf die Energiebereitstellung und Leistungsfähigkeit
besitzen, allerdings wurden die Trockenschnitzel bisher nur über kurze Versuchszeiträume
verfüttert.
In der vorliegenden Studie sollten daher die kurz- und langfristigen Effekte des
isoenergetischen Austauschs von 65 % der verdaulichen Energie eines pelletierten
Mischfutters durch melassiertes Trockenschnitzelexpandat untersucht werden.
1. Kritik der Methoden
1.1. Durchführung der Versuche
Sowohl die Trainingsphasen, als auch die Leistungskontrollen (Stufentest 1-3,
Dauerbelastung 1-3, Intervallbelastung 1-4) wurden von den Pferden über den gesamten
Versuchszeitraum auf einem Hochgeschwindigkeitslaufband absolviert. Dadurch konnte eine
exakte Durchführung der Arbeitsprotokolle und somit eine standardisierte Belastung zu jedem
Zeitpunkt sichergestellt werden. Auch eine gute Vergleichbarkeit der in den
Leistungskontrollen gemessenen Parameter, wie zum Beispiel Herzfrequenz und Laktat, ist
laut SEEHERMAN und MORRIS (1990 a) bei Laufbandversuchen gegeben.
Zu Beginn und am Ende der beiden Trainingsperioden wurde ein Stufentest durchgeführt.
Stufentests sind zur Erfassung des Leistungs- und Trainingszustandes von Pferden geeignet
107
V. Diskussion
(PERSSON 1983; EVANS und ROSE 1988 c; SCHUBACK und ÉSSEN-GUSTAVSSON
1998). Laut LINDNER (1997) soll ein Stufentest mindestens 4 Stufen beinhalten. Die Dauer
der einzelnen Stufen sollte zwischen einer und fünf Minuten liegen (EVANS und ROSE 1988
a; COUROUCÉ 1999) und der optimale Geschwindigkeitsunterschied zwischen den Stufen
wird von LINDNER (1997) und COUROUCÉ (1999) mit etwa 1 m/s veranschlagt.
Diese Voraussetzungen wurden in der vorliegenden Studie erfüllt.
Vor den drei Stufentests wurde für alle Pferde jeweils eine Trainingspause von vier Tagen
eingelegt. Dieser zeitliche Abstand ist notwendig, da das Pferd laut SNOW und HARRIS
(1991) sowie HYYPPÄ et al. (1997) bis zu 72 Stunden benötigt, um die Glykogenspeicher
nach einer Belastung zu repletieren. So konnte ausgeschlossen werden, dass die Leistungen
während der Stufentests durch diesen Parameter beeinflusst wurden.
Als Trainingsbelastungen wurden Dauerbelastung und Intervallbelastung im Wechsel
gewählt.
Eine regelmäßig durchgeführte Ausdauerbelastung steigert die Grundausdauer und die aerobe
Leistungsfähigkeit, wohingegen Intervallbelastungen zu einer Steigerung der Muskelkraft und
sowohl der aeroben, als auch der anaeroben Leistungsfähigkeit führen (GABEL et al. 1983).
Laut GYSIN et al. (1987) und HARKINS et al. (1990) ist eine Kombination dieser beiden
Trainingsformen möglich und empfehlenswert.
Zu kritisieren ist jedoch, dass die Intensität der Trainingseinheiten für alle Pferde gleich
gewählt wurde. Ein individuelles Training wurde nicht durchgeführt, die Versuchstiere
wurden somit unabhängig von ihrem jeweiligen Leistungspotential trainiert.
Die Verlängerung der Galoppphasen bei der Intervallbelastung von zwei Minuten
(Intervallbelastung 1 und 2) auf vier Minuten (Intervallbelastung 3 und 4) wurde im Rahmen
einer Trainingsanpassung durchgeführt. Der gute Trainingszustand der Versuchspferde nach
der ersten Trainingsperiode ließ vermuten, dass die Möglichkeit einer Leistungssteigerung
ohne Verlängerung der Galoppabschnitte nicht gegeben gewesen wäre.
108
V. Diskussion
Eine individuelle Belastung aufgrund der v2,5 oder v4 (siehe Abbildung 17) und eine
nachfolgende spezifische Anpassung des Trainings anhand der Ergebnisse der Stufentests
wäre wünschenswert gewesen und hätte möglicherweise zu deutlichen Trainingseffekten
geführt.
Mit v2,5 oder v4 wird die Geschwindigkeit gekennzeichnet, bei der während einer
standardisierten Belastung rechnerisch eine Konzentration von 2,5 respektive 4 mmol Laktat
pro Liter Blut beobachtet werden kann.
In Abbildung 17 sind die Laktatkurven der Pferde während des ersten Stufentests und die
jeweiligen Geschwindigkeiten bei v4 dargestellt.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
4 5 6 7 8 9 10
Geschwindigkeit (m/s)
Lak
tat i
m V
ollb
lut (
mm
ol/l)
Pferd 1Pferd 2Pferd 6Pferd 3Pferd 4Pferd 5
v4
Abbildung 17: Laktatkurven und v4 der Versuchspferde während des ersten Stufentests
1.2. Versuchspferde, Fütterung, Haltung
Für die Versuche standen sechs Traber zur Verfügung, die eine relativ homogene
Altersgruppe bildeten (2 - 4 Jahre). Von Vorteil war, dass fünf der Tiere Halbgeschwister
waren (alle zweijährig) und dass für alle Pferde während des Versuchszeitraums die selben
109
V. Diskussion
Fütterungs- und Haltungsbedingungen vorlagen. Das unterschiedliche Geschlecht der
Versuchstiere hat laut ROSE et al. (1990) keine Auswirkung auf die ermittelten Parameter.
Die Anzahl der Tiere war im Rahmen des Versuchsaufbaus gering bemessen; durch den
Ausfall von Pferd IV in der zweiten Trainingsperiode wurde die statistische Auswertung der
Daten dieses Testabschnitts aufgrund der zu kleinen Gruppengröße (Gruppe B: n = 2)
erschwert.
Neben der geringen Gruppengröße ergab sich eine weitere Problematik, die anhand der
Plasmaglukosekonzentrationen der zweiten und dritten Dauerbelastung verdeutlicht werden
soll. Wie den Abbildungen 18 und 19 entnommen werden kann, wies Pferd IV nach der
Erholungsphase der zweiten Dauerbelastung mit 4,78 mmol/l einen moderaten Glukosewert
auf und beeinflusste den Mittelwert der Gruppe B dementsprechend (5,43 ± 0,65 mmol/l im
Vergleich zu 5,27 ± 1,87 mmol/l bei Gruppe A). Durch den Wegfall dieses moderaten Wertes
während der dritten Dauerbelastung, die Pferd IV aufgrund des krankheitsbedingten Ausfalls
nicht absolvieren konnte, lag der Mittelwert der Gruppe B mit 6,21 ± 0,78 mmol/l deutlich
über dem der Gruppe A (4,84 ± 0,30 mmol/l) und impliziert somit einen fütterungsbedingten
Effekt. Dieser ist aufgrund der geringen Gruppengröße (n = 2) weder statistisch verifizierbar,
noch ist er bei Annahme eines moderaten Glukosewertes für Pferde IV wahrscheinlich.
5,33 5,41 5,07 5,444,78
6,06
01
23
45
67
Dauerbelastung 2
Glu
kose
(mm
ol/l)
im P
lasm
a
Gr. B Gr. A
I. II. VI III. VIV.
Abbildung 18: Glukosekonzentrationen (mmol/l) im Plasma der Pferde der Gruppen A und B
während der Erholungsphase von Dauerbelastung 2
110
V. Diskussion
4,81 5,154,56
5,666,75
01
23
45
67
Dauerbelastung 3
Glu
kose
(mm
ol/l)
im P
lasm
a
Gr. B Gr. A
I. II. VI III. V
Abbildung 19: Glukosekonzentrationen (mmol/l) im Plasma der Pferde der Gruppen A und B
während der Erholungsphase von Dauerbelastung 3
1.3. Auswahl der Parameter und Untersuchungsmethoden
In der vorliegenden Studie wurden die Parameter Herzfrequenz und Laktat zur Erfassung der
Leistungsfähigkeit herangezogen.
Dies sind die am häufigsten zur Leistungskontrolle von Pferden herangezogenen Parameter.
Beide werden von der Dauer und Intensität einer Belastung direkt beeinflusst (ART und
LEKEUX 1995; GEOR et al. 1996) und sind somit als Indikatoren der Arbeitsintensität,
Fitness oder des Belastungspotentials während einer standardisierten Belastung geeignet
(SEEHERMAN und MORRIS 1990 b; LINDNER 1997).
Als Indikatoren des Energiestoffwechsels fungierten in der vorliegenden Arbeit die Parameter
Glukose, Insulin und freie Fettsäuren.
Der Glukoseverbrauch ist von der Belastungsdauer und der Belastungsintensität abhängig.
Die Höhe der im Blut zirkulierenden Glukose ist abhängig von dem Gleichgewicht zwischen
der Glukoseaufnahme in die arbeitende Muskulatur und der hepatischen Glykogenolyse- bzw.
Glukoneogeneserate (ART und LEKEUX 1995). Die Art und der Zeitpunkt der Fütterung
können die Bereitstellung von Glukose während einer Belastung beeinflussen.
111
V. Diskussion
Die wesentliche Wirkung des Insulins im Gesamtorganismus ist die Senkung des
Blutglukosespiegels, entweder durch eine erhöhte Aufnahme von Glukose in die Zelle oder
durch eine erhöhte Verwertung von Glukose in der Zelle (FISCHER 1994). Somit ist die
insulinämische Wirkung nicht nur mit der glykämischen verbunden, sondern auch direkt mit
der Art der Fütterung und der nachfolgenden Belastung.
Durch eine Erhöhung der Katecholamin- und Kortisolkonzentration und einen Abfall des
Insulinspiegels bei Belastung wird die vermehrte Freisetzung von freien Fettsäuren aus dem
Depotfettgewebe stimuliert. Diese werden in der Muskulatur oxidiert und dienen so der
Energiegewinnung. Der prozentuale Anteil der freien Fettsäuren an der Energiebereitstellung
steigt mit zunehmender Belastungsdauer (LAWRENCE 1998) und kann ebenfalls durch die
Fütterung und die Art einer Belastung beeinflusst werden.
Zusammenfassend ist zu sagen, dass mit den oben genannten Parametern eine adäquate
Auswahl zur Beurteilung des Energiestoffwechsels getroffen wurde.
Allerdings wurde auf eine Untersuchung des Glykogengehaltes in der Muskulatur verzichtet,
obwohl der Glykogenabbau während der Belastung in zahlreichen Untersuchungen wertvolle
Hinweise auf den Energiestoffwechsel geliefert hat. Laut VERVERT (1998) und SNOW et al.
(1982) sind aber gerade in kleinen Versuchsgruppen sehr hohe individuelle Schwankungen
dieses Parameters möglich, eine Auswertung der Daten wird dadurch erschwert.
Da in der vorliegenden Studie nicht nur Effekte auf den Energiestoffwechsel, sondern auch
auf den Wasserhaushalt der Versuchstiere zu erwarten waren, wurden neben den oben
beschriebenen Indikatoren des Energiestoffwechsels auch einige für den Wasserhaushalt
relevante Parameter untersucht. Neben den Schweißverlusten wurden sowohl das
Gesamteiweiß zur Bestimmung der Plasmavolumenverluste, als auch die Elektrolyte Natrium,
Kalium und Chlorid ausgewählt (COENEN und MEYER 1987; PAGAN 2002).
Eine Kontrolle der täglichen Wasseraufnahme, welche möglicherweise durch die Art der
Fütterung beeinflusst werden kann (DANIELSEN et al. 1995), wurde nicht durchgeführt,
sollte allerdings in Folgestudien berücksichtigt werden.
112
V. Diskussion
2. Diskussion der Ergebnisse
Im Vergleich zu den bisher vorgelegten Studien, in denen zwischen 15 und 45 % MJ DE der
Kraftfuttermahlzeiten isoenergetisch durch Trockenschnitzel ersetzt wurde, interessierte in der
vorliegenden Arbeit der isoenergetische (MJ DE) Austausch eines mit 65 % deutlich höheren
Anteils der Kraftfutterration. Ein vergleichsweise hoher Einsatz von Trockenschnitzeln wurde
gewählt, um die Effekte der Trockenschnitzelfütterung deutlicher hervorheben zu können.
Die Pferde des Trockenschnitzelregimes bekamen in Toto 2,5 ± 0,2 kg uS
Trockenschnitzelexpandat täglich, welches einem Anteil von 38 ± 1,8 % MJ DE an der
Gesamtration entsprach.
Erstmalig wurden expandierte Trockenschnitzel in einem Belastungsversuch eingesetzt. Als
expandiert bezeichnet man Futtermittel, welche mittels Expander hydrothermisch behandelt
und als Granulat für die direkte Verfütterung produziert werden (LUCHT 1997).
Die Behandlung mittels Feuchtigkeit, Temperatur, Druck und elektromechanischer Energie
im Expander beeinflusst die nutritive und physikalische Charakteristik des Futters. Stärke
wird aufgeschlossen, die Vitamine und Aminosäuren bleiben jedoch stabil. Laut LUCHT
(1997) kommt es zu einer generellen Erhöhung der Verdaulichkeit, allerdings wurden in der
genannten Studie keine Untersuchungen beim Pferd durchgeführt.
Eine Studie von KÖNIG (1994) ergab, dass expandierte Futtermittel frei von pathogenen
Keimen, Staub und Schimmelpilzen sind. Von HINTZ (1992) wurden sie aufgrund dessen als
Rohfaserquelle für Pferde mit chronischen Atemwegsproblemen empfohlen.
BARSNICK (Dissertation in Vorbereitung) stellte, im Gegensatz zu LUCHT (1997) keinen
Unterschied in der Verdaulichkeit zwischen losen Trockenschnitzeln, melassiertem
Trockenschnitzelexpandat und pelletierten Trockenschnitzeln bei Pferden fest.
113
V. Diskussion
Trockenschnitzel sollten etwa eine Stunde vor der Verfütterung eingeweicht werden, um dem
Risiko von Schlundverstopfungen vorzubeugen (MEYER 1987). Dies stellt die
Praktikabilität der Trockenschnitzel in Frage. Zusätzlich besteht vor allem bei hohen
Außentemperaturen und längeren Einweichzeiten das Risiko einer Kontamination oder
Vergärung der Trockenschnitzel (MEYER und COENEN 2002).
Eine Verfütterung von Trockenschnitzeln ohne ein vorangegangenes Einweichen würde die
Praktikabilität steigern. HARRIS und RODIEK (1993) beobachteten keine Probleme bei der
Verfütterung von trockenen, losen Schnitzeln an Pferde in einer anteiligen Menge von 45 %
der Tagesration.
Um bei einer Fütterung von trockenen Schnitzeln eine Schlundverstopfung zu vermeiden,
muss das Quellvermögen der Trockenschnitzel auf ein Minimum reduziert werden.
Daher bieten sich zur Fütterung ohne vorheriges Einweichen lose Trockenschnitzel an. Diese
haben mit einer Quellungsrate von 2,91 ein ähnliches Quellvermögen wie ein handelsübliches
Kraftfutter (3,09-fach). Trockenschnitzelexpandat liegt mit einer 4,82-fachen Quellung etwa
65 % über den Werten der losen Schnitzel, die Trockenschnitzelpellets quellen um 112 %
mehr als die losen Trockenschnitzel auf das 6,12-fache ihres Gewichts.
Das Quellvermögen von Trockenschnitzeln unterschiedlicher Konfektionierungen ist in der
Abbildung 20 dargestellt.
Die empfohlene Trockenschnitzelhöchstmenge für Pferde liegt bei 2 kg uS pro Tag
(MEYER und COENEN 2002). In der vorliegenden Studie wurde diese Menge um etwa 25 %
überschritten. Es stellten sich weder Akzeptanzprobleme noch sonstige Auffälligkeiten dar.
In der Studie von BARSNICK (Dissertation in Vorbereitung) lag die Trockenschnitzelration
mit 3,3 kg uS pro Tag sogar um 65 % höher als die oben genannte Empfehlung, es konnten
ebenfalls keine Nachteile festgestellt werden. Die Akzeptanz der Trockenschnitzel, des
Trockenschnitzelexpandats und der Trockenschnitzelpellets in Kombination mit einer
Heufütterung wurde von BARSNICK (Dissertation in Vorbereitung) als sehr gut bewertet.
114
V. Diskussion
2,91 3,09
4,82
6,17
0
1
2
3
4
5
6
7
loseTrockenschnitzel
Kraftfutter Trockenschnitzel-expandat
Trockenschnitzel-pellets
Futtermittel
Que
llver
mög
en (u
m d
as X
-fach
e)
.
Abbildung 20: Quellvermögen von Trockenschnitzeln unterschiedlicher Konfektionierungen
im Vergleich mit einem handelsüblichen Kraftfutter (nach BARSNICK,
Dissertation in Vorbereitung)
Die in den Trockenschnitzeln enthaltenen Gerüstkohlenhydrate werden unter Freisetzung von
flüchtigen Fettsäuren als energiereiches Substrat im Dickdarm fermentiert (LINDBERG und
JACOBSSON 1992). Als energetisch effizienteste und somit quantitativ wichtigste
Endprodukte entstehen Acetat, Propionat und Butyrat sowie Methan und Kohlendioxid.
Im Unterschied dazu wird bei einer Getreidefütterung die enzymatisch im Dünndarm
abgebaute Stärke vor allem zu Glukose umgewandelt. Aus diesem Grund kommt es laut
LINDBERG und JACOBSSON (1992) bei einer Trockenschnitzelfütterung im Vergleich zu
einer stärkereichen Fütterung möglicherweise zu Fermentations- und somit zu
Energieverlusten.
In der Tabelle 44 sind ausgewählte energetische Wirkungsgrade von Nährstoffen für
Biosynthesen aufgelistet.
115
V. Diskussion
Tabelle 44: Prozentualer energetischer Wirkungsgrad von Nährstoffen für
Syntheseprodukte (nach JEROCH et al. 1999)
SYNTHESE
Energetischer
Wirkungsgrad
(in %)
Fettsynthese
Glukose → langkettige Fettsäuren
Acetat → langkettige Fettsäuren
Butyrat → langkettige Fettsäuren
Ethanol → langkettige Fettsäuren
Protein → Körperfett
Nahrungsfett → Körperfett
Kohlenhydrate → Körperfett
Acetat + Glycerin → Körperfett
73-86
63-76
69-79
63-77
65
70-95
74-86
65-76
Kohlenhydratsynthese
Laktat → Glukose
Propionat → Glukose
Glukoplastische Aminosäuren → Glukose
Glukose → Glykogen
Glukose → Laktose
78-86
75-82
59-74
97
96-98
Proteinsynthese Eiweiß → Eiweiß
Aminosäuren und Glukose
55-62
64-71
Ein Hinweis auf entstandene Wirkungsgradverluste könnte zunächst die
Körpergewichtsentwicklung der Versuchstiere sein.
Die Pferde in der vorliegenden Studie wurden über einen Zeitraum von etwa drei Monaten
beobachtet. Sie wurden entsprechend den Angaben für mittlere Arbeit am noch wachsenden
Pferd gefüttert.
Bei der täglich erfolgten Aufnahme von durchschnittlich 71 MJ DE ergibt sich für die
Testdauer von 76 Tagen eine mittlere Gesamtenergieaufnahme von 5396 MJ DE pro Pferd.
116
V. Diskussion
Allerdings wurden die Versuchstiere nur an 35 Tagen belastet (insgesamt 16
Dauerbelastungen, 16 Intervallbelastungen und drei Stufentests). Wenn man für die
verbliebenen 41 Ruhetage einen Erhaltungsenergiebedarf von etwa 55 MJ DE voraussetzt,
ergibt sich ein kalkulierter Bedarf von 4740 MJ DE für die gesamte Versuchsdauer. Dies
bedeutet eine Differenz von 656 MJ DE zwischen dem kalkulierten Bedarf der Tiere und der
aufgenommenen Energie innerhalb der elf Testwochen. Umgerechnet lag die tägliche
Energieversorgung der Pferde mit durchschnittlich 8,7 MJ DE oberhalb des kalkulierten
Bedarfs (siehe Abbildung 21).
0
1000
2000
3000
4000
5000
6000
Aufnahme Bedarf
Ene
rgie
(MJ
DE
)
Überschuss (14 %)
5396 MJ DE
4740 MJ DE
656 MJ DE
Abbildung 21: Mittlere Gesamtenergieaufnahme, mittlerer kalkulierter Gesamtenergiebedarf
und mittlerer kalkulierter Energieüberschuss der Pferde über den gesamten
Versuchszeitraum
Die vergleichbare Gewichtsentwicklung der beiden Versuchsgruppen in der vorliegenden
Studie weist darauf hin, dass entweder keine Fermentationsverluste aufgetreten sind, oder
dass sie sich in einer Größenordnung abspielen, die für den Energiestoffwechsel der Pferde
nicht relevant ist.
Die somit scheinbar geringen Fermentationsverluste lassen sich möglicherweise durch eine
relativ hohe praecaecale Verdaulichkeit der Nicht-Stärke-Polysacharide in den
Trockenschnitzeln erklären.
117
V. Diskussion
MOORE-COYLER et al. (1997) untersuchten die Verdaulichkeit von rohfaserhaltigen
Futtermitteln an drei caecumfistulierten Ponys. Die Autoren stellten fest, dass die enthaltenen
Nicht-Stärke-Polysacharide (NSP) nicht nur, wie allgemein angenommen, im Dickdarm
fermentiert werden, sondern auch zum Teil schon im Dünndarm verdaut werden. Dabei lagen
Trockenschnitzel mit 15 % praecaecaler Verdaulichkeit der Nicht-Stärke-Polysacharide
deutlich über den entsprechenden Daten von Heu (6,5 %) oder Sojabohnenschalen (8 %).
In diese Beobachtung lassen sich auch die Befunde von HYSLOP et al. (1997) einordnen. Sie
untersuchten die Verdaulichkeit unterschiedlicher Futtermittel nach dem Einbringen in den
Dickdarm von vier caecumfistulierten Ponys. Zwölf Stunden nach der Inkubation waren etwa
80 % der aufgenommenen Trockenschnitzelmenge verdaut. Im Gegensatz dazu lagen die
Verdaulichkeiten von Heu und Sojabohnenschalen im Dickdarm mit jeweils etwa 50 % der
ursprünglichen Masse deutlich darunter.
In einer Studie von WARREN et al. (1999) wurden bei Pferden nach einer zehntägigen
Fütterung mit Trockenschnitzeln vergleichsweise höhere Körpergewichte beobachtet, als in
der rohfaserarm gefütterten Kontrollgruppe. Allerdings stellten sich in bezug auf das
Körpergewicht nach einer Entwässerung mit Furosemid keine Unterschiede zwischen den
Gruppen dar. Die Autoren zeigen auf, dass diese Veränderungen allein auf die erhöhte
Wasseraufnahme nach der rohfaserreichen Fütterung zurückzuführen sind, da diese der
Reduktion des Körpergewichts durch die Furosemid-Gabe entsprach.
In der eigenen Studie wurden weder die Verdaulichkeit der Diäten, noch die tägliche
Wasseraufnahme protokolliert. Inwieweit die Körpergewichtsentwicklung der Pferde bei einer
Trockenschnitzelfütterung durch die veränderte Wasseraufnahme beeinflusst wurde und somit
möglicherweise energetische Fermentationsverluste kompensiert worden sind, kann nicht im
Detail geklärt werden. Allerdings weisen die metabolischen Reaktionen auf die
unterschiedlichen Belastungsformen während der Trainingsphasen keine nachteiligen Effekte
der Trockenschnitzelfütterung auf.
118
V. Diskussion
In der vorliegenden Studie lagen die Plasmaglukosewerte beider Gruppen drei Stunden nach
der Fütterung bei < 5 mmol/l (Kraftfutterregime: 4,8 mmol/l, Trockenschnitzelregime: 4,6
mmol/l). Auch die Insulinkonzentrationen lagen mit 4,2 µU/ml (Kraftfutterregime) und 5,0
µU/ml (Trockenschnitzelregime) gleich auf.
Ähnliche Ergebnisse wurden von CRANDELL et al. (1999) erzielt. Die Autoren berichten
von einem Anstieg der Plasmaglukosewerte von etwa 5 mmol/l vor der Fütterung auf 5,75
mmol/l drei Stunden nach der Aufnahme sowohl der stärkereichen Kraftfutter-Kontrolldiät,
als auch der Versuchsdiät, bei der 15 % des Kraftfutters isoenergetisch durch
Trockenschnitzel ausgetauscht worden waren.
Auch die Insulinkonzentrationen lagen mit 60 µU/ml drei Stunden nach der Fütterung in
beiden Gruppen gleich auf und sanken nach Beginn der Belastung auf unter 50 µU/ml ab.
Bestätigt werden diese Ergebnisse auch von KARLSSON et al. (2002), die drei Stunden nach
Fütterung keine Unterschiede der Glukose- und Insulinreaktionen zwischen den
Versuchsgruppen feststellen konnten.
Im Gegensatz dazu beschreiben LINDBERG und KARLSSON (2001) deutlich niedrigere
Plasmaglukose- und Insulinwerte zwei Stunden nach einer Fütterung von Trockenschnitzeln
im Vergleich zu einer stärkereichen Haferfütterung. Hierbei wurden etwa 60 % des Hafers
isoenergetisch durch Trockenschnitzel ersetzt. Die Glukosekonzentration im Plasma der
Kontrollgruppe stieg von 5,5 mmol/l auf 7,5 mmol/l, die Trockenschnitzelgruppe konnte nach
zwei Stunden nur einen Anstieg auf 6,8 mmol/l aufweisen. Vier Stunden nach der Fütterung
lagen die Werte beider Gruppen mit 6,2 mmol/l (Kontrollgruppe) und 6,3 mmol/l
(Trockenschnitzelgruppe) gleich auf. Ein ähnliches Bild stellte sich bei den Insulinwerten dar.
Zwei Stunden nach der Fütterung lagen die Insulinkonzentrationen im Plasma der
Kontrollgruppe mit 51 µU/ml deutlich über denen der Trockenschnitzelgruppe (22 µU/ml),
weitere zwei Stunden später lagen die Werte beider Gruppen mit 25 ± 7 µU/ml gleich auf.
Es ist allerdings zu bedenken, dass möglicherweise die Art der Stärkezufuhr einen Einfluss
auf die Glukose- und Insulinantwort besitzt. Im Vergleich zur vorliegenden Studie, in der ein
119
V. Diskussion
pelletiertes Mischfutter als Kontrollfutter diente, wurden die Pferde in der Untersuchung von
LINDBERG und KARLSSON (2001) mit Hafer gefüttert, so dass die Unterschiede weniger
auf die Trockenschnitzel, als auf die Stärkequelle zurückzuführen sind.
Auch die freien Fettsäuren wiesen in der vorliegenden Studie keine Unterschiede bei dem
Vergleich der unterschiedlichen Fütterungen auf. Die Ruhewerte der Pferde beider Gruppen
lagen bei etwa 100 µmol/l. Dies entspricht den Angaben in der Literatur. LUCKE und HALL
(1980 a und b), ORME et al. (1994) und HYYPPÄ et al. (1997) geben Werte zwischen 20 und
500 µmol/l unter Ruhebedingungen an.
Unter Belastungsbedingungen waren in der vorliegenden Studie ebenfalls die Parameter
Glukose, Insulin und freie Fettsäuren als Indikatoren des Energiestoffwechsels von Interesse.
Generell stiegen die Plasmaglukosekonzentrationen bei allen drei Belastungen an. Der
Anstieg war bei den schnellen Stufentests und Intervallbelastungen mit Werten um das
doppelte des Ruhewertes deutlich, die Dauerbelastungen führten nur zu einem moderaten
Anstieg der Glukosekonzentrationen.
Die Plasmainsulinkonzentration sank während der überwiegend anaeroben Belastungsform
der Stufentests und Intervallbelastungen, während der Dauerbelastung als aerober Form des
Trainings blieben die Insulinwerte konstant.
Ähnliche Beobachtungen wurden auch von CRANDELL et al. (1999) und KARLSSON et al.
(2002) beschrieben.
Die Werte der freien Fettsäuren erhöhten sich in Abhängigkeit der Belastungsart. Bei
Stufentest und Intervallbelastung stiegen sie auf etwa 150-250 µmol/l, die Dauerbelastungen
erbrachten Konzentrationen von über 640 µmol/l im Plasma.
Unter Belastungsbedingungen kommt es zu einem Anstieg der FFS-Konzentrationen.
CHROBOK (2000) ermittelte freie Fettsäuren-Werte von bis zu 345 µmol/l nach einem
Stufenbelastungstest. Bei Distanzritten mit einer Länge von bis zu 100 km kann die
120
V. Diskussion
Konzentration der freien Fettsäuren auf Werte über 2000 µmol/l ansteigen (HALL et al. 1982;
SLOET VAN OLDRUITENBORGH-OOSTERBAAN et al. 1991).
Insgesamt können weder in der Glukose- und Insulinreaktion, noch bei den freien Fettsäuren
Unterschiede zwischen der Fütterung mit Trockenschnitzelexpandat und Kraftfutter
festgestellt werden. Möglicherweise werden kurzfristige Effekte aber auch dadurch kaschiert,
dass die Belastung erst drei Stunden nach der Fütterung durchgeführt wurde. Mittelfristig
wäre zu bedenken, dass der im Trockenschnitzelregime gefütterte Kraftfutteranteil eventuell
ausreicht, um die oben genannten metabolischen Reaktionen auszulösen. Darüber hinaus ist
langfristig eine Beeinflussung der Ergebnisse durch die relativ hohe Gesamtenergieaufnahme
der Pferde, die für die geforderten Belastungen großzügig bemessen war, nicht
auszuschließen. Bei einer restriktiven Gesamtenergieaufnahme, die die Pferde an den Rand
einer negativen Energiebilanz gebracht hätte, wären möglicherweise fütterungsbedingte
Effekte deutlich geworden.
Neben den oben genannten metabolischen Reaktionen wurde auch die Leistungsfähigkeit der
Pferde in der vorliegenden Untersuchung berücksichtigt.
Generell kam es bei den schnelleren Belastungen (Stufentests und Galoppphasen der
Intervallbelastung) zu deutlicheren Erhöhungen der Herzfrequenz und der Laktatwerte, als
während der drei Dauerbelastungen.
Die beiden Parameter zeigten sich ebenfalls ohne Unterschiede zwischen den
Versuchsgruppen. Dies gilt sowohl für die Trainingsbelastungen, als auch für die drei zur
Leistungskontrolle durchgeführten Stufentests.
Auch die Untersuchungen von CRANDELL et al. (1999) ergaben für die Kontroll- und
Trockenschnitzelgruppe vergleichbare Herzfrequenz- und Laktatwerte, und somit keine
Unterschiede in den leistungsbedingten Reaktionen.
KARLSSON et al. (2002) verwendeten in ihrer Studie die Parameter Laktat und
Muskelglykogengehalt zur Leistungsüberprüfung während der Belastungstests. Die Pferde
121
V. Diskussion
starteten mit Laktatkonzentrationen von < 1,0 mmol/l im Vollblut. Diese stiegen im Laufe des
Tests an. Dabei zeigte sich in der Hafergruppe ein mit etwa 8 mmol/l signifikant höherer
Laktatpeak während der Belastung als in der Gruppe der mit Trockenschnitzeln gefütterten
Pferde (6,5 mmol/l).
Auch die Muskelglykogengehalte differierten zwischen den Gruppen. Die Pferde beider
Gruppen wiesen vor der Belastung einen Muskelglykogengehalt von über 546 mmol/kg
Trockenmasse auf. Die Werte der Hafergruppe sanken während der Belastung auf 394
mmol/kg Trockenmasse und lagen somit deutlich unter den Werten der
Trockenschnitzelgruppe (484 mmol/kg Trockenmasse).
Diese Effekte können laut KARLSSON et al. (2002) zwei unterschiedliche Ursachen haben:
Erstens kommt es durch die Dickdarmfermentation der Trockenschnitzel zu einer vermehrten
Produktion von kurzkettigen Fettsäuren, die dann, zum großen Teil ohne eine vorherige
Metabolisierung in der Leber, direkt in Acetyl-CoA umgewandelt und in die Atmungskette
eingeschleust werden könnten. Sie wären demnach eine zusätzliche aerobe Energiequelle.
Zweitens wäre es möglich, dass die erhöhte tägliche Aufnahme von Zucker (350 g/Tag mehr
in der Trockenschnitzelgruppe) zu den oben genannten Effekten geführt hat. JANSSON et al.
(2002) bei denen es nach der Gabe von Zucker zur Einsparung von Glykogen kam, stützen
diese These.
Im Gegensatz dazu konnte in Studien von GEOR et al. (2000) sowie JOSE-CUNILLERAS et
al. (2002) zwar eine Erhöhung der Blutglukose nach der Aufnahme von zuckerhaltigen Diäten
festgestellt werden, eine Veränderung des Muskelglykogengehaltes blieb jedoch aus.
In der vorliegenden Studie wurden, wie bei KARLSSON et al. (2002), melassierte
Trockenschnitzel verfüttert. Sie wiesen mit 18 % Zuckergehalt einen mittleren
Melassierungsgrad auf. In Form von Melasse sind täglich 400 g Zucker in die Ration gelangt,
die wie Stärke praecaecal verdaut werden. Aus diesem Grund scheint eine Beeinflussung der
Glykogenspeicher durch Zucker im Vergleich zur stärkereichen Kontrollfütterung
unwahrscheinlich. In der eigenen Untersuchung konnten im Gegensatz zu der oben genannten
Studie keine Leistungsunterschiede zwischen den Gruppen festgestellt werden. Auf eine
122
V. Diskussion
Messung des Glykogengehaltes in der Muskulatur wurde verzichtet. Eine alleinige
Veränderung dieses Parameters ist zwar aufgrund der straffen Einbindung in den
Energiestoffwechsel unwahrscheinlich, sollte aber in weiteren Untersuchungen geklärt
werden.
Die Ergebnisse der eigenen Studie, die aus energetischer Sicht keine nachteiligen Effekte der
Trockenschnitzelfütterung im Vergleich zu einer Kraftfuttergabe aufweisen, werden auch von
BICHMANN (Dissertation in Vorbereitung) bestätigt. Sie fütterte fünf Pferden in Toto 2,5 ±
0,2 kg uS Trockenschnitzelexpandat täglich. Dies entsprach einem Anteil von 65 % MJ DE an
der Kraftfutterration, also exakt dem Fütterungsregime der Trockenschnitzelgruppe in der
vorliegenden Studie. Die Pferde absolvierten eine Distanz von 30 km auf dem Laufband. Es
konnten ebenfalls keine nachteiligen Effekte einer Fütterung mit melassiertem
Trockenschnitzelexpandat auf die Parameter Glukose, Insulin, freie Fettsäuren, Herzfrequenz
und Laktat festgestellt werden.
Neben den metabolischen Reaktionen und den Effekten auf den Energiestoffwechsel stellt
sich im Folgenden die Frage nach den weiteren Vor- und Nachteilen einer
Trockenschnitzelfütterung.
Aufgrund des hohen Rohfasergehaltes und der damit guten Wasserbindungskapazität hat die
Fütterung von expandierten Trockenschnitzeln möglicherweise einen positiven Einfluss auf
den Wasserhaushalt.
Laut MEYER und COENEN (1989) und MEYER (1996) enthält der Dickdarm eines Pferdes
zwischen 35 und 80 Litern Wasser und 10-20 % der körpereigenen Natrium-, Kalium- und
Chloridvorräte. Damit ist er ein wichtiges Wasser- und Elektrolytreservoir und kann
belastungsbedingte Schweißverluste ausgleichen (MEYER 1987; COENEN 1992; WARREN
et al. 1999). Die Speicherkapazität des Pferdedarms ist abhängig von der Art der Fütterung. Je
mehr rohfaserreiche Nahrung aufgenommen wird, desto größer ist die Akkumulation von
Wasser und Elektrolyten im Darm (COENEN und MEYER 1987; MEYER 1995).
Die Abbildungen 22 und 23 machen diesen Zusammenhang deutlich.
123
V. Diskussion
10
12
14
16
18
20
22
12 13 14 15 16 17 18 19 20
TS
im M
agen
-Dar
m-T
rakt
(g/k
g K
M)
.
TS-Aufnahme (g/kg KM)
TS-Aufnahme in der vorliegenden Studie (18,6 g/kg KM)
Abbildung 22: Zusammenhang zwischen der TS-Aufnahme und der Füllung des Magen-
Darm-Traktes (nach MEYER 1996)
80
100
120
140
160
180
200
1 1,5 2 2,5 3 3,5 4 4,5 5 5,5 6 6,5 7
Was
ser
im M
agen
-Dar
m-T
rakt
(g/k
g K
M)
Rfa-Aufnahme (g/kg KM)
Rfa-Aufnahme in der vorliegenden Studie (4,1 g/kg KM)
Abbildung 23: Zusammenhang zwischen der Rohfaseraufnahme und dem Wasserbestand im
Verdauungstrakt (nach MEYER 1996)
124
V. Diskussion
Eine rohfaserreiche Fütterung führt also zu einer Verbesserung des Wasser- und
Elektrolythaushalts und kann so gegebenenfalls die Thermoregulation während einer
Belastung positiv beeinflussen.
Laut SOSA LEÓN et al. (1995) beginnt die Wasseraufnahme aus dem Darm etwa 30 Minuten
nach der Fütterung und erreicht ihren Höhepunkt nach zwei Stunden. Dies und die Tatsache,
dass Pferde insbesondere während der kurzen Wettkampfpausen bei Ausdauerbelastungen
nicht in ausreichendem Maß Wasser zur Repletion der Flüssigkeitsdefizite aufnehmen
(COENEN 1991), spricht für den Einsatz von rohfaserreichen Futtermitteln vor einer solchen
Belastung.
Aus diesem Grund empfehlen RICE et al. (2001) und PAGAN (2002) langfristig eine
rohfaserreiche Diät; kurz vor einer Belastung sollten jedoch nur kleine Mengen an
wasserbindenden Futtermitteln gegeben werden, um eine vermehrte Last durch das
zusätzliche Gewicht auszuschließen.
Nach der Fütterung von 1 kg Heu (uS) werden bei einem TS-Gehalt von 88 % und einer
mittleren Verdaulichkeit von 60 % etwa 350 g TS unverdaut ausgeschieden. Dieser
unverdaute Anteil liegt bei Trockenschnitzeln mit gleichem TS-Gehalt, aber einer höheren
mittleren Verdaulichkeit (> 80 %) nur bei etwa 180 g TS. Wenn man einen TS-Gehalt im Kot
von ~ 18 % bei Heu und ~ 21 % bei Trockenschnitzeln zu Grunde legt (BARSNICK,
Dissertation in Vorbereitung), so werden nach der Fütterung von 1 kg Heu etwa 2 kg Wasser
über den Kot ausgeschieden, die gleiche Menge Trockenschnitzel führt zu einer
Ausscheidung von nur 0,9 kg Wasser.
Bei vergleichbaren positiven Effekten auf den Wasserhaushalt liegt der Vorteil einer
Trockenschnitzelfütterung darin, dass im Vergleich zu einer Fütterung mit Heu keine erhöhte
faecale Wasserausscheidung stattfindet.
In der vorliegenden Studie wurden keine fütterungsbedingten Unterschiede in den Parametern
des Wasserhaushaltes gefunden. Dabei interessierten zunächst die Schweißverluste.
125
V. Diskussion
Besonderes Augenmerk wurde auf die Dauerbelastung als Ausdauerbelastung und auf die
Stufentests gerichtet, da sie die höchsten Schweißverluste forderten.
Neben den moderaten Schweißverlusten von 6,4 kg während der Dauerbelastung, und somit
etwa 1,5 % des Körpergewichts, wurden auch nur geringe Veränderungen im Gesamteiweiß
beobachtet (∆ 1,8 %). Während der drei Stufentests verloren die Pferde im Mittel 8,3 kg
Schweiß, also auch hier weniger als 2 % des Körpergewichts. Die
Gesamteiweißkonzentrationen lagen am Ende der Stufentests um 7,2 % höher als zu Beginn
der Belastung.
Um die Effekte der Fütterung auf den Wasserhaushalt aussagekräftig beurteilen zu können,
wären Schweißverluste von über 3 % von Vorteil gewesen (HOLLMANN und HETTINGER
1990). Für diese Größenordnung reichten Länge und Intensität der Dauerbelastung nicht aus,
die entsprechenden Effekte können daher nicht ausreichend bewertet werden.
Schätzt man nach BOYD (1981) vom Gesamteiweiß (TPP) ausgehend die
Plasmavolumenverluste (∆ PV) mit der Formel ∆ PV % = [1 – (TPPStart / TPPEnde) • 100], so
wurden während der Dauerbelastung Plasmavolumenverluste von etwa 1,8 % erreicht, die
Stufentests führten im Schnitt zu Verlusten von 9,9 % des Plasmavolumens. Dabei stellten
sich keine Unterschiede zwischen den Plasmavolumina der Pferde des Trockenschnitzel- und
des Kraftfutterregimes dar (siehe Abbildung 24).
126
V. Diskussion
-11,6
-9,6-8,2
-9,8
-11,7
-8,4
-14
-12
-10
-8
-6
-4
-2
0ST1 ST2 ST3
Plas
mav
olum
enve
rlus
te in
%
Gr. AGr. B
Ko Ko KF TSE TSE KF
Abbildung 24: Plasmavolumenverluste (in %) der Pferde der Gruppen A und B während der
drei Stufentests
Auch DANIELSEN et al. (1995) beschäftigten sich mit den Zusammenhängen zwischen
rohfaserreicher Fütterung und erhöhter Wasseraufnahme. Sie fütterten Pferden über einen
Zeitraum von sieben Tagen Heu. Gruppe 1 hatte ad libitum Zugang, Gruppe 2 wurde
restriktiv gefüttert und erhielt die letzte Heumahlzeit am Abend vor der Belastung. Die erste
Belastung fand am ersten Tag der Fütterungsperiode statt und forderte Schweißverluste von
2,8 %, die zweite Belastung wurde nach einer einwöchigen Gewöhnung an das
Fütterungsregime durchgeführt und hatte Schweißverluste von 4 % zur Folge.
Generell stellten die Autoren eine erhöhte Wasseraufnahme in Gruppe 1 fest, die sich auch in
höheren postprandialen Körpergewichten wiederspiegelte. Die Körpergewichtsverluste
während der Belastung stellten sich jedoch ohne Unterschied zwischen den Gruppen dar.
Auch lagen die gemessenen Herzfrequenzen beider Gruppen während der Belastung gleich
auf.
Die Gesamteiweißkonzentrationen im Plasma der Pferde blieben zu Beginn des Versuchs
sowohl innerhalb der Belastung als auch im Vergleich der Gruppen konstant. Im Gegensatz
dazu beobachteten die Autoren während der Belastung nach der siebentägigen Adaptation
deutlich geringere Plasmaeiweißkonzentrationen in der Gruppe der ad libitum gefütterten
127
V. Diskussion
Tiere. Sie schließen daraus, dass in dieser Gruppe eine nicht unerhebliche Menge des
zusätzlich aufgenommenen Wassers aus dem Darm in den Blutkreislauf resorbiert worden ist.
Dies kann laut DANIELSEN et al. (1995) zu einer Verbesserung des Wasserhaushalts
während einer Belastung führen.
Zu ähnlichen Ergebnissen kamen WARREN et al. (1999). Sie stellten eine positive
Korrelation zwischen rohfaserreicher Fütterung und Wasseraufnahme respektive
Körpergewichtszunahme fest. Ebenfalls stellten sich in bezug auf das Körpergewicht nach
einer Entwässerung mit Furosemid keine Unterschiede zwischen den Gruppen dar. Die
Plasmavolumina beider Gruppen lagen gleich auf, die Plasmaeiweißkonzentrationen der
rohfaserreich gefütterten Gruppe waren jedoch im Vergleich zur Kontrollgruppe um 25 %
erniedrigt.
Auch CUDDEFORD et al. (1992) stellen nicht in Frage, dass rohfaserreiche Diäten den
Wassergehalt im Darm des Pferdes erhöhen können. Allerdings kommen sie im Gegensatz zu
den oben zitierten Autoren zu dem Schluss, dass die hydrophilen Polysacharide mit ihrer
hohen Wasserbindungskapazität möglicherweise eine so feste Bindung des Wassers
verursachen, dass die oben genannten positiven Effekte nur in reduziertem Umfang auftreten
können.
Möglicherweise ist dieser Effekt bei Trockenschnitzeln stärker ausgeprägt, als bei einer
Heufütterung. Dies könnte auch erklären, weshalb sich in der vorliegenden Studie, neben den
moderaten Plasmavolumenverlusten per se, keine Unterschiede im Gesamteiweißgehalt
dargestellt haben.
Bei Schweißverlusten von über 3 % und somit deutlichen Effekten auf den Wasserhaushalt
wäre eine verbesserte Plasmavolumenauffüllung und die eventuell daraus resultierende
reflektorische Erniedrigung der Herzfrequenz durch eine verbesserte Perfusion als
möglicher Vorteil der Trockenschnitzelfütterung denkbar.
128
V. Diskussion
SCHNERMANN (2000) supplementierte Pferden nach einer Belastung mit Schweißverlusten
von etwa 15 kg in einer zweistündigen Erholungsphase rund 15 l Wasser mit und ohne
Elektrolytzusatz. Bei der nachfolgenden 30-minütigen Belastung kam es bei den
supplementierten Tieren im Vergleich zur Kontrollgruppe zu niedrigeren Herzfrequenzen,
allerdings konnte dies statistisch nicht bestätigt werden.
NYMAN et al. (1998) beobachteten nur zu Beginn einer Belastung Unterschiede in der
Herzfrequenz zwischen den Versuchsgruppen. Die Herzfrequenz der 30 Minuten vor der
Belastung mit zwölf Liter Flüssigkeit supplementierten Tiere lag beim Start über denen der
normohydrierten und der über zwölf Stunden dehydrierten Tiere. Im weiteren Verlauf der
Belastung stellten sich jedoch keine Unterschiede dar, so dass die beschriebene kurzfristige
Veränderung als Reaktion auf das um zwölf Kilogramm erhöhte Körpergewicht
zurückzuführen ist.
SOSA LEÓN et al. (1996) berichten sogar von einer deutlichen Erhöhung der Herzfrequenz
der mit 6 % ihres Körpergewichtes flüssigkeitssupplementierten Pferde im Vergleich zur
Kontrollgruppe. Diese bestand über den kompletten Zeitraum der moderaten Belastung und
ist ebenfalls der Beeinflussung durch den zusätzlichen Ballast von etwa 26 kg anzurechnen.
Wie bereits erwähnt, konnten in der vorliegenden Studie keine Unterschiede in der
Herzfrequenz und somit im Leistungspotential zwischen Gruppe A und Gruppe B festgestellt
werden.
Des Weiteren ist durch die Veränderung der Perfusion ein Einfluss auf den Abtransport der
Wärme aus der Peripherie, und somit auf die Thermoregulation denkbar.
Dies wird allerdings in der Literatur nicht bestätigt. Sowohl SOSA LEÓN et al (1996), als
auch SCHNERMANN (2000) fanden keine Unterschiede der Körperinnentemperatur
zwischen den jeweiligen Kontrollgruppen und den mit Wasser supplementierten Pferden.
In der vorliegenden Arbeit stieg die Körperinnentemperatur der Pferde während der Belastung
generell an. Dabei führten die Stufentests zu deutlicheren Erhöhungen der
129
V. Diskussion
Körperinnentemperaturen als die Dauer- und Intervallbelastungen. Allerdings konnten keine
fütterungsbedingten Differenzen nachgewiesen werden, so dass der Effekt der
Trockenschnitzelgabe auf die Thermoregulation nicht eindeutig zu klären ist.
Bei den Elektrolyten (Natrium, Kalium und Chlorid) wurden in der eigenen Studie die
typischen belastungsbedingten Veränderungen festgestellt. Es konnten keine Unterschiede
zwischen den Fütterungsregimes beobachtet werden.
Ähnlich wie beim Wasser dient der Dickdarm auch als Elektrolytreservoir (MEYER und
COENEN 2002), so dass neben möglichen wasserbindenden Effekten der Trockenschnitzel
auch ein Einfluss auf die Elektrolytspeicherung und Resorption aus dem Darm während der
Belastung denkbar ist.
Wie bereits erwähnt, scheint allerdings die gewählte Belastungsform als zu moderat, so dass
Effekte auf die Elektrolythomöostase nicht sichtbar werden.
Ein weiterer Aspekt der Trockenschnitzelfütterung stellt die verbesserte Stickstofffixierung
durch die Bakterien im Dickdarm dar (LINDBERG und JACOBSSON 1992). Im Unterschied
zu einer stärkereichen Fütterung mit vorwiegend praecaecaler Verdaulichkeit sind bei einer
Trockenschnitzelfütterung deutliche Effekte der verbesserten Stickstoffbindung möglich, im
Vergleich zu einer Heufütterung mit einem vergleichbaren Rohfaseranteil ist jedoch kein
Unterschied zu erwarten.
Die resultierende Entlastung von Leber und Niere würde zu einer Energieeinsparung führen
und somit die Leistung gegebenenfalls positiv beeinflussen.
Dieser Punkt wird in der Literatur allerdings konträr diskutiert. LINDBERG und KARLSSON
(2001) beobachteten im Gegenteil eine vermehrte Stickstoffausscheidung über den Harn nach
einer Trockenschnitzelfütterung, so dass die Stickstoff-Fixierung als nicht sicher anzusehen
ist.
Entsprechende Parameter der Leber- oder Nierenfunktion wurden in der vorliegenden Studie
nicht berücksichtigt. Für nachfolgende Studien sollten diese jedoch von Interesse sein, um
130
V. Diskussion
insbesondere den Effekt der Stickstoff-Fixierung durch Trockenschnitzel weiter klären zu
können.
3. Abschließende Betrachtung
Die vorliegende Studie hatte zum Ziel, die metabolischen Reaktionen und die
Leistungsfähigkeit bei Sportpferden nach einer Fütterung mit Trockenschnitzeln respektive
Kraftfutter zu untersuchen.
Sowohl die vorliegenden Daten aus der Literatur, als auch die Ergebnisse der eigenen Studie
legen den Schluss nahe, dass eine Fütterung mit Trockenschnitzeln keine nachteiligen Effekte
auf die Energiebereitstellung beim Pferd während einer Belastung hat, so dass die postulierten
„Energieverluste“ der Trockenschnitzel durch die Fermentation im Dickdarm
vernachlässigbar sind.
Nicht zu vergessen ist, dass die teilweise exzessive, stärkereiche Fütterung von Hafer oder
anderen Getreidesorten in der Sportpferdefütterung im Verdacht steht, ein prädisponierender
Faktor für gastrointestinale (wie zum Beispiel Kolik und Magenulzera) und muskuläre
Erkrankungen wie das Tying-up-Syndrom zu sein. Dieses gesundheitliche Risiko würde
durch eine Trockenschnitzelfütterung minimiert werden.
Perspektiven der Trockenschnitzelfütterung ergeben sich aus möglichen Effekten auf den
Wasserhaushalt, die allerdings in dieser Studie nicht belegt werden konnten, da die
Belastungsintensität mit Schweißverlusten um 1,5 % des Körpergewichtes als zu moderat
einzustufen ist.
Weitere Ansätze ergeben sich auch durch eine möglicherweise verbesserte Stickstofffixierung
durch die Bakterien im Dickdarm, die daraus resultierende Entlastung von Leber und Niere
und die dadurch entstehenden Vorteile für den Energiehaushalt und gegebenenfalls für die
Regenerationsphase nach extensiven Belastungen.
131
V. Diskussion
132
Weitere Studien sollten sich schwerpunktmäßig auf die Veränderungen der Wasser- und
Elektrolythomöostase sowie auf die möglicherweise verbesserte Stickstofffixierung im Darm
fokussieren.
Im Vergleich zu der vorliegenden Studie wäre eine intensivere Ausdauerbelastung oder eine
medikamentell ausgelöste Dehydrierung mit Schweißverlusten von mindestens 3 %
wünschenswert, um entsprechend deutliche Veränderungen auf den Wasser- und
Elektrolythaushalt zu provozieren und somit mögliche Behandlungseffekte sicher detektieren
zu können.
VI. Zusammenfassung
VI. Zusammenfassung
Kurz- und langfristige Effekte der Fütterung von Trockenschnitzelexpandat auf die
metabolischen Reaktionen und die Leistungsfähigkeit beim arbeitenden Pferd
Judith Möhrer
In dieser Studie sollte der Einsatz von melassiertem Trockenschnitzelexpandat als Futtermittel
im isoenergetischen Austausch zu einem kommerziellen Mischfutter bei Sportpferden
untersucht werden. Ziel der vorliegenden Arbeit war es, die metabolischen Reaktionen und
die Leistungsfähigkeit beim arbeitenden Pferd vergleichend zu überprüfen.
Sechs Traber wurden nach einem standardisierten Protokoll auf dem Laufband belastet. Das
Training setzte sich aus zwei im Kreuzdesign angeordneten Trainingsperioden zusammen.
Gruppe A (n = 3) begann mit der Kraftfutter-, Gruppe B (n = 3) mit der
Trockenschnitzelration. In der Trockenschnitzelgruppe wurde 65 % der verdaulichen Energie
(MJ DE), die aus dem Kraftfutter stammt, durch Trockenschnitzelexpandat ersetzt. Nach der
ersten Trainingsperiode wechselten die Pferde auf das jeweils andere Fütterungsregime. Eine
Trainingsperiode bestand aus jeweils acht Dauer- und Intervallbelastungen, die von den
Pferden jeden zweiten Tag im Wechsel absolviert werden mussten. Zu Beginn und am Ende
jeder Trainingsperiode wurde ein Stufentest zur Erfassung des Leistungspotenzials
durchgeführt.
Die während der Stufentests und Trainingsbelastungen ermittelten Parameter waren
Körpergewicht, Körperinnentemperatur, Schweißverlust, Herzfrequenz, Gesamteiweiß,
Insulin, Glukose, Laktat, freie Fettsäuren, Natrium, Kalium und Chlorid.
Das mittlere Körpergewicht der Pferde betrug zu Versuchsbeginn 406 ± 41 kg und nach der
etwa elfwöchigen Gesamttrainingszeit 421 ± 56 kg (Behandlung n.s).
133
VI. Zusammenfassung
Die Körperinnentemperatur der sechs Versuchstiere lag in Ruhe bei durchschnittlich 37,6 ±
0,2 °C. Sie stieg belastungsbedingt auf bis zu 41,4 ± 0,3 °C an (p < 0,05; Behandlung n.s.).
Die Schweißverluste der Pferde im Verlauf der Stufentests lagen bei 1,8 % des
Körpergewichts, die Trainingsbelastungen führten zu Schweißverlusten von 0,9 %
(Intervallbelastung) und 1,5 % (Dauerbelastung) des Körpergewichts (Behandlung n.s.).
Während der drei Stufentests stieg die Herzfrequenz der Traber von 117 ± 9 Schlägen pro
Minute auf 204 ± 5 Schläge pro Minute an. Der Anstieg der Herzfrequenz während der
Dauerbelastungen gestaltete sich moderater, die Pferde erreichten hier Werte von 136 ± 8
Schlägen pro Minute. Bei den Intervallbelastungen stieg die Herzfrequenz in den
Galoppphasen auf maximal 208 Schläge pro Minute an und fiel in den Schrittphasen auf unter
100 Schläge pro Minute ab. Behandlungsbedingte Effekte konnten nicht nachgewiesen
werden.
Insgesamt konnte während der Stufentests ein Anstieg der Gesamteiweißkonzentration im
Plasma um 7,2 % festgestellt werden Die Dauerbelastungen führten bei beiden Gruppen nur
zu moderaten Veränderungen des Gesamteiweißgehaltes im Plasma. Die Konzentration des
Gesamteiweißes stieg während der Galoppphasen der Intervallbelastung an und fiel in den
Schrittphasen wieder ab (p < 0,05; Behandlung n.s.).
Die Insulinkonzentrationen im Plasma sanken während der Stufentests und
Intervallbelastungen ab (p < 0,05), wohingegen sie während der Dauerbelastung konstant
blieben (n.s.). Fütterungsbedingte Unterschiede wurden nicht festgestellt.
Generell stiegen die Glukosekonzentrationen bei allen drei Belastungsformen an (p < 0,05).
Der Anstieg war bei den Stufentests und Intervallbelastungen mit Werten um das Doppelte
des Ruhewertes deutlich, die Dauerbelastung führte nur zu einem moderaten Anstieg der
Glukosewerte. Behandlungsbedingte Effekte wurden nicht mit p < 0,05 abgesichert.
134
VI. Zusammenfassung
135
Die Laktatwerte stiegen im Allgemeinen während der Belastung an (p < 0,05). Dabei kam es
bei den Stufentests und den Galoppphasen der Intervallbelastung zu deutlicheren Erhöhungen
der Werte, als während der drei Dauerbelastungen. Unterschiede zwischen den Diäten
konnten nicht verifiziert werden.
Die Werte der freien Fettsäuren erhöhten sich in Abhängigkeit der Belastungsart. Bei
Stufentest und Intervallbelastung stiegen sie von Ruhewerten um 100 µmol/l auf etwa 150-
250 µmol/l, die Dauerbelastungen erbrachte Konzentrationen von über 640 µmol/l im Plasma
(p < 0,05; Behandlung n.s.).
Die Natrium- und Kaliumkonzentrationen im Vollblut stiegen im Verlauf der Stufentests an,
wohingegen sie sich bei den drei Dauerbelastungen konstant darstellten. Die in den
Galoppphasen der Intervallbelastungen angestiegenen Werte fielen während der Schrittphasen
wieder auf das Ursprungsniveau ab. Die Chloridkonzentrationen im Plasma sanken sowohl
bei den Trainingsbelastungen, als auch bei den Stufentests belastungsbedingt ab.
Behandlungsbedingte Unterschiede lagen nicht vor.
Die Verfütterung von Trockenschnitzelexpandat an noch wachsende, arbeitende Pferde wies
keine nachteiligen Effekte auf den Energiestoffwechsel auf, allerdings konnten auch die
spekulierten positiven Auswirkungen auf den Wasserhaushalt nicht deutlich abgesichert
werden.
VII. Summary
VII. Summary
Short- and long-term effects of molassed sugar beet pulp on metabolic parameters and
performance in exercising horses.
Judith Möhrer
This study investigated the effect of partial replacement of a pelleted concentrate with
molassed sugar beet pulp on metabolic parameters and performance in exercising horses.
Six Standardbred horses entered the study in a balanced 3 x 3 crossover design. The horses in
group A (n = 3) were fed a pelleted concentrate during the first experimental period, and the
horses in group B (n = 3) received an isoenergetic meal designed to replace 65 % of the
concentrate´s digestible energy (MJ DE) with molassed sugar beet pulp. In the second
experimental period, feeding regimes were crossed over. Both experimental periods consisted
of eight long-term and eight interval exercise sessions performed every other day on a high
speed treadmill. At the beginning and at the end of each experimental period, a standardized
exercise test was performed and evaluated.
Throughout the study, the following parameters were measured at timed intervals: body
weight, rectal body temperature, sweat loss, heart rate, total plasma protein, insulin, glucose,
lactate, free fatty acids, sodium, potassium and chloride.
Mean body weight of all horses increased from 406 ± 41 kg at the beginning of the study to
421 ± 56 kg at the end of the experiment (p < 0.05). No significant difference in body weight
between the two diets was seen.
There were no significant differences in rectal body temperature between group A and
group B. Exercise resulted in an increase from 37.6 ± 0.2 °C up to 41.4 ± 0.3 °C (p < 0.05).
136
VII. Summary
Sweat losses occuring during the training sessions and standardized exercise tests reached
maximal concentrations of 2 % of the total body weight (no significant difference between
the diets).
Heart rate sharply increased from 117 ± 9 beats per minute to 204 ± 5 beats per minute
during the standardized exercise tests. In response to the long-term exercise sessions, mean
heart rate raised slightly to 136 ± 8 beats per minute. The interval exercise sessions caused
peak heart rates of approximately 208 beats per minute during the gallop periods and a
decrease during the walking phases (below 100 beats per minute). The different diets did not
affect the heart rate.
While a 7.2 % rise of total plasma protein was detected during the standardized exercise
tests, the concentrations during the long-term exercise sessions changed just moderately. The
gallop phases of the interval exercise sessions increased plasma protein concentrations, and a
decrease was noticed during the walking periods. The increase of total plasma protein was
significant, but did not vary between the diets.
Plasma insulin did not differ between the diets either. Concentrations decreased during the
standardized exercise tests and the interval training sessions (p < 0.05), but did not change
during the long-term exercise sessions (n.s.).
Plasma glucose concentrations increased during exercise (p < 0.05). Compared to the values
at rest, glucose concentrations were doubled during the standardized exercise tests and the
interval training sessions. Long-term exercise sessions only moderately increased plasma
glucose. The two different diets did not affect the plasma glucose levels.
Blood lactate did not change either with the different diets (n.s.). The exercise induced
increase (p < 0.05) was higher during the standardized exercise tests and the gallop phases of
the interval exercise sessions compared to the long-term training sessions.
137
VII. Summary
138
According to this study the rise of the free fatty acids depended on type of exercise.
Concentrations increased from about 100 µmol/l to 150-250 µmol/l during the standardized
exercise tests and the interval training sessions, whereas long-term exercise sessions forced
peak free fatty acid concentrations of 640 µmol/l and above (p < 0.05). The difference
between the two diet-groups was not significant.
Blood sodium and potassium levels peaked during the standardized exercise tests and
remained constant at that level during the long-term training sessions. The blood parameters
increased during the gallop periods of the interval exercise sessions but returned to pre-
exercise concentrations during the walking phases. Blood chloride concentrations decreased
during both the standardized exercise tests and the two types of exercises. Dietary effects
were not observed.
In conclusion, no detrimental effects on metabolic parameters and performance in exercising
horses fed with molassed sugar beet pulp were found. The speculated positive effects on the
horse´s hydration status could not be confirmed.
VIII. Literaturverzeichnis
VIII. Literaturverzeichnis ARANA, M. J., A. V. RODIEK und C. L. STULL (1988): Effects during rest and exercise of four dietary treatments on plasma glucose, insulin, cortisol and lactic acid. Am. Soc. Animal Sci. 39, 165-169 ARGENZIO, R. A., und H. F. HINTZ (1971): Volatile fatty acids tolerance and effect of glucose and VFA on plasma insulin levels in ponies. J. Nutr. 102, 723-730 ART, T., und P. LEKEUX (1993): Training-induced modifications in cardiorespiratory and ventilatory measurements in Thoroughbred horses. Equine Vet. J. 25, 532-536 ART, T., und P. LEKEUX (1995): Ventilatory and arterial blood gas tension adjustments to strenuous exercise in Standardbreds. Am. J. Vet. Res. 56, 1332-1337 ÅSTRAND, P. O., und K. ROHDAHL (1986): Textbook of work physiology. 3. Aufl., McGraw-Hill Comp., New York BACH KNUDSEN, K. E. (1997): Carbohydrate and lignin contents of plant materials used in animal feeding. Anim. Feed Sci. Technol. 67, 319-338 BARSNICK, R. (Dissertation in Vorbereitung): Akzeptanz und Verdaulichkeit von Trockenschnitzeln unterschiedlicher Konfektionierungen bei Pferden. Hannover, Tierärztl. Hochsch. BECKER, M., und K. NEHRING (1967): Handbuch der Futtermittel. 3. Aufl., Parey Verlag, Berlin, S. 362-364 BEYER, M. (1998): Colic. In: PAGAN, J. D. (Edit.): Advances in equine nutrition. Nottingham University Press, Manor Farm, Trumpton, S. 483-488
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IX. Tabellenanhang
Tabellen A 1-10: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) Tabelle A 1: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 121 131 146 157 176 181 195 II 121 134 159 179 189 201 217 VI 114 136 150 165 180 199 210
MW 119 134 152 167 182 194 208
Gruppe A: Kontrolle
SD 5 3 7 12 7 12 12 III 108 124 147 153 162 178 192 IV 117 129 146 171 184 192 208 V 116 136 149 170 184 199 215
MW 114 130 148 165 177 190 205
Gruppe B: Kontrolle
SD 5 7 2 11 13 11 12 Tabelle A 2: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 116 136 146 166 172 184 194 II 123 132 151 172 182 198 215 VI 121 130 143 159 175 190 205
MW 120 133 147 166 177 191 205
Gruppe A: Kraftfutter
SD 4 4 5 7 6 8 11 III 111 123 131 146 160 170 184 IV 111 128 141 163 168 180 200 V 108 123 141 168 182 202 220
MW 110 125 138 159 170 184 202
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 2 3 6 12 12 17 19 Tabelle A 3: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 119 138 160 162 168 177 188 II 121 126 141 158 174 191 204 VI 122 131 144 151 173 186 205
MW 121 132 149 157 172 185 199
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 2 7 11 6 4 8 10 III 115 138 145 147 154 166 186 IV - - - - - - - V 115 130 147 169 190 200 215
MW 115 134 146 158 172 183 201
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0 6 2 16 26 25 21
156
IX. Tabellenanhang
Tabelle A 4: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während DB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 110 149 71 II 115 143 86 VI 127 138 72
MW 118 144 77
Gruppe A: Kontrolle
SD 9 6 9 III 102 139 71 IV 120 138 71 V 114 132 69
MW 112 133 71
Gruppe B: Kontrolle
SD 10 5 2 Tabelle A 5: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 114 137 79 II 112 138 74 VI 120 129 75
MW 116 135 76
Gruppe A: Kraftfutter
SD 5 5 3 III 102 138 73 IV 118 138 71 V 108 133 74
MW 110 137 73
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 9 3 2 Tabelle A 6: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 112 143 80 II 105 133 75 VI 118 129 83
MW 112 135 80
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 7 8 5 III 105 128 78 IV - - - V 108 130 74
MW 107 129 76
Gruppe B: Kraftfutter
SD 3 2 3
157
IX. Tabellenanhang
Tabelle A 7: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während IB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 118 64 198 81 201 78 II 119 66 205 85 211 84 VI 124 63 201 82 197 81
MW 121 65 202 83 203 81
Gruppe A: Kontrolle
SD 4 2 4 3 8 3 III 111 63 197 84 208 83 IV 116 59 207 85 204 83 V 109 66 211 93 212 95
MW 112 63 205 88 208 87
Gruppe B: Kontrolle
SD 4 4 8 5 4 7 Tabelle A 8: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 113 63 204 94 208 95 II 115 72 200 78 207 76 VI 119 72 186 87 195 82
MW 116 69 197 87 204 85
Gruppe A: Kraftfutter
SD 4 6 10 9 8 10 III 107 69 202 97 201 94 IV 120 94 197 100 222 109 V 106 62 188 80 192 79
MW 111 75 196 93 205 94
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 8 17 8 11 16 15 Tabelle A 9: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 112 76 203 98 203 93 II 120 69 206 82 201 84 VI 123 91 202 92 202 100
MW 119 79 204 91 202 93
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 6 12 3 9 1 9 III 107 81 189 94 186 74 IV 118 74 210 97 198 91 V 110 68 205 101 204 94
MW 112 75 202 98 196 87
Gruppe B:
SD 6 7 11 4 10 11
158
IX. Tabellenanhang
Tabelle A 10: Herzfrequenz (Schläge pro Minute) während IB4 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 107 84 198 91 200 84 II 113 69 201 94 200 85 VI 108 77 190 91 191 71
MW 110 77 197 92 197 80
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 4 8 6 2 6 8 III 113 96 185 90 185 83 IV - - - - - - V 103 66 194 94 197 94
MW 108 81 190 92 191 89
Gruppe B: Kraftfutter
SD 8 22 7 3 9 8 Tabellen B 1-10: Gesamteiweiß (g/dl) Tabelle B 1: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 5,0 5,5 5,6 5,6 5,8 6,0 6,0 II 5,1 5,1 5,5 5,5 5,5 5,6 5,8 VI 5,8 5,9 5,8 6,1 6,1 6,1 6,8
MW 5,3 5,5 5,7 5,8 5,8 5,9 6,2
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,5 0,4 0,2 0,4 0,4 0,3 0,6 III 6,1 6,1 6,1 6,0 6,1 6,1 6,1 IV 5,1 5,1 5,3 5,3 5,6 5,9 5,6 V 5,2 5,3 5,4 5,4 5,6 5,8 5,8
MW 5,5 5,5 5,6 5,6 5,8 6,0 5,9
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,6 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,3 Tabelle B 2: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 5,9 5,8 5,9 6,0 6,0 6,1 6,2 II 5,2 5,3 5,4 5,5 5,6 5,8 5,9 VI 6,0 6,1 6,0 6,0 6,1 6,3 6,8
MW 5,7 5,8 5,8 5,9 5,9 6,1 6,3
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,5 0,5 0,4 0,3 0,3 0,3 0,5 III 5,5 5,8 5,8 5,8 5,8 5,8 6,0 IV 5,2 5,3 5,5 5,5 5,8 5,8 5,9 V 5,2 5,5 5,5 5,8 5,9 6,0 6,0
MW 5,3 5,6 5,6 5,7 5,9 5,9 6,0
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,2 0,3 0,2 0,2 0,1 0,2 0,1
159
IX. Tabellenanhang
Tabelle B 3: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während ST3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10
I 6,0 5,9 6,1 6,1 6,2 6,3 6,4 II 5,8 5,5 5,7 5,8 5,9 6,0 6,2 VI 5,0 4,8 5,0 5,0 5,4 5,4 5,5
MW 5,6 5,4 5,6 5,7 5,9 5,9 6,1
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,6 0,6 0,6 0,6 0,5 0,5 0,5 III 5,5 5,6 5,8 5,9 5,8 5,5 5,7 IV - - - - - - - V 5,4 5,4 5,6 5,8 5,9 6,0 6,3
MW 5,5 5,5 5,7 5,9 5,9 5,8 6,0
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,1 0,2 0,2 0,1 0,1 0,4 0,5 Tabelle B 4: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 5,8 6,0 5,8 II 5,3 5,0 4,9 VI 5,7 6,0 6,0
MW 5,6 5,7 5,6
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,3 0,6 0,6 III 6,0 5,7 5,3 IV 5,3 5,0 4,9 V 5,4 5,5 5,5
MW 5,6 5,4 5,3
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,4 0,4 0,4 Tabelle B 5: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 5,3 5,7 5,5 II 5,6 5,5 5,3 VI 5,4 5,9 5,5
MW 5,5 5,7 5,5
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,2 0,2 0,3 III 6,0 6,0 5,5 IV 5,1 5,2 5,2 V 5,5 5,9 5,5
MW 5,6 5,7 5,4
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,5 0,5 0,2
160
IX. Tabellenanhang
Tabelle B 6: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während DB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 5,6 5,9 5,4 II 5,7 5,8 5,4 VI 5,4 5,7 5,3
MW 5,6 5,8 5,4
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,2 0,2 0,1 III 5,3 5,6 5,2 IV - - - V 5,0 5,7 5,5
MW 5,2 5,7 5,4
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,3 0,1 0,3 Tabelle B 7: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während IB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,7 5,1 6,1 5,0 5,9 5,5 II 5,7 5,1 5,6 5,2 5,8 4,8 VI 5,9 5,5 6,1 5,8 6,1 5,6
MW 5,8 5,3 6,0 5,4 6,0 5,3
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,2 0,3 0,3 0,5 0,2 0,5 III 5,8 6,0 6,4 5,5 6,2 5,5 IV 5,2 5,0 5,4 4,8 5,1 4,8 V 5,5 5,1 6,0 5,2 5,9 5,3
MW 5,5 5,4 6,0 5,2 5,8 5,2
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,4 0,6 0,6 0,4 0,6 0,4 Tabelle B 8: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,8 5,5 6,1 5,5 5,1 5,4 II 5,6 5,3 6,1 5,3 5,8 5,3 VI 6,0 5,5 6,1 5,5 6,1 5,5
MW 5,8 5,5 6,1 5,5 5,7 5,4
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,3 0,2 0,1 0,2 0,6 0,1 III 5,4 5,3 6,3 5,3 5,9 5,3 IV 5,2 5,0 5,7 5,2 5,5 5,2 V 5,3 5,2 5,9 5,5 6,0 5,2
MW 5,3 5,2 6,0 5,4 5,8 5,3
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,1 0,2 0,4 0,2 0,3 0,1
161
IX. Tabellenanhang
Tabelle B 9: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während IB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 5,5 5,3 6,2 5,2 5,8 5,2 II 6,0 5,8 6,3 5,9 6,3 5,9 VI 5,8 5,6 6,2 5,6 6,2 5,8
MW 5,8 5,6 6,3 5,6 6,1 5,7
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,3 0,3 0,1 0,4 0,3 0,4 III 5,8 5,5 6,1 5,6 5,9 5,4 IV 5,2 5,1 5,8 5,1 5,4 5,1 V 5,6 5,2 5,8 5,4 5,9 5,6
MW 5,6 5,3 5,9 5,4 5,8 5,4
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,4 0,3 0,2 0,3 0,3 0,3 Tabelle B 10: Gesamteiweißkonzentration (g/dl) im Plasma während IB4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,3 4,9 5,8 5,1 6,0 5,6 II 5,5 5,3 6,0 5,3 6,0 5,4 VI 5,3 5,2 6,1 5,5 6,0 5,5
MW 5,4 5,2 6,0 5,3 6,0 5,5
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,2 0,3 0,2 0,3 0 0,1 III 5,1 5,1 5,6 4,8 5,8 4,8 IV - - - - - - V 5,6 5,2 6,0 5,3 6,0 5,2
MW 5,4 5,2 5,8 5,1 5,9 5,0
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,4 0,1 0,3 0,4 0,2 0,3 Tabellen C 1-10: Insulin (µU/ml) Tabelle C 1: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10 I 3,337 0,077 II 3,835 0,017 VI 2,928 0,120
MW 3,367 0,072
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,455 0,052 III 2,972 0,034 IV 9,012 0,337 V 6,581 0,007
MW 6,189 0,126
Gruppe B: Kontrolle
SD 3,040 0,184
162
IX. Tabellenanhang
Tabelle C 2: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während ST2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10
I 4,721 0,023 II 4,002 0,020 VI 2,849 0,017
MW 3,858 0,020
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,945 0,003 III 5,068 0,073 IV 8,337 0,023 V 3,782 0,052
MW 5,729 0,050
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 2,349 0,026 Tabelle C 3: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10 I 9,263 2,180 II 5,782 0,132 VI 3,184 0,078
MW 6,077 0,797
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 3,051 1,199 III 3,082 0,127 IV - - V 4,916 0,018
MW 3,999 0,073
Gruppe B: Kraftfutter
SD 1,297 0,078 Tabelle C 4: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 9,767 7,756 10,01 II 5,378 2,820 7,084 VI 2,074 3,336 7,646
MW 5,740 4,638 8,247
Gruppe A: Kontrolle
SD 3,860 2,714 1,554 III 3,748 2,878 7,474 IV 3,089 2,457 3,521 V 5,315 6,611 11,85
MW 4,051 3,982 7,618
Gruppe B: Kontrolle
SD 1,144 2,287 4,171
163
IX. Tabellenanhang
Tabelle C 5: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während DB2 Geschwindigkeit (m/s) Pferd 4 5 Behandlung 1,6
I 6,642 II 6,271 4,951 6,057 VI 4,490 4,659 5,014
MW 5,801 4,866 7,398 Kraftfutter
SD 1,151 0,180 3,268 2,084 4,009 4,195
IV 5,478 V 6,243 7,401 8,856
4,602 5,411 6,119
Gruppe B: Trocken-
SD 2,214 2,435 Tabelle C 6: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 5 1,6 I 10,15 II 7,262 6,071 6,384 VI 8,277 2,364 5,325
MW 8,267
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,048 1,893 2,536
4,986 11,12
Gruppe A:
III 4,823 5,305
schnitzel MW 1,771
4 6,183 3,558
6,723 4,815
III 1,286 5,984 9,250 -
V 2,575 3,309 4,961 1,782 4,174 7,288
SD 0,912 1,892 Tabelle C 7: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während IB1
Behandlung 1,6 9 1,6 9 1,6
IV - - Gruppe B:
MW Kraftfutter
3,033
Geschwindigkeit (m/s) Pferd 4 I 8,252 9,529 7,912 12,01 7,891 9,324 II 3,158 1,213 0,974 5,497 2,352 6,887 VI 2,320 1,436 0,202 2,017 0,154 5,462
MW 4,577 4,060 3,030 6,506 3,466 7,225
Gruppe A: Kontrolle
SD 3,211 4,739 4,247 5,069 3,987 1,953 III 3,524 2,786 2,616 3,466 0,652 4,103 IV 8,942 3,516 2,042 3,799 2,234 5,273 V 2,340 4,035 1,527 6,399 3,922 4,012
MW 4,936 3,446 2,062 4,555 2,270 4,463
Gruppe B: Kontrolle
SD 3,521 0,628 0,545 1,606 1,636 0,704
164
IX. Tabellenanhang
Tabelle C 8: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während IB2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 2,672 6,168 3,187 5,473 2,330 5,355 II 4,796 1,636 1,236 3,274 0,774 7,936 VI 1,862 1,719 0,224 3,002 1,83 3,264
MW 3,110 3,175 1,549 3,917 1,645 5,519
Gruppe A: Kraftfutter
SD 1,516 2,593 1,507 1,355 0,795 2,341 III 4,067 3,351 0,174 3,964 0,809 4,025 IV 5,188 2,893 1,100 10,55 3,483 6,697 V 6,552 5,227 2,709 9,760 6,187 7,427
MW 5,269 3,824 1,328 8,091 3,493 6,050
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,245 1,237 1,283 3,596 2,690 1,792 Tabelle C 9: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 4,796 4,090 0,897 5,891 4,155 4,506 II 2,206 1,651 0,413 5,991 2,056 6,838 VI 4,103 2,690 0,437 3,360 1,749 6,196
MW 3,702 2,811 0,583 5,081 2,654 5,847
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,341 1,224 0,273 1,491 1,310 1,205 III 3,506 4,618 1,346 2,976 1,018 4,670 IV 4,618 6,243 1,920 4,643 1,737 7,332 V 4,912 4,201 0,936 12,81 4,435 7,677
MW 4,346 5,021 1,401 6,809 2,397 6,560
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,742 1,079 0,495 5,262 1,802 1,646 Tabelle C 10: Insulinkonzentration (µU/ml) im Plasma während IB4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 4,979 1,898 0,256 6,085 2,795 4,044 II 1,884 2,319 0,097 9,923 2,575 6,757 VI 1,551 0,698 0,469 3,515 1,144 4,558
MW 2,805 1,639 0,274 6,508 2,172 5,12
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,891 0,842 0,187 3,225 0,897 1,442 III 3,194 2,331 0,071 2,651 0,244 4,785 IV - - - - - - V 3,214 2,106 0,499 12,12 5,598 7,362
MW 3,204 2,219 0,285 7,383 2,921 6,074
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,015 0,160 0,303 6,693 3,786 1,823
165
IX. Tabellenanhang
Tabellen D 1-10: Glukose (mmol/l) Tabelle D 1: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 4,60 5,29 4,71 4,27 4,67 5,29 6,46 II 5,07 4,85 5,15 4,75 6,42 7,26 8,61 VI 4,75 4,64 4,89 5,51 6,28 7,01 8,98
MW 4,81 4,93 4,92 4,85 5,79 6,52 8,02
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,25 0,34 0,23 0,63 0,98 1,08 1,37 III 4,42 4,71 4,49 4,89 5,51 6,53 7,70 IV 4,05 4,09 4,60 4,75 8,32 6,46 7,08 V 5,51 5,84 5,69 6,28 7,96 8,94 10,84
MW 4,66 4,88 4,93 5,31 7,27 7,31 8,54
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,76 0,89 0,67 0,85 1,53 1,42 2,02 Tabelle D 2: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 4,93 5,22 5,07 5,95 5,88 6,50 5,69 II 4,16 3,87 3,98 6,57 6,17 6,35 5,51 VI 3,07 2,08 3,32 3,38 4,71 6,21 7,15
MW 4,06 3,73 4,13 5,30 5,59 6,36 6,12
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,94 1,58 0,89 1,70 0,78 0,15 0,90 III 4,93 4,16 3,98 4,05 4,34 5,44 7,23 IV 4,56 4,49 4,92 4,75 6,10 6,42 7,67 V 5,69 5,55 5,88 5,51 7,77 9,27 10,29
MW 5,06 4,74 4,93 4,77 6,07 7,05 8,40
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,58 0,73 0,96 0,74 1,72 1,99 1,66 Tabelle D 3: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 5,62 3,76 4,64 2,99 2,70 3,07 3,36 II 4,27 3,65 3,76 4,49 5,26 6,06 7,62 VI 3,83 3,65 4,31 4,31 4,89 5,99 5,99
MW 4,58 3,69 4,24 3,93 4,29 5,04 5,66
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,94 0,07 0,45 0,82 1,39 1,71 2,15 III 4,38 4,12 4,38 4,78 5,91 6,75 8,80 IV - - - - - - - V 5,15 5,00 5,29 4,96 7,34 7,99 10,1
MW 4,77 4,56 4,84 4,87 6,63 7,37 9,44
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,55 0,63 0,65 0,13 1,02 0,88 0,90
166
IX. Tabellenanhang
Tabelle D 4: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während DB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 4,78 6,31 5,84 II 4,12 5,95 5,33 VI 4,56 5,88 5,15
MW 4,49 6,05 5,44
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,34 0,24 0,36 III 4,02 6,79 5,91 IV 4,85 5,69 5,29 V 4,49 6,10 5,37
MW 4,46 6,20 5,53
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,42 0,56 0,34 Tabelle D 5: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 4,89 6,13 5,33 II 5,88 4,09 5,40 VI 4,82 5,33 5,07
MW 5,20 5,19 5,27
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,60 1,03 0,18 III 4,31 6,06 5,44 IV 4,67 4,75 4,78 V 4,71 6,86 6,06
MW 4,57 5,89 5,43
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,23 1,07 0,65 Tabelle D 6: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 4,53 5,66 4,81 II 3,83 4,12 5,15 VI 4,89 4,67 4,56
MW 4,42 4,82 4,84
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,54 0,79 0,30 III 4,75 6,79 6,75 IV - - - V 4,75 6,10 5,66
MW 4,75 6,45 6,21
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0 0,49 0,78
167
IX. Tabellenanhang
Tabelle D 7: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während IB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 4,82 3,72 3,80 5,07 5,58 5,77 II 4,31 4,49 5,37 6,10 6,06 5,51 VI 4,53 4,71 5,04 4,85 4,53 4,71
MW 4,56 4,31 4,74 5,34 5,39 5,33
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,26 0,52 0,83 0,67 0,79 0,56 III 4,85 4,49 4,82 5,29 6,24 6,46 IV 3,36 2,85 3,43 4,56 4,56 5,07 V 4,78 5,15 5,14 6,21 8,25 6,82
MW 4,33 4,17 4,47 5,36 6,35 6,12
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,85 1,19 0,91 0,83 1,85 0,93 Tabelle D 8: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 4,82 5,55 5,48 5,33 6,21 4,78 II 4,31 3,98 3,98 4,93 6,97 5,91 VI 4,38 4,20 4,82 5,00 5,04 4,85
MW 4,51 4,58 4,76 5,09 6,08 5,18
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,28 0,86 0,76 0,22 0,98 0,64 III 4,23 3,76 3,98 5,40 5,77 5,69 IV 3,36 3,91 5,26 6,64 7,41 6,42 V 5,58 5,15 5,69 6,35 6,61 6,17
MW 4,39 4,28 4,98 6,13 6,60 6,10
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,12 0,77 0,89 0,65 0,83 0,38 Tabelle D 9: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,84 5,48 6,94 6,42 6,21 5,22 II 4,49 4,56 5,15 5,84 5,37 5,40 VI 4,34 4,31 4,89 4,71 5,55 5,22
MW 4,89 4,79 5,66 5,66 5,71 5,28
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,83 0,62 1,12 0,87 0,45 0,11 III 4,27 4,63 5,15 5,88 5,95 5,80 IV 4,78 4,93 6,02 5,99 5,33 5,80 V 5,66 5,33 6,79 7,63 6,42 6,53
MW 4,91 4,97 5,99 6,50 5,90 6,05
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,71 0,36 0,83 0,99 0,55 0,43
168
IX. Tabellenanhang
Tabelle D 10: Glukosekonzentration (mmol/l) im Plasma während IB4 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 3,98 3,29 4,67 7,01 8,03 7,88 II 3,61 4,20 5,58 6,72 5,99 4,93 VI 3,76 3,54 4,49 5,11 4,75 4,42
MW 3,79 3,68 4,92 6,28 6,26 5,75
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,19 0,48 0,59 1,03 1,66 1,87 III 4,20 4,82 5,26 5,95 5,77 5,11 IV - - - - - - V 4,42 4,53 5,22 6,50 6,86 5,66
MW 4,31 4,68 5,24 6,23 6,32 5,39
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,16 0,21 0,03 0,39 0,78 0,39 Tabellen E 1-10: Laktat (mmol/l) Tabelle E 1: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 1,1 1,6 2,0 2,4 3,5 6,1 9,7 II 1,3 1,4 1,9 3,9 5,9 9,7 15,5 VI 1,6 2,0 3,7 5,1 8,4 14,0 18,3
MW 1,4 1,7 2,6 3,8 6,0 10,0 14,5
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,3 0,4 1,1 1,4 2,5 4,0 4,4 III 1,6 1,5 2,6 3,3 6,5 9,5 15,3 IV 1,7 1,9 2,3 3,7 5,8 8,7 15,6 V 1,5 1,7 2,3 4,2 7,7 11,5 17,9
MW 1,6 1,7 2,4 3,8 6,7 9,9 16,3
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,2 0,2 0,2 0,5 1,0 1,5 1,5 Tabelle E 2: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 1,0 0,9 1,1 0,9 2,5 4,2 7,8 II 1,0 1,1 1,2 1,7 4,7 7,2 13,1 VI 1,1 1,0 1,6 2,9 5,3 9,2 13,2
MW 1,1 1,0 1,3 1,9 4,2 6,9 11,4
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,1 0,2 0,3 1,1 1,5 2,6 3,1 III 1,1 1,2 1,7 2,0 4,1 8,9 14,2 IV 1,1 1,4 1,2 2,1 3,2 4,8 9,5 V 1,0 1,2 1,0 4,2 7,5 12,4 19,4
MW 1,1 1,3 1,3 2,8 5,0 8,7 14,4
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,1 0,2 0,4 1,3 2,3 3,9 5,0
169
IX. Tabellenanhang
Tabelle E 3: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10
I 1,1 1,2 1,7 1,9 3,4 5,2 9,7 II 1,0 1,2 1,7 3,3 5,0 7,8 12,7 VI 0,9 0,8 1,2 2,4 4,6 8,7 14,5
MW 1,0 1,1 1,6 2,6 4,4 7,3 12,3
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,1 0,3 0,3 0,8 0,9 1,9 2,5 III 1,1 1,4 2,0 3,0 5,0 10,7 17,4 IV - - - - - - - V 1,3 1,1 1,6 4,1 6,3 11,7 19,5
MW 1,2 1,3 1,8 3,6 5,7 11,2 18,5
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,2 0,3 0,3 0,8 1,0 0,8 1,5 Tabelle E 4: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 1,6 1,6 1,3 II 1,4 1,8 1,3 VI 1,1 1,5 1,1
MW 1,4 1,7 1,3
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,3 0,2 0,2 III 1,6 1,9 1,8 IV 1,7 1,7 1,6 V 1,3 1,4 1,4
MW 1,6 1,7 1,6
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,3 0,3 0,2 Tabelle E 5: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 1,6 2,0 1,6 II 1,4 1,5 1,5 VI 0,8 1,5 1,2
MW 1,3 1,7 1,5
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,5 0,3 0,3 III 1,8 1,6 1,7 IV 1,9 1,7 1,4 V 1,0 1,3 1,1
MW 1,6 1,6 1,4
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,5 0,3 0,4
170
IX. Tabellenanhang
Tabelle E 6: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 1,8 1,7 1,4 II 0,9 1,5 1,0 VI 1,3 2,7 2,4
MW 1,4 2,0 1,6
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,5 0,7 0,8 III 1,0 1,6 1,1 IV - - - V 1,0 1,5 1,4
MW 1,0 1,6 1,3
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0 0,1 0,3 Tabelle E 7: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 1,5 1,3 7,5 2,0 8,2 2,0 II 1,1 1,0 6,9 2,4 7,2 2,3 VI 1,4 1,2 8,2 4,2 7,5 3,3
MW 1,4 1,2 7,6 2,9 7,7 2,6
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,3 0,2 0,7 1,2 0,6 0,7 III 1,1 1,0 7,2 3,3 9,7 4,5 IV 1,7 1,2 6,9 3,4 6,8 2,7 V 1,3 1,2 12,9 8,4 13,2 5,7
MW 1,4 1,2 9,0 5,1 9,9 4,3
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,4 0,2 3,4 3,0 3,3 1,6 Tabelle E 8: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 1,5 1,4 10,1 4,5 10,0 4,1 II 1,8 1,1 6,3 2,6 6,4 2,5 VI 1,6 1,2 6,7 3,3 7,3 2,3
MW 1,7 1,3 7,7 3,5 7,9 3,0
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,2 0,2 2,1 1,0 1,9 1,0 III 1,9 1,8 13 7,4 9,6 3,3 IV 1,1 1,0 7,5 8,2 11,4 5,5 V 1,3 1,0 6,6 2,7 5,5 2,3
MW 1,5 1,3 9,1 6,1 8,9 3,7
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,5 0,5 3,5 3,0 3,1 1,7
171
IX. Tabellenanhang
Tabelle E 9: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 1,4 1,0 15,8 5,2 5,7 1,8 II 1,3 0,8 7,2 2,5 6,4 2,1 VI 0,9 0,9 9,3 5,2 8,7 3,3
MW 1,2 0,9 10,8 4,3 7,0 2,4
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,3 0,1 4,5 1,6 1,6 0,8 III 0,9 0,8 10,5 3,3 6,9 2,5 IV 0,8 0,8 10,2 3,6 6,1 2,5 V 0,8 0,8 10,0 4,5 11,5 4,8
MW 0,9 0,8 10,3 3,8 8,2 3,3
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,1 0 0,3 0,7 3,0 1,4 Tabelle E 10: Laktatkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 1,0 0,9 9,2 3,1 5,3 1,9 II 1,0 0,9 8,7 3,0 6,6 2,2 VI 1,1 0,9 7,7 3,1 6,8 3,3
MW 1,1 0,9 8,6 3,1 6,3 2,5
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,1 0 0,8 0,1 0,9 0,8 III 1,1 1,0 11,8 4,0 7,2 3,3 IV - - - - - - V 0,8 0,5 9,8 3,9 10,6 4,1
MW 1,0 0,8 10,8 4,0 8,9 3,7
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,3 0,4 1,5 0,1 2,5 0,6 Tabellen F 1-10: Freie Fettsäuren (µmol/l) Tabelle F 1: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10 I 260 186 II 116 200 VI 51,5 148
MW 143 178
Gruppe A: Kontrolle
SD 107 27,0 III 229 195 IV Gruppe B:
Kontrolle
116 161 V 90,3 114
MW 146 157 SD 73,8 40,7
172
IX. Tabellenanhang
Tabelle F 2: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während ST2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10
73,3 265 II 35,4 88,6 VI 40,7 100
MW 49,8 152
Gruppe A: Kraftfutter
SD 20,6 98,8 III 96,7 162 IV 104 114 V 74,8 85,4
MW 91,9 121
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 15,2 38,8
I
Tabelle F 3: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 10 I 27,2 147 II 86,4 193 VI 74,3 143
MW 62,7 161
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 31,3 27,8 III 58,3 156 IV - - V 24,3 58,3
MW 41,3 108
Gruppe B: Kraftfutter
SD 24,1 69,1 Tabelle F 4: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 222 1031 910 II 78,1 758 957 VI 56,8 696 701
MW 119 829 856
Gruppe A: Kontrolle
SD 89,9 179 137 III 153 1083 996 IV 79,7 712 957 V 72,2 773 992
MW 102 856 982
Gruppe B: Kontrolle
SD 44,7 199 21,5
173
IX. Tabellenanhang
Tabelle F 5: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während DB2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 33,5 833 544 II 42,7 511 654 VI 27,2 578 402
MW 34,5 641 534
Gruppe A: Kraftfutter
SD 7,80 170 127 III 299 1194 932 IV 28,2 574 533 V 152 793 923
MW 160 854 796
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 136 315 228 Tabelle F 6: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 43,7 855 741 II 48,1 703 848 VI 47,6 714 900
MW 46,5 758 830
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 2,50 84,8 81,1 III 336 1024 895 IV - - - V 39,3 503 609
MW 188 764 752
Gruppe B: Kraftfutter
SD 210 369 203 Tabelle F 7: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während IB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 86,3 191 94,7 292 139 306 II 59,7 137 53,9 101 219 231 VI 66,2 214 72,3 276 113 318
MW 70,8 181 73,7 223 157 285
Gruppe A: Kontrolle
SD 13,9 39,6 20,5 106 55,3 47,2 III 389 473 166 346 148 329 IV 66,5 175 69,7 213 214 264 V 40,8 189 43,2 91,7 42,2 183
MW 166 279 93,0 217 135 259
Gruppe B: Kontrolle
SD 195 169 64,7 128 86,7 73,2
174
IX. Tabellenanhang
Tabelle F 8: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während IB2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 108 286 112 252 111 259 II 64,0 164 77,2 263 130 276 VI 46,6 122 61,6 130 59,7 122
MW 72,9 191 83,6 215 101 219
Gruppe A: Kraftfutter
SD 31,7 85,2 25,9 73,9 36,4 84,5 III 144 406 143 274 121 479 IV 52,9 111 63,1 86,1 52,9 162 V 90,8 181 77,2 194 82,5 183
MW 95,9 233 94,5 185 85,5 275
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 45,8 155 42,7 94,3 34,2 178 Tabelle F 9: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 78,8 171 50,6 169 68,9 309 II 276 516 89,3 435 96,1 485 VI 60,7 160 61,2 229 89,6 264
MW 139 283 67,1 278 84,9 353
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 120 203 20,0 140 14,3 117 III 98,2 331 90,2 340 114 372 IV 68,4 190 56,3 211 61,6 313 V 49,0 181 42,1 218 56,8 235
MW 71,9 234 62,9 257 77,5 307
Gruppe B: Kraftfutter
SD 24,8 84,2 24,8 72,6 31,8 68,8 Tabelle F 10: Konzentration der freien Fettsäuren (µmol/l) im Plasma während IB 4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 55,5 114 46,3 220 64,1 286 II 107 293 99,2 402 123 368 VI 126 338 85,7 423 84,2 399
MW 96,2 249 77,1 349 90,5 351
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 36,5 119 27,5 112 30,0 58,4 III 130 387 108 346 103 341 IV - - - - - - V 43,1 121 42,1 198 52,9 170
MW 86,6 254 75,1 272 78,0 256
Gruppe B: Kraftfutter
SD 61,5 189 46,6 105 35,5 121
175
IX. Tabellenanhang
Tabellen G 1-10: Natrium (mmol/l) Tabelle G 1: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 137,1 137,9 138,9 139,7 140,6 137,2 140,6 II 137,1 139,2 138,3 139,1 139,9 140,5 140,2 VI 136,2 136,6 138,5 139,1 139,3 140,7 143,8
MW 136,8 137,9 138,6 139,3 140,0 139,5 141,6
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,6 1,3 0,4 0,4 0,7 2,0 2,0 III 134,8 135,4 137,0 137,4 138,9 136,8 141,8 IV 139,8 140,2 139,6 139,1 140,2 138,5 144,1 V 136,3 136,8 138,1 138,5 139,8 140,2 143,6
MW 137,0 137,5 138,3 138,4 139,7 138,5 143,2
Gruppe B: Kontrolle
SD 2,6 2,5 1,4 0,9 0,7 1,7 1,3 Tabelle G 2: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 138,3 136,9 140,2 142,6 143,8 142,4
II 137,1 138,8 140,2 138,1 138,7 143,1 142,6 VI 138,6 140,9 135,9 140,1 141,9 135,4 142,3
MW 138,2 139,4 137,7 139,5 141,1 140,8 142,5
Gruppe A: Kraftfutter
SD 1,0 1,4 2,3 1,2 2,1 4,7 0,2 III 137,0 140,7 139,1 134,3 141,7 142,7 140,8 IV 135,6 140,4 139,9 138,3 141,6 142,7 143,6 V 137,2 138,5 139,3 139,5 141,8 140,5 146,5
MW 136,6 139,9 139,5 137,4 141,7 142,0 143,7
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,9 1,2 0,5 2,8 0,2 1,3 2,9
I 138,8
Tabelle G 3: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 133,4 134,6 135,9 135,6 135,6 137,5 138,0 II 133,0 133,5 133,8 134,9 135,4 136,5 139,5 VI 131,5 133,7 131,9 131,8 131,5 134,0 135,4
MW 132,7 134,0 133,9 134,1 134,2 136,0 137,7
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,1 0,6 2,1 2,1 2,4 1,9 2,1 III 134,7 137,4 136,1 136,1 137,3 138,4 139,8 IV - - - - - - - V 134,0 134,4 135,5 136,3 135,6 137,1 142,6
MW 134,4 135,9 135,8 136,2 136,5 137,8 141,2
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,5 2,2 0,5 0,2 1,3 1,0 2,0
176
IX. Tabellenanhang
Tabelle G 4: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 135,9 136,4 136,5 II 136,3 135,3 135,4 VI 137,4 137,3 136,8
MW 136,6 136,4 136,3
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,8 1,1 0,8 III 135,5 136,4 136,7 IV 134,0 135,0 133,8 V 135,9 136,3 135,4
MW 135,2 135,9 135,3
Gruppe B: Kontrolle
SD 1,1 0,8 1,5 Tabelle G 5: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 136,0 135,6 136,4 II 137,1 136,9 137,0 VI 137,7 137,9 136,3
MW 137,0 136,8 136,6
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,9 1,2 0,4 III 136,5 136,1 136,7 IV 135,4 135,6 135,5 V 135,9 136,2 137,0
MW 136,0 136,0 136,4
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,6 0,4 0,8 Tabelle G 6: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 133,0 - 136,3
135,9 - 134,1 VI 133,1 131,7 130,7
MW 134,0 131,7 133,7
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,7 0 2,9 III 131,3 131,7 130,1 IV - - - V 128,1 129,9 131,2
MW 129,7 130,8 130,7
Gruppe B: Kraftfutter
SD 2,3 1,3 0,8
II
177
IX. Tabellenanhang
Tabelle G 7: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB1 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 136,9 137,1 140,5 135,1 141,6 135,3 135,7 136,3 140,7 135,0 137,6 135,5
VI 136,1 136,9 144,5 137,1 141,9 135,6 MW 136,3 136,8 141,9 135,8 140,4 135,5
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,7 0,5 2,3 1,2 2,5 0,2 III 137,8 136,8 140,5 137,4 143,5 136,3 IV 135,9 134,9 139,3 135,9 139,3 134,6 V 135,2 134,8 144,2 135,8 142,7 135,4
MW 136,3 135,5 141,4 136,4 141,9 135,5
Gruppe B: Kontrolle
SD 1,4 1,2 2,6 0,9 2,3 0,9
II
Tabelle G 8: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 138,8 137,4 147,0 136,3 144,2 137,5 II 136,0 135,0 141,7 135,4 139,7 134,5 VI 135,7 135,5 140,9 136,5 141,1 135,7
MW 136,9 136,0 143,2 136,1 141,7 135,9
Gruppe A: Kraftfutter
SD 1,8 1,3 3,4 0,6
IV 138,6 147,9 143,1 136,7 142,9 137,9 V 135,3 134,2 139,7 134,1 139,3 133,9
MW 136,8 139,4 142,8 135,8 141,5 136,1
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,7 7,5 3 1,5 2 2,1
2,4 1,6 III 136,3 136,1 145,6 136,6 142,2 136,5
Tabelle G 9: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 134,6 134,0 141,1 134,4 138,8 133,6 II 135,5 133,6 139,2 133,4 138,7 133,0 VI 133,6 134,3 139,4 132,2 136,9 132,7
MW 134,6 134,0 139,9 133,4 138,2 133,1
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,0 0,4 1,1 1,2 1,1 0,5 III 136,1 136,4 141,0 136,2 139,5 136,3 IV 136,3 135,2 140,9 135,4 139,1 136,3 V 136,1 136,7 141,1 135,4 141,7 136,0
MW 136,2 136,1 141,0 135,7 140,1 136,2
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,2 0,8 0,1 0,5 1,4 0,2
178
IX. Tabellenanhang
Tabelle G 10: Natriumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB4 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 133,7 137,0 145,9 141,3 143,4 137,5 II 139,9 134,1 139,2 134,5 139,0 134,5 VI 131,2 131,4 136,3 130,5 135,8 131,4
MW 135,0 134,2 140,5 135,5 139,4 134,5
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 4,5 2,9 5,0 5,5 3,9 3,1 III 136,8 139,5 - 134,4 - - IV - - - - - - V 137,2 135,8 133,8 137,4 136,0 140,3
MW 137,0 137,7 133,8 135,9 136,0 140,3
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,3 2,7 0 2,2 0 0 Tabellen H 1-10: Kalium (mmol/l) Tabelle H 1: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 4,37 5,14 5,25 5,28 5,38 5,48 5,75
4,93 5,00 5,02 5,14 5,25 5,51 VI 5,14 5,24 5,26 5,40 5,55 5,78 6,29
4,75 5,11 5,17 5,24 5,36 5,51 5,85
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,39 0,16 0,15 0,20 0,21 0,27 0,40 III 5,00 5,14 5,29 5,2 5,37 5,51 5,99 IV 4,73 4,94 4,95 5,03 5,10 5,25 5,61 V 4,71 4,85 4,93 5,02 5,30 5,44 6,25
MW 4,82 4,98 5,06 5,09 5,26 5,40 5,95
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,17 0,15 0,21 0,11 0,15 0,14 0,33
II 4,74
MW
Tabelle H 2: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 5,22 5,12 5,15 5,31 5,52 5,65 6,03 II 5,05 5,19 5,24 5,16 5,22 5,48 5,74
5,32 4,98 5,40 5,64 5,72 5,66 6,18 MW 5,20 5,10 5,27 5,37 5,49 5,60 5,99
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,14 0,11 0,13 0,25 0,26 0,11 0,23 III 5,03 5,44 5,25 5,15 5,40 5,54 5,72 IV 4,69 5,01 5,07 5,14 5,47 5,55 5,72 V 4,93 5,11 5,17 5,29 5,49 5,56 6,28
MW 4,89 5,19 5,17 5,20 5,46 5,55 5,91
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,18 0,23 0,10 0,09 0,05 0,02 0,33
VI
179
IX. Tabellenanhang
Tabelle H 3: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während ST3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10
I 4,91 5,12 5,32 5,30 5,38 5,47 5,64 II 4,69 4,86 4,92 5,12 5,09 5,25 5,54 VI 4,69 5,11 5,12 5,08 5,18 5,26 5,62
MW 4,77 5,03 5,12 5,17 5,22 5,33 5,60
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,13 0,15 0,21 0,12 0,15 0,13 0,06 III 4,99 5,25 5,22 5,19 5,32 5,41 5,68 IV - - - - - - - V 4,86 5,03 5,11 5,28 5,36 5,53 6,30
MW 4,93 5,14 5,17 5,24 5,34 5,47 5,99
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,10 0,16 0,08 0,07 0,03 0,09 0,44 Tabelle H 4: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 4,59 4,65 4,29 II 4,85 4,84 4,30 VI 4,52 4,49 4,23
MW 4,70 4,70 4,30
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,20 0,20 0,10 III 4,55 4,34 3,96 IV 4,57 4,72 4,29 V 4,61 4,72 4,17
MW 4,60 4,60 4,20
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,10 0,30 0,20 Tabelle H 5: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 4,59 4,42 4,21 II 4,91 4,81 4,36 VI - 5,63 4,26
MW 4,75 5,00 4,30
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,20 0,70 0,10 III 4,52 4,35 4,27 IV 4,54 4,46 4,14 V 4,62 4,45 4,15
MW 4,60 4,50 4,20
Gruppe B: Trocken-schnitzel
SD 0,10 0,10 0,10
180
IX. Tabellenanhang
Tabelle H 6: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während DB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I - 4,39 4,38 II 4,78 4,18 4,09
- 5,56 5,01 MW 4,78 4,80 4,50
Gruppe A: Trocken-
SD schnitzel
0 0,80 0,50 III 4,09 4,43 3,65 IV - - - V 4,48 4,13 4,60
MW 4,30 4,30 4,20
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,30 0,30 0,70
VI
Tabelle H 7: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,02 4,52 6,23 4,43 6,44 4,38 II 5,19 4,79 6,72 4,57 6,37 4,55 VI 4,43 4,72 6,32 4,35 6,02 4,34
MW 4,90 4,70 6,50 4,50 6,30 4,50
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,40 0,20 0,30 0,20 0,30 0,20 III 4,95 4,69 6,46 4,32 6,53 4,11 IV 4,98 4,53 6,35 4,30 6,09 4,31 V 4,95 4,55 7,58 4,24 6,65 4,31
MW 5,00 4,60 6,80 4,30 6,50 4,30
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,10 0,10 0,70 0,10 0,30 0,20 Tabelle H 8: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB2
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 4,96 4,42 7,16 4,31 6,71 4,30
II 5,12 4,62 6,60 4,44 6,34 4,48 VI 5,19 4,64 6,73 4,61 6,45 4,58
MW 5,10 4,60 6,90 4,50 6,50 4,50
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0,20 0,20 0,30 0,20 0,20 0,20 III 4,91 4,34 7,14 4,21 6,34 4,26 IV 4,77 4,69 6,43 4,43 6,17 4,08 V 4,72 4,21 6,07 4,14 6,00 4,28
MW 4,80 4,50 6,60 4,30 6,20 4,30
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 0,10 0,30 0,60 0,20 0,20 0,20
I
181
IX. Tabellenanhang
Tabelle H 9: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB3 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 4,75 4,58 6,46 4,29 6,03 4,36 II 4,67 4,44 5,98 4,28 5,71 4,29 VI 4,79 5,03 6,18 4,23 5,86 4,10
MW 4,80 4,70 6,30 4,30 5,90 4,30
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,10 0,40 0,30 0,10 0,20 0,20 III 4,71 4,53 6,12 4,37 5,72 4,28 IV 4,54 4,07 5,97 4,03 5,41 4,07 V 4,40 4,34 6,27 4,11 6,01 4,04
MW 4,60 4,40 6,20 4,20 5,80 4,20
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,20 0,30 0,20 0,20 0,40 0,20 Tabelle H 10: Kaliumkonzentration (mmol/l) im Vollblut während IB4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 5,02 4,76 6,65 4,57 6,15 4,57 II 4,90 4,42 5,20 4,22 5,77 4,21 VI 4,97 4,49 5,99 4,26 5,70 4,33
MW 5,00 4,60 6,00 4,40 5,90 4,40
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 0,10 0,20 0,80 0,20 0,30 0,20 III 4,83 4,52 5,43 4,13 5,83 4,29 IV - - - - - - V 4,84 4,31 5,97 4,26 5,75 4,30
MW 4,90 4,50 5,70 4,20 5,80 4,30
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,10 0,20 0,40 0,10 0,10 0,10 Tabellen I 1-10: Chlorid (mmol/l) Tabelle I 1: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während ST1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 100,5 104,8 103,3 99,80 102,9 101,2 99,80 II 102,4 103,6 103,6 104,0 102,2 100,8 99,40 VI 100,8 101,6 99,80 99,80 99,80 100,1 97,60
MW 101,3 103,4 102,3 101,2 101,7 100,7 98,94
Gruppe A: Kontrolle
SD 1,030 1,620 2,120 2,430 1,630 0,560 1,180 III 101,2 101,9 101,2 101,6 99,80 100,1 98,70 IV 103,3 103,9 103,3 102,3 101,6 100,9 100,2 V 100,1 101,6 101,6 99,40 99,80 99,00 96,90
MW 101,6 102,5 102,1 101,1 100,4 100,0 98,60
Gruppe B: Kontrolle
SD 1,630 1,260 1,120 1,520 1,040 0,960 1,660
182
IX. Tabellenanhang
Tabelle I 2: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während ST2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10
I 98,10 97,50 97,10 96,10 96,40 95,70 94,70 II 104,7 105,4 105,4 104,7 102,6 101,9 102,2 VI 100,6 104,6 99,60 100,6 98,50 96,80 96,80
MW 101,2 102,5 100,7 100,5 99,17 98,14 97,90
Gruppe A: Kraftfutter
SD 3,340 4,350 4,260 4,310 3,160 3,310 3,870 III 99,90 100,2 98,80 98,10 98,70 98,70 98,00 IV 100,9 100,9 99,80 99,80 99,50 98,80 99,20 V 103,3 101,9 101,9 100,5 100,1 98,70 97,60
MW 101,4 101,0 100,2 99,47 99,44 98,74 98,27
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,750 0,860 1,590 1,240 0,710 0,060 0,840 Tabelle I 3: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während ST3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 6 7 8 9 10 I 98,10 99,10 99,80 99,50 99,50 98,40 97,40 II 99,80 102,6 103,0 101,2 101,2 99,50 99,50 VI 99,90 99,90 99,50 98,80 97,60 98,10 97,10
MW 99,27 100,6 100,8 99,84 99,44 98,67 98,00
Gruppe A: Trocken-schnitzel
SD 1,020 1,840 1,940 1,240 1,810 0,740 1,310 III 101,9 102,6 101,9 101,9 100,9 101,6 101,9 IV - - - - - - - V 100,2 100,6 100,2 98,50 99,50 98,80 97,00
MW 101,1 101,6 101,1 100,2 100,2 100,2 99,45
Gruppe B: Kraftfutter
SD 1,210 1,420 1,210 2,410 0,990 1,980 3,470 Tabelle I 4: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während DB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 102,6 101,9 98,70 II 102,6 100,8 100,8 VI 103,4 100,1 99,40
MW 102,9 101,0 99,70
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,500 1,000 1,100 III 100,8 97,00 96,60 IV 101,6 97,80 98,40 V 100,8 97,80 97,70
MW 101,1 97,60 97,60
Gruppe B: Kontrolle
SD 0,500 0,500 1,000
183
IX. Tabellenanhang
Tabelle I 5: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während DB2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6
I 101,5 99,00 98,70 II 103,3 100,8 97,30 VI 104,7 100,1 100,5
MW 103,2 100,0 98,90
Gruppe A: Kraftfutter
SD 1,700 1,000 1,700 III 101,9 98,40 98,70 IV 101,9 98,70 99,10 V 99,10 96,30 97,00
MW 101,0 97,80 98,30
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,700 1,400 1,200 Tabelle I 6: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während DB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 5 1,6 I 98,90 95,80 97,90 II 99,10 97,00 96,70 VI 97,10 - -
98,40 96,40 97,30
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,300 0,600 0,600 III 101,2 98,10 99,10
- - V 100,9 96,40 96,80
MW 101,1 97,30 98,00 Kraftfutter
MW
IV - Gruppe B:
SD 0,300 1,300 1,700 Tabelle I 7: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während IB1
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 103,6 103,6 100,8 102,2 100,5 101,9 II 102,6 102,3 102,3 102,6 100,9 101,6 VI 102,9 104,3 100,8 101,9 102,9 102,2
MW 103,1 103,4 101,3 102,3 101,5 101,9
Gruppe A: Kontrolle
SD 0,520 1,020 0,870 0,360 1,290 0,310 III 101,2 101,6 101,9 101,6 100,5 101,6 IV 101,9 102,6 100,9 100,9 101,2 97,00 V 99,80 99,40 97,40 98,40 98,00 99,10
MW 101,0 101,2 100,1 100,3 99,90 99,24
Gruppe B: Kontrolle
SD 1,070 1,640 2,370 1,690 1,690 2,310
184
IX. Tabellenanhang
Tabelle I 8: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während IB2 Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6
I 101,9 104,4 103,1 101,5 99,10 102,3 II 101,9 102,3 103,3 101,2 101,6 101,9 VI 101,9 102,6 102,9 101,2 99,30 100,8
MW 101,9 103,1 103,1 101,3 100,0 101,7
Gruppe A: Kraftfutter
SD 0 1,140 0,210 0,180 1,390 0,780 III 98,80 99,80 99,00 99,00 96,70 98,10 IV 101,9 101,6 99,40 101,2 103,6 101,9 V 101,2 100,5 99,80 100,5 98,70 99,10
MW 100,7 100,7 99,40 100,3 99,67 99,70
Gruppe B: Trocken- schnitzel
SD 1,630 0,910 0,410 1,130 3,560 1,970 Tabelle I 9: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während IB3
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 96,40 98,10 93,30 99,50 95,40 96,40 II 102,3 102,3 100,9 102,3 100,2 101,6 VI 97,10 97,80 97,50 97,10 95,50 95,80
MW 98,60 99,40 97,24 99,64 97,04 97,94
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 3,230 2,520 3,810 2,610 2,750 3,190 III 102,6 103,6 100,6 102,9 101,6 101,6 IV 101,2 100,9 99,50 98,80 102,3 99,90 V 103,3 102,6 101,2 102,9 101,9 101,9
MW 102,4 102,4 100,5 101,6 102,0 101,2
Gruppe B: Kraftfutter
SD 1,070 1,370 0,870 2,370 0,360 1,080 Tabelle I 10: Chloridkonzentration (mmol/l) im Plasma während IB4
Geschwindigkeit (m/s) Behandlung Pferd 4 1,6 9 1,6 9 1,6 I 100,2 99,20 96,20 98,10 96,80 98,10 II 101,2 100,5 100,9 100,2 100,2 99,50 VI 97,90 98,20 97,20 97,50 98,20 97,70
MW 99,77 99,30 98,10 98,60 98,40 98,44
Gruppe A: Trocken- schnitzel
SD 1,700 1,160 2,480 1,420 1,710 0,950 III 101,9 101,9 100,9 101,6 100,9 100,5 IV - - - - - - V 101,2 101,6 102,8 99,10 99,80 99,50
MW 101,6 101,8 101,9 100,4 100,4 100,0
Gruppe B: Kraftfutter
SD 0,500 0,220 1,350 1,770 0,780 0,710
185
Danksagung Ich danke Herrn Prof. Dr. M. Coenen für die Überlassung des Themas, die jederzeit freundliche Unterstützung und seine allzeit ruhige und besonnene Art. Frau Dr. I. Vervuert möchte ich für ihren unermüdlichen Einsatz während der praktischen Durchführung der Versuche und die kritische Durchsicht der Arbeit herzlich danken. Mein aufrichtiger Dank gilt allen Mitarbeiterinnen, Mitarbeitern und Doktoranden des Instituts für Tierernährung für das hervorragende Arbeitsklima und die Hilfsbereitschaft. Im Speziellen möchte ich mich bei Frau U. Liedtke und Herrn M. Patzer bedanken, die nicht nur die Pferde, sondern auch uns Doktoranden immer herzlich und kompetent betreut haben. Des Weiteren sei Herrn P. Rust und seiner Labormannschaft für die allzeit spontane und freundliche Unterstützung gedankt. Ganz besonders danke ich Mirja Bichmann. Ohne Dich wäre das alles nur halb so schön gewesen! Herrn Prof. Dr. Dr. h.c. H.-P. Sallmann und Frau A. Widdel danke ich für die Möglichkeit zur Durchführung der Insulin-Bestimmung im Institut für Physiologische Chemie. Dem Labor der Rinderklinik, insbesondere Frau I. Grewe, möchte ich für die Bestimmung der Freien Fettsäuren in meinen Proben danken. Der Firma Südzucker AG, Mannheim/Ochsenfurt, sei für die finanzielle Unterstützung meiner Dissertation gedankt. Der Firma deuka, Düsseldorf, danke ich für die Bereitstellung des pelletierten Kraftfutters. Vielen Dank auch an Familie Frahm (Gestüt Helenenhof) für die Bereitstellung der Versuchspferde. Ich möchte mich bei meiner Familie und bei meinen Freunden bedanken, die mich während der Anfertigung dieser Arbeit immer unterstützt haben. Vor allem danke ich Susi und Jürgen für die Korrekturen des Manuskripts, Robert für die Bereitstellung seines Druckers und Kike. Des weiteren danke ich Werner de Riese für die Korrektur der Summary. Meinem Bruder David, der ein großer Held ist, danke ich für die telefonische Betreuung. Einen lieben Dank auch an Familie Frauen und Marita Block – es ist immer schön bei Euch! Danke Tamme. Meinen Eltern gilt der größte Dank, denn sie haben mich zu dem gemacht, was ich bin. Danke für alles.