PENGARUH VARIASI WAKTU INKUBASI SEDIAAN BACA
TERHADAP HASIL PEMERIKSAAN TELUR CACING
SOIL TRANSMITTED HELMINTHS (STH) PADA
METODEKATO KATZ
SKRIPSI
Diajukan sebagai salah satu syarat untuk menyelesaikan
Pendidikan Diploma IV Kesehatan
Program Studi Analis Kesehatan
Diajukan oleh :
NURUL AINI
G1C012020
PROGRAM STUDI D IV ANALIS KESEHATAN
FAKULTAS ILMU KEPERAWATAN DAN KESEHATAN
UNIVERSITAS MUHAMMADIYAH SEMARANG
2016
http://lib.unimus.ac.id
4
Pengaruh Variasi Waktu Inkubasi Sediaan Baca Terhadap Hasil Pemeriksaan
Telur Cacing Soil Transmitted Helminths (STH) Pada Metode Kato Katz
Nurul Aini1, Budi Santosa
2, Fitri Nuroini
3
1 Program Studi D IV Analis Kesehatan Fakultas Ilmu Keperawatan dan Kesehatan
Universitas Muhammadiyah Semarang 2,3
Laboratorium Parasitologi Klinik Fakultas Ilmu Keperawatan dan Kesehatan
Universitas Muhammadiyah Semarang
ABSTRAK
Soil Transmitted Helminths (STH) merupakan cacing usus yang penularannya
melalui tanah. STH antara lain cacing gelang (A. lumbricoides), cacing cambuk
(T. trichiura), dan cacing tambang (N. americanus dan A. duodenale). Pemeriksaan
metode Kato Katz adalah suatu pemeriksaan sediaan tinja ditutup dan diratakan di bawah
cellophane tape yang telah direndam dalam larutan malachite green. Salah satu faktor
dari metode Kato Katz adalah lama waktu inkubasi. Pada sediaan yang basah lapisan
albuminoid, lapisan hialin dan lapisan vitelin belum terlihat jelas karena sediaan belum
menyerap cat malachite green secara sempurna sehingga akan mempengaruhi hasil
pemeriksaan. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh variasi waktu
inkubasi sediaan baca terhadap jumlah telur cacing STH pada metode Kato Katz. Metode
yang digunakan pada penelitian ini adalah metode Kato Katz dengan variasi waktu
inkubasi 5, 15, 25, 35 dan 45 menit. Hasil penelitian menunjukan pada rerata jumlah
cacing STH pada menit 5 adalah 680,00, rerata pada menit 15 adalah 733,33, rerata pada
menit 25 sebesar 886,67, rerata pada menit 35 sebesar 973,33 dan rerata pada menit 45
sebesar 1013,33. Hasil analisis One way ANOVA menunjukan nilai p=0,000, karena
nilai p<0,05 maka terdapat pengaruh variasi waktu inkubasi sediaan baca terhadap
pemeriksaan telur cacing STH pada metode Kato Katz dengan perbedaan waktu antara 5,
15, 25, 35, dan 45 menit. Semakin lama waktu inkubasi maka semakin banyak jumlah
telur cacing yang ditemukan.
Kata Kunci: Kato Katz, Sediaan baca, Telur cacing STH, Variasi waktu inkubasi
http://lib.unimus.ac.id
5
The Effect of Time Variation Incubation Preparations Readability Toward Soil
Transmitted Helminths (STH) Worm Egg in Kato Katz Method
Nurul Aini1, Budi Santosa
2, Fitri Nuroini
3
1. Medical Laboratory Technichal DIV Study Programe of Health and Nursing Faculty
Muhammadiyah University of Semarang. 2,3.
Parasytology Laboratory at Health and Nursing Faculty Muhammadiyah University of
Semarang.
ABSTRACT
Soil Transmitted Helminths (STH) are worm intestines that infect through soil.
STH worm include tape worm, whip worm, mine worm. Kato Katz method is caped feces
preparations study and flating under cellophane tape that sub merged in malachite green
soluble. One of the element of Kato Katz method is incubation duration. In preparations
testing, albuminoid, hyaline and vitelin are not visible because preparations are not
absord malachite green dye perfectly so it will influence examination result. The purpose
of this study is to understand the variation effect of timing incubation preparation toward
number of STH worm egg result in Kato Katz method. Method that using in thi sis Kato
Katz method with incubation timing variation 5, 15, 25, 35 dan 45 menit. Result of this
examination show average STH worm in 5 minutes is 680,00, in 15 minutes the average
is 733,33, in 25 minutes the average is 886,67, in 35 minutes the average is 973,33 and in
45 minutes the average is 1013,33. Analysis result of One Way ANOVA showing value
p=0,000 because value p<0,05so there is effect in variation time incubation preparation
read toward STH worm egg examination in Kato Katz method with time differentiation
about 5, 15, 25, 35 and 45 minutes. Longer the incubation time, more the number of
worm that found.
Keyword: Kato Katz, Read preparation, STH worm egg, Variation time incubation
http://lib.unimus.ac.id
7
KATA PENGANTAR
Assalammua’laikum warohmatullahi wabarokatuh
Segala puji syukur atas kehadirat kepada Allah SWT yang telah
melimpahkan segala rahmat, hidayah dan Inayah-Nya serta Sholawat dan salam
kepada junjungan kita Baginda Rasulullah SAW dan para Sahabat-Nya,
sehingga penulis dapat menyelesaikan proposal tugas akhir yang berjudul
“Pengaruh Variasi Waktu Inkubasi Sediaan Baca Terhadap Hasil Pemeriksaan
Telur Cacing Soil Transmitted Helminths (STH) Pada Metode Kato Katz”.
Penulis menyadari bahwa terselesaikannya Skripsi ini tidak lepas dari
bimbingan, dukungan dan bantuan dari berbagai pihak. Oleh karena itu pada
kesempatan ini, penulis ingin menyampaikan ucapan terima kasih kepada:
1. Bapak Dr. Budi Santosa, SKM, M.Si, Med selaku dosen pembimbing I
beserta Ibu Fitri Nuroini, M.Sc selaku dosen pembimbing II yang telah
memberikan bimbingan, arahan, izin penelitian, kritik dan saran serta
memotivasi selama penyusunan Skripsi ini.
2. Ibu Dra. Sri Sinto Dewi M.Si, Med selaku Ketua Program Studi D IV
Analis Kesehatan Fakultas Ilmu Keperawatan dan Kesehatan Universitas
Muhammadiyah Semarang.
3. Asisten Laboratorium Parasitologi yang telah membantu dan memberikan
dukungan.
4. Ibu, Bapak dan Kakak tercinta yang telah memberikan doa, dukungan moral,
dan material.
5. Sahabat-sahabat yang selalu memberikan semangat dalam penyusunan
Skripsi ini.
http://lib.unimus.ac.id
8
Penulis menyadari masih banyak ketidaksempurnaan dalam penulisan
Skripsi ini. Oleh karena itu, penulis mengharapkan kritik dan saran yang
membangun. Semoga Skripsi ini dapat bermanfaat bagi para pembaca. Amin
Wassalammua’laikum warohmatullahi wabarokatuh
Semarang, September 2016
Nurul Aini
G1C012020
http://lib.unimus.ac.id
9
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN JUDUL ....................................................................................... i
HALAMAN PERSETUJUAN ....................................................................... ii
HALAMAN PENGESAHAN ......................................................................... iii
ABSTRAK ....................................................................................................... iv
HALAMAN PERNYATAAN ......................................................................... vi
KATA PENGANTAR ...................................................................................... vii
DAFTAR ISI .................................................................................................... ix
DAFTAR TABEL ........................................................................................... xi
DAFTAR GAMBAR ....................................................................................... xii
DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................... xiii
BAB I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang ........................................................................................... 1
1.2 Rumusan Masalah ...................................................................................... 3
1.3 Tujuan Penelitian ....................................................................................... 3
1.3.1 Tujuan Umum .................................................................................. 3
1.3.2 Tujuan Khusus ................................................................................. 3
1.4 Manfaat Penelitian ..................................................................................... 4
1.5 Orisinalitas Penelitian ................................................................................ 5
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Soil Transmitted Helminths (STH) ............................................................ 6
2.1.1 Ascaris lumbricoides ....................................................................... 6
2.1.2 Trichuris trichiura ........................................................................... 8
2.1.3 Ancylostoma duodenale dan Necator americanus ........................... 10
2.2 Metode Pemeriksaan Tinja ........................................................................ 13
2.2.1 Metode Direct Slide ......................................................................... 13
2.2.2 Metode Flotasi ................................................................................. 14
2.2.3 Metode Sedimentasi ........................................................................ 14
2.2.4 Metode Kato .................................................................................... 14
2.3 Metode Kato Katz ...................................................................................... 15
2.4 Kerangka Teori .......................................................................................... 17
2.5 Kerangka Konsep ...................................................................................... 18
2.6 Hipotesis .................................................................................................... 18
BAB III. METODE PENELITIAN
3.1 Jenis Penelitian .......................................................................................... 19
3.2 Variabel Penelitian .................................................................................... 19
3.3 Definisi Operasional .................................................................................. 19
3.4 Populasi dan Sampel ................................................................................. 20
3.5 Alat dan Bahan Penelitian ......................................................................... 20
http://lib.unimus.ac.id
10
3.6 Prosedur Penelitian .................................................................................... 20
3.6.1 Persiapan Pembuatan Reagen .......................................................... 20
3.6.2 Pengambilan Sampel Feses ............................................................. 21
3.6.3 Metode Kato Katz ............................................................................ 22
3.7 Rancangan Percobaan ................................................................................ 23
3.8 Alur Penelitian .......................................................................................... 24
3.9 Teknik Pengumpulan dan Analisa Data .................................................... 25
3.10 Tempat dan Waktu Penelitian ................................................................... 25
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil ........................................................................................................... 26
4.2 Pembahasan ............................................................................................... 26
BAB V. SIMPULAN DAN SARAN
5.1 Simpulan .................................................................................................... 29
5.2 Saran .......................................................................................................... 29
DAFTAR PUSTAKA ...................................................................................... 30
LAMPIRAN ..................................................................................................... 32
http://lib.unimus.ac.id
11
DAFTAR TABEL
Halaman
Tabel 1. Orisinalitas Penelitian ......................................................................... 5
Tabel 2. Perbedaan Morfologi A. duodenale dan N. americanus ..................... 11
Tabel 3. Jumlah Telur Cacing STH (EPG) Berdasarkan Variasi Waktu
Inkubasi ............................................................................................... 23
Tabel 4. Rerata Jumlah Telur Cacing STH (EPG) Berdasarkan Variasi
Waktu Inkubasi .................................................................................... 26
Tabel 5. Hasil Pengamatan Jumlah Telur Cacing STH ..................................... 32
Tabel 6. Hasil Uji Normalitas ........................................................................... 33
Tabel 7. Hasil Uji One Way ANOVA ................................................................ 33
http://lib.unimus.ac.id
12
DAFTAR GAMBAR
Halaman
Gambar 1. Morfologi Telur A. lumbricoides .................................................... 8
Gambar 2. Cacing dewasa T. trichiura ............................................................. 9
Gambar 3. Morfologi Telur T. trichiura ........................................................... 9
Gambar 4. Cacing dewasa A. duodenale dan N. americanus ............................ 11
Gambar 5. Telur Cacing Tambang .................................................................... 12
Gambar 6. Larva Rabditiform dan Larva Filariform A. duodenale dan
Larva Rabditiform dan Larva Filariform N. americanus ................ 12
Gambar 7. Bagan Alur Kerangka Teori ............................................................ 17
Gambar 8. Bagan Alur Kerangka Konsep ......................................................... 18
Gambar 9. Bagan Alur Penelitian ..................................................................... 24
Gambar 10. Diagram Jumlah Telur Cacing STH .............................................. 32
Gambar 11. Sampel Feses ................................................................................. 34
Gambar 12. Persiapan Alat dan Bahan Penelitian ............................................ 34
Gambar 13. Proses Penyaringan Feses .............................................................. 34
Gambar 14. Penimbangan Deck Glass .............................................................. 34
Gambar 15. Penimbangan Feses ....................................................................... 34
Gambar 16. Proses Penempelan Cellophane Tape ........................................... 34
Gambar 17. Proses Perataan Feses .................................................................... 35
Gambar 18. Pengamatan Telur Cacing ............................................................. 35
Gambar 19. Sampel X1 Telur Cacing Pada Menit 5 ......................................... 35
Gambar 20. Sampel X1 Telur Cacing Pada Menit 15 ....................................... 35
Gambar 21. Sampel X1 Telur Cacing Pada Menit 25 ....................................... 36
Gambar 22. Sampel X1 Telur Cacing Pada Menit 35 ....................................... 36
Gambar 23. Sampel X1 Telur Cacing Pada Menit 45 ....................................... 36
Gambar 24. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 5 ......................................... 36
Gambar 25. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 15 ....................................... 37
Gambar 26. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 25 ....................................... 37
Gambar 27. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 35 ....................................... 37
Gambar 28. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 35 ....................................... 38
Gambar 29. Sampel X2 Telur Cacing Pada Menit 45 ....................................... 38
Gambar 30. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 5 ......................................... 38
Gambar 31. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 5 ......................................... 38
Gambar 32. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 15 ....................................... 39
Gambar 33. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 15 ....................................... 39
Gambar 34. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 25 ....................................... 39
Gambar 35. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 25 ....................................... 39
Gambar 36. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 35 ....................................... 40
Gambar 37. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 35 ....................................... 40
Gambar 38. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 45 ....................................... 40
Gambar 39. Sampel X3 Telur Cacing Pada Menit 45 ....................................... 40
http://lib.unimus.ac.id
13
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
Lampiran 1.HasilPengamatanTelurCacing STH ............................................... 32
Lampiran 2.Diagram JumlahTelurCacing STH ................................................ 32
Lampiran 3.HasilAnalisis Data ......................................................................... 33
Lampiran 3.DokumentasiPenelitian ................................................................... 34
http://lib.unimus.ac.id
14
BAB I
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Penyakit kecacingan tersebar luas, baik di pedesaan maupun di
perkotaan. Angka infeksinya tinggi, tetapi intensitas infeksinya (jumlah cacing
dalam perut) berbeda. Diperkirakan lebih dari dua milyar orang terinfeksi
cacing di seluruh dunia dan 300 juta diantaranya menderita infeksi berat dengan
150 ribu kematian terjadi setiap tahun akibat infeksi cacing usus atau yang
sering disebut Soil Transmitted Helminths (STH) (Depkes RI, 2007). Prevalensi
kecacingan di Indonesia pada umumnya masih sangat tinggi, terutama pada
golongan penduduk yang kurang mampu dengan sanitasi yang buruk
(Kemenkes RI, 2012). Infeksi kecacingan yang sering terjadi adalah STH, STH
merupakan infeksi cacing usus yang ditularkan melalui tanah. Beberapa jenis
cacing STH antara lain Ascaris lumbricoides (cacing gelang), Trichuris trichiura
(cacing cambuk), Ancylostoma duodenale dan Necator americanus (cacing
tambang) (Gandahusada dkk, 2008).
Infeksi kecacingan dapat diperiksa dengan pemeriksaan feses. Pemeriksaan
feses bertujuan untuk mengetahui ada tidaknya telur cacing ataupun larva yang
infektif. Pemeriksaan feses juga dapat digunakan untuk mendiagnosa tingkat
infeksi cacing parasit usus. Teknik diagnostik merupakan salah satu aspek yang
penting untuk mengetahui adanya infeksi penyakit kecacingan, yang dapat
http://lib.unimus.ac.id
15
ditegakkan dengan cara melacak dan mengenal stadium parasit yang ditemukan
(Gandahusada dkk, 2008).
Pemeriksaan laboratorium tinja untuk menemukan telur parasit memegang
peranan penting untuk memastikan status kecacingan seseorang. Kato Katz
merupakan salah satu metode pemeriksaan tinja yang bisa digunakan di Indonesia.
Metode ini sering digunakan untuk penegakan diagnosa di lapangan karena
memiliki sensitivitas yang tinggi, sederhana, murah, dan sampel yang dibutuhkan
sedikit (Ebrahim, 2007). Pemeriksaan metode Kato Katz adalah suatu
pemeriksaan sediaan tinja ditutup dan diratakan di bawah cellophane tape yang
telah direndam dalam larutan malachite green (Depkes RI, 2006).
Penelitian tentang sensitivitas terhadap metode Kato Katz pernah dilakukan
sebelumnya (Ismail, 2013), akan tetapi penelitian yang membahas tentang
pemeriksaan telur cacing dengan menggunakan variasi waktu inkubasi sediaan
baca pada metode Kato Katz belum pernah dilakukan. Oleh karena itu pada
penelitian ini akan dilakukan pemeriksaan telur cacing dengan menggunakan
variasi waktu inkubasi sediaan baca pada suhu kamar dengan metode Kato Katz.
Diharapkan apabila sediaan yang paling baik saat menit awal maka dapat
mengefektifkan waktu pemeriksaan sehingga penanganan sampel dapat dilakukan
lebih cepat. Sebaliknya apabila sediaan paling baik adalah setelah diinkubasi
pada menit akhir maka akan diperoleh sediaan baca yang paling baik.
http://lib.unimus.ac.id
16
1.2 Rumusan Masalah
Berdasarkan latar belakang masalah tersebut, maka dapat dirumuskan
permasalahan sebagai berikut :
1. Bagaimana jumlah telur cacing STH pada variasi waktu inkubasi (5, 15,
25, 35 dan 45 menit) pada suhu kamar terhadap sediaan baca dengan
metode Kato Katz?
2. Bagaimana pengaruh variasi waktu inkubasi (5, 15, 25, 35 dan 45 menit)
terhadap jumlah telur cacing dengan metode Kato Katz?
1.3 Tujuan Penelitian
Tujuan penelitian ini adalah :
1.3.1 Tujuan Umum
Untuk mengetahui pengaruh variasi waktu inkubasi sediaan baca terhadap
jumlah telur STH dengan metode Kato Katz.
1.3.2 Tujuan Khusus
1. Untuk mengetahui jumlah telur cacing STH pada variasi waktu
inkubasi (5, 15, 25, 35 dan 45 menit) pada suhu kamar terhadap
sediaan baca dengan metode Kato Katz.
2. Untuk mengetahui pengaruh variasi waktu inkubasi (5, 15, 25, 35
dan 45 menit) terhadap jumlah telur cacing dengan metode Kato Katz.
http://lib.unimus.ac.id
17
1.4 Manfaat Penelitian
Dengan hasil yang diperoleh dari penelitian yang dilakukan diharapkan :
1. Institusi Kesehatan
Memberikan informasi kepada para praktisi laboratorium mengenai
variasi waktu inkubasi sediaan baca terhadap pemeriksaan telur cacing
dengan perbedaan waktu inkubasi dalam pemeriksaan tinja pada metode
Kato Katz.
2. Peneliti
Menambah dan meningkatkan wawasan serta kemampuan peneliti
terutama dalam bidang parasitologi tentang pemeriksaan telur cacing
dengan metode Kato Katz, sekaligus menerapkan teori yang telah
diperoleh dengan melakukan penelitian.
3. Ilmu Pengetahuan
Menambah pengetahuan yang berkaitan dengan pengaruh variasi waktu
inkubasi sediaan baca terhadap pemeriksaan telur cacing dengan
perbedaan waktu inkubasi dalam pemeriksaan tinja pada metode Kato
Katz.
http://lib.unimus.ac.id
18
1.5 Orisinalitas Penelitian
Tabel 1. Orisinalitas Penelitian
Judul Penelitian Metode Penelitian Hasil Penelitian
1. Cahya F. Ismail,
2013.
Perbandingan Uji
Sensitifitas dan
Spesifitas Metode
Kato Kualitatif dan
Metode Langsung
Pada Pemeriksaan
Telur Cacing Soil
Transmitted
Helminth
Eksperimental Metode Kato memiliki nilai
sensitifitas yang lebih tinggi
untuk mendeteksi telur cacing
A.lumbricoides dan
T.trichiura. Metode langsung
memiliki nilai sensitifitas
yang lebih tinggi dalam
mendeteksi telur cacing
A.lumbricoides dibandingkan
pada T.trichiura. Kedua
metode pemeriksaan terdapat
hubungan yang sebanding
dalam mendeteksi telur cacing
dengan intensitas infeksi.
2. Alexander B.
Limpomo, 2014.
Perbedaan Metode
Flotasi
Menggunakan
Larutan
dengan Metode Kato
Katz Untuk
Pemeriksaan
Kuantitatif Tinja
Ekperimental;
Randomisasi
Metode Kato-Katz mampu
menemukan jumlah telur
cacing tambang sedikit lebih
banyak dibandingkan metode
Flotasi. Perbedaan jumlah telur
tersebut tidak signifikan baik
dalam menentukan derajat
infeksi maupun dalam statistik.
Berdasarkan dari data penelitian tersebut, penulis memiliki tujuan untuk
melakukan penelitian mengenai jumlah telur cacing STH dan pengaruh variasi
waktu inkubasi (5, 15, 25, 35 dan 45 menit) terhadap jumlah telur cacing dengan
metode Kato Katz. Perbedaan penelitian ini dengan penelitian sebelumnya adalah
variasi waktu inkubasi pada sediaan baca.
http://lib.unimus.ac.id
19
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Soil Transmitted Helminths (STH)
Cacing usus atau sering disebut STH adalah cacing usus yang penularannya
melalui tanah.Tanah merupakan media pertumbuhan telur untuk menjadi
infektif.Jenis parasit yang termasuk dalam STH adalah cacing gelang
(A.lumbricoides), cacing cambuk (T.trichiura), dan cacing tambang
(N.americanus dan A.duodenale) (Gill & Beeching, 2009).Anak-anak merupakan
kelompok umur yang terbanyak menderita infeksiSTH (Marlina &Junus, 2012).
2.1.1 Ascaris lumbricoides
Taksonomi A.lumbricoidesadalah sebagai berikut(Irianto, 2013):
Kingdom : Animalia
Filum : Nemathelmintes
Kelas : Nematoda
Sub kelas : Phasmida
Ordo : Rhabdidata
Familia : Ascarididae
Genus : Ascaris
Spesies : Ascaris lumbricoidesLinnaeus, 1758
A.lumbricoides secara umum dikenal sebagai cacing gelang, merupakan
salah satu jenis dari STH, yaitu cacing yang memerlukan media tanah dalam
proses perkembangannya untuk menjadi infektif. A.lumbricoides merupakan
Nematoda parasit yang paling banyak menyerang manusia.Cacing dewasa
berwarna agak kemerahan atau putih kekuningan, bentuknya silindris memanjang,
ujung anterior tumpul memipih dan ujung posteriornya agak meruncing.Terdapat
http://lib.unimus.ac.id
20
garis-garis lateral yang biasanya mudah dilihat, terdapat sepasang, warnanya
memutih sepanjang tubuhnya (Irianto, 2013).
Cacing dewasa jantan memilikipanjang tubuh 15 cm – 31 cm dengan
diameter 2 mm – 4 mm. Sedangkan cacing betina panjang tubuhnya berkisar
antara 20 cm – 35 cm, terkadang panjangnya mencapai 49 cm, dengan diameter 3
mm – 6 mm. Perbedaan antara cacing betina dan cacing jantan terletak pada
bagian ekornya (ujung posterior), yaitu ujung ekor cacing jantan melengkung ke
arah ventral. Cacing jantan memiliki sepasang spikula dan silindris, sebagai alat
kopulasi dengan panjang2 mm – 3,5 mm dan ujungnya meruncing. Cacing betina
memiliki vulva yang terletak di bagian ventral sepertiga dari panjang tubuh dari
ujung kepala.Seekor cacing gelang betina dapat menghasilkan 200.000 telur per
hari(Irianto, 2013).
Telur cacing yang telah dibuahi (fertilized eggs) berbentuk lonjong,
berukuran 45-70 µ x 35-50 µ, memiliki kulit telur tidak berwarna dan dinding
tebal terdiri dari dua lapis. Telur yang tidak dibuahi (unfertilized egg), memiliki
bentuk yang lebih lonjong berukuran sekitar 80 x 55 µ(Soedarto, 2009).
(1)
(2)
(3)
(4)
Gambar 1.Morfologi telur A.lumbricoides(1) Bentuk normal, (2) Dekortikasi, (3)
Berembrio, (4) Tak fertil (Chiodini dkk, 2003)
http://lib.unimus.ac.id
21
2.1.2 Trichuris trichiura
Taksonomi T. trichiura adalah sebagai berikut (Irianto, 2013):
Kingdom : Animalia
Filum : Nemathelmintes
Kelas : Nematoda
Sub kelas : Aphasmidia
Ordo : Enoplida
Familia : Trichuridae
Genus : Trichuris
Spesies : Trichuris trichiura Linnaeus,1758
T.trichiura merupakan salah satu nematoda usus yang memiliki bentuk
spesifik seperti cambuk sehingga sering disebut sebagai cacing cambuk (whip
worm). Bagian anterior (kepala) halus seperti benang sepanjang 3/5 dari seluruh
tubuh, pada bagian posterior (ekor) tebal berbentuk seperti gagang cambuk sekitar
2/5 panjangbadan. Cacing jantan memiliki panjang tubuh 30-45 mm, sedangkan
cacing betina memiliki panjang tubuh 35-50 mm. Ujung ekor betina berbentuk
bulat, sedangkan cacing jantan memiliki ujung ekor yang melengkung dan
memiliki spikula tunggal. Seekor cacing T.trichiurabetina dapat menghasilkan
telur sekitar 3000 – 10.000 per hari (Irianto, 2013).
Telur T.trichiura memiliki bentuk yang khas berwarna coklat,berbentuk
seperti penampan kuno.Telur T.trichiura ukuran telur sekitar 50x25µ dan
memiliki dua kutub jernih yang menonjol. Telur tersebutakan menjadi telur
matang dalam waktu 3 – 6 minggu dalam lingkungan yang sesuai, yaitu pada
tanah yang lembab dan tempat yang teduh (Irianto, 2013).
http://lib.unimus.ac.id
22
(A)
(B)
Gambar 2. Cacing dewasa T.trichiura(A) Cacing betina dan (B) Cacing jantan
(Chiodini dkk, 2003)
(1)
(2)
(3)
(4)
Gambar 3.Morfologi Telur T.trichiura(1) Telur berembrio, (2) Bentuk morula, (3)
Stadium 2-Sel, (4) Bentuk diagnostik(Onggowaluyo, 2001)
2.1.3 Ancylostoma duodenaledanNecator americanus
Taksonomi A.duodenale adalah sebagai berikut (Irianto, 2013) :
Kingdom : Animalia
Filum : Nemathelmintes
Kelas : Nematoda
Sub kelas : Phasmidia
Ordo : Rhabditida
Familia : Ancylostomatidae
http://lib.unimus.ac.id
23
Genus : Ancylostoma
Spesies : Ancylostoma duodenale Linnaeus, 1758
Taksonomi N.americanus adalah sebagai berikut (Irianto, 2013):
Kingdom : Animalia
Filum : Nemathelmintes
Kelas : Nematoda
Sub kelas : Phasmidia
Ordo : Rhabditida
Familia : Ancylostomatidae
Genus : Necator
Spesies : Necator americanusLinnaeus, 1758
CacingA.duodenale dewasa berukuran kecil, berbentuk silindris, dan
bewarna putih kelabu.Apabila sudah menghisap darah, cacing berwarna
kemerahan. Cacing betina memiliki panjang tubuh 9 – 13 mm, sedang cacing
jantan memiliki panjang tubuh antara 5 – 11 mm.N.americanus lebih kecil dari
A.duodenale. Cacing N.americanus dan A.duodenale relatif memiliki kutikula
yang tebal.Bagian ujung belakang yang jantan memiliki bursa kopulatriks seperti
jari yang berguna sebagai alat pemegang pada waktu kopulasi, sedangkan yang
betina memiliki bentuk ujung ekor lurus dan lancip.
(A)
http://lib.unimus.ac.id
24
(B)
Gambar 4. Cacing dewasa (A)A.duodenale dan(B) N.americanus(Chiodini dkk,
2003)
Berikut adalah tabel morfologi A. duodenale dan N. americanus :
Tabel 2.Perbedaan Morfologi A.duodenale dan N.americanus
Organ Ancylostoma duodenale Necator americanus
Mulut Mempunyai 2 pasang gigi Mempunyai 2 lempeng
yang berbentuk bulan
sabit
Vulva Terletak di belakang
pertengahan badan
Terletak di depan
pertengahan badan
Posterior betina Mempunyai jarum Tanpa jarum
Bursa kopulatriks Seperti payung Berlipat dua
Spikula Letak berjauhan, ujung
meruncing
Berdempetan, ujungnya
berkait
64 x 40
Gambar 5.Telur Cacing Tambang(Chiodini dkk, 2003)
http://lib.unimus.ac.id
25
Morfologi telur cacing tambang berbentuk lonjong, dengan ukuran sekitar
64x40 µ.Telur tidak berwarna dan berdinding tipis yang tembus sinar.(Soedarto
2011).
(A)
(B)
Gambar 6.(A) Larva rabditiform dan larva filariformA.duodenale, (B) Larva
rabditiform dan larva filariform N.americanus(Chiodini dkk, 2003)
Siklus hidup cacing A.duodenale dan N.americanus memiliki dua stadium
larva, yaitu larva rabditiform yang tidak infektif dan larva filariform yang infektif.
Larva rabditiform memiliki bentuk tubuh agak gemuk dengan panjang sekitar250
µdan larva filariform yang berbentuk langsing panjang tubuhnya sekitar 600
µ(Soedarto, 2009).
2.2 Metode Pemeriksaan Tinja
Dasar dari metode pemeriksaan tinja yaitu pemeriksaan langsung dan
tidak langsung.Pemeriksaan langsung adalah pemeriksaan yang langsung
dikerjakan setelah tinja didefekasikan.Pemeriksaan langsung dibagi menjadi dua
yaitu makroskopik dan mikroskopik.Pemeriksaan langsung makroskopis
dilakukan untuk memeriksa adanya darah atau lendir, bau, warna dan konsistensi
tinja.Pemeriksaan langsung mikroskopik dilakukan setelah pemeriksaan
http://lib.unimus.ac.id
26
makroskopik.Contoh metode pemeriksaan langsung mikroskopik adalah direct
slide dan Kato Katz.Pemeriksaan tidak langsung adalah pemeriksaan yang dapat
dilakukan beberapa saat atau beberapa hari setelah tinja didefekasikan.Contoh
metode pemeriksaan tidak langsung adalah flotasi, sedimentasi, Stoll, dan lain-
lain.
Metode pemeriksaan tinja juga dibagi menjadi metode kuantitatif dan
metode kualitatif.Metode kualitatif berguna untuk menentukan positif atau negatif
kecacingan.Metode yang biasa digunakan untuk pemeriksaan kualitatif adalah
metode direct slide, metode flotasi dan metode sedimentasi.Metode kuantitatif
berguna untuk menentukan intensitas infeksi atau berat ringannya penyakit
dengan mengetahui jumlah telur per gram tinja.Metode yang biasa digunakan
untuk pemeriksaan kuantitatif adalah metode Kato-Katz dan metode Stoll
(Djaenudin, 2009).
2.2.1 Metode Direct Slide
Metode ini dipergunakan untuk pemeriksaan secara cepat dan baik untuk
infeksi berat, tetapi untuk infeksi ringan sulit untuk menemukan telur.
Digunakanlarutan NaCl fisiologis (0,9%) atau eosin 2%. Eosin 2% dimaksudkan
untuk lebih jelas membedakan telur cacing dengan kotoran disekitarnya
(Djaenudin, 2009).
2.2.2 Metode Flotasi
Metode ini menggunakan larutan garam jenuh atau gula jenuh sebagai alat
untuk mengapungkan telur.Metode ini terutama dipakai untuk pemeriksaan tinja
yang mengandung sedikit telur.Cara kerja dari metode ini berdasarkan Berat Jenis
http://lib.unimus.ac.id
27
(BJ) telur-telur yang lebih ringan daripada BJ larutan yang digunakan sehingga
telur-telur terapung dipermukaan, dan juga untuk memisahkan partikel-partikel
yang besar yang terdapat dalam tinja (Djaenudin, 2009).
2.2.3 Metode Sedimentasi
Metode ini merupakan metode yang baik untuk memeriksa sampel tinja
yang sudah lama.Prinsip dari metode ini adalah dengan adanya gaya sentrifugasi
dapat memisahkan antara suspensi dan supernatannya sehingga telur cacing dapat
terendapkan (Djaenudin, 2009).
2.2.4 Teknik Kato (Kato dan Miura, 1954)
Teknik Kato sering pula disebut dengan teknik sediaan tebal,karena teknik
ini dibuat tidak menggunakan kaca penutup.Teknik inihanya dapat diaplikasikan
untuk spesimen feses yang memilikikonsistensi minimal lembek hingga agak
keras.Apabila spesimen berupa feses cair, teknik kato tidak tepat dijadikan
pilihan.Kelebihan teknik Kato adalah dapat melakukan penghitunganjumlah telur
cacing dari spesimen fesesyang diperiksa sehingga dapat diketahui derajat infeksi
penderita.
Prinsip pemeriksaan ini adalah feses direndam pada larutanmalachite green,
dikeringkan dengan kertas saring dan didiamkan 20-30 menit pada inkubator
dengan suhu 40o
C untukmendapatkantelur cacing dan larva(Hadidjaja, 1990).
2.3 Metode Kato-Katz
(World Health Organization) WHO merekomendasikan dua jenis
pemeriksaan yang dapat mendeteksi adanya telur cacing dalam tinja yaitu Direct
Thin Smear (pemeriksaan langsung apus tipis) dan Cellophan Thick Smear
http://lib.unimus.ac.id
28
(pemeriksaan apus tebal menggunakan selofan) atau yang lebih dikenal dengan
metode Kato Katz (WHO, 2006).Metode Kato Katz pertama kali diperkenalkan
oleh Kato dan Miura pada tahun 1954.Metode ini diyakini sangat berguna dan
efisien untuk mendiagnosa adanya kasus infeksi cacing usus. Metode ini relatif
mudah dilakukan tetapi menuntut ketelitian karena pembuatan sediaan apus tebal
dari tinja ini sangat dipengaruhi oleh kelembapan dan suhu setempat (Indra&
Wistiani, 2013).
Prinsip dari metode ini sama dengan metode direct slide dengan
penambahan pemberian cellophane tapeyang sudah direndam dengan malachite
green sebagai latar (Cheesbrough, 1991). Metode Kato Katz menggunakan
gliserin sebagai salah satureagennya, oleh karena itu sediaan harus sesegera
mungkin diperiksa dengan mikroskopsetelah pembuatan sediaan apus tebal
dengan cellophane tape.Sediaan yang lain yang belum diperiksa sebaiknya
disimpan pada suhu kamar dan disimpan dalam kotak yang tertutup (Indra &
Wistiani, 2013).Keberadaan telur cacing tambang pada sediaan bacaharus dibaca
dalam waktu 30-60 menit(Levecke dkk, 2011).
Kelebihan metode Kato Katz sangat sensitif, memiliki variansi minimal
antara sampel, sederhana untuk dilakukan dan sesuai untuk studi lapangan.
Metode Kato Katz kemudian diadopsi oleh WHO untuk melakukan diagnosis
kuantitatifdan kualitatif dari infeksi intestinal yang disebabkan oleh cacing,
sepertiA.lumbricoides,T.trichiura, A.deodenale, N.americanus dan S. mansoni,
terutama dalam program pengendalian dan studi kemoterapi. Metode Kato Katz
kemudian dikonfirmasi oleh banyak pekerja laboratorium dari berbagai belahan
http://lib.unimus.ac.id
29
dunia.Akan tetapi, metode Kato Katz memiliki kelemahan tidak mampu
mendeteksi larva dan kista protozoa sehingga beberapa survei data yang
menggunakan metode Kato Katz biasanya tidak dapat mendeteksi keberadaan
infeksi protozoa(Ebrahim, 2007).
Ada beberapa faktor yang mempengaruhi metode Kato Katz antara lain
volume feses, lama waktu inkubasi, sediaan baca, suhu dan kelembapan.Volume
feses merupakan kuantifikasi intensitas telur cacing yang diperoleh pada
pemeriksaan berdasarkan volume feses, apabila volume feses berlebihan maka
akan mempengaruhi hasil pemeriksaan.Lama waktu inkubasi berpengaruh pada
sediaan baca, semakin lama waktu inkubasi akan diperoleh sediaan baca yang
baik tetapi apabila telur cacing tambang sudah terlihat pada sediaan baca maka
harus segera dibaca dalam kurun waktu 30-60 menit. Apabila melewati batas
waktu tersebut (lebih dari 60 menit) maka telur cacing tambang akan menghilang.
Pada sediaan yang basah lapisan albuminoid, lapisan hialin dan lapisan vitelin
belum terlihat jelas karena sediaan belum menyerap cat malachite green secara
sempurna sehingga akan mempengaruhi hasil pemeriksaan telur cacing pada
metode Kato Katz.Suhuyang digunakan pada pemeriksaan telur cacing dengan
metode Kato Katz menggunakan suhu kamar.Metode Kato Katz relatif mudah
dilakukan, tetapi menuntut ketelitian karena pembuatan sediaan apus tebal dari
tinja ini sangat dipengaruhi oleh kelembapan.
http://lib.unimus.ac.id
30
2.4 Kerangka Teori
Gambar 7. Bagan Alur Kerangka Teori
2.5 Kerangka Konsep
Gambar 8.Bagan Alur Kerangka Konsep
Kualitas sediaan
1. Waktu inkubasi
2. Bentuk
morfologi
3. Hasil
pemeriksaan
telur cacing
Metode Kato
Katz
Variasi waktu inkubasi
Hasil pemeriksaaan telur cacing
STH
Variasi waktu
inkubasi
sediaan baca
Hasil pemeriksaan telur cacing
STH
http://lib.unimus.ac.id
31
2.6 Hipotesis
Hipotesis yang diajukan dalam penelitian ini adalah
1. Jumlah telur cacing STH paling banyak ditemukan pada menit akhir.
2. Semakin lama waktu inkubasi maka semakin banyak jumlah telur cacing
yang ditemukan.
http://lib.unimus.ac.id
32
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1 Jenis Penelitian
Jenis penelitian ini adalah penelitian eksperimen, karena pada penelitian ini
dilakukan pengamatan sediaan baca telur cacing STH dengan metode Kato Katz
berdasarkan pada variasi waktu inkubasi.
3.2 Variabel Penelitian
Variabel bebas dalam penelitian ini adalah variasi waktu inkubasi sediaan
baca. Variabel terikat dalam penelitian ini adalah hasil pemeriksaan telur cacing
Soil Transmitted Helminths.
3.3 Definisi Operasional
1. Telur cacing STH adalah cacing usus yang siklus hidupnya melalui
tanah termasuk dalam kelas Nematoda yaitu: A. lumbricoides,
T. trichiura, A. duodenale, N. americanus.
2. Metode Kato Katz adalah suatu pemeriksaan sediaan tinja yang ditutup
dan diratakan di bawah cellophane tape yang telah direndam dalam
larutan malachite green.
3. Waktu sediaan baca adalah lamanya waktu inkubasi yang digunakan
untuk mengetahui kandungan sediaan baca telur cacing pada metode
Kato Katz, dalam penelitian ini digunakan waktu inkubasi selama 5, 15,
25, 35 dan 45 menit.
http://lib.unimus.ac.id
33
3.4 Populasi dan Sampel
Populasi dalam penelitian ini adalah petani dan pekerja batu bata di
Kabupaten Grobogan. Sampel dalam penelitian ini adalah petani dan pekerja batu
bata di Kabupaten Grobogan yang berjumlah 3 orang yang dipilih secara acak
dengan teknik sampling menggunakan Simple Random Sampling. Banyaknya
sampel diperoleh dari hasil perhitungan dengan menggunakan rumus
(Hanafiah, 2003) yaitu ( t – 1 ) ( r – 1 ) ≥ 15.
3.5 Alat dan Bahan Penelitian
Alat yang digunakan untuk penelitian yaitu selofan selebar ± 2,5 x 3 cm,
kawat kasa selebar ± 3 x 4 cm untuk menyaring tinja, kertas karton tebal selebar ±
3 x 4 cm di tengah berlubang, isi lubang karton telah diketahui sebelumnya ± 50
mg, timbangan, obyek glas, tutup botol dari karet, kertas saring selebar ± 10 x 10
cm, kertas berminyak tidak tembus air selebar ± 10 x 10 cm, lidi, mikroskop.
Bahan yang digunakan untuk penelitian yaitu larutan malachite green 3%,
larutan gliserin, tinja yang akan diperiksa.
3.6 Prosedur Penelitian
3.6.1 Persiapan Pembuatan Reagen
1) Pembuatan Larutan Kato Katz
Larutan Kato Katz adalah cairan yang digunakan untuk merendam selofan
atau untuk memulas cellophane tape dalam pemeriksaan tinja. Untuk membuat
larutan Kato Katz diperlukan campuran dengan perbandingan: aquadest 100
bagian, gliserin 100 bagian, dan malachite green 3% sebanyak 1 bagian. Cara
http://lib.unimus.ac.id
34
pembuatannya adalah ditimbang malachite green sebanyak 3 gram, masukan ke
dalam beaker glass dan tambahkan aquadest 100 ml sedikit demi sedikit lalu
diaduk dengan sendok kecil hingga homogen, maka telah diperoleh malachite
green 3%. Kemudian 100 ml aquadest dimasukan ke dalam waskom kecil,
kemudian 100 ml gliserin ditambahkan sedikit demi sedikit dan ditambahkan
dengan 1 ml larutan malachite green 3%, kemudian diaduk sampai homogen,
sehingga diperoleh larutan Kato Katz 201 ml. (Ismid dkk, 2000)
2) Cara Merendam Cellophane Tape
Cara merendam cellophane tape adalah dibuat bingkai kayu segi empat sesuai
dengan waskom plastik kecil. Kemudian plastik mika dililitkan pada bingkai
tersebut. Cellophane tape direndam selama 18-24 jam dalam larutan Kato Katz.
Pada waktu sudah dipakai, menggunting selofan (digantikan dengan plastik jenis
mika) yang sudah direndam (Ismid dkk, 2000).
3.6.2 Pengambilan Sampel Feses
Setelah memberikan edukasi kepada responden, peneliti memberikan botol
tinja kepada responden yang masing-masing telah diberikan label nama dari tiap
responden. Kemudian memberikan edukasi pada responden tata cara pengambilan
feses sebagai berikut, pengambilan feses sebaiknya dianjurkan pada pagi hari.
Kemudian pasien diminta untuk berkemih terlebih dahulu. Feses yang akan
diambil tidak boleh bercampur dengan air kloset maupun urin. Kemudian feses
ditampung pada pot steril bermulut lebar dan berpenutup, yang telah berisi
formalin 10%. Selanjutnya peneliti menerima tabung berisi feses dari pasien.
Feses dikirim ke Laboratorium Parasitologi UNIMUS.
http://lib.unimus.ac.id
35
3.6.3 Metode Kato Katz
Cara kerja pemeriksaan feses metode Kato Katz adalah kertas saring
diletakkan di atas kertas berminyak di meja laboratorium. Tinja diambil
sebanyak-banyaknya dengan lidi dan diletakkan di atas kertas minyak yang
dialasi dengan kertas saring di meja laboratorium. Kemudian kawat kasa
diletakkan di atas tinja. Obyek glass diambil dan kertas karton diletakkan di atas
obyek glass, lubang kertas karton harus berada di tengah obyek glass. Kawat kasa
ditekan dengan menggunakan lidi di atas tinja, sehingga tinja tersaring keluar di
atas kawat kasa. Selanjutnya dengan lidi tinja di atas kawat kasa dimasukkan ke
dalam lubang kertas karton. Lubang karton diisi sampai rata dengan permukaan
kertas-kertas karton. Kertas karton diangkat dan tinja dalam lubang akan
tertinggal di atas obyek glass. Tinja ditutup di atas obyek glass dengan selofan.
Selofan ditekan dengan obyek glass lain atau tutup botol dari karet untuk
meratakan tinja di bawah selofan. Sediaan diletakkan secara terbalik di atas kertas
saring, Sediaan diinkubasi selama 20 – 30 menit. Sediaan diamati dengan
mikroskop pada perbesaran 10x. Telur cacing pada sediaan dihitung kemudian
jumlah telur cacing yang diperoleh dimasukkan ke dalam rumus (Ismid dkk,
2000) berikut: jumlah telur cacing x
= jumlah telur per gram tinja (EPG).
http://lib.unimus.ac.id
36
3.7 Rancangan Percobaan
Rancangan percobaan dilakukan untuk mengetahui hasil jumlah telur cacing
STH berdasarkan variasi waktu inkubasi. Tabel rancangan percobaan disusun
sebagi berikut :
Tabel 3. Jumlah Telur Cacing STH (EPG) Berdasarkan Variasi Waktu Inkubasi
Waktu Inkubasi
Jumlah Telur STH (EPG)
Sampel X1 Sampel X2 Sampel X3
5 Menit
15 Menit
25 Menit
35 Menit
45 Menit
http://lib.unimus.ac.id
37
3.8 Alur Penelitian
Gambar 9. Bagan Alur Penelitian
Sampel Feses
Inkubasi
5 menit
Kualitas sediaan
Penghitungan jumlah telur per gram
Analisis data
Petani dan Pekerja Batu Bata
Inkubasi
15 menit
Inkubasi
35 menit
Inkubasi
25 menit
Inkubasi
45 menit
Metode Kato Katz
http://lib.unimus.ac.id
38
3.9 Teknik Pengumpulan dan Analisa Data
Data yang diperoleh merupakan data yang diperoleh dengan cara
mengambil sampel pada petani dan pekerja batu bata di Kabupaten Grobogan.
Sampel tersebut kemudian dibawa ke Laboratorium untuk diperiksa menggunakan
mikroskop pada perbesaran 10x dan 40x. Pengamatan mikroskopik dilakukan
untuk melihat ada tidaknya telur cacing STH. Apabila positif terdapat telur cacing
STH kemudian dilakukan pemeriksaan telur cacing dengan metode Kato Katz
dengan waktu inkubasi yang berbeda. Selanjutnya jumlah telur cacing STH yang
diperoleh dimasukkan dalam perhitungan EPG (Egg Per Gram) atau telur per
gram tinja, diperoleh nilai rata-ratanya dan dimasukkan ke dalam tabel.
Data yang terkumpul berupa angka yaitu hasil pemeriksaan telur cacing
STH yang ditemukan pada feses. Data tersebut kemudian dianalisis menggunakan
uji kenormalan dengan menggunakan uji Shapiro Wilk. Apabila data yang
diperoleh berdistribusi normal, dilanjutkan dengan uji One Way ANOVA.
3.10 Tempat dan Waktu Penelitian
Tempat penelitian dilaksanakan di Laboratorium Parasitologi Fakultas Ilmu
Keperawatan dan Kesehatan Universitas Muhammadiyah Semarang. Waktu
penelitian dilaksanakan selama 3 bulan dari bulan Maret sampai Mei 2016.
http://lib.unimus.ac.id
39
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil
Hasil pengamatan pada sediaan baca terhadap pemeriksaan telur cacing STH
pada metode Kato Katz dengan variasi waktu inkubasi antara 5, 15, 25, 35, dan 45
menit dapat dilihat pada tabel di bawah ini :
Tabel 4. Rerata Jumlah Telur Cacing STH (EPG) Berdasarkan Variasi Waktu
Inkubasi
No Perlakuan Rata-rata
telur cacing STH (EPG)
1 5 Menit 680,00
2 15 Menit 733,33
3 25 Menit 886,67
4 35 Menit 973,33
5 45 Menit 1013,33
Berdasarkan hasil penelitian diperoleh rerata jumlah telur cacing STH
pada menit 5 adalah sebesar 680,00, rerata jumlah telur cacing STH menit 15
adalah 733,33, rerata jumlah telur cacing STH menit 25 sebesar 886,67, rerata
telur cacing STH menit 35 sebesar 973,33 dan rerata telur cacing STH menit 45
sebesar 1013,33.
4.2 Pembahasan
Berdasarkan Tabel 4 dapat disimpulkan bahwa pada rerata jumlah telur
cacing STH pada menit 45 menunjukkan jumlah telur cacing STH terbanyak. Hal
tersebut menunjukkan bahwa semakin lama waktu inkubasi maka semakin banyak
telur cacing STH yang ditemukan, karena pada menit 45 cat malachite green telah
http://lib.unimus.ac.id
40
menyerap secara sempurna sehingga lapisan albuminoid, lapisan hialin, lapisan
vitelin pada telur cacing sudah terlihat jelas. Sedangkan pada jumlah telur cacing
STH pada menit 5, menit 15, menit 25 dan menit 35 menunjukkan hasil telur
cacing lebih sedikit, karena pada sediaan baca terlihat masih basah dan cat
malachite green belum menyerap secara sempurna sehingga lapisan albuminoid,
lapisan hialin, lapisan vitelin pada telur cacing belum terlihat jelas.
Sediaan baca pada pemeriksaan telur cacing STH dengan metode Kato
Katz diperoleh kualitas yang paling baik pada menit 45. Pada menit 45 cat
malachite green telah menyerap secara sempurna sehingga lapisan albuminoid,
lapisan hialin, lapisan vitelin pada telur cacing STH akan tampak jelas.
Berdasarkan hasil uji Shapiro Wilk (terlampir pada lampiran 3), diperoleh
hasil bahwa jumlah telur cacing STH pada variasi waktu inkubasi (5, 15, 25, 35
dan 45 menit) terhadap sediaan baca dengan metode Kato Katz berdistribusi
normal dengan nilai signifikasi sebagai berikut: signifikasi pada menit 5 p=0,363,
signifikasi menit 15 p=0,878, signifikasi menit 25 p=0,463, signifikasi menit 35
p=0,463, signifikasi menit 45 p=0,637, karena nilai (p>0,05) maka dapat
disimpulkan bahwa data berdistribusi normal.
Data yang diperoleh berdistribusi normal, sehingga dilanjutkan dengan uji
One Way ANOVA, untuk mengetahui ada tidaknya pengaruh variasi waktu
inkubasi (5, 15, 25, 35 dan 45) terhadap jumlah telur cacing dengan metode Kato
Katz. Berdasarkan uji One Way ANOVA diperoleh nilai yang signifikan yaitu
P=0,000, sehingga 0,000 < 0,05. Berarti H0 ditolak dan Ha diterima, maka dapat
disimpulkan bahwa terdapat pengaruh yang signifikan antara variasi waktu
http://lib.unimus.ac.id
41
inkubasi sediaan baca terhadap jumlah telur cacing pada metode Kato Katz
dengan perbedaan waktu inkubasi antara 5, 15, 25, 35, dan 45 menit.
Faktor – faktor yang mempengaruhi metode Kato Katz adalah lama waktu
inkubasi berpengaruh pada sediaan baca, semakin lama waktu inkubasi akan
diperoleh sediaan baca yang baik tetapi apabila telur cacing tambang sudah
terlihat pada sediaan baca maka harus segera dibaca dalam kurun waktu 30-60
menit. Apabila melewati batas waktu tersebut (lebih dari 60 menit) maka telur
cacing tambang akan menghilang (Acharya, 2016).
http://lib.unimus.ac.id
42
BAB V
SIMPULAN DAN SARAN
5.1 Simpulan
Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa:
1. Rerata jumlah telur cacing STH pada menit 5 adalah sebesar 680,00, menit
15 adalah 733,33, menit 25 sebesar 886,67, menit 35 sebesar 973,33 dan
menit 45 sebesar 1013,33, sehingga telur cacing STH paling banyak
ditemukan pada menit 45.
2. Semakin lama waktu inkubasi maka semakin banyak jumlah telur cacing
yang ditemukan.
5.2 Saran
Saran penulis untuk penelitian selanjutnya agar dapat menggunakan jumlah
sampel yang lebih besar untuk meningkatkan validitas penelitian.
http://lib.unimus.ac.id
43
DAFTAR PUSTAKA
Acharya, T. 2016. Kato Katz Technique: Principle, Procedure and Results.
http://microbeonline.com/kato-katz-technique-principle-procedure-results/.
Lab Diagnosis of parasitic disease. Diakses tanggal 7 Juli 2016.
Cheesbrough, M. 1991. Techniques used to Identify Parasites, Medical
Laboratory Manual for Tropical Countries. Edisi 2. Butterworth-Heinemann
Ltd., Oxford, UK.
Chiodini, P.L. Moody, A.H. Manser, D.W. 2003. Atlas Of Medical Helminthology
And Protozoology. Edisi Empat. Churschill Livingstone. London.
Departemen Kesehatan RI, 2007. Pedoman Pengendalian Kecacingan. Direktorat
Jenderal PP & PL. Jakarta.
Departemen Kesehatan RI, 2006. Diagnosa Infeksi Cacing Tambang. Jurnal
Kesehatan Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan. Vol. 16 (4): 23
Djaenudin N., Ridad A. 2009. Parasitologi Kedokteran: Ditinjau dari Organ
Tubuh yang Diserang. Penerbit Buku Kedokteran EGC. Jakarta.
Ebrahim A., El-Morshedy H., Omer E., El Daly S., Barakat R. 2007. Evaluation
of The Kato Katz Thick Smear and Formol Ether Sedimentation Techniques
For Quantitative Diagnosis of Schistosoma Mansoni. American Journal of
Tropical Medicine and Hygiene. 57: 706-708.
Gandahusada, S., Herry D.I, Wita P. 2008. Parasitologi Kedokteran. Edisi Tiga.
Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia, Jakarta.
Gill, G. dan Beeching, N. 2009. Lecture Notes Tropical Medicine. 6th
Edition.
Blackwell Publishing.
Hadidjaja, P. 1990. Penuntun Laboratorium Parasitologi Kedokteran. Fakultas
Kedokteran Universitas Indonesia, Jakarta.
Hanafiah K.A, 2003. Rancangan Percobaan, Teori dan Aplikasi. Fakultas
Pertanian Universitas Sriwijaya. Palembang. PT Raja Grafindo Persada.
Jakarta.
Indra, K.A dan Wistiani. 2013. Parasites Load Soil Transmitted Helminth dengan
Kadar Hemoglobin. Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Diponegoro.
Semarang.
http://lib.unimus.ac.id
44
Ismail, C.F. 2013. Perbandingan Uji Sensitivitas dan Spesifitas Metode Kato
Kualitatif dan Metode Langsung Pada Pemeriksaan Telur Cacing Soil
Transmitted Helminth. Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Gajah
Mada. Yogyakarta.
Ismid, I.S., Winita, R., Sutanto, I., Zulhasril. Sjarifuddin, P.K. 2000. Penuntun
Praktikum Parasitologi Kedokteran. Fakultas Kedokteran Universitas
Indonesia. Jakarta.
Irianto, K. 2013. Parasitologi Medis. Alfabeta. Bandung.
Kementrian Kesehatan RI. 2012. Pedoman Pengendalian Kecacingan. Direktorat
Jenderal PP & PL. Jakarta. Hal: 9.
Levecke B., Jerzy M., Sitara S., Marco A., Shaali M. 2011. A Comparison of
the Sensitivity and Fecal Egg Counts of the McMaster Egg Counting and
Kato-Katz Thick Smear Methods for Soil Transmitted Helminths.
Plos Journal. Negleted Tropical Disease. Vol. 5 (6 ) : e1201.
Limpomo, A.B. 2014. Perbedaan Metode Flotasi Menggunakan Larutan
dengan Metode Kato-Katz Untuk Pemeriksaan Kuantitaf Tinja. Skripsi
Fakultas Kedokteran Universitas Diponegoro. Semarang.
Linnaeus, C. The Taxonomicon. http://taxonomicon.taxonomy.nl/Reference.aspx.
Diakses tanggal 20 Januari 2016.
Marlina, L dan W. Junus. 2012. Hubungan Pendidikan Formal, Pengetahuan Ibu
dan Sosial Ekonomi Terhadap Infeksi Soil Transmitted Helminths Pada
Anak Sekolah Dasar Di Kecamatan Seluma Timur Kabupaten Seluma
Bengkulu. Jurnal Ekologi Kesehatan. Vol. 11 (1) : 1 – 7.
Onggowaluyo, J. S. 2001. Parasitologi Medik I (Helmintologi) : Pendekatan
Aspek Identifikasi, Diagnosis, dan Klinik. Penerbit Buku Kedokteran EGC.
Jakarta.
WHO. 2006. Soil Transmitted Helminths. http://who.int/intestinal_worms/en.
Diakses tanggal 26 Oktober 2015.
Soedarto. 2009. Penyakit Menular Di Indonesia. Sagung Seto. Jakarta.
Soedarto, 2011. Buku Ajar Helmintologi Kedokteran. Airlangga University Press.
Surabaya.
http://lib.unimus.ac.id
45
LAMPIRAN
Lampiran 1. Hasil Pengamatan Jumlah Telur Cacing STH
Tabel 5. Hasil Pengamatan Jumlah Telur Cacing STH
Kelompok
Jumlah Telur Cacing STH (EPG)
5
menit
15
menit
25
menit
35
menit
45
menit
X1 700 780 920 960 1000
X2 720 860 900 1020 1080
X3 620 680 840 940 960
Lampiran 2. Diagram Jumlah Telur Cacing STH
Gambar 10. Diagram Jumlah Telur Cacing STH
0
200
400
600
800
1000
1200
5 menit 15 menit 25 menit 35 menit 45 menit
Jumlah Telur Cacing STH (EPG)
Axi
s Ti
tle
Jumlah Telur Cacing STH
X1
X2
X3
http://lib.unimus.ac.id
46
Lampiran 3. Hasil Analisis Data
Tabel 6. Hasil Uji Normalitas
Tests of Normality
Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk
Statistic df Sig. Statistic df Sig.
Jumlah telur cacing STH menit 5 .314 3 . .893 3 .363
Jumlah telur cacing STH menit 15 .196 3 . .996 3 .878
Jumlah telur cacing STH menit 25 .292 3 . .923 3 .463
Jumlah telur cacing STH menit 35 .292 3 . .923 3 .463
Jumlah telur cacing STH menit 45 .253 3 . .964 3 .637
a. Lilliefors Significance Correction
Tabel 7. Hasil Uji One Way ANOVA
ANOVA
Jumlah telur cacing STH
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 230506.667 4 57626.667 15.890 .000
Within Groups 36266.667 10 3626.667
Total 266773.333 14
http://lib.unimus.ac.id
47
Lampiran 4. Dokumentasi Penelitian
Gambar 11. Sampel Feses
Gambar 12. Persiapan Alat dan Bahan
Penelitian
Gambar 13. Proses Penyaringan Feses
Gambar 14. Penimbangan Deck Glass
Gambar 15. Penimbangan Feses
Gambar 16. Proses Penempelan
Cellophane Tape
http://lib.unimus.ac.id
48
Gambar 17. Proses Perataan Feses
Gambar 18. Pengamatan Telur Cacing
Gambar 19. Sampel X1 Telur Cacing
Pada menit 5
Gambar 20. Sampel X1 Telur Cacing
Pada Menit 15
http://lib.unimus.ac.id
49
Gambar 21. Sampel X1 Telur Cacing
Pada Menit 25
Gambar 22. Sampel X1 Telur Cacing
Pada Menit 35
Gambar 23. Sampel X1 Telur Cacing
Pada Menit 45
Gambar 24. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 5
http://lib.unimus.ac.id
50
Gambar 25. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 15
Gambar 26. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 25
Gambar 27. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 35
Gambar 28. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 35
http://lib.unimus.ac.id
51
Gambar 29. Sampel X2 Telur Cacing
Pada Menit 45
Gambar 30. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 5
Gambar 31. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 5
http://lib.unimus.ac.id
52
Gambar 32. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 15
Gambar 33. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 15
Gambar 34. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 25
Gambar 35. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 25
http://lib.unimus.ac.id
53
Gambar 36. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 35
Gambar 37. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 35
Gambar 38. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 45
Gambar 39. Sampel X3 Telur Cacing
Pada Menit 45
http://lib.unimus.ac.id