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CITOGENÉTICA EN EL MIELOMA MÚLTIPLE CITOGENÉTICA EN EL MIELOMA MÚLTIPLE Esperanza Such Lab. Citogenética

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Page 1: Esperanza Such Lab. Citogenética. Introducción El mieloma múltiple es una neoplasia caracterizada: por la acumulación incontrolada de células plasmáticas

CITOGENÉTICA EN EL MIELOMA MÚLTIPLECITOGENÉTICA EN EL MIELOMA MÚLTIPLE

Esperanza Such Lab. Citogenética

Page 2: Esperanza Such Lab. Citogenética. Introducción El mieloma múltiple es una neoplasia caracterizada: por la acumulación incontrolada de células plasmáticas

Introducción

El mieloma múltiple es una neoplasia caracterizada:

• por la acumulación incontrolada de células plasmáticas clonales en MO, y

• por una gran heterogeneidad en cuanto a las alteraciones genéticas que presentan.

Cabe pensar que bajo este termino se engloben enfermedades diferentes.

Se van a revisar los conocimientos más destacados que han dado lugar a las técnicas de análisis genéticos y a su papel en el diagnostico.

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• Diversos estudios moleculares indican que la célula clonogénica es una célula B madura que ha pasado por el centro germinal del folículo linfoide.

• Estas células han sufrido un proceso de hipermutación somática o un cambio del gen de la cadena pesada de las inmunoglobulinas.

Introducción

El linfocito migra a la médula ósea donde puede permanecer durante largo tiempo como célula plasmática.

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• Un % importante de pacientes con MM tienen una

fase preclínica de MGUS en la que la clona maligna

permanece estable durante años hasta que, por

causas desconocidas, escapa a los mecanismos

reguladores que limitaban su crecimiento, y se

produce la transformación maligna.

• Los datos actuales sugieres que el MM aparece como

consecuencia de diferentes pasos oncogénicos.

Introducción

Hallek et al, 1998

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Posiblemente el evento inicial consiste en

translocaciones del gen de la cadena pesada de las

inmunoglobulinas (IgH) situado en 14q32 debidas a:

• Errores durante el proceso de recombinación de IgH

• Errores durante la fase de hipermutación somática en

el centro germinal del folículo linfoide.

Bergsagel el al, 2004

Introducción

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Introducción

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Ciclo celular

• Se ha revisado recientemente por la posibilidad de

que haya dos vías en la patogénesis del MM:

– Hiperdiploide.

– Hipodiploide o diploide.

• Entre el 55-60% de los mielomas presentan anomalías

clonales en el contenido de DNA (aneuploidías)

generalmente hiperploidías.

• El ciclo celular

– Se mide por citometría de flujo.

– Permite distinguir anomalías en el contenido de

DNA en poblaciones celulares.

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HIPERDIPLOIDES:

• Se generan clones menos agresivos que implican un mejor pronóstico

• Están presentes desde las primeras fases de la enfermedad

– Se observa en las MGUS donde el porcentaje de aneuploidías es del 73%.

• Se pueden usar para estudios de EMR con una sensibilidad de 10-4

Ciclo celular

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• Valor pronóstico:

– Permite determinar el porcentaje de células plasmáticas en las diferentes fases del ciclo celular.

– El % de células plasmáticas en fase S (DNA mayor a 2n y menor a 4n) es un parámetro directamente relacionado con la actividad proliferativa del clon tumoral.

Ciclo celular

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– Los pacientes con un mayor porcentaje de células plasmáticas en fase S (3%) tienen una supervivencia más corta.

Ciclo celular

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Mateo et al, 2005

Ciclo celular

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CITOGENÉTICA CONVENCIONAL

• El análisis cromosómico mediante citogenética

convencional, que ha generado información de primer

orden en otras hemopatías malignas, se ha visto

limitado en el caso del MM.

– Bajo índice proliferativo de las células mielomatosas

– Infiltración desigual y, generalmente, escasa de la

MO.

– Reducido número de metafases analizables que, en

buena parte, proceden de las células mieloides de la

MO.

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• Los pocos cariotipos que se encuentran suelen ser

complejos y con múltiples alteraciones numéricas y

estructurales.

• El porcentaje de los cariotipos descritos suele ser muy

variable, raramente supera el 30% en las distintas

publicaciones.

• Impide detectar anomalías estructurales más importantes.

CITOGENÉTICA CONVENCIONAL

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• Sin embargo proporciona una visión global del genoma y es una buena herramienta para determinar la ploidía del MM.

CITOGENÉTICA CONVENCIONAL

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CITOGENÉTICA CONVENCIONAL

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Cambios numéricos

Ganancias: 3,5,7,9,11,15,18,19,21

Perdidas: 8,13,14,16,22,X,Y

Cambios estructurales

1q Trisomias parciales

1p Delecciones

14q t(11;14)(q24;q32)

8q t(8;14)(q24;q32)

t(8;22)(q24;q11)

t(2;8)(p12;q32)

11q t(11;14)(q13;q32)

Ganancias

6q Deleciones

16p ó 16q t(1;16)(q11;q11)

22q11 Deleciones

19q y 19p Traslocaciones

CITOGENÉTICA CONVENCIONAL

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FISH

• La introducción de la fluorescencia en los últimos 20 años ha supuesto un avance extraordinario en el campo de la citogenética.

• En el MM la técnica citogenética más usada es la hibridación in situ fluorescente (FISH).

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FISH

• Resuelve la mayoría de los problemas inherentes a la citogenética convencional

– No necesita metafases

– Elevada resolución permite detectar translocaciones crípticas.

• Su objetivo son las alteraciones específicas.

• Debido a la baja infiltración, se debe realizar siempre sobre células mielomatosas purificadas

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FISH

• Inicialmente se creía que sólo el 30% de los MM

presentaban alteraciones citogenéticas.

• Ahora, gracias a la FISH se sabe que el porcentaje es

aproximadamente del 60%.

• Las anomalías más frecuentes son las translocaciones

del 14q32 (40% de los pacientes) que provoca la

yuxtaposición del gen de la cadena pesada de las Ig

frente a diversos genes.

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En el MM la translocación (Tx) de IGH se clasifican:

• Primarias (40%): Consideradas un proceso inicial en la patogénesis.

– Son consecuencia de errores en los procesos de remodelación del DNA específico de las células B.

– Los puntos de rotura ocurren en las regiones adyacentes a las regiones de cambio de IGH

IGH

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IGH

Secundarias (20%): implicadas en la progresión

– Podrían estar mediadas por otros tipos de

mecanismos de recombinación no dirigidos a las

regiones recombinantes de IgH.

• El resto de los pacientes (40%) no presentan

alteraciones de IgH.

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IGH

• A diferencia de otros síndromes linfoproliferativos B, en MM hay una marcada diversidad de loci cromosómicos implicados en Tx de IGH (60%).

• En un 40% está implicados los siguientes genes:

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GEN IMPLICADO TRANSLOCACIÓN FRECUENCIA

CCND1 t(11;14)(q13;q32) 20%

FGFR/MMSET t(4;14)(p16;q32) 15%

CMAF t(14;16)(q32;q23) 5-10%

CCND3 t(6;14)(p21;q32) 3%

MAFB t(14;20)(q32;q11) bastante rara

IGH

• Las más frecuentes son:

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Δ13

• Tiene una frecuencia del 40-50% • Se trata de la perdida de material genético más

frecuente en el MM.• Presenta una fuerte asociación con otras anomalias

genéticas:– 80% de los MM con t(4;14) o t(14;16)– 65% de los casos con add(1q)– 70% de las deleciones p53– 65% de los hipodiploides

• La variabilidad de clonas existente con Δ13

iría a favor de que es un evento secundario

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Δ13

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• Clásicamente la monosomía se ha asociado a con un

pronóstico adverso independiente de la técnica

utilizada (cariotipo o FISH)

• Según algunos autores (grupo de Arkansas) la

influencia negativa de la monosomía no es tan

marcada cuando se detecta únicamente por FISH.

• Estudios más recientes no encuentran una

disminución en la supervivencia de los pacientes que

sólo tienen monosomía 13.

Δ13

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p53

• Está localizado en el cromosoma 17p13, está implicado en el control de la proliferación, diferenciación y apoptosis celular.

• La progresión tumoral depende de la inactivación de este gen o de pérdidas alélicas.

Tiene una incidencia menor que Δ13 (5-10%) pero se perfila como una alteración de pronostico desfavorable.

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CCND1 t(11;14)• Incidencia del 15-20%.

• Implica al gen CCND1 provocando una sobreexpresión de la proteína ciclina D1.

• Esta ciclina tiene un papel clave en la regulación del ciclo celular particularmente en la progresión de las células de la fase G1 a S.

• Se había asociado a un curso agresivo de la enfermedad pero en la actualidad se ha demostrado que la supervivencia es similar o mayor que los que no la tienen.

• La amplificación del gen de la ciclina D1 puede estar producida por otros mecanismos que aumentan su incidencia al 30%.

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FGFR/MMSET t(4;14)

• Incidencia del 15%

• Es indetectable por citogenética convencional.

• Como consecuencia de la translocación se desregulan dos genes prooncogénicos situados en der(4):

– FGFR3 (fibroblast growth-factor receptor 3)

– MMSET (multiple myeloma SET domail)

• Se asocia con IgA y del(13), con elevada actividad proliferativa y niveles aumentados de B2-microglob, asociados con mal pronostico y con supervivencias cortas.

• Se considera uno de los factores pronósticos independientes con mayor peso

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CMAF t(14;16)

• Incidencia del 5-10%

• Aumenta la expresión de C-MAF que es un factor de

transcripción involucrado en procesos celulares

básicos incluidos proliferación, diferenciación y

respuesta IL6.

• Recientemente se ha descrito otro gen, WWOX, que

también se encuentra en la región 16q23.

• Los pacientes con esta alteración presentan

características muy similares a los que tienen la

t(4;14) y una supervivencia corta.Fonseca et al, 2003

Page 31: Esperanza Such Lab. Citogenética. Introducción El mieloma múltiple es una neoplasia caracterizada: por la acumulación incontrolada de células plasmáticas

• Son ganancias del brazo largo del cromosoma 1.

• Es una de las alteraciones mas recurrentes en el MM.

• No se había estudiado el impacto en la supervivencia hasta que el grupo de Arkansas demostró:

– el aumento de la expresión del gen CKS1B localizado en 1q21

– imparte mayor agresividad al curso clínico de la enfermedad y una reducción significativa de la supervivencia.

Add(1q)

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• El resto de alteraciones son poco frecuentes (5%) pero la presencia de un cariotipo aberrante o hipodiploide se asocia a mal pronostico.

Las alteraciones citogenéticas son muy frecuentes en el MM y claves en el pronóstico, por lo que se considera un estudio obligado en todo paciente con MM.

FISH

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Los pacientes con translocaciones de IGH, RB o deleciones de p53 tienen menor supervivencia y tiempo de progresión en pacientes con ATSP.

NC Gutierrez et al, 2007

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NC Gutierrez et al, 2007

La deleción de RB no tiene valor pronóstico negativo si no va asociado a otras alteraciones

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NC Gutierrez et al, 2007

Los reordenamientos de t(4;14) son de mal pronostico independientemente

de las alteraciones adiccionales presentes.

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NC Gutierrez et al, 2007

La t(11;14) y deleciones de RB no tienen valor pronóstico.

p53 tiene valor pronóstico desfavorable.

Page 38: Esperanza Such Lab. Citogenética. Introducción El mieloma múltiple es una neoplasia caracterizada: por la acumulación incontrolada de células plasmáticas

NC Gutierrez et al, 2007

El 62% de los pacientes con reordenamientos de IGH presentan del de RB.

El 79% de los pacientes con t(4;14) presentan del RB.

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Conclusión

TRANSLOCACIÓN FRECUENCIA PRONÓSTICO

Δ13 40-50% NO INFORMATIVO

p53 5-10% DESFAVORABLE

IGH t(14; x): 60% -

t(11;14)(q13;q32)bcl1 20% FAVORABLE

t(4;14)(p16;q32)fgfr3 15% DESFAVORABLE

t(14;16)(q32;q23)maf

5-10% DESFAVORABLE

Add(1p) - DESFAVORABLE

•Citogenética convencional•Estudio del Ciclo Celular•FISH

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Línea vertical de Neoplasias HematologicasRed de Mieloma y Linfoma

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PLAN ESTRATÉGICO Y GRUPOS PARTICIPANTES

La clave del éxito de esta red ha radicado en su doble planteamiento:

La existencia de un grupo clínico-terapéutico nacional (GEM/PETHEMA) que engloba a más de 100 hospitales con dos laboratorios que centralizan nuevas técnicas de diagnóstico biológico y una serie de laboratorios de investigación básica alrededor.

Un modelo de investigación traslacional basado en la continua interacción entre laboratorios básicos y grupos clínicos (ej: los estudios sobre mecanismos de acción de nuevos fármacos llevan a ensayos fase I/II)

El plan estratégico actual es mantener y desarrollar este modelo.

En función de la nueva estructura de la Red de Cáncer se establecen:

a) Tres plataformas horizontales

Programas 2 y 4: Diagnóstico Molecular, Citogenético e Inmunofenotípico: Centralizado en tres laboratorios para todos los hospitales de grupo GEM y coordinados desde las plataformas horizontales correspondientes.

• Laboratorio del Hospital 12 de Octubre (Dr. JJ. Lahuerta)

• Laboratorio del Hospital Clínico de Salamanca (Dr. San Miguel)

• Laboratorio del Hospital la Fe de Valencia (Dr M.A. Sanz)

* Actuará como apoyo el laboratorio del CIMA (Pamplona): (Drs. Odero/Calasanz)

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Citogenética

• Separación de células CD138+ mediante esferas magnéticas.

• Obtenemos una pureza del 70-90%.

• Este método no distingue entre células normales y plasmáticas tumorales.

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PANEL DE FISH