fluorescencja 8-azaksantyny i jej pochodnych w środowisku wodnym: jeszcze raz fototautomeria
DESCRIPTION
Fluorescencja 8-azaksantyny i jej pochodnych w środowisku wodnym: jeszcze raz fototautomeria. Jacek Wierzchowski Katedra Fizyki i Biofizyki UWM w Olsztynie. Fluoryzujące pochodne i analogi puryn, stosowane w badaniach enzymologicznych (przykłady). - PowerPoint PPT PresentationTRANSCRIPT
Fluorescencja 8-azaksantyny i jej pochodnych w środowisku
wodnym: jeszcze raz fototautomeria.
Jacek Wierzchowski
Katedra Fizyki i Biofizyki UWM w Olsztynie
N
N
NO
O
H
H
N
H
NNH
N
NO
O
H
H
N
ksantyna 8-azaksantyna (8-azaX) (X)
2-aminopuryna N1,N6-etenoadenozyna formycyna A 8-azaguanina
max ~ 360 nm max ~ 410 nm max ~ 340 nm max ~ 390 nm
~ 0.6 = 0.55 = 0.08 ~ 0.08 ÷ 0.3
Najważniejsze zastosowania:Badania oddziaływań enzym-ligand oraz asocjacji białek, polinukleotydów itd.Badania dynamiki DNA i RNAFluorymetryczne oznaczanie aktywności enzymów
Fluoryzujące pochodne i analogi puryn, stosowane w badaniach
enzymologicznych (przykłady).
N
N
N
NH
NH2
NH
N
NN
N
R
NN
N
NH
NH2
R
NH
NNH
N
N
NH2
O
Czy 8-azaksantyna fluoryzuje?
Deaminaza guaninowa (GDA) działa na 8-azaguaninę, produkując 8-azaX:
NH
NNH
N
N
NH2
O
NNH
NH N
O
O
NH
+ NH3GDA
Gdyby produkt fluoryzował, mielibyśmy metodę oznaczania aktywności GDA.
Enzym ten jest ważny klinicznie - stanowi marker zakażenia HCV!
Inne możliwe pożytki z fluorescencji 8-azaX:• Badanie oddziaływań z oksydazą ksantynową.• 8-azaX to silny inhibitor urykazy (enzym utleniajacy kwas moczowy).• Pochodne metylowe – analogi kofeiny, teofiliny etc. to potencjalne ligandy dla receptorów adenozynowych.
Pierwsze podejście: produkt deaminacji 8-azaguaniny nie fluoryzuje
NH
N
N
N
NH2
O
_
NN
NH
N
N
NH2
O
_
N
NH
N
NH
O
O
_
NN
NH
NH
N
O
O
_
Własności kwasowo-zasadowe puryn i 8-azapuryn.
Związek Główna forma anionowa
pKa fluorescencja w pH 7
Guanina (G) 9.2 nie (forma obojętna)
8-azaG 6.5 tak (390 nm) – forma obojętna
Ksantyna (X) 7.2 nie(mieszanina form)
8-azaX 4.7 nie (monoanion!!)
Albert, A. Chemistry of 8-azapurines. Adv. Heterocycl. Chem. 1986, 39, 117-178.
Czy forma obojętna 8-azaX (pH < 5) fluoryzuje? TAK!! ale…
(▬▬), absorpcja w pH 2; (▬ ▬), absorpcja w pH 7; (○○○), wzbudzenie fluorescencji w pH 4;
(●●●), fluorescencja w 1 mM HCl; (++++), fluorescencja w metanolu.
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
190002400029000340003900044000
Wavenumber [cm-1]
Ab
so
rba
nc
e/f
luo
res
ce
nc
e
Tautomeria formy obojętnej 8-azateofiliny:L’abbe G., Persoons M-A., Toppet S. Magn. Res. Chem. 25 (1985), 362-4.Sanchez M.P., Romnero MA, Salas JM, Cardenas DJ, Molina J, Quiros M.. J. Mol. Struct. 344 (1995), 257-264.
NNH
N
N
N
O
O
CH3
CH3
NN
N N
O
O
N
CH3
CH3
H
>
N(8)H N(7)HDMSO: 80% <20%Kryształ: 100%
Wygląda na to, że główną formą 8-azaX jest forma N(8)H. Zatem czy to ona fluoryzuje? Model:
NN
NH
NH
N
O
O
CH3
Fluorescencja N8-metylo-azaX:
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
180002300028000330003800043000
Wavenumber [cm-1]
Ab
so
rba
nc
e/f
luo
res
ce
nc
e
(▬▬), absorpcja w pH 3; (▬ ▬), absorpcja w pH 11; (○○○), wzbudzenie fluorescencji w pH 3; (∆∆∆),wzbudzenie fluorescencji w pH 11. (●●●),
fluorescencja w 1 mM HCl; (×××), fluorescencja w pH 11; (++++), fluorescencja w metanolu.
Wydajność fluorescencji (pH 9) - 60% (!!!)
0
20
40
60
80
100
120
140
160
0 2 4 6 8 10 12pH
Flu
ore
scen
ce
Fluorescencja 8-azaX (●--●) i N8-m-azaX (■■), mierzona
w 420 nm, jako funkcja pH.Wartości pKa stanu podstawowego: 4.7 (8-azaX) i ~7.2 (N8-m-azaX).
------------------------------------
Ale dlaczego fluorescencja N8-m-azaX poniżej i powyżej 7.2
jest identyczna?
Kwasowość molekuł w stanach wzbudzonych może różnić się znacznie od kwasowości w stanie podstawowym:
OH O
+ H+
-naftol: pKa = 9.3 pK* ~ 2.8
fluorescencja formy anionowej występuje w pH > 2.5 (obok formy obojętnej!)-----------
cykl Foerstera pozwala na obliczenie pK* na podstawie widm formy protonowanej i zdysocjowanej:
)(101.2/)(10ln* 00003
0000 AHAAHA kThcpKpK
A00
;
AH00 - liczby falowe (w cm-1) przejść 0-0 dla obu form.
Przesunięcie widm o 475 cm-1 w temperaturze 300 K oznacza pK* - pK = 1
Jakie jest pK* dla N8-metylo-azaX (pKa ~7.4)?
A00 ≈ 29000 cm-1AH00 ≈ 32900 cm-1 pK* - pK ~ - 8 (± 0.5)
pK* ~ -0.5 (!!!!)
SO3-SO3-
SO3- OH
COOH
Przykłady literaturowe:
ZwiązekpKa pK* ΔpK
fenol 10.6 3.6 -7.0
β-naftol 9.3 2.8 -6.5
(piranina) 7.7 1.3 -6.4
3.7 6.9 +3.2
NNCH3
N
NO
O
H
H
N
NNCH3
N
NO
O
H
H
N
NN
N
NO
O
H NCH3
NNCH3
N
NO
O
H N
_
_
**
pK = 7.4
h - H+
fluorescencja 420 nm
- H+
fluorescencja 340 nm(tylko w metanolu)
pH>7.4
Wytłumaczenie pochodzenia fluorescencji N8-metylo-azaX w środowisku wodnym (420 nm) i metanolowym (340 nm)
NNH
N
NO
O
H
H
N
NNH
N
NO
O
H
H
N
NN
N
NO
O
H
H
N
NNH
N
NO
O
H N
_
_
**
pK = 4.7
h - H+
fluorescencja 420 nm
(nie fluoryzuje)
- H+
fluorescencja 335 nm (tylko w metanolu)
A jeśli tak, to…
Wytłumaczenie pochodzenia fluorescencji 8-azaX w środowisku wodnym i metanolowym (fototautomeria anionu!)
**Zagadka: jakie jest pK* dla 8-azaX?
Dlaczego w środowisku wodnym nie pojawia się forma obojętna związku?
[AH]* [A- ]* + H+k1
k -1
dyfuzyjna stała przeniesienia protonu: V-1 = kdif 10-pH[A-]*
kdif=5·1010 M-1·s-1 (dla przeniesienia protonu)
k1 = k-1(pH=pK*) = V-1/[A-]*= 100.5·5·1010·s-1 ≈ 1.6·1011 s-1;czas przeniesienia protonu 6.3 ps.
czas zaniku fluorescencji [AH]* (mierzony w metanolu): 0.85 ns
Czy rzeczywiście ten sam chromofor świeci w 8-azaX i N8-metylo-8azaX?
Pomiary czasów zaniku fluorescencji (J. Sepioł, IChF PAN):
0
2
4
6
8
10
12
14
0 2 4 6 8 10 12
pH
deca
y tim
e [n
s]
1.0E+01
1.0E+02
1.0E+03
1.0E+04
0 10 20 30 40 50
time [ns]co
unts
N8-me-8-azaX, pH 11
8-azaX, pH 1.3 - 5.6
Lampa
Wnioski: a) ten sam chromofor w obu związkach i całym zakresie pH; b) w pH < 3 obserwujemy tłumienie dynamiczne.
Trochę wspomnień:Wierzchowski J.; Shugar, D. Luminescence studies on formycin, its aglycone, and their N-methyl derivatives: tautomerism, sites of protonation and phototautomerism. Photochem. Photobiol. 1982, 35, 445-458.
NH2
NN
N
NH
H R
NH2
NN
NH
N
R
NH2
NN
N
NH
R
hv, -H+
*
+
Wierzchowski, J.; Szczęśniak, M.; Shugar D. Fluorescence emission properties of the cation of 4-aminopyrazolo[3,4-d]pyrimidine, an adenine analogue: evidence for phototautomerism. Z. Naturforsch. 1980, 35c, 878-889.
NH2
NH
NN
N
H
NH2
NN
N
NH
NH2
NH
NN
N
hv, -H+
*
+
Inne przypadki fototautomerii wśród analogów purynowych:
Taylor C.A., El-Bayoumi A.A., Kasha M., 1969, PNAS 63, 253-260. 7-azaindol
N-H
N N-H
N N
N-H N
N-H
*hv
Wenska G.; Skalski B; Insinska M.; Paszyc S.; Verrall, R.E. Ground and excited state prototropic behavior of 1-(purin-6-yl)-3-methylimidazolium chloride. J. Photochem. Photobiol. A 1997, 108, 135-142.
N
CH3-N
NH
N
N
N
N
CH3-N
N
N
NH
N
+ +
hv
*
C. Santhosh and P. C. Mishra. Electronic spectra of 2-aminopurine and 2,6-diaminopurine: phototautomerism and fluorescence reabsorption. Spectrochimica Acta Part A: Molecular Spectroscopy, 1991, 47, 1685-1693.S. K. Srivastava and P. C. Mishra. Phototautomerism of the G---C base pair of DNA. Journal of Theoretical Biology, 93, 1981, 655-666.
Zastosowanie w enzymologii: reakcja 8-azaX z fosforylazą ksanozynową (PNPII) z E. coli - (synteza 8-
azaksantozyny -???) – B. Kierdaszuk.
Puryna + rybozo-1-fosforan → nukleozyd + Pi
220 240 260 280 300 3200.0
0.2
0.4
0.6
0.8 276AzaXao
AzaXan265
Ab
so
rban
ce
Wavelength, nm
Warunki: ~100 M 8-azaX, pH ~5, 2 mM rybozo-1-fosforan, 25 C....
Reakcja idzie.... tylko czy to aby na pewno produktem jest 8-azaksantozyna???
... i 9-benzylo-azaX
NN
NH
NH
N
O
OCH2Ph
240 260 280 300 320 3400.00
0.02
0.04
pH 9
pH 12pH 7
pH 5.3
pH2
90% MeOH276 AzaXao
305
Abs
orba
nce
Wavelength, nm
-0.1
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
200 250 300 350 400 450 500
Wavelength [nm]
Abso
rban
ce/fl
uore
scen
cepKa ~ 7.2; pKa ~ 5.7
Anion: absorpcja 305 nm, Anion: absorpcja 279 nm Emisja 440 nm Emisja 365 nm
Porównajmy....
Nukleozyd (??)
350 400 450 5000.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0AzaXao
exc=275 nm
440 nm
90% MeOHpH 12
pH 2
Fluo
resc
ence
Inte
nsity
Wavelength, nm
H I J K L M
Co się dzieje?
NN
NH
NH
N
O
O
O
OHOH
HOCH2
NN
NH
NH
N
O
O
O
OHOH
HOCH2
NN
NH
NH
N
O
O
O
HOCH2
OH
OH
N9-nukleozyd?Chyba nie!
N8-nukleozyd?N7-nukleozyd?
A jak reaguje PNP ze ssaków? – Brak reakcji!!
Dla porównania: Reakcja E. coli PNP-II z AzaGua:
240 260 280 300 320 3400.00
0.02
0.04
0.06
Agua_product_pHeff
9
126.5
4.5
Ab
so
rban
ce
Wavelength, nm
Porównanie widm produktu reakcji z widmami 8-azaguanozyny pokazuje, że w tym wypadku rybozylacja idzie na N-9 (z możliwą małą domieszką innych form).
Dlaczego??
NN
NH
NH
N
O
O
-D-rybozyl
NN
NH
N
N
O
NH2
-D-rybozyl
Jakie mogą być z tego pożytki?
• jeśli N8-metylo-azaGuanina jest substratem dla GDA….. to mielibyśmy czułą metodę analityczną dla tego enzymu
• W kompleksach z białkami procesy ESPT będą przebiegały inaczej niż w wodzie – jak??? Na pewno można odróżnić ligand wolny od związanego….
• Aza-analogi kofeiny, teofiliny, teobrominy…… fluorescencyjne badania oddziaływań z receptorami?
• ------• PNPII – pierwszy enzym rybozylujący puryny (lub
analogi) w pozycji innej niż N9?? • A w ogóle to dlaczego inne formy PNP rybozylują puryny
na N9, jeśli N7-nukleozydy podlegają fosforolizie?
REKLAMA
Katedra Fizyki i Biofizyki UWM ogłosi wkrótce
konkurs na stanowisko asystenta