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GUIA DE CAMPO PARA EL ESTUDIO DE LA FAUNA ICTICOLA DE LA RESERVA PROVINCIAL DE LOS

ESTEREOS DEL IBERA. VIAJE DE CAMPAÑA CATEDRA DE ZOOLOGIA III (VERTEBRADOS), FCNyM, UNLP

AÑO 2014

Autores: Martin Montes, Adriana Almirón, Jorge Casciotta

ELEMENTOS NECESARIOS PARA TRABAJAR

• Ropa cómoda para pescar: malla, short, remera, gorro y no olvidar el protector solar.

• Botas de goma (indispensable). • libreta de campo y lápiz. • guantes de látex, pinzas, tijeras(al menos un juego por

grupo). • Caña de pescar (o línea). • Una Guía de Métodos de Muestreo y una Guía de Análisis

de Comunidades y Poblaciones (al menos cada 15 personas)

OBJETIVOS:

Reconocer las diferentes metodologías que se pueden utilizar en el campo para la colecta de peces.

Identificar la fauna ictícola característica de la laguna de Ibera mediante el uso de claves dicotómicas.

Conocer los parámetros físicos-químicos que caracterizan un cuerpo de agua. Identificar problemas al momento de encarar un estudio ecológico de las

poblaciones y comunidades ictícolas. Introducir al uso de herramientas propias al estudio de los peces Introducción al conocimiento de paquetes y metodologías estadísticas.

HIPOTESIS: “El sitio 2 (camping) presentara una menor biodiversidad ya que representa un ambiente mucho más disturbado con respecto al sitio 1 (playita)”

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CRONOGRAMA TENTATIVO DE LAS ACTIVIDADES A REALIZAR: (hora aproximada de comienzo y finalización de las actividades)

1- Charla en el camping sobre artes de pesca (métodos pasivos y activos)9 -10hs.

2-Muestreo en La Playa1.10-11:30 hs.

3-Determinacion taxonómica de los peces en el camping.12-13:30 hs.

4-Almuerzo (en medio de la determinación, para darle gustito al almuerzo)!)

5- Muestreo en el Muelle16-17hs.

6- Determinación taxonómica de los peces en el camping.17-18 hs.

7.-Diseccion de peces (reconocimiento de la anatomía y búsqueda de parásitos) 18hs.

8- Actividad Nocturna

TENER EN CUENTA PARA LA CONFECCION DEL INFORME:

1.- Recolectar datos de sus compañeros, deberán tener 5 planillas con los dos sitios que se han muestreado (deberían estar en la computadora, por las dudas siempre es bueno anotar todo en la libreta de campo).

2.- Con la lista de especies y sus abundancias se debe confeccionar una sola lista correspondiente al año 2014 (una para cada sitio). Como hemos muestreado siempre los mismos ambientes cada día es una pseudoréplica (no es independiente de la muestra anterior).

3.- Realizar una curva de acumulación de especies con el método de rarefacción para calcular (y comparar) la riqueza especifica.

4.- Calcular la biodiversidad de cada sitio aplicando el Índice de Shannon-Wiener y la equitabilidad con el programa Ecosim y el método de rarefacción (estadística frecuentista) y con el WinBUGS (estadística bayesiana). Calcular el índice de Simpson con el programa WinBUGS.

5.- Discutir diferencias entre sitios y entre metodologías aplicadas. ¿La hipótesis está bien planteada?

6.- Comparar la abundancia de cada orden en total con respecto a las especies citadas, entre sitios y con respecto a otros años.

1 Solo ingresaran al agua los que lleven botas.

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7.- ¿Que otras actividades podrían realizarse en el sistema? ¿Cómo mejorarían el estudio que hemos realizado?

El informe debe constar de:

Introducción (donde se realizó el trabajo, antecedentes, objetivos).

Materiales y Métodos (que hicieron y que usaron, ambientes que compararon).

Resultados (Lista de especies encontradas, índices calculados, gráficos obtenidos).

Discusión (explicaciones de lo observado tanto en las comparaciones entre sitios, años y metodologías).

PROGRAMAS QUE SE UTILIZARAN, PEQUEÑO INSTRUCTIVO: ECOSIM Usa archivos con terminación “.txt” Ir a Filenew Ir a Editresizematrix se establecen los números de filas (especies) y columnas (sitios) Ir a EditEditmatrix as textaquí se abre una ventana desde la que se pueden incorporar los datos uno a uno o ser copiados y pegados desde el Excel. Para esto último debe utilizarse la combinación de teclas para copiar (CTRL + c) y pegar (CTRL + v). En caso contrario la base quedara mal armada. Las columnas se separan por espacio, razón por la cual no debe haber espacios extra entre las palabras de las especies u otra categoría. Los puntos dividen a los números decimales. Una vez terminado el proceso de editar la matriz, se clickea sobre “Close” y se aceptan los cambios. Ir a Analize (Fig. 2)species diversitymarcar individuos Abundanceclickear sobre “user defined”, se abrirá una nueva ventana y pondremos las cantidades de individuos sobre los cuales querremos más adelante calcular los diversos índices. Randomization algoritm marcaremos la “rarefacción” Species diversity calcularemos para en este viaje únicamente “species Richness” y “Shannon” column to analize elegimos el sitio que deseamos se analice. Se presionara el botón de “RUN” y se abrirá una nueva ventana. Se elegirá “diversity curve”, y nos mostrara el índice calculado para cada valor que habíamos determinado en “Abundance”. Se salvaran los datos en un archivo (que tendrá extensión “.txt”.) y que luego recuperaremos con el Excel.

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¿Cómo recuperar el archivo desde Excel? “abrir archivo” se selecciona el directorio y se pide que nos muestre todos los archivos del directorio. Se selecciona el archivo con la extensión “txt” que nos interesa. se abrirá una ventana se elegirá ”delimitación” y posteriormente se marcara “tabulación” y “espacio”, se dará click en “siguiente”, luego en “finalizar” y se creara un archivo de Excel el cual deberemos guardar con la extensión del programa. BIODAP También usa archivos con extensión “.txt”. Ir a “File”newse abrirá una ventana donde se elegirán la cantidad de sitios y especies y se pondrá las abundancias. Se salvara el archivo. Si no funciona crear desde fuera del programa con el “Worpad” o el “blog de notas” un archivo “.txt” donde cada columna está separada de la siguiente por un espacio (en nuestro caso serán 3 columnas, una para especie, una para “playita” y otra para “camping”). Ir a File open y seleccionar el archivo creado por cualquiera de los dos métodos anteriores. Presionar en “Raw data” de esta forma aparece en pantalla el archivo que creamos. Clickear sobre “Diversity Index” seleccionar el índice que se quiera calcular (en nuestro caso son dos índices, “Shannon” y “Simpson”. WinBUGS Se escribe el script o se consigue, en nuestro caso utilizaremos dos scripts [1]. Clickear sobre “File” open para abrir el archivo con el script. Se cargan los datos a ser modelados y se corre el programa de la siguiente forma. Se clickea sobre “Model” aparece un cuadrito que dice “specification tool”. Nos posesionamos fuera del modelo establecido, sobre la palabra “list”, por ejemplo y apretamos en “Checkmodel” (si no hay errores en el margen izquierdo inferior aparecerá un cartel que dice “model is sintectally correct”). Se marca la palabra “list” y se presiona en el mismo cuadrito anterior el botón de “load data” (en el margen izquierdo inferior “data loaded”). Se apretara el botón que dice “compile” y posteriormente “gen inits” (con esto se generan los valores iniciales desde los que partirá el sistema, podrían ser definidos por nosotros, pero es más sencillo en este caso que los genere el mismo programa). Se abrirá ahora de la barra superior la opción “Inference”sample. Aquí se observan los “percentiles”, es decir definimos cual es la probabilidad a la cual deseamos trabajar. En donde dice “node”se pondrá el nombre de la variable que se desea calcular (en nuestro caso son “Shan” y “Simp”) y se apretara la opción “set”. Donde dice “beg” y “end” se indicara desde que cadena se quiere empezar a calcular los índices propuestos, solo modifiquen el cuadrito “beg” y pongan 10 mil. Ir a “Model””update” aquí se colocara la cantidad de cadenas de Montecarlo que quieran que se produzcan, a mayor cantidad el proceso tardara más tiempo, pero a su vez se

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obtendrá un valor con menor varianza, más puntual. Si ponen 100 mil, estará bien. De esta forma diremos al programa que empiece a partir de la muestra 10001 (o sea que estas primeras 10mil muestras no las considere) y haga un total de 100 mil replicas para calcular los índices que pretendemos. Volvemos a la ventanita “Sample Monitor Tool” ponemos la variable que queremos calcular (por ejemplo “Shan”) en “node”. Al apretar sobre el botón de “stats” se abre una nueva ventana con los resultados del índice. Estos pueden copiarse y pegarse en una hoja de Excel.

Figura 1.- Captura inicio del programa, panel desplegado al calcular los diferentes índices y pantalla de resultados del programa EcoSim.

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Figura 2.- Captura de pantalla inicial, pantalla para elegir los índices a calcular, del programa BIODAP.

Figura 3.- Pantalla de inicio y pantalla “model” (WinBUGS).

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Figura 4.- Pantalla “inference” y “Sample Monitor Tool” (WinBUGS).

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Figura 5.- Ventanas de resultados obtenidos con WinBUGS.

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Especies registradas en diferentes viajes de campaña y en la bibliografía

Muestreo de los viajes de campaña

Según bibliografía[2]

Orden Characiformes

1998 1999 2000 2001 2002 2012 2013 Laguna Ibera

Sistema Ibera

CHARACIDAE Acestrorhynchus pantanerio X X X X X X X X Aphyocharax anisitsi X X X X X X Aphyocharax rathbuni X X X X X Aphyocharax nattereri X X Astyanax asuncionensis X X X X Astyanax bimaculatus X X X X Astyanax eigenmanniorum X X X Astyanax rutilus X X X X X X X Astyanax pynandi X X X X Bryconamericus iheringi X X X X Charax leticiae X X X X X Charax stenopterus X X X X X Cheirodon interruptus X Diapoma terofali X Hemigrammus mahnerti X X X Hemigrammus ulreyi X X X X Heterocheidoron yatay X X X X Hypessobrycon anisitsi X X X X X X Hypessobrycon elachys X X Hypessobrycon eques X X X X X X X X Hypessobrycon igneus X X X X Hypessobrycon luetkenii X X X X X X Hypessobrycon meridionalis X X X Hypessobrycon wajat X X X X X X X X Hyphessobricon auca X X Moennkhausia intermedia X X X X X X X X Moennkhausia sanctaefilomenae

X

Odontostilbe pequira X X Oligosarcus jenynsii X X X X X X

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Oligosarcus paranensis X X X X Oligosarcus sp X X Psellogrammus kennedyi X X X X X X Roeboides affinis X X X Roeboides descalvadensis X X X X X Serrapinus calliurus X X X X X X X Serrapinus kriegi X X X X X X X SERRASALMIDAE Serrasalmus maculatus X X X X X X Pygocentrus nattereri X X X Metynnis mola X X PROCHILODONTIDAE Prochilodus lineatus X CURIMATIDAE Steindachnerina brevipinna X X X X X Steindachnerina conspersa X X X X Cyphocharax saladensis X X Cyphocharax spilotus x X X X Cyphocharax voga x X ERYTHRINIDAE Hoplerytrynus unitaeniatus X X X X X X Hoplias malabaricus X X X X X X X LEBIASINIDAE Pyrrhulina australis X X X X X ANOSTOMIDAE Leporinus lacustris X X X X X Leporinus obtusidens X X X X CRENUCHIDAE Characidium zebra X X X X X X Characidium rachovii X X X X

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Orden Gymnotiformes

RHAMPHICHTHYIDAE Rhamphichthys hahni X STERNOPYGIDAE Eigenmania trilineata X X GIMNOTIDAE Gymnotus inaequilabiatus X X X HYPOPOMIDAE Brachyhypopomus gauderio X X Brachyhypopomus draco X Brachyhypopomus bombilla X

Orden Siluriformes

PIMELODIDAE Pimelodus sp X X Pimelodella gracilis X X Pimelodella laticeps X X Rhamdia quelen X X X X CALLICHTHYIDAE Callichthy callichthys X X Corydoras undulatus X X X X Corydoras aeneus X X X Corydoras hastatus X X X Hoplosternum littorale X X Lepthosplosternum pectorale X LORICARIDAE Loricariichthys platymetopon X X X X X Loricariichthys melanocheilus X X X X x Rineloricaria parva X X X x X

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TRICHOMYCTERIDAE Homodiaetus anisitsi X X AUCHENIPTERIDAE Trachelyopterus galeatus X X X ASPREDINIDAE Bunocephalus doriae X X X

Orden Cyprinodontiformes

CYPRINODONTIDAE Melanorivulus punctatus X X X X ANABLEPIDAE Jenynsiia multidentata X X POECILIDAE Cnesterodon decemmaculatus X Phalloceros caudimaculatus X

Orden Perciformes

X CICHLIDAE Apistogramma borellii X X X X X X Apistogramma commbrae X X X X X Australoheros facetus X X X Cichlasoma dimerus X X X X X X X Crenicichla lepidota X X X X X X Crenicichla vittata X X X X Gymnogeophagus balzanii X X X X X X X X Laetacara dorsigera X X X SCIAENIDAE Pachyurus bonariensis X X X X X

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Orden Synbranchiformes

SYNBRANCHYDAE Synbranchus marmoratus X X X X X

Orden Clupeididae

CUPLEIDIDAE Platanichthys platana X X X X X X

Resultados del Año 2013

Durante los muestreos con red de arrastre se registraron 29 especies correspondientes a 5 órdenes diferentes (en su mayoría Characiformes).

Se compararon dos sitios con diferente grado de vegetación flotante. El sitio 1 corresponde a un ambiente abierto y el sitio 2 presento gran cantidad de plantas flotantes y juncos.

Con el programa ECOSIM y el método de rarefacción se calculó la riqueza específica y se graficaron los resultados (grafico 1). Se puede observar que los límites de credibilidad no se superponen, con lo cual la riqueza especifica en ambos sitios es significativamente diferente siendo mayor en el sitio 2. Con el mismo programa y método se calculó el índice de Shannon-Wiener (grafico 2), nuevamente se observa una diferencia significativa entre los sitios al no superponerse los límites de confianza y siendo el sitio 2 el que presenta una mayor biodiversidad. El alto valor obtenido para el sitio 2 hace pensar que la disponibilidad de diversas plantas flotantes provee una mayor diversidad de nichos para ser ocupados por las diferentes especies ictícolas.

Se realizó una curva de acumulación de individuos y especies para cada sitio en particular al fin de constatar si se lograba una meseta que asegurar que se habían muestreado todas las especies del sistema y/o determinar el tamaño muestreal mínimo que debería ser tomado para obtener una muestra representativa de los ambientes. En ninguno de los casos (grafico 3 y grafico 4) se logra esta asíntota, con lo cual aún deberían muestrearse muchos más ejemplares para que estén representadas todas las especies de la laguna de Ibera.

Gráficos: Leyendas, en color negro se presentan los valores obtenidos para el sitio 1 (no vegetado) y en color rojo se representan los valores obtenidos para el sitio 2 (Vegetado). El eje de las X corresponde al número de ejemplares.

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Gráfico 1.- Riqueza específica y límites de credibilidad obtenido con el método de rarefacción para cada sitio de muestreo.

Gráfico 2.- Índices de diversidad de Shannon-Wiener y límites de credibilidad obtenidos con el método de rarefacción para cada sitio de muestreo.

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100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000 1154

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1,5

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2,5

3

100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000 1154

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Gráfico 3.- Curva de acumulación del sitio 1 (No vegetado).

Gráfico 4.- Curva de acumulación del sitio 2 (Vegetado).

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Frecuencias relativas de cada sitio de muestreo Año 2013.

Playita Camping

Orden Characiformes Mañana Tarde Día 1

CHARACIDAE

Aphyocharax anisitsi 108 15 3 Aphyocharax rathbuni 8 8 1 Aphyocharax nattereri 0 0 0 Astyanax asuncionensis 54 54 16 Astyanax bimaculatus 0 0 0 Astyanax eigenmanniorum 0 0 0 Astyanax rutilus 94 156 0 Astyanax pynandi 10 28 0 Bryconamericus iheringi 0 0 0 Charax leticiae 17 1 0 Charax stenopterus 0 0 0 Cheirodon interruptus 0 0 0 Diapoma terofali 0 0 0 Hemigrammus mahnerti 0 0 0 Hemigrammus ulreyi 0 0 0 Heterocheidoron yatay 0 8 0 Hypessobrycon anisitsi 8 3 2 Hypessobrycon elachys 0 0 0 Hypessobrycon eques 225 12 8 Hypessobryconigneus 0 1 0 Hypessobrycon luetkenii 207 58 1 Hypessobrycon meridionalis 0 0 0 Hypessobrycon wajat 407 54 1 Hyphessobricon auca 0 0 0 Moennkhausia intermedia 269 219 39 Moennkhausia sanctaefilomenae 0 0 0 Odontostilbe pequira 0 0 0 Oligosarcus jenynsii 1 0 0 Oligosarcus paranensis 0 0 0 Oligosarcus sp. 0 0 0 Psellogrammus kennedyi 8 18 14 Roeboides affinis 0 0 0 Roeboides descalvadensis 0 2 0 Serrapinus calliurus 103 135 17

16

Serrapinus kriegi 2 5 0 ACESTRORHYNCHIDAE Acestrorhynchus pantanerio 11 6 3 SERRASALMIDAE 0 0 0 Serrasalmus maculatus 2 2 1 Pygocentrus nattereri 1 1 0 Metynnis mola 0 4 0 CURIMATIDAE 0 0 0 Steindachnerina brevipinna 2 37 0 Steindachnerina conspersa 0 0 0 Cyphocharax saladensis 0 0 0 Cyphocharax spilotus 0 0 0 Cyphocharax voga 0 0 0 ERYTHRINIDAE 0 0 0 Hoplerytrynus unitaeniatus 0 2 0 Hoplias malabaricus 1 12 1 LEBIASINIDAE 0 0 0 Pyrrhulina australis 1 8 0 ANOSTOMIDAE 0 0 0 Leporinus lacustris 10 25 1 Leporinus obtusidens 0 0 0 CRENUCHIDAE 0 0 0 Characidium cf. zebra 0 2 1 Characidiumranchovii 0 0 0

Orden Gymnotiformes

RHAMPHICHTHYDAE 0 0 0 Eigenmania trilineata 0 0 0 Rhamphhichthys hahni 0 0 0 GIMNOTIDAE 0 0 0 Gymnotus inaequilabiatus 0 0 0

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HYPOPOMIDAE Brachyhypopomus gauderio 0 0 0 Brachyhypopomus bombilla 0 0 0 Brachyhypopomus draco 1

Orden Siluriformes

0 0 0 PIMELODIDAE 0 0 0 Pimelodus sp 0 0 0 Pimelodella gracilis 0 0 0 Pimelodella laticeps 0 0 0 Rhamdia quelen 0 0 0 CALLICHTHYIDAE 0 0 0 Callichthy callichthys 0 0 0 Corydoras undulatus 0 0 0 Corydoras aeneus 0 0 0 Corydoras hastatus 0 0 0 Hoplosternum littorale 0 0 0 Lepthosplosternum pectorale 0 0 0 LORICARIDAE 0 0 0 Loricariichthys platymetopon 0 0 0 Loricariichthys melanocheilus 0 1 0 Rineloricaria parva 0 0 0 TRICHOMYCTERIDAE Homodiaetus anisitsi 0 0 0 AUCHENIPTERIDAE Trachelyopterus galeatus 0 0 0 ASPREDINIDAE Bunocephalus doriae 0 0 0

Orden Cyprinodontiformes

RIVULIDAE 0 0 0 Melanorivulus punctatus 0 0 0

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ANABLEPIDAE 0 0 0 Jenynsiia multidentata 0 0 0 POECILIDAE Cnesterodon decemmaculatus 0 0 0 Phalloceros caudimaculatus 0 0 0

Orden Perciformes

CICHLIDAE Apistogramma borellii 0 1 0 Apistogramma commbrae 1 2 2 Cichlasoma dimerus 1 2 0 Australoheros facetus 0 0 0 Crenicichla lepidota 1 0 0 Crenicichla vittata 0 0 0 Gymnogeophagus balzanii 19 16 0 Laetacara dorsigera 0 0 0 SCIAENIDAE Pachyurusbonariensis 5 7 0

Orden Synbranchiformes

SYNBRANCHYDAE 0 0 0

Synbranchus marmoratus 1 0 0

Orden Clupeididae

CUPLEIDIDAE 0 0 0

Platanichthys platana 1238 249 1

Total 2815 1154 112 Bibliografia: [1].- GOLICHER D. J., O`HARA R. B., RUIZ-MONTOYA L. & CAYUELA L. 2006.Lifting a veil ondiversity: a bayesian approach to fitting relative-abundance models. Ecological Applications 16(1): 202-212. [2].- CASCIOTTA, J. R.; A. E. ALMIRÓN & J. BECHARA. 2005. Peces del Iberá - Hábitat y Diversidad. Grafikar, La Plata, Argentina; UNDP, Fundación Ecos, UNLP y UNNE; 244 pp. ISBN 987-05-0375-6.