guiassuelosquimicos2013a

UNIVERSIDAD DE LA AMAZONIAMINISTERIO DE EDUCACIÓN NACIONAL

NIT:891.190.346-1

FACULTAD DE CIENCIAS BASICASFACULTAD DE INGENIERIAS

MANUAL DE PRÁCTICAS DE ANALISIS QUIMICO DE SUELOS PARA ESTUDIANTES DE CIENCIAS BASICAS E INGENIERIA

JADER MUÑOZ RAMOS Geólogo MSc PhD, Docente Universidad del Tolima

HELBER ROSASIng. Agroecólogo Esp, Docente Programa de Ing. Agroecológica UniAmazonía

WILSON RODRIGUEZ PEREZ Químico Farmacéutico MSc, Docente Programa de Química UniAmazonía

FLORENCIA, FEBRERO DE 2013

UAGEO-Guías Química de suelos-2011 Página 1


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El trabajo experimental de cualquier curso de química de suelos debe responder a dos finalidades: primero, debe reforzar habilidades en manejo adecuado de materiales, instrumentos y reactivos. Es de recordar, que la temática revisada en este curso asocia conocimientos previos de química general, orgánica, analítica e inorgánica. Segundo, insistir en la adecuada documentación e interpretación de los datos obtenidos. Para esto, es necesario hacer uso de la estadística, como una herramienta imprescindible en el trabajo de laboratorio enfocado hacia el análisis químico cuantitativo.

Con base a lo anterior, se han planteado las prácticas de laboratorio y se presentan a continuación con el fin de tratar de reforzar las habilidades prácticas e intelectuales en los estudiantes de la UNIAMAZONIA, que participan de los procesos de formación en Biología, Química, Ingeniería agroecológica y Medicina Veterinaria y Zootecnia. Igualmente, las practicas, están planteadas para llevarse a cabo en las condiciones actuales de trabajo de laboratorio en nuestra Institución

En cuanto a las prácticas como tal, el planteamiento es el siguiente: inicialmente se dan unos interrogantes al estudiante para que consulte en las distintas fuentes de información sobre el tema por tratar. Luego de realizada la práctica se revisan los datos tomados y posteriormente se hace una análisis estadístico de los mismos para realizar el respectivo informe siguiendo los delineamientos dados por la revista MOMENTOS DE CIENCIA de la Facultad de Ciencias Básicas. Esta forma de trabajo permitirá a los estudiantes, familiarizarse mejor con el método científico, como aspecto clave para la adecuada planeación, ejecución y socialización de un trabajo de investigación en ciencias del suelo.

Los autores



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PRACTICA CONTENIDO

1 MUESTREO EN CAMPO, HUMEDAD GRAVIMETRICA y DENSIDAD APARENTE

2 pH

3 ACIDEZ, ALUMINIO E HIDROGENO INTERCAMBIABLE

4 CARBONO ORGANICO. Volumetría

5 CAPACIDAD DE INTERCAMBIO CATIONICO

6 BASES INTERCAMBIABLES

7 FOSFORO DISPONIBLE. Espectrofotometría

8 NITROGENO TOTAL

9 Fraccionamiento de la materia orgánica

10 Análisis de abonos orgánicos



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MUESTREO EN CAMPOPráctica 1

1. OBJETIVO1.1. Realizar la toma de la muestra de suelo para su respectivo análisis químico, determinar humedad gravimétrica y densidad aparente por el método de cilindro

2. FUNDAMENTO (Zamudio et al 2006 )

2.1 Cuales son los dos requisitos básicos para la selección y toma de muestras de suelo?2.2 Cómo unidades básicas de muestreo, que se entiende por unidad natural y unidad práctica? 2.3 Escribir, mínimo cinco, condiciones para seleccionar áreas de muestreo2.4 Cómo se clasifican las muestras de suelo, de acuerdo con la forma de obtenerla y preparación posterior en el laboratorio para su análisis?2.5 Cómo se clasifican las muestras de suelo, de acuerdo con la unidad básica de muestreo?2.6 Cuáles son los tres tipos de diseño de muestreo representativo?

3. MATERIALESLibreta de laboratorio, esfero, guantes, tapabocas, bolsas, marcador no borrable, cinta de enmascarar, palin o barreno, GPS o altimetro, cuchillo o espátula

4. METODOLOGIA4.1 Sitio: Registrar las coordenadas geográficas del sitio de muestreo (usar GPS), e indicar nombre de la vereda, corregimiento, municipio, Departamento. Fecha, Paisaje, cobertura, nombre del colector, Instrumento de muestreo (palin o barreno).. 4.2. Retire hojarasca, palos, piedras grandes y material extraño del sitio de muestreo, medio metro a la redonda4.3 seleccione Instrumento de muestreo4.4 Tome la muestra según indicaciones del docente a cargo. Sacar muestra de suelo a una profundidad de 30 cm. Realizar muestreo en zigzag. Tomar tres submuestras del recorrido en un mismo balde o bolsa. Juntarlas para obtener una muestra fresca.4.5 colecte la muestra fresca (3 Kg) en una bolsa previamente rotulada y con cierre de seguridad. Según el caso, envuelva la muestra fresca rápidamente en papel cristaflex. 4.6 Extienda la muestra fresca de suelo en una bandeja plástica limpia y retire material extraño del suelo (raíces, cortezas, hojas entre otros) 4.7 Seque la muestra al sol o en estufa a máximo 35ºC por tres a siete días4.8 Obtenido el material seco, disgregue el material más grande del suelo seco con un rodillo de madera y pase la muestra por tamiz de 2 mm (malla 9, serie Tyler; malla 10 ASTM) hasta recoger 1000g de material seco 4.9 realice cuarteo del material seco y tamizado y luego guarde en recipiente limpio de tapa plástica o bolsa con cierre de seguridad rotulada (código) alrededor de 500g

Determinación de densidad aparente

Método del cilindro



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1. Tome la muestra no disturbada con el cilindro 2. Tome la masa del cilindro más suelo húmedo con tapa inferior3. Coloque el cilindro con suelo húmedo a 105°C x 24 h4. Tome la masa del cilindro con suelo seco5. Retire el suelo seco del cilindro6. Tome la masa del cilindro solo con tapa inferior7. Determine el volumen del cilindro (Vc=πr2h; r y h en cm).

Determine la humedad gravimétrica con estos datos

Método del terrón parafinado

Coloque la parafina en la cápsula de aluminio y caliente hasta que alcance temperatura de 60-90 °C en fase líquida. Verificar temperatura con termómetro

1. Tome el terrón de suelo sin disturbar (sin hilo) y con humedad de campo, péselo y apunte el dato obtenido en gramos. Verifique que el diámetro del terrón sea inferior al diámetro del tubo de una probeta de 50 ml

2. Colocar un hilo (30 cm ) al terrón3. Sumerja, usando el hilo, el terrón de suelo durante 5 s en el recipiente con

parafina líquida (Dparafina=0.9 g/ml) a no más de 90°C. colocar un termómetro dentro de la parafina para verificar la temperatura. Retírelo y deje drenar el exceso de parafina. Repita esta operación mínimo tres veces hasta asegurarse de que el terrón esté totalmente sellado con parafina

4. Dejar secar el terrón parafinado suspendido y por 15 min5. Pese el terrón parafinado y apunte el dato 6. Mida el volumen de agua desplazado en la probeta por el terrón parafinado

Nota: Tenga en cuenta que si aparecen burbujas en la parafina cuando la muestra es pesada en el agua, o si el peso se incrementa con el tiempo, es porque el terrón no quedó bien sellado y el agua comienza a penetrar en el terrón. En este caso hay que repetir todo el procedimiento.

Pt=masa del terrón solo (fresco)Ptp=masa del terrón con parafinaPp= masa de la parafinaVolumen parafina=Pp/densidad parafina

Volumen terrón parafinado =volumen desplazado leído en probeta

Volumen terrón= Volumen terrón parafinado-Volumen parafina

Da terrón= Pt/Volumen terrón

BIBLIOGRAFIA

ZAMUDIO-SÁNCHEZ, A. M., M. L. CARRASCAL-CARRASCAL, C. E., PULIDO-ROA, J. F. GALLARDO, E. A. ÁVILA-PEDRAZA, M. A. VARGAS-ALFONSO & D. F. VERA-RAIGOSA. 2006. Métodos analíticos del laboratorio de suelos. 6a ed. Instituto Geográfico Agustín Codazzi —IGAC—. Bogotá, D. C.



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DETERMINACIÓN DE pHPráctica 2

1. OBJETIVO1.1. Determinar pH de la muestra de suelo mediante potenciometría por cinco metodologías diferentes

2. FUNDAMENTO 2.1 Qué se entiende por reacción del suelo?2.2 Escribir cuatro razones por las cuales se explique el carácter ácido de los suelos2.3 Escribir los cinco tipos de roca ígnea según el contenido de sílice (cuarzo)2.4 Qué se entiende por acidez activa?2.5 Qué se entiende por acidez intercambiable y acidez no intercambiable?2.6 Qué se entiende por acidez total?

3. MATERIALESLibreta de laboratorio, espátula, beaker plástico de 250 ml, balanza de triple brazo, varilla de agitación, frasco lavador, probeta de 10 ml o dispensador del mismo volumen, cronometro, pH metro, solución buffer de pH 4.00 y solución buffer de pH 7.00. Solución de KCl 1M, solución de CaCl2 0.01M, solución de NaF 1M

4. METODOLOGIA

NOTA: USAR BATA DE LABORATORIO, GAFAS DE SEGURIDAD Y TAPA BOCA

4.1 Calibre el pH metro

4.2 pH en agua (relación suelo : solución 1:1)Pese 10 g de suelo seco pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 10 ml de agua destilada y desionizada, homogenice con el agitador mecánico durante 10 min en intervalos de 15 min y por una hora. Cumplido este último tiempo agite vigorosamente la muestra por 30 segundos e inmediatamente tome el valor de pH de la suspensión formada. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura

4.3 pH en agua (relación suelo : solución 1:5)Pese 10 g de suelo pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 50 ml de agua destilada, homogenice con el agitador mecánico durante 10 min en intervalos de 15 min y por una hora. Cumplido este último tiempo agite vigorosamente la muestra por 30 segundos e inmediatamente tome el valor de pH de la suspensión formada. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura

4.4 pH en CaCl2 (relación suelo:solución 1:2)Pese 10 g de suelo pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 20 ml de CaCl2 0.01M, homogenice con el agitador mecánico durante media hora. Dejar reposar media hora mas Cumplido este último tiempo agite vigorosamente la muestra por 30 segundos e inmediatamente tome el valor de pH de la suspensión formada. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura



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4.4 pH en KCl (relación suelo : solución 1:1)Pese 10 g de suelo pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 10 ml de KCl 1M, homogenice con el agitador mecánico durante una hora. Cumplido este último tiempo agite vigorosamente la muestra por 30 segundos e inmediatamente tome el valor de pH de la suspensión formada. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura

4.4 pH en NaF (relación suelo: solución 1:50)Pese 0.50 g de suelo pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 25 ml de NaF 1M, tomar el tiempo y agitar durante un minuto manualmente, efectuar la lectura del pH exactamente a los dos minutos después de la adición del NaF, colocando el electrodo en el tercio superior de la dispersión. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura

Tabla de datospH

Código muestra

agua ( 1:1) agua ( 1:5) CaCl2 0.01M (1:2)

KCl 1M (1:1)

NaF 1M (1:50)

BIBLIOGRAFIA

BORNEMISZA, Elemer. 1982. Introducción a la química de suelos. Organización de estados americanos (OEA). Programa regional de desarrollo científico y tecnológico. Washinton. 65p.

FASSBENDER, Hans & BORNEMISZA, Elemer. 1994. Química de suelos con énfasis en suelos de América Latina. Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA). Costa Rica. 404p.




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ACIDEZ, ALUMINIO E HIDROGENO INTERCAMBIABLE Práctica 3

1. OBJETIVO1.1. Determinar acidez, aluminio e hidrógeno intercambiable del suelo


2. FUNDAMENTO

2.1 Escriba la reacción de neutralización de un suelo ácido, presentando altos contenidos de aluminio, con carbonato de calcio

2.2 Escribir las cuatro clases de cal usada para neutralizar la acidez del suelo2.3 Escribir el nombre de los cuatro tipos de suelo según el criterio de alcalinidad2.4 Qué factores afectan el valor del pH del suelo (mínimo cuatro)? 2.5 Cómo se determina ΔpH en análisis de suelos2.6 Cómo se puede detectar presencia de alofán en suelo?

3. METODOLOGIA3.1 muestra: seca y pasada por tamiz de 2 mm3.2 reactivos: hidróxido de sodio (NaOH) 0.1N, acido clorhídrico (HCl) 0.1N, fenolftaleína 0.1% (en etanol), fluoruro de sodio (NaF) al 4%, cloruro de potasio (KCl) 1N3.3 materiales: bureta de 25 ml, erlenmeyer, equipo de filtración al vacio, agitador de vidrio, balanza de triple brazo, balanza analítica, estufa de secado, probeta3.4 procedimientoDeterminar el pH de la muestra de suelo en mezcla (1:1)3.4.1 pH en agua (relación suelo: solución 1:1)Pese 10 g de suelo pasado por tamiz de 2 mm en beaker plástico y agregue 10 ml de agua destilada, homogenice con el agitador mecánico durante 10 min en intervalos de 15 min y por una hora. Agite la muestra formando una suspensión e inmediatamente tome el valor de pH. Lavar y enjuagar el electrodo al terminar cada lectura. Revise que el pH metro este calibrado . Determine el pH del agua utilizada. Hacer blanco de reactivos

3.4.2 Pesar 10g de suelo seco y tamizado en balanza de triple brazo. Adicionarle 50 ml de KCl 1N y agitar continuamente por 15 min. Filtrar al vacio y lavar el residuo de la filtración con tres porciones de 10 ml de KCl 1N. Reunir los filtrados (80ml). Use papel de filtro de 11 a 15 cm de diámetro para evitar que la suspensión de suelo contamine el filtradoAgregar dos gotas de fenolftaleína al 0.1% en etanol y titular los 80 ml de filtrado con NaOH 0.1N hasta aparición de tonalidad rosada pálida. Anotar volumen.Agregar a la solución anterior gotas de HCl 0.01N hasta decolorarla. Si el pH de esta muestra es menor de 3, agregar 10 ml de NaF al 4%. La muestra adquiere una coloración rojiza. Agitar un minuto y titular con HCl 0.1N hasta decoloración de la muestra. Anotar volumen.



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Nota: valorar las soluciones de NaOH y HCl.. Determine acidez, aluminio e hidrógeno intercambiable del suelo analizado

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CARBONO ORGANICO. VolumetríaPráctica 4

1. OBJETIVO1.1. Determinar el porcentaje de carbono orgánico oxidable, carbono orgánico total, carbono orgánico estable, materia orgánica y nitrógeno total


2. FUNDAMENTO

2.1 Cuáles son los componentes del edafón?2.2 Qué se entiende por autótrofo y heterótrofo?2.3 Qué se entiende por humus?2.4 Qué se entiende por mineralización de la materia orgánica?2.5 Indicar los tipos de suelo según el porcentaje de materia orgánica?2.6 Escribir el nombre de dos metodologías para determinar materia orgánica en suelo y una metodología en tejido vegetal

3. METODOLOGIA3.1 muestra: seca y pasada por tamiz de 2 mm y de 250 micras3.2 reactivos: K2Cr2O7 1N, H2SO4 concentrado, ferroína, FeSO4 1N3.3 materiales: bureta de 25 ml, erlenmeyer, equipo de filtración al vacio, agitador de vidrio, balanza de triple brazo, balanza analítica, estufa de secado, probeta3.4 procedimientoTomar una porción de suelo seco y de 2 mm de partícula y pasar por tamiz de 250 micras. Simultáneamente hacer blanco.de reactivos.Conectar la plancha de calentamiento y dejar en posición 1Pesar 1g de suelo seco y de tamaño de partícula 250 micrasAgregar la muestra de suelo en un erlenmeyer de 250 mLAdicionar 10 ml de K2Cr2O7 1N con pipeta aforada y agitar para dispersar el sueloColocar el erlenmeyer a chorro de agua y adicionar lentamente 10 ml de H2SO4

concentrado y agitando suavemente (la reacción es fuertemente exotérmica)Colocar el erlenmeyer en la plancha caliente por 20 min sin agitarVerificar temperatura no superior a 120°CRetirar el erlenmeyer de la plancha y dejar en reposo 20 minColocar el erlenmeyer a chorro de agua y adicionar lentamente 100 ml de H2O destilada y desionizada (la disolución es exotérmica)Dejar enfriar la muestraAgregar 5 gotas de ferroínaTitular con FeSO4 1N. la muestra cambia a color verde y luego se pone marrón. Ahí termina la titulación. Titular el blanco.



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Determine el porcentaje de carbono oxidable, carbono estable, carbono orgánico total, materia orgánica y nitrógeno total en la muestra analizada.

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CAPACIDAD DE INTERCAMBIO CATIONICO (CIC)Práctica 5

1. OBJETIVO1.1. Determinar la capacidad de intercambio catiónico del suelo


2. FUNDAMENTO 2.1 Escribir el nombre y símbolo químico de cinco cationes que sean parte del reporte de bases totales y elementos menores en un análisis de suelos rutinario2.2 Defina capacidad de intercambio catiónico (CIC) y escriba en que unidades se reporta.2.3 Que se entiende por capacidad de intercambio catiónico efectivo y capacidad de intercambio catiónico variable?2.4 Escribir el nombre y símbolo químico de cinco aniones relacionados con análisis de suelos 2.5 Qué se entiende por capacidad de intercambio aniónico? 2.6 Escribir la fórmula para calcular el porcentaje de saturación de bases de un suelo. Explicar a qué corresponde cada término en la fórmula dada.

3. METODOLOGIA3.1 muestra: seca y pasada por tamiz de 2 mm 3.2 reactivos: acetato de amonio 1N pH 7, cloruro de lantano al 10%, etanol al 96%, NaCl al 10%, formaldehido al 38%, NaOH 0.1N, fenolftaleína al 1%..3.3 materiales: balanza, agitador mecánico, bomba de filtración al vacio, frascos plásticos de 100 ml tapa rosca, erlenmeyer, embudo buchner, papel filtro cualitativo, frasco lavador, balón aforado 250 ml, pipeta de 10 ml, bureta de 25 ml con soporte y pinza

3.4 procedimientoPesar 5g de suelo seco y tamizado (2 mm) en recipiente plástico con tapa rosca, agregar 30 ml de acetato de amonio 1N pH 7, cerrar el frasco y agitar por 20 minFiltrar al vacio la mezcla anteriorLavar el suelo con tres porciones de 10 ml de acetato de amonio 1N pH 7 y colectando en el mismo recipienteTransvasar el filtrado al balón aforado de 250 ml, agregar 1 ml de cloruro de lantano 10%, y llevar a volumen con agua destilada y desionizada.(guardar para análisis por absorción atómica (AA) parámetro bases totales)NO ELIMINAR LA MUESTRA DE SUELO DEL EMBUDO BUCHNER



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Lavar el erlenmeyer de recolección del filtrado y purgarlo con agua destilada y desionizada. Escurrirlo bien.Lavar el residuo de suelo con 5 porciones de 10 ml de etanol 96% filtrando al vacioPasar el filtrado del lavado con etanol a una botella para destilarlo y reutilizarloLavar bien el erlenmeyer de recolección del filtradoLavar ahora el suelo con 5 porciones de NaCl 10%Ahora si, botar el residuo de suelo en la canecaAgregar al filtrado salino 5 ml de formaldehido al 38% y cinco gotas de fenolftaleínaTitular con NaOH 0.1N hasta coloración permanente rosado pálido. Hacer blanco de reactivos (50 ml NaCl 10% y 5 ml formaldehido 38%) y titular.Valorar el NaOH 0.1NDetermine la capacidad de intercambio catiónico del suelo analizado

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BASES INTERCAMBIABLES Práctica 6

1. OBJETIVO1.1. Determinar el contenido de bases intercambiables (Ca, K, Mg y Na) del suelo


2. FUNDAMENTO

2.1 Qué se entiende por bases totales en un análisis de suelos?2.2 Cómo se prepara la muestra de suelo para análisis de bases totales por absorción atómica?2.3 A qué corresponde la abscisa y la ordenada de una curva de calibración?2.4 Para qué se usa óxido o cloruro de lantano en los análisis de metales por absorción atómica?2.5 Cual es el fundamento de la espectrofotometría de absorción atómica?2.6 A cuantos mg corresponde un meq de Calcio?

3. METODOLOGIA3.1 muestra: filtrado de acetato de amonio de la práctica 5 de CIC 3.2 reactivos: acetato de amonio 1N pH 7, cloruro de lantano al 10%, aire, acetileno 3.3 materiales: Equipo de absorción atómica. Tubos de ensayo graduados 25 ml. Pipetas de 1 ml. Compresor

3.4 procedimientoFiltrar las muestras y soluciones patrón con un filtro de 0.22micrasAl iniciar a trabajar en el espectrofotómetro tome nota de longitud de onda, slit, relación acetileno/aire, energía, soluciones patrón y de chequeo para cada lámpara que necesite

Cada 10 muestras debe retirar el agua del compresor, girando la perilla que se encuentra debajo este, a su vez mueva el compresor hacia arriba y abajo BIBLIOGRAFIA



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FOSFORO DISPONIBLE. EspectrofotometríaPráctica 7

1. OBJETIVO1.1. Determinar fosforo disponible en el suelo


2. FUNDAMENTO 2.1 Escribir dos métodos para cuantificar fósforo en suelo2.2 Cuáles son las formas aprovechables de fosforo en los suelos agrícolas?2.3 En la materia orgánica, cuales son los cinco tipos principales de compuestos fosfatados2.4 A qué corresponde la abscisa y la ordenada de una curva espectral?2.5 Qué cuidados se deben tener en cuenta en laboratorio, en la preparación de la vidriería para realizar cuantificación de fósforo disponible en una muestra de suelo2.6 explique el fundamento de la reacción del fosfato con el molibdato, en la cuantificación del fósforo disponible?

3. METODOLOGIA3.1 muestra: seca y pasada por tamiz de 2 mm3.2 reactivos: Solución cromica: 200ml de dicromato de potasio (K2Cr2O7) + 20ml de acido sulfúrico (H2SO4) [], solución floruro de amonio (NH4F) 1N. (37g/L), Acido clorhídrico (HCl []) 0.5N. (20ml HCl/500ml), solución extractora: 460ml H2O + 15ml NH4F 1N+ 25ml HCl 0.5N, solución HCl 10N: 80ml H2O + 404ml HCl [], solución molibdato de amonio-HCl 10N: 15g molibdato/350ml H2O + 300ml HCl 10N. Dejar enfriar, solución cloruro estañoso (SnCl2): 0,150g SnCl2/50ml HCl [], solución patrón de fosfato: 0,4389g fosfato diacido de potasio (KH2PO4)/L. (KH2PO4 se debe secar en estufa durante ½ hora antes de prepararlo)3.3 materiales: Vortex, espectrofotómetro, equipo de filtración al vacio, 5 Balones aforados de 250ml, 2 balones aforados de 100ml, 1 Beaker de 500ml, Varilla de agitación, 2 pipetas 10ml, 2 pipetas de 1ml, 9 tubos de ensayo de 20ml, gradilla, probeta de 100ml, 1 cubeta plástica, papel de filtro, embudos, erlenmeyer. 3.4 procedimiento



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Lavar TODO el material con solución crómica, enjuagar con agua destilada, luego dejar el material por 15 min en HCl 3% y lavar nuevamente con agua destiladaPesar 2,85 g de suelo seco tamizado (2 mm), adicionar 20ml de solución extractora y filtrar Preparar adiciones (Tabla1)

Tabla 1. Adiciones para calibración de curva espectral ml

B 1 2 3 4 5 6 7 8Agua 8,0 7,9 7,8 7,6 7,4 7,2 7,0 6,8 0Fosfato patrón 0,0 0,1 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1,2 0SnCl2 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5Molibdato-HCl 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5Solución extractora

1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 1,0 0

Muestra 0 0 0 0 0 0 0 0 9,0

Calibrar curva espectral con los tubos B y 3 Extraer de la muestra filtrada y agitar por 40s Adicionar a celdas del espectrofotómetro y leer

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NITROGENO TOTAL Práctica 8

1. OBJETIVO1.1. Determinar nitrógeno total en el suelo


2. FUNDAMENTO

2.1 Escribir cuatro formas en las cuales aparezca el nitrógeno en la naturaleza2.2 Escribir tres formas de nitrógeno orgánico y tres formas de nitrógeno inorgánico en la naturaleza2.3 escribir los pasos involucrados en la determinación de nitrógeno total por el método de Kjendhal2.4 En qué consiste la amonificación del nitrógeno y la nitrificación del nitrógeno?2.5 Escribir el nombre de tres aminoácidos aromáticos2.6 Explicar el termino denitrificación

3. METODOLOGIA3.1 muestra: seca y pasada por tamiz de 2 mm3.2 reactivos: Acido sulfúrico (H2SO4) concentrado, tabletas Kjendhal, Acido bórico 20g/500ml, hidróxido de sodio 960g/3L, acido clorhídrico 0.1N, Biftalato de potasio 0,3g/50ml3.3 materiales: Equipo digestor. Erlenmenyer de 50ml, Probeta3.4 procedimiento Pesar 1g de suelo seco y tamizado (2 mm) en balanza analíticaAgregar la muestra de suelo en un tubo BücherAdicionar 15 ml de H2SO4 concentrado y 3 tabletas Kjendhal (nacionales) o una (importada MERCK)Cambiar el agua de la manguera del digestor y encender el Scrüber



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Las muestras deben permanecer 2 horas en el digestor Retirar los tubos Bücher de la placa de calentamiento y dejar enfriar por media hora Empacar en erlenmeyerPasar al tubo del destilador evitando el paso de precipitado ajustar en el equipo Cerrar la pantalla de protecciónAdicionar 4 gotas del indicador tachiro al erlenmeyer receptor del acido bórico y destiladoDestilar por 2 minObservar que la mezcla de reacción se coloque azul o caféEl destilado es de color verde EsmeraldaSe titula con HCl hasta perder el color verdosoValorar la solución de HCl 0.1 N

%N=NHCl∗V HCl

ml∗14,01g N1000meq

∗100

PesoMS


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