INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONESFORESTALES, AGRÍCOLAS Y PECUARIAS

CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL DEL NORESTECAMPO EXPERIMENTAL SUR DE TAMAULIPAS

SITIO EXPERIMENTAL EBANO

FOLLETO DE PRODUCTORES No. 9 NOVIEMBRE DE 2007

ISBN 978-970-43-0327-3

MANEJO INTEGRADO DELAS PLAGAS DEL CHILE Y

JITOMATE EN EL ALTIPLANODE SAN LUIS POTOSÍ

SECRETARIA DE AGRICULTURA, GANADERIA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACIÓN

Ing. Alberto Cárdenas Jiménez

Secretario

Ing. Francisco López Tostado Subsecretario de Agricultura y Ganadería

Ing. Antonio Ruiz García

Subsecretario de Desarrollo Rural

Lic. Jeffrey Max Jones Jones Subsecretario de Fomento a los Agronegocios

C. Ramón Corral Avila

Comisionado Nacional de Acuacultura y Pesca INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES,

AGRICOLAS Y PECUARIAS

Dr. Pedro Brajcich Gallegos Director General

Dr. Salvador Fernández Rivera

Coordinador de Investigación, Innovación y Vinculación

Dr. Enrique Astengo López Coordinador de Planeación y Desarrollo

Lic. Marcial A. García Morteo

Coordinador de Administración y Sistemas

CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL NORESTE

Dr. Sebastián Acosta Núñez Director Regional

Dr. Jorge Elizondo Barrón Director de Investigación

M.C. Nicolás Maldonado Moreno

Director de Planeación y Desarrollo

M. A. José Luis Cornejo Enciso Director de Administración

M.C. José Luís Barrón Contreras

Director de Coordinación y Vinculación en San Luis Potosí

M.C. Gerardo Arcos Cavazos Jefe del Campo Experimental Sur de Tamaulipas

M.C. Eduardo Céspedes Torres

Encargado del Sitio Experimental Ébano

INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRICOLAS Y PECUARIAS

CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL

NORESTE

CAMPO EXPERIMENTAL SUR DE TAMAULIPAS

SITIO EXPERIMENTAL EBANO

MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE EN EL ALTIPLANO DE SAN LUIS

POTOSÍ

M.C. Enrique Garza Urbina Investigador del área de Entomología

Sitio Experimental Ébano

Ing. Ausencio Rivas Monge Director Técnico del Centro Regional de Estudios y Reproducción de Organismos Benéficos de Cd.

Fernández, S. L. P.

Ing. J. Guillermo Moreno Chávez Profesional Fitosanitario Junta Local de Sanidad

Vegetal de Villa de Arista, S. L. P.

Folleto para Productores Núm. 9 San Luis Potosí, S.L.P., México.

Noviembre de 2007

MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE EN EL ALTIPLANO DE

SAN LUIS POTOSÍ

No está permitida la reproducción total o parcial de este folleto, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier medio, ya sea electrónico, mecánico, por fotocopias, por registro u otros medios, sin permiso previo y por escrito de los titulares del Copyright. Derechos reservados © 2007, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. Av. Progreso No. 5 Col. del Carmen Delegación Coyoacán C. P. 04100 México, D. F. Tel. (55) 548 419 00 Primera edición Tiraje 1,000 ejemplares Impreso en México Clave INIFAP/CIRNE A-425 ISBN 978-970-43-0327-3 Folleto para Productores Núm. 9. Noviembre de 2007 SITIO EXPERIMENTAL EBANO Km. 67 Carretera Valles -Tampico Apdo. Postal # 87 Ébano, San Luis Potosí, México Teléfono y Fax (845) 263 3090 E-mail: ceeba_inifap@yahoo.com.mx La cita correcta de este folleto es: Garza U. E., A. Rivas M. y J. G. Moreno Ch. 2007. Manejo integrado de las plagas del chile y jitomate en el Altiplano de San Luis Potosí. Campo Experimental Sur de Tamaulipas. Sitio Experimental Ébano. INIFAP-CIRNE. San Luis Potosí, México. Folleto para Productores Núm. 9. 47 p.

CONTENIDO

INTRODUCCION PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE INSECTOS VECTORES DE ENFERMEDADES PULGON SALTADOR MOSQUITA BLANCA PULGON VERDE MANEJO INTEGRADO DE INSECTOS VECTORES Control Cultural Control Mecánico Control Biológico Control Químico PLAGAS DEL ORDEN LEPIDOPTERA GUSANO DEL FRUTO GUSANO ALFILER GUSANO SOLDADO GUSANO DEL CUERNO GUSANO FALSO MEDIDOR MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS DEL ORDEN LEPIDOPTERA Control Cultural Control Mecánico Control Biológico Control Químico OTRAS PLAGAS MINADOR DE LA HOJA BARRENILLO DEL CHILE ARAÑA ROJA MANEJO INTEGRADO DE OTRAS PLAGAS Control Cultural Control Mecánico Control Biológico Control Químico IMPACTO Y DOMINIO DE RECOMENDACIÓN SINONIMIAS APENDICE

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MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE EN EL

ALTIPLANO DE SAN LUIS POTOSÍ

Enrique Garza Urbina1

Ausencio Rivas Monge 2

J. Guillermo Moreno Chávez 3

INTRODUCCION

En el Altiplano Potosino los cultivos de chile Capsicum annuum L., y de jitomate Lycopersicum esculentum Miller, son las especies hortalizas de mayor importancia económica y social, ya que constituyen la principal fuente de ingresos de los productores y de los trabajadores del área rural que se emplean en el proceso de producción que comprende desde el trasplante hasta la cosecha. En esta región destacan como plagas de importancia económica en estos cultivos el pulgón saltador Bactericera cockerelli, mosquita blanca Bemisia tabaci, B. argentifolli, pulgón verde Myzus persicae, minador de la hoja Liriomyza spp., barrenillo del chile Anthonomus eugenii, araña roja Tetranychus urticae, gusano del fruto Helicoverpa zea y Heliothis virescens, gusano alfiler Keiferia lycopersicella, gusano soldado Spodoptera exigua, gusano del cuerno Manduca sexta, M. quinquemaculata y gusano falso medidor Trichoplusia nii y Pseudoplusia includens. En el plano económico estas plagas han ocasionado fuertes pérdidas de capital para los productores, falta de empleo y de ingresos en el medio rural. La exagerada aplicación de insecticidas contra estas plagas ocasiona serios problemas en el ecosistema: de residuos tóxicos en las cosechas, de resistencia de los insectos a los insecticidas, de reducción de la fauna benéfica y de incremento de la contaminación ambiental y de los costos de producción.

1 M.C. Investigador del Sitio Experimental Ébano. CESTAM.CIRNE.INIFAP

2 Ing. Director Técnico del CREROB. Cd, Fernández, S. L. P. 3 Ing. Junta Local de Sanidad Vegetal de Villa de Arista, S. L. P.

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El presente folleto tiene como objetivo orientar a los productores en el conocimiento de las plagas y de métodos prácticos y económicos para detectar y evitar el daño que ocasionan a estos cultivos, el uso correcto de los insecticidas y otras formas de control, dentro de una estrategia de Manejo Integrado de Plagas (MIP). PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE

En esta publicación se presentan las principales plagas que ocasionan daños económicos a los cultivos de chile y jitomate en la región; se describen las características más importantes de su morfología, biología, tipos de daños que producen y sus métodos de control; estas pertenecen al Phylum artropoda, especialmente a las clases: Insecta y Aráchnida; dentro de la clase insecta a los ordenes Homóptera, Coleoptera, Díptera y Lepidóptera y en Aráchnida al orden Acarina. INSECTOS VECTORES DE ENFERMEDADES

PULGON SALTADOR Bactericera cockerelli Orden: HOMOPTERA Familia: PSILLIDAE Importancia Económica La importancia de este insecto radica en la transmisión de un patógeno conocido como fitoplasma, el cual origina la enfermedad conocida como “Permanente del jitomate”, esta ha ocasionado en los últimos años perdidas en la producción de esta hortaliza, hasta de un 45% a nivel nacional.

Descripción Morfológica

Huevo. Son ovalados y de color anaranjado amarillento brillante, presentan en uno de sus extremos un pedicelo corto con el que son adheridos a las hojas (Figura 1 del apéndice).

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Ninfa. Son de forma oval, aplanada y semejante a escamas con los ojos de color rojo y con glándulas de cera en los márgenes del cuerpo. El primer instar ninfal es de color amarillo claro y cambia a café claro en el segundo, a café con tintes verdes en el tercer instar y a verde con tintes café en el cuarto y quinto instar, el desarrollo de los paquetes alares no se nota del primero al tercer instar, solo se observa del cuarto al quinto instar (Figura 2 del apéndice).

Adulto. Son muy parecidos a una cigarra, miden alrededor de 2 milímetros de longitud. Recién emergido su color cambia gradualmente de amarillo claro a verde pálido, café o verde dos o tres días después, hasta alcanzar un color gris o negro a los cinco días de edad. Presentan una banda ancha blanca en el primer segmento abdominal y una “v” invertida blanca en el último segmento (Figura 3 del apéndice).

Biología, Hábitos y Daños La hembra del pulgón saltador oviposita más de 500 huevecillos en el envés y bordes de las hojas, los cuales son adheridos a estas por un pequeño pedicelo, los huevecillos requieren de un período de incubación de tres a 15 días, la ninfa pasa por 4 instares en 14 a 17 días; se requieren alrededor de 30 días desde la copula hasta la formación del adulto. Esta plaga causa daños al jitomate cuando se alimenta de las plantas y succiona sus jugos e inyecta una toxina que daña a las células que producen la clorofila ocasionando que las plantas queden amarillentas y raquíticas. Por otra parte actúa como transmisor de un fitoplasma causante de la enfermedad “Permanente del jitomate” que llega a causar daños que fluctúan del 45 al 60%.

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MOSQUITA BLANCA Bemisia tabaci y B. argentifolii Orden: HOMOPTERA Familia: ALEYRODIDAE Importancia Económica

La mosquita blanca es una plaga que en los últimos años ha incrementado su incidencia en el Altiplano Potosino. Son varias las causas por las que se deriva su importancia, una de ellas, es el daño directo, ya que al succionar la savia de las plantas las debilita y puede ocasionar su muerte, sobre todo en sembradíos en los que se presentan altas poblaciones; sin embargo, el daño mayor está relacionado con la transmisión de enfermedades de tipo viral (geminivirus), para lo cual no es necesaria la presencia de poblaciones altas de mosquitas.

Descripción Morfológica

Huevo. Los huevecillos son elípticos y alargados, con el polo superior más agudo que el inferior y llevan en esta parte un pedicelo corto. Son de color verde pálido recién ovipositados y después adquieren una coloración café obscura (Figura 4 del apéndice).

Ninfa. Las ninfas son de forma oval, de color amarillo pálido o amarillo verdoso, pasan por cuatro estadios, el primero posee patas y es el único móvil, los demás son ovalados y sin patas; en vista dorsal el cuerpo es más ancho en la parte anterior (Figura 5 del apéndice). Después de que la ninfa ha empezado su alimentación pasa por dos instares ninfales más, los cuales se parecen a “escamas”. Al terminar el tercer instar pasa a un periodo de inactividad y latencia denominado “pupa”, durante el cual no se alimenta hasta que llega al estado adulto.

Adulto. Los adultos miden 1.5 milímetros de longitud, son de color blanco amarillento (Figura 6 del apéndice), se les encuentra en el envés de las hojas y cuando se les disturba vuelan rápidamente.

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Biología, Hábitos y Daños

La hembra de la mosquita blanca oviposita más de 300 huevecillos en el envés de las hojas, los cuales son colocados desordenadamente en posición vertical. La ninfa pasa por cuatro estadios, en los cuales se alimenta en el envés, en el primero se desplaza distancias cortas hasta seleccionar un sitio donde alimentarse y ahí se establece hasta llegar a adulto.

El daño directo lo ocasionan las ninfas y los adultos al succionar la savia de las plantas lo que origina el amarillamiento, moteado y encrespamiento de las hojas, seguido de necrosis y defoliación; otro daño es la excreción de mielecilla sobre las hojas en la cual se desarrolla una fungosis negra llamada fumagina, la cual interfiere con la fotosíntesis y baja la calidad de la cosecha. Sin embargo, el daño mayor de esta plaga está relacionado con la transmisión de enfermedades de tipo viral, las cuales afectan el rendimiento y calidad de las cosechas, con daños que varían de 20 a 100%. PULGON VERDE Myzus persicae Orden: HOMOPTERA Familia: APHIDIDAE Importancia Económica El pulgón verde es el vector de virus en vegetales más dañino del mundo, es capaz de transmitir más de 120 enfermedades que afectan a más de 500 plantas hospedantes, donde se incluyen gran número de plantas de importancia económica. Descripción Morfológica Huevo. En regiones templadas este pulgón inverna en estado de huevo, éstos son de color negro brillante y frecuentemente son depositados en la corteza de árboles frutales.

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Ninfas. Los pulgones inmaduros son llamados ninfas, son de color amarillo pálido, con tres líneas obscuras en la parte posterior del abdomen que no están presentes en el adulto (Figura 7 del apéndice). Pasan por cuatro estados ninfales, período que es completado en 6 a 11 días. Adultos. Los adultos ápteros varían en color, de verde a amarillo pálido, los alados son verdes con manchas negras o café oscuro en el abdomen, son de tamaño pequeño a mediano, de 1 a 2 mm de longitud y sus antenas son tan largas como el cuerpo (Figura 8 del apéndice). Las hembras adultas dan nacimiento a aproximadamente 50 ninfas. Biología, Hábitos y Daños El ciclo biológico comprende cuatro instares ninfales y el estado adulto, el cual puede ser alado o áptero; este se completa en aproximadamente 10 días; en la región, durante el desarrollo del cultivo solo hay reproducción partenogenética y no se producen machos; las hembras son vivíparas y pueden producir hasta 100 ninfas. Las aladas se producen en respuestas a condiciones de hacinamiento, falta de alimento o senescencia de los tejidos. Son visitadas por hormigas, las cuales se alimentan de la mielecilla que excretan, estas pueden mover a las ninfas a plantas que no están infestadas y establecer nuevas colonias. Las ninfas y los adultos se alimentan en grandes colonias sobre el envés de las hojas. El daño es ocasionado por todos los estadios al succionar la savia de las hojas y brotes, al alimentarse inyectan una saliva tóxica que distorsiona las hojas, el daño causa reducción del vigor de la planta, achaparramiento, marchitez, amarillamiento, encrespamiento y caída de las hojas, así como fumagina que crece en la mielecilla que excretan, la cual ennegrece las hojas y se reduce la fotosíntesis. Sin embargo, el daño mayor es como vector de enfermedades de tipo viral.

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MANEJO INTEGRADO DE INSECTOS VECTORES

Control Cultural

Selección del sitio de siembra. La siembra se debe realizar en áreas que no tengan huertas abandonadas de chile o de jitomate, ya que en estas se reproducen las plagas y las enfermedades, de ahí se dispersan a las nuevas plantaciones. Seleccionar lotes con buena fertilidad y sin problemas de drenaje, con una pendiente mínima del 0.25%, con la finalidad de evitar encharcamientos que estresan y debilitan a las plantas, las cuales son más susceptibles a las plagas y ha los virus y fitoplasmas que trasmiten.

Fecha de siembra. La fecha de siembra para los cultivos de chile y jitomate comprende del 15 de abril al 30 de mayo, período en el que se obtienen los máximos rendimientos y se tiene la menor incidencia de las plagas. Se recomienda proteger los almácigos o producir la planta en invernaderos para que lleguen al campo libres de virus y fitoplasmas y no realizar siembras escalonadas que favorezcan la reproducción del inoculo y de las plagas. Control de maleza. El control de maleza y de hospedantes alternos de las plagas y de las enfermedades en la huerta, en los alrededores y la eliminación de plantas enfermas del cultivo ayudan a reducir el inoculo y la incidencia de las plagas. Fertilización. La fertilización con la dosis 180-90-00 y el manejo óptimo de la humedad del cultivo hace más tolerantes a las plantas del ataque de fitoplasmas, virus y de las diferentes plagas que afectan este cultivo, ya que se optimiza el crecimiento de las plantas. Rotación de cultivos. La rotación con cultivos que no son afectados por las plagas del chile y jitomate y en los cuales no se reproducen los fitoplasmas y virus, como es el

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caso del maíz, ayuda a reducir la fuente de inoculo y la incidencia de plagas y de enfermedades de estos cultivos. Destrucción de residuos del cultivo. Se sugiere destruir los residuos de plantas inmediatamente después del último corte mediante métodos de labranza, con la finalidad de impedir el incremento de las poblaciones de plagas y la fuente de inoculo de fitoplasmas y virus.

Control Mecánico

Uso de trampas. El uso de trampas adhesivas es una técnica para monitorear y para trampeo masivo de plagas, con la finalidad de reducir su incidencia. Una alternativa para cuantificar la población de insectos vectores es el uso de estas trampas de colores naranja o verde fluorescente para paratrioza y amarillas para mosca blanca y pulgones (Figura 55 del apéndice), las cuales deben ser orientadas para recibir la luz del sol y colocadas a una altura superior al de las plantas de chile y jitomate, además, puede ser de gran ayuda ya que los insectos capturados no volverán a hacer daño al cultivo. Estas trampas se elaboran con plásticos de estos colores y de un tamaño de 20 X 30 centímetros y se les unta una resina sintética o grasa automotriz. Sin embargo, también son atraídos otros insectos por estos colores; en parcelas de transferencia de tecnología con la estrategia de MIP, se han observado grandes cantidades de fauna benéfica en estas trampas, por lo que en caso de que esto suceda será necesario eliminar el trampeo masivo.

Control Biológico

Conservación de la fauna benéfica. En la estrategia de MIP se deben tener las precauciones necesarias para conservar la fauna benéfica que se presenta de manera natural en la región, ya que la mayoría de los insecticidas afectan las poblaciones de estos insectos, por lo que solamente deberán utilizarse productos autorizados, con buena efectividad y selectivos en el control

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de la plaga, los cuales se mencionan en el apartado de control químico.

En el Altiplano Potosino se tiene alta incidencia de insectos benéficos cuando se implementa esta estrategia, debido a que durante los primeros 90 días del ciclo del cultivo no se generalizan las aplicaciones de insecticidas y a que los productos sugeridos presentan bajo o nulo impacto sobre las poblaciones de insectos parásitos y depredadores; con este manejo, se conserva la fauna benéfica nativa, entre las que destacan por su abundancia diferentes insectos depredadores de huevecillos y ninfas del pulgón saltador, dentro de estos a la catarinita Hippodamia convergens, crisopas Chrysopa spp., la chinche ojona Geocoris sp. y diferentes especies de chinches asesinas y arañas verdaderas (Figuras 29, 38, 30, 31, 32 y 33 del apéndice).

En esta misma región se ha observado al final del ciclo del cultivo un parasitismo del 80 a 90% de las ninfas del pulgón saltador por la avispita Tamarixia triozae (Figura 34 del apéndice) en huertas donde se ha establecido el MIP; en mosca blanca, parasitoides internos del tercer estadio ninfal de los géneros Encarsia y Eretmocerus, la hembra de estos parasitoides oviposita bajo la ninfa de segundo o tercer estadio y cuando la ninfa alcanza su tercer o cuarto estadio, la larva del parasitoide penetra en el huésped deteniendo su desarrollo; la mosquita bailarina Drapetis sp., depredador de adultos de esta misma plaga, crisopas Chrysopa spp., chinche pirata Orius spp., chinche Macrolophus sp. y arañas (Figuras 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42 y 32 del apéndice). En pulgón verde se han observado diferentes insectos depredadores de ninfas y de adultos, dentro de estos a la catarinita Hippodamia convergens, crisopas Chrysopa spp., arañas y parasitoides como las avispitas de los géneros Lisiphlebus, Aphidius, Aphelinus y al díptero Aphidoletes (Figuras 29, 40, 43, 44 y 45 del apéndice); la hembra de estas avispitas introduce un huevo en el pulgón, desarrollándose, a expensas de éste, cuatro estadios larvarios. Por esta razón, el áfido que ha

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sido parasitado se hincha, quedando inmovilizado hasta convertirse en una envoltura coriácea conocida como “momia”, de la cual emerge el adulto del parasitoide a través de un orificio circular; por otra parte el díptero de la familia Cecidomidae Aphidoletes es un depredador de pulgones, la larva pica e inyecta un tóxico al pulgón, absorbiendo en seguida su contenido (Figura 45), el pulgón adquiere una coloración marrón o negra. Los adultos de este depredador son de hábitos nocturnos o crepusculares alimentándose de mielecilla, el cual no es muy especifico y puede alimentarse de muchas especies de pulgones.

Uso de entomopatógenos. El uso de microorganismos entomopatógenos que incluyen hongos, bacterias, virus, protozoarios y nemátodos, se ha desarrollado de manera diferente al control biológico clásico, ya que son utilizados como tratamientos repetitivos y no como un organismo capaz de perpetuarse por si mismo, es decir, se manejan como insecticidas biológicos, los cuales difieren en forma significativa de los plaguicidas convencionales, debido a que son organismos vivos que generalmente regulan la población plaga más que eliminarla, tienen un impacto retardado y son muy selectivos.

Para el control de la mosquita blanca los mejores resultados se han obtenido con el hongo Paecilomyces fumosoroseus y Verticillium lecanii en dosis de 2.4 X 1012 conidias por hectárea, con reducciones superiores al 80 y 70% en ninfas y adultos respectivamente, superando a los hongos Beauveria bassiana y Metharizium anisopliae. En el caso de paratrioza y pulgón verde los hongos entomopatogeno Beauveria bassiana y Verticillum lecanii respectivamente, presentan buena efectividad en el control de esta plaga en dosis de 2.4 x 1012 conidias por hectárea.

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Control Químico

Muestreos y Umbral económico En el almacigo. La etapa de almacigo es considerada la más crítica, ya que las plántulas son más susceptibles al virus trasmitido por mosquita blanca, por lo que se recomienda que estos se encuentren protegidos con malla antiafidos y tratar la semilla como se menciona en el apartado de aplicación de insecticidas. En esta etapa se deben muestrear un mínimo de 50 plántulas por 10 m2 de almacigo por lo menos tres veces por semana o colocar trampas adhesivas de color amarillo para monitorear la población de insectos. La incidencia de mosquita blanca, pulgones, diabróticas, trips y minador de la hoja, deja de tener importancia en esta etapa al ser controladas con el tratamiento de la semilla. Del trasplante al inicio de floración. Durante esta etapa se deben revisar en forma visual o con la ayuda de un visor por lo menos 50 plantas por cada cinco hectáreas, distribuidas en cinco o más sitios o con la ayuda de las trampas adhesivas. La incidencia de insectos vectores de virus y plagas como trips, diabróticas y larvas de minador de la hoja no son de importancia al ser controladas por la aplicación de imidacloprid o Thiamethoxam al cuello de la raíz; al encontrar estos insectos es importante observar su comportamiento, ya que sus movimientos son lentos, no responden al ser disturbados o no pueden volar, indicios de que el producto está funcionando y no hay necesidad de complementar el control. De la floración a la cosecha. Continuar con los muestreos como se menciona en el apartado anterior. Una forma de verificar si el producto utilizado al inicio de la temporada esta funcionando, es muestreando la presencia de estados inmaduros de la mosquita blanca; si se detecta la incidencia de ninfas de segundo a cuarto instar, será necesario complementar el control con algunos de los

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productos mencionados en el apartado de aplicación de insecticidas. Aplicación de Insecticidas

Dentro de la estrategia del MIP en chile y jitomate, el control químico se inicia con el tratamiento de la semilla con el insecticida imidacloprid (Gaucho) en dosis de 49 gramos de ingrediente activo (g I. A.) por kilogramo de semilla. Inmediatamente después del trasplante realizar una aplicación dirigida al cuello de la raíz con este mismo insecticida, en su presentación Confidor, en dosis de 350 g I. A./ha o Thiamethoxam (Actara) en dosis de 150 g I. A./ha. Debido a que estos productos son sistémicos, son absorbidos por las raíces y ascienden con la corriente de savia, protegiendo las plantas contra insectos vectores de virus por más de 30 y 60 días para la primera y segunda aplicación respectivamente; es decir, tienen un efecto prolongado y una vez que los insectos se alimentan de las plantas tratadas, estos dejan de alimentarse y aunque estén presentes no causan más daños, poco después mueren.

Por lo anterior, durante 60 días después de la segunda aplicación, no es necesario complementar el control de insectos vectores de virus como mosquita blanca, pulgón saltador y pulgones, ni para plagas secundarias como trips, diabróticas, pulga saltona y minador de la hoja.

Para el control de los insectos vectores después de este período, se sugiere la aplicación de los hongos mencionados en el apartado uso de entomopatogenos, o cualquiera de los siguientes insecticidas: para mosquita blanca, Pymetrozine 250 g I. A./ha, Sales potásicas de ácidos grasos en dosis al 2%, es decir 4.0 litros del producto en 200 litros de agua, Buprofezin 446 g I. A./ha y Amitraz 200 g I. A./ha para el control de ninfas, , Aceite parafínico de petróleo en dosis de 1200 g I. A./ha o Pyriproxifen 41.2 g I. A./ha.

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En el caso de paratrioza utilizar Abamectina 3.6 gramos de ingrediente activo por hectárea (g I. A./ha), Pymetrozine 250 g I. A./ha y Amitraz 200 g I. A. /ha y para pulgón verde complementar el control con Pymetrozine en dosis de 250 g I. A./ha. PLAGAS DEL ORDEN LEPIDOPTERA

GUSANO DEL FRUTO Helicoverpa zea y Heliothis. virescens

Orden: LEPIDOPTERA Familia: NOCTUIDAE Importancia Económica

Las larvas de estas dos especies son plagas de importancia del chile y del jitomate, ya que dañan a los frutos desde la formación hasta la maduración; una vez afectados se pudren a consecuencia de la penetración de hongos, bacterias e insectos quedando inutilizados para el mercado.

Descripción Morfológica

Huevo. Los huevecillos son de forma esférica con la base aplanada, presentan de 22 a 24 estrías perpendiculares, muy bien definidas, recién ovipositados son de color blanco cremoso y aproximadamente a las 24 horas se observa una franja de color café oscuro alrededor del huevo (Figura 9 del apéndice).

Larva. Las larvas de estas especies son muy similares y solo se pueden diferenciar con la ayuda de un microscopio; son de colores muy variados, con bandas longitudinales y usualmente con puntitos negros (Figura 10 del apéndice). Las larvas de H. virescens tienen espínulas microscópicas en los pináculos cerdígeros I y II en el 1º, 2º y 8º segmentos abdominales y la mandíbula tiene en la parte interna un retináculo de color oscuro en forma de peine, no así en H. zea.

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Pupa. La pupa es de color café brillante, mide 16 milímetros de longitud y se le encuentra en el suelo dentro de una celda a una profundidad de 3 a 8 centímetros.

Adulto. Los adultos de estas dos especies son palomillas muy diferentes, H. zea es un poco más grande, mide 2.5 centímetros de largo, de color amarillo ocre con una manchita no bien definida en el centro de las alas anteriores; H. virescens mide unos 2 centímetros, es de color amarillo verdoso, con tres bandas oblicuas en las alas anteriores (Figuras 11 y 12 del apéndice).

Biología, Hábitos y Daños

La hembra deposita los huevecillos en forma individual en las hojas ubicadas cerca de la inflorescencia. Cuando hay frutos en la planta, la larva al emerger penetra inmediatamente el fruto, son de hábitos canibalísticos, por lo que solo se encuentra una larva por fruto. Estas pasan por seis instares larvarios alcanzando un tamaño de 4 centímetros, generalmente el estado larvario lo completan en un solo fruto, a menos que sea muy pequeño, entonces puede dañar varios frutos; después se dirigen al suelo y se transforman en pupa. De esta emerge el adulto para repetir el ciclo, el cual se completa en aproximadamente un mes a temperaturas de 23 a 30º C.

Dada la diversidad de cultivos que hay en la región en los que estas especies pueden reproducirse, se presentan varias generaciones al año. Los frutos dañados por este insecto se caracterizan porque muestran un aspecto aguanoso con gran cantidad de residuos fecales, posteriormente esos frutos son afectados por organismos secundarios que causan su pudrición.

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GUSANO ALFILER Keiferia lycopersicella Orden: LEPIDOPTERA Familia: GELECHIIDAE Importancia Económica Es una de las plagas más importantes del jitomate, tanto por el daño físico que ocasiona al follaje, tallos tiernos y al fruto, el cual minan causando su pudrición y pérdida del valor en el mercado, además de su alta capacidad de desarrollar resistencia a insecticidas, lo que hace que su control sea muy difícil y costoso.

Descripción Morfológica

Huevo. Los huevecillos son de forma elíptica, de color amarillo recién ovipositados y después se vuelven de color anaranjado antes de la eclosión.

Larva. La larva es de color verde pálido a rosada al principio, después se vuelve grisácea con manchas púrpuras, mide de 6 a 8 milímetros de largo cuando está completamente desarrollada (Figura 13 del apéndice).

Pupa. La pupa es de color café claro y generalmente se encuentra en el suelo dentro de un capullo cubierto con partículas de tierra, aunque también se puede encontrar dentro del fruto.

Adulto. El adulto es una palomilla de 5 milímetros de longitud, de color café sucio con manchas negras en todo el cuerpo (Figura 14 del apéndice). Biología, Hábitos y Daños

La hembra deposita los huevecillos en forma aislada en el haz o envés de las hojas cercanas a las inflorescencias; las larvitas de primero y segundo instar minan las hojas produciendo amplias cavidades y en el tercero usan su seda para doblar la hoja, donde se

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protegen, también salen de la mina y se introducen en los frutos cerca del pedúnculo en donde terminan su estado larvario, la pupa se encuentra dentro del fruto o en el suelo en un pupario, después emerge el adulto para repetir el ciclo, el cual dura 21 días a temperaturas de 30º C. Las hojas muy atacadas se secan y los frutos se deforman o se pudren internamente, siendo descartados para su comercialización. GUSANO SOLDADO Spodoptera exigua Orden: LEPIDOPTERA Familia: NOCTUIDAE Importancia Económica Las poblaciones de este insecto se han incrementado en los últimos años en la región, su importancia en los cultivos de chile y jitomate se debe al daño que ocasionan las larvas en el follaje y al mordisquear los frutos, los cuales quedan inutilizados para la comercialización; por otra parte, han desarrollado resistencia a la mayoría de los insecticidas convencionales. Descripción Morfológica

Huevo. Los huevecillos se encuentran en masas de 50 a 150 sobre las hojas y están cubiertos con escamas de color gris del abdomen de la hembra (Figura 15 del apéndice).

Larva. Las larvas chicas son de color verde claro con la cabeza negra y las grandes son de color verde oscuro en diversas tonalidades, con bandas claras a lo largo del cuerpo, alcanzan un tamaño de 2.5 centímetros de largo (Figura 16 del apéndice).

Pupa. La pupa es de color café brillante, se le encuentra en el suelo a una profundidad de 1.0 centímetro, dentro de una celda elaborada con partículas de tierra.

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Adulto. El adulto es una palomilla de color café grisáceo y brillante, mide 2.5 centímetros con las alas extendidas. Las alas anteriores son de color café grisáceo, con líneas café oscuro y escamas blancas, con una mancha redonda color crema con el centro anaranjado; las alas posteriores son blancas con las venas y el margen color café (Figura 17 del apéndice). Biología, Hábitos y Daños

La hembra deposita los huevecillos en grupos cubriéndolos con escamas de su cuerpo, lo que limita la acción de los parasitoides. El primer instar se alimenta en grupos por debajo de una telaraña de seda en el envés de las hojas que quedan esqueletonizadas; el siguiente hace perforaciones irregulares en el follaje y hasta el tercer o cuarto se alimentan de los frutos. La larva pasa por 5 o 6 instares, para después dirigirse al suelo donde se convierte en pupa, de la cual emergen los adultos para completar el ciclo, en aproximadamente 30 días. El daño en el fruto consiste de mordiscos superficiales que se secan al madurar, en ocasiones las larvas recién emergidas penetran el fruto y ocasionan un daño similar al del gusano del fruto. GUSANO DEL CUERNO Manduca sexta y M. quinquemaculata Orden: LEPIDOPTERA Familia: SPHINGIDAE

Importancia Económica Las larvas de estas dos especies pueden ocasionar defoliaciones severas a los cultivos de chile y jitomate y el deterioro de los frutos, aunque pocas veces se observan infestaciones fuertes. Descripción Morfológica

Huevo. Los huevos tienen forma globular, son de color verde, miden 1.5 milímetros de diámetro y son

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depositados individuamente en el haz de las hojas o sobre los frutos.

Larva. Las larvas son de color verde claro a oscuro; las de M. sexta tienen siete líneas blancas oblicuas en cada lado del cuerpo cerca de los espiráculos; en el último segmento abdominal posee un cuerno curvado hacia abajo que inicialmente es verde y luego se torna rojo, llegan a medir hasta 9.0 centímetros (Figura 18 del apéndice). La larva de M. quinquemaculata tiene ocho manchas transversales en cada lado del cuerpo y el cuerno es recto y de color negro.

Pupa. La pupa es de color pardo rojizo y presenta una envoltura especial en forma de gancho que alberga la probosis.

Adulto. Las palomillas tienen la forma típica de los esfíngidos, miden de 10 a 12 centímetros de expansión alar; son de color gris, con grandes manchas anaranjadas en los lados del abdomen; M. sexta y M. quinquemaculata tienen seis y cinco manchas a cada lado respectivamente, de ahí derivan los nombres científicos de estas especies (Figura 19 del apéndice). Biología, Hábitos y Daños La hembra llega a poner más de 300 huevos en el haz de las hojas en forma individual, después de tres a cinco días emerge el primero de los cinco estadios larvales, los cuales se alimentan durante 20 a 30 días en el follaje, los tallos y los frutos. Al finalizar su desarrollo la larva se oculta en el suelo y construye una celda laxa con seda, tierra y restos orgánicos, dentro de la cual transcurre el período pupal durante 15 a 21 días.

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GUSANO FALSO MEDIDOR Trichoplusia nii y Pseudoplusia includens Orden: LEPIDOPTERA Familia: NOCTUIDAE Importancia Económica Las larvas pequeñas de estas dos especies se alimentan de la parte inferior de las hojas del jitomate y respetan la cutícula superior, en tanto que las más desarrolladas defólian las plantas y perforan los frutos, favoreciendo la entrada de microorganismos.

Descripción Morfológica

Huevo. Los huevos de T. nii son puestos individualmente en el envés de las hojas, son de color verde pálido y con forma de domo; mientras que los de P. includens son puestos en el haz, son redondeados y de color verde.

Larva. La larva de T. nii es de color verde pálido con rayas laterales de color amarillo o blanco y patas toráxicas siempre blancas. La larva de P. includens es de color verde amarillento oscuro con pináculos negros y cabeza con puntos negros; el cuerpo y patas son raramente de color verde pálido, con franjas longitudinales y laterales de color blanco. Ambas larvas tienen tres pares de propatas (Figura 20 del apéndice).

Pupa. La pupa es de color verde claro y por lo general se encuentran en un capullo tejido en el envés de las hojas.

Adulto. El adulto de P. includens se reconoce por el color café o bronce oscuro de sus alas anteriores, que tienen una mancha color plateado en forma de “Y”, que es característica de esta especie. El tórax de este insecto presenta una protuberancia debido a un conjunto de escamas y setas erectas. El adulto de T. nii se diferencia del

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de P. includens porque en sus alas anteriores, moteadas en gris pardo oscuro, tienen un punto plateado parecido a la figura de un 8 cerca del centro. El tamaño de ambos es similar, de 3 a 4 centímetros de longitud (Figura 21 del apéndice). Biología, Hábitos y Daños Las larvas de ambas especies se alimentan del follaje, aunque también se pueden encontrar perforando frutos. En altas densidades estos insectos pueden defoliar por completo una planta; las larvas pequeñas se alimentan en el envés dando un apariencia de color plateado al follaje cuando es visto desde arriba, mientras que las más grandes consumen porciones irregulares del follaje, dejando solamente las venas grandes de las hojas. Ambas especies son consideradas como plagas de menor importancia, pero en poblaciones altas pueden causar daño económico. MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS DEL ORDEN LEPIDOPTERA Control Cultural Es importante eliminar la maleza dentro del cultivo y de los alrededores, para evitar que estas plantas actúen como focos de infección al ser elegidas por las palomillas para la oviposición, como es el caso del gusano soldado con la maleza conocida como quelite. Además, se deberán destruir las plantas de chile y jitomate inmediatamente después del último corte con la finalidad de reducir las poblaciones de lepidópteros; por otra parte la eliminación de frutos que se desechan en los empaques ayuda a disminuir las poblaciones del gusano alfiler y gusano del fruto.

Control Mecánico Uso de trampas. El uso de trampas con cebo alimenticio ayuda a reducir la incidencia y los daños ocasionados por los gusanos: soldado, del fruto y falso

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medidor. Estas consisten de cualquier recipiente con capacidad mínima de cuatro litros, a las cuales se les abren unas ventanas rectangulares de 20 x 15 cm y se les coloca melaza fermentada con cascara de piña, la cual sirve como atrayente alimenticio, capturando hembras y machos. Estas trampas deberán colocarse sobre estacas con una separación máxima de 50 metros en la periferia del cultivo (Figura 57 del apéndice). Uso de feromonas. El uso de trampas con feromonas sintéticas en dispositivos de lenta liberación, sirven para atraer machos en el caso de lepidópteros (feromona sexual), con la finalidad de detectar la presencia temprana y así tomar las medidas de control oportunas o como método de confusión en el apareamiento del gusano alfiler, las cuales son efectivas en el combate de esta plaga cuando se realiza en áreas grandes y compactas. Al distribuirse en el campo, se evita el apareamiento normal de los adultos y con ello se interrumpe su reproducción y por lo tanto el daño en el cultivo. Existen dos tipos de trampas para su uso en los cultivos de chile y jitomate: Trampa de ala (Figura 59 del apéndice), sirve para detectar especies de lepidópteros de tamaño pequeño; como en el caso del gusano alfiler, con sistema de lenta liberación del atrayente (8 a 10 semanas). Para monitoreo aislado se usan 2 trampas de ala en 5 hectáreas y para monitoreo intensivo de 10 a 15 trampas de agua por hectárea. Trampa de agua (Figura 60 del apéndice), para captura masiva de lepidópteros de mayor tamaño como es el caso del gusano soldado, gusano del fruto y gusano falso medidor, con sistema de lenta liberación del atrayente (3 a 4 semanas). Para monitoreo aislado se utilizan de 2 a 3 trampas por cada 10 hectáreas y para el intensivo de 10 a 15 trampas por hectárea.

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La trampa de ala y las feromonas se adquieren en tiendas especializadas de agroquímicos y la trampa de agua se elabora con un recipiente de un galón, al cual se le abren unas ventanas de 15 X 20 centímetros, se coloca agua con jabón y el sistema de lenta liberación de la feromona se cuelga con un alambre. Control Biológico

De los enemigos naturales de los gusanos soldado, del fruto del cuerno y falso medidor, podemos encontrar depredadores, parasitoides y patógenos eficaces en el control de estas plagas. Dentro de los depredadores generalistas se han observado varias especies que se alimentan de huevos y larvas; entre los mas importantes están la chinche pirata Orius spp., Chinche ojona Geocoris spp., diferentes especies de chinches asesinas, catarinitas Hippodamia convergens, diferentes avispas de la familia Vespidae y la crisopa Chrysoperla carnea, (Figuras 41, 30, 31, 32, 29, 54, 38, 39 y 40 del Apéndice),la cual es capaz de depredar todas las larvas recién emergidas de una masa de huevecillos en un lapso de 24 horas. Entre los parasitoides más comunes se han observado avispitas del género Cotesia y moscas de la familia Tachinidae. Estos enemigos naturales son muy efectivos en reducir las poblaciones de gusanos cuando no se realizan aplicaciones de insecticidas químicos generalistas, los cuales afectan sus poblaciones.

Para reducir la incidencia y los daños ocasionados por los gusanos: del fruto, alfiler, soldado, del cuerno y falso medidor, es necesario efectuar liberaciones de 75 mil avispitas Trichogramma pretiosum (Figura 53 del apéndice) por hectárea (30 pulgadas cuadradas) con intervalos semanales, desde el transplante hasta finales del ciclo. Para lograr un buen control, la distribución de las avispitas debe ser lo más uniforme posible en un mínimo de 30 puntos por hectárea. Los insecticidas biológicos a base de la bacteria Bacillus thuringiensis son efectivos contra los gusanos del

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fruto, alfiler, del cuerno y falso medidor, cuando se aplican sobre los primeros estadios larvales en dosis de 1.0 kilogramo de producto comercial por hectárea; sin embargo, no han mostrado buena efectividad en el control del gusano soldado. El virus de la poliedrosis nuclear de Spodoptera exigua, ha presentado un control excelente sobre larvas de primero a tercer instar del gusano soldado, con reducciones superiores al 90%, en dosis de 1.2 x 1010 cuerpos poliédricos de inclusión por hectárea. Además de controlar al gusano del fruto, del cuerno y falso medidor.

Estos insecticidas biológicos son muy específicos para el control de larvas y no afectan a otros organismos, por lo que son compatibles con programas de MIP. Control Químico Para el control de los gusanos soldado, del cuerno, del fruto, falso medidor y alfiler se deben utilizar los insecticidas biológicos mencionados en el apartado uso de entomopatógenos, o los insecticidas spinosad 48 g I. A./ha, hexaflumuron 25 g I. A./ha, tebufenozide 80 g I. A./ha o benzoato de emamectina 10 g I. A./ha. Las aplicaciones deben realizarse cuando se detecten un 5% de plantas infestadas. OTRAS PLAGAS MINADOR DE LA HOJA Liriomyza spp. Orden: DIPTERA Familia: AGROMYZIDAE

Importancia Económica

Este insecto alcanza el nivel de plaga primaria en los cultivos de chile y jitomate cuando se recurre al uso calendarizado de insecticidas generalistas para combatir las

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plagas, ya que con esta práctica se eliminan los enemigos naturales que normalmente lo mantienen bajo control.

Descripción Morfológica Huevo. Los huevecillos son ovalados de color blanco crema, miden 0.25 milímetros de longitud. Larva. Las larvas no tienen patas y son de color amarillo, miden de 2 a 4 milímetros de longitud y 0.5 milímetros de ancho cuando están completamente desarrolladas (Figura 22 del apéndice). Pupa. La pupa es de color amarillo anaranjado, tornándose a café amarillento en su etapa más avanzada, de forma ovalada, estrechándose al final y distintamente segmentada (Figura 23 del apéndice). Adulto. El adulto es una mosca pequeña de unos 2 milímetros de longitud, de color negro con manchas amarillas en el escutelo y en la parte de las patas y abdomen (Figura 24 del apéndice).

Biología, Hábitos y Daños

Las mosquitas insertan sus huevecillos en las hojas tan pronto como se trasplantan las plantitas; las larvitas al nacer minan las hojas formando galerías sinuosas, al final de las cuales salen y se transforman en pupa en la base del tallo. El daño principal es ocasionado por las larvas, que forman minas al alimentarse y desarrollarse dentro de la hoja. En infestaciones fuertes, la planta toma una coloración blanquizca y detiene su desarrollo normal, estas infestaciones pueden ocasionar la defoliación del plantío con la consecuente reducción en el rendimiento y el tamaño de los frutos y finalmente quemaduras de la fruta por el sol. Los adultos también pueden causar daño al ovipositar y alimentarse, lo que se manifiesta en diminutas picaduras sobre la superficie de la hoja, que sirven de entrada a bacterias y hongos.

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BARRENILLO DEL CHILE Anthonomus eugenii Orden: COLEOPTERA Familia: CURCULIONIDAE Importancia Económica El barrenillo es una de las principales plagas del cultivo de chile, debido a la resistencia que ha desarrollado a diferentes grupos de insecticidas que normalmente lo mantenían bajo control, su manejo se complica dado que ataca los frutos desde el inicio de la fructificación hasta el final de la cosecha, provocando pérdidas que pueden ser hasta del 100%.

Descripción Morfológica

Huevo. Los huevecillos son depositados en las yemas florales y frutos tiernos, son ovalados, pero pueden tomar la forma de la cavidad en que están situados, su superficie es lisa, correosa y flexible, de color blanco aperlado cuando están recién ovipositados y después se tornan amarillentos, miden aproximadamente 0.5 mm de longitud y 0.4 mm de diámetro.

Larva. Las larvas no tienen patas, son robustas y curvadas, recién eclosionadas miden de 0.8 a 1.5 mm de longitud. Su cuerpo es de color blanco brillante, la cabeza es grande, blanca con el extremo negro y las mandíbulas de color café. Después de la muda la larva mide de 1.3 a 2.6 mm de longitud, con la cabeza amarillo claro y las mandíbulas de color café oscuro o negro. El tercer estadio larval mide de 2.2 a 5.0 mm de longitud con un promedio de 3.3 mm, de color gris blancuzco, con la cabeza café y las mandíbulas negras (Figura 25 del apéndice).

Pupa. Inicia cuando la larva hace una cavidad ovalada dentro de la fruta y su cuerpo comienza a acortarse y ensancharse, en este momento su color es blanco brilloso (Figura 26 del apéndice). Pocas horas después la pupa desecha su piel larval y sufre cambios en apariencia, los

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ojos se manchan y comienzan a mostrar un tinte amarillo. A los dos ó tres días los ojos se obscurecen, el pico toma una coloración café amarillenta con el extremo negro y las antenas y élitros toman un color gris.

Adulto. Los adultos recién emergidos son de color café claro y se obscurecen a gris o café rojizo a negro en dos ó tres días, tienen el cuerpo ovalado, y cubierto con pubescencia de color amarillo claro, principalmente sobre el pronoto y élitros, miden de 2.0 a 3.5 mm de longitud (Figura 27 del apéndice). A dos tercios del extremo de la tibia tienen una coloración anaranjada amarillenta. Los adultos tienen el pico característico de los picudos, el cual en el barrenillo del chile es un sexto más grande que la cabeza y el protorax, su aparato bucal es masticador. Las antenas son largas, delgadas y la clava oblonga, los élitros tienen surcos de punturas. Biología, Hábitos y Daños La hembra deposita más de 300 huevecillos en forma individual en orificios que hace en los botones florales y frutos inmaduros. Se requieren de tres a cinco días para su eclosión. Prefiere ovipositar en frutos tiernos y los orificios que realiza son sellados con un fluido amarillo claro, el cual endurece a los pocos minutos.

La larva después de una a cuatro horas de la eclosión se alimenta de la semilla y de la pulpa del fruto tierno. La primer muda ocurre en un promedio de dos días y la larva de segundo instar se alimenta por otros dos días antes de volver a mudar. El tercer estadio larval se alimenta por un período de 3.5 días y luego se prepara para el estado de pupa, el cual inicia cuando la larva hace una cavidad ovalada dentro de la fruta, que a su vez es alineada con excremento hasta formar una celda. Este estado dura de tres a seis días y un promedio de 4.5 días, durante este período la celda se mantiene cerrada.

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El adulto completamente desarrollado requiere de tres a cuatro horas para emerger, para lo cual realiza un orificio redondo en el fruto. Después de que emerge, se alimenta inmediatamente en los botones florales y frutos inmaduros. El daño primario es causado por las larvas en botones florales y frutos inmaduros; los primeros síntomas de un fruto infestado son pedúnculos amarillos y cenizos, los cuales llegan a marchitarse en el punto de unión con la planta, lo que ocasiona la caída de la fruta.

Los frutos infestados se tornan rojos o amarillos prematuramente y pueden quedar deformes y pequeños antes de caer al suelo. Estos tienen la semilla y la pulpa ennegrecidos como resultado de la alimentación de las larvas. Los adultos también ocasionan un daño al picar los botones y frutos inmaduros para su alimentación. Este daño por alimentación no afecta la calidad de los chiles secos, pero sí la de chiles para enlatar o para consumo en fresco. Los frutos maduros no son susceptibles al ataque del barrenillo debido a las propiedades de su epidermis. Por otra parte, los orificios realizados a los frutos por oviposición, emergencia de adultos o alimentación, favorecen la entrada de microorganismos que ocasionan infecciones internas como el del moho causado por el hongo Alternaria alterna. ARAÑA ROJA Tetranychus urticae Orden: ACARINA Familia: TETRANIQUIDAE Importancia Económica La importancia de esta plaga se ha incrementado en los últimos años como consecuencia de una mayor intensificación de los cultivos, un aumento de la fertilización nitrogenada y sobre todo por el empleo indiscriminado de insecticidas. Es una plaga polífaga, se desarrolla sobre más

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de 150 especies cultivadas. Su importancia se debe al daño que ocasionan las ninfas y adultos en el envés de las hojas al succionar la savia. Descripción Morfológica Huevo. Los huevecillos tienen el cascarón liso, son esféricos y de color blanquecino, ámbar o anaranjado, tornándose amarillentos en el momento de la eclosión. Larvas y ninfas. Las larvas son redondeadas, con tres pares de patas. Las ninfas son bastante parecidas a los adultos, ya que poseen cuatro pares de patas, con un color amarillento en el que resaltan los puntos rojos de los ojos y unas manchas oscuras laterales. Adulto. La hembra adulta tiene forma elíptica, con un tamaño de 0.5 a 0.6 mm de longitud, son más oscuras y de mayor tamaño que los machos. El cuerpo de los machos es fusiforme, con patas muy largas, lo que les permite tener más rapidez en sus movimientos (Figura 28 del apéndice). Biología, Hábitos y Daños El ciclo completo de la araña roja comprende cinco estados de desarrollo: huevo, larva, protoninfa, deutoninfa y adulto. La reproducción es sexual, sin embargo, puede darse partenogénesis de tipo telitóquico, es decir, los huevos no fecundados dan lugar a hembras. La hembra pone más de 100 huevos durante los 22 a 28 días que dura su vida; la vida del macho es aproximadamente la mitad que la de la hembra y presentan una relación entre machos y hembras de 1 a 3. El desarrollo del ciclo biológico es muy rápido, de huevo a adulto tarda de 10 a 15 días a 25oC y 80% de humedad relativa.

La araña roja coloniza sobre todo las hojas jóvenes, aunque en caso de ataques graves se encuentra distribuida sobre las hojas de toda la planta, donde teje capas de seda,

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creando un microclima que la protege de la deshidratación y de los ataques de sus depredadores.

Los daños son ocasionados por las picaduras de los adultos, larvas y ninfas al alimentarse. Al clavar los estiletes absorben los jugos celulares y vacían las células de su contenido, el tejido afectado toma una coloración amarillenta, que se torna marrón con el paso del tiempo. Las colonias de araña roja se localizan en el envés de las hojas, apareciendo en el haz zonas enrojecidas o amarillentas en hojas grandes o abombadas en hojas en crecimiento. En ataques fuertes, todos los órganos de la planta se ven afectados, se detiene el crecimiento y la planta es cubierta con densas telas. MANEJO INTEGRADO DE OTRAS PLAGAS Control Cultural En el caso del minador de la hoja y de la araña roja, una de las principales medidas preventivas es la de asegurarse de que las plantas no vengan contaminadas de los almácigos. Cuando los cultivos hospedantes de estas plagas no están presentes en el campo, éstas se encuentran en una variedad de plantas, principalmente maleza de hoja ancha, que les sirven como reservorio. La destrucción de esta maleza y de los residuos de los cultivos inmediatamente después de la última cosecha, son medidas de prevención muy importantes para reducir sus poblaciones. Para el control cultural del picudo del chile, se sugiere establecer el cultivo dentro de la fecha de siembra recomendada, con la finalidad de evitar siembras continuas que favorecen el incremento de las poblaciones de esta plaga y efectuar la destrucción de las plantas de chile, mediante métodos de labranza tan pronto como se realice la última cosecha, además, es necesario eliminar las plantas de hierba mora dentro y alrededor de las huertas, ya que sirven como reservorio de esta plaga.

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Por otra parte, es conveniente recoger los frutos caídos y enterrarlos o hervirlos en agua para eliminar las larvas, pupas y adultos que se encuentran dentro de ellos, de lo contrario se tendrán poblaciones continuas de la plaga.

Control Mecánico

Se ha observado que el minador de la hoja es muy atraído por el color blanco y el uso de trampas adhesivas de plástico de este color, untadas con resina sintética o una capa muy delgada de grasa automotriz ayuda a capturar grandes cantidades de adultos de esta plaga (Figura 56 del apéndice). En el caso de araña roja, en la actualidad no existe algún método efectivo de control mecánico de esta plaga. Uso de feromonas. En el caso del barrenillo del chile, el uso de trampas con feromonas sintéticas sirve para atraer machos y hembras (feromona de agregación), con la finalidad de detectar la presencia temprana de la plaga y así tomar las medidas de control oportunas. Se utiliza la trampa de color amarillo con feromona (Figura 58 del apéndice), con dispositivos de lenta liberación (3 - 4 semanas), se deben utilizar 2 trampas por hectárea colocadas en la periferia del cultivo, las aplicaciones se pueden iniciar cuando se detecte el primer adulto en la trampa; el monitoreo se debe de realizar desde el inicio de la floración hasta el final del ciclo. Estas trampas y la feromona se adquieren en tiendas especializadas de agroquímicos. Control Biológico

Un programa de manejo integrado de plagas que utiliza como principal táctica la conservación de enemigos naturales, controla exitosamente las poblaciones del minador de la hoja.

A nivel mundial, se han encontrado varios parasitoides del minador de la hoja, principalmente de las

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familias Braconidae, Chalcididae, Eulophidae, y Pteromalidae. En el Altiplano Potosino se han observado los géneros: Diglyphus, Dacnusa y Opius (Figuras 46, 47 y 48 del apéndice). Los cuales llegan a parasitar hasta en un 95% a las larvas de esta plaga, cuando se efectúa el manejo integrado de plagas y no se realizan aplicaciones de insecticidas generalistas que afecten sus poblaciones.

Estos insectos atacan a las larvas del minador de la hoja mientras se alimentan del tejido de la hoja, las larvas parasitadas eventualmente quedan inmóviles en sus minas, hinchadas y de color negro mientras el parasitoide se desarrolla internamente. Las larvas parasitadas que llegan al estado de pupa pueden quedar dentro o fuera de las hojas y solo se desarrolla una larva de parasitoide por larva de minador. Las pupas de los parasitoides permanecen en los remanentes de sus hospedantes, son de color negro brillante y no están cubiertas de seda.

Para el control biológico del barrenillo del chile, en Hawaii se han liberado y establecido los agentes de control biológico Eupelmus crushmani y Catolaccus hunteri Crawford; además, se han realizado liberaciones de Bracon vestiticida Vier pero no se ha logrado establecer; en la región se han observado larvas parasitadas por Catolaccus y por una avispita de la familia Braconidae (Figuras 49 y 50 del apéndice). En el caso de la araña roja existen diferentes enemigos naturales, principalmente insectos y ácaros que puedan atacarla; a nivel regional, se han observado ácaros depredadores de los géneros Amblyseius y Phytoseiulus (Figuras 51 y 52 del apéndice) alimentándose de las colonias de esta plaga. Los huevos de estos depredadores son ovales y color rosado, los cuales se obscurecen a medida que maduran, la larva tiene tres pares de patas, pasa por los estadios de protoninfa y deutoninfa. Los adultos son de color rojo y muy activos, la forma de distinguirlos en una colonia de araña roja es por la rapidez

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de sus movimientos al caminar y por la coloración en adultos de rojo más intenso.

Control Químico

En los cultivos de chile y jitomate las aplicaciones de insecticidas para el control del minador de la hoja se deben iniciar después de los 60 días del trasplante, siempre y cuando el 20 % de las hojas presenten una o más minas con larvas vivas. Antes de este período la plaga es controlada con la aplicación de Imidacloprid (Confidor) o Thiamethoxam (Actara) que se realiza a la base de la planta para el control de insectos vectores de virus; además, con este manejo se reduce la aplicación de insecticidas para el control de ésta y otras plagas, lo que permite que los parasitoides del minador de la hoja se establezcan en las huertas de estos cultivos.

En el Altiplano Potosino esta plaga es altamente resistente a la mayoría de los insecticidas convencionales, el uso de éstos ocasiona problemas más grandes, ya que se reducen las poblaciones de parasitoides. Los productos más adecuados para su control son abamectina (Agrimec) y cyromacyna (Trigard) en dosis de 5.4 y 75 g I.A./ha respectivamente, los cuales deben ser utilizados en forma alterna para reducir los riesgos inherentes al desarrollo de la resistencia; estos productos tienen poca o nula efectividad sobre adultos, por lo que cuando se detecte una alta población en actividad de alimentación y oviposición, es necesario aplicar clorpirifós etil en dosis de 750 g I. A./ha.

Para el control químico del barrenillo del chile las aplicaciones de insecticida se deben iniciar cuando se encuentre un adulto por cada 200 plantas, inspeccionando un mínimo de dos yemas florales, botones o flores por planta, a partir de la etapa de inicio de floración y durante toda la fructificación o cuando se detecte el primer adulto en las trampas de feromona.

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Los productos más adecuados para su control son Thiametoxam y Fipronil en dosis de 50 y 20 g I. A. /ha; es importante evitar el uso de insecticidas inefectivos y la mezcla de estos, aumentar las dosis iniciales efectivas, o realizar aplicaciones preventivas sin un muestreo previo, ya que se propicia la resistencia genética a los mismos y se dificulta el control de ésta y otras plagas.

En el caso de araña roja el muestreo se debe llevar a cabo revisando plantas al azar una o dos veces por semana, desde el establecimiento del cultivo. Debido al alto potencial reproductivo de esta plaga conviene controlarla al detectar el primer foco de infección. El insecticida más adecuado para el control de esta plaga es la abamectina en dosis de 9 g I. A./ha. Existen otros productos que controlan a la araña roja; sin embargo, son muy tóxicos para la fauna benéfica y ocasionan el resurgimiento de otras plagas como el minador de la hoja, por lo que es importante evitar su uso y no realizar mezclas de insecticidas, ya que se propicia la resistencia genética a los mismos y se dificulta el control de ésta y otras plagas. Por otra parte la aspersiones con azufre elemental son efectivas cuando se realizan semanalmente en dosis de 2000 g I. A./ha con densidades bajas de este ácaro, o cuando se aplican en forma preventiva para el control de enfermedades foliares ya que el producto requiere de una a dos semanas para efectuar el control. IMPACTO Y DOMINIO DE RECOMENDACION El control de las plagas del chile y jitomate que considere un enfoque de manejo integrado de plagas, reduce la incidencia de enfermedades virales en un 70%, logra disminuir el uso de insecticidas y los costos por concepto de control de plagas hasta en un 50%; además, se reduce la contaminación ambiental y los residuos tóxicos en las cosechas, se impide el desarrollo de poblaciones de insectos plaga que presenten resistencia múltiple a los insecticidas y sobre todo se evita el rebrote de otras plagas

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consideradas como secundarias, al conservar la fauna benéfica natural que las mantiene bajo control y finalmente se incrementan las poblaciones de insectos benéficos que ayudan a la regulación de poblaciones de insectos plaga, promoviendo así la sostenibilidad del sistema de producción en la región.

Para el buen funcionamiento de la estrategia, es necesario que se implemente a nivel regional, es decir, en todas las zonas productoras de chile y jitomate del Altiplano de San Luis Potosí, el cual comprende los municipios de Moctezuma, Villa de Arista, Matehuala, Guadalcazar, Villa de Reyes, Cedral, Salinas de Hidalgo, Villa de Ramos y San Luis Potosí.

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SINONIMIAS

Producto Nombre Comercial Abamectina ABAMECTINA 1.8% CE, ABAMEX QL 1.8

C.E., THUNDER 18 C.E., AGROMEC 1.8 C.E., LUCATINA 1.8 C.E., LUC. TOR 1.8 C.E., AGRIMEC 1.8% C.E., AGRIVER 1.8 C.E., AGRIVER 1.8 PH., AGROMECTIN, BERMECTINE 1.8% CE, VERTIMEC.

Aceite parafínico AGRI-DEX, ANASEF-T, SAF-T-SIDE.

Amitraz AKAROFF, AMITRAZ 200 CE, MITOFF 200CE, MITRAZ 200 CE.

Azufre elemental AZUFER 71, AZUFRE 93% AGRICOLA, AZUFRE HUMECTABLE 90, AZUFRE PERFECTO 93, COSMOSUL, FLWAZ 725 L, KUMULUS-DF, LUCAFLOW, MICROTHIOL, NOVAZUFRE 720 FW, SULTRON 725, VELSUL 725.

Bacillus thuringiensis

BACILLUS HD, BACTIVEC, BACTOSPEINE DF, BIOBIT DF, DIPEL DF, CRYMAX GDA, LEPINOX WDG, NEWBT-2X WP, RADIUS 48 LV, XENTARI DF, XTREEM DF, XENTARI GRD.

Benzoato de emamectina

PROCLAIM.

Buprofezin APPLAUD 40 SC

Clorpirifós etil ANALOR 480, CLORPIRIFOS 480, CLORVER 480 CE, CLORVER 50 W, COMPAS 480, CYREN 480 CE, DINNAFOS 480 CE, KNOCKER 480, LORPAC 480, LORSBAN 75 WG, LORSBAN 480, LUCABAN 480 CE, MAGNUM L-480, MASTER 25 CS, POLARIS 40, POL-PIRIFOS 480, PREDATOR 480 CE, PYRINEX 48 CE, VELBAN 480, VEXTER.

Cyromacyna TRIGARD 75 PH

Feromonas Gusano alfiler K. lycopersicella, Gusano soldado S. exigua, Gusano del fruto: H. zea y H. virescens, Gusano falso medidor T. Nii Barrenillo del chile A. eugenii

BIO LURE TPW BIO LURE BAW BIO LURE CEW BIO LURE TBW BIO LURE CL TRAMPA AMARILLA

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Fipronil REGENT 200 SC

Hexaflumuron CONSULT 100 SC

Hongos entomopatógenos Verticillium lecanii Beauveria bassiana Metarhizium anisopliae Paecylomyces fumosoroseus

VERTI-SIN. BEA-SIN. MICO BAS META-SIN. MICO-MET PAE-SIN. MICO PAE

Imidacloprid CITLALLI 350 FW, CONFIDOR 350 SC, GAUCHO 70 WS, LUCACLOPRID 350 SC.

Pymetrozine PLENUM 50 PH

Pyriproxyfen KNACK

Sales potásicas de ácidos grasos

IMPIDE, ROYAL MH-30

Spinosad GF-120, SPINTOR 12 SC, TRACER, SPINOACE 480.

Tebufenozide CONFIRM 2F

Thiamethoxam ACTARA 25 WG.

VPN S. exigua SPOD-X LC

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APENDICE

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Figura 2. Ninfas del pulgón saltador B. cockerelli

Figura 4. Huevos de mosquita Blanca B. tabaci

Figura 1. Huevos del pulgón saltador B. cockerelli

Figura 3. Adulto del pulgón saltador B. cockerelli

Figura 6. Adultos de mosquita blanca B. tabaci

Figura 5. Ninfa de mosquita blanca B. tabaci

39

Figura 8. Adulto áptero y alado del pulgón verde M. persicae

Figura 7. Ninfas del Pulgón Verde M. persicae

Figura 9. Huevos del gusano del fruto Heliothis spp.

Figura 10. Larva del gusano del fruto Heliothis spp.

Figura 11. Adulto del gusano del fruto Helicoverpa zea

Figura 12. Adulto del gusano del fruto Heliothis virescens

40

Figura 13. Larva del gusano alfiler K. lycopersicella

Figura 14. Adulto del gusano alfiler K. lycopersicella

Figura 15. Huevos del gusano soldado S. exigua

Figura 16. Larva del gusano soldado S. exigua

Figura 17. Adulto del gusano soldado S. exigua

Figura 18. Larva del gusano del cuerno M. sexta

41

Figura 22. Larva del minador de la hoja Liriomyza spp.

Figura 21. Adulto del gusano falso medidor T. nii

Figura 19. Adulto del gusano del cuerno M. sexta Figura 20. Larva del gusano falso medidor

P. includens

Figura 23. Pupa del minador de la hoja Liriomyza spp.

Figura 24. Adulto del minador de la hoja Liriomyza spp.

42

Figura 26. Pupas del Barrenillo del chile A. eugenii

Figura 27. Adulto del barrenillo del chile A. eugenii

Figura 28. Adulto de araña roja T. urticae

Figura 25. Larvas del barrenillo del chile A. eugenii

Figura 30. Chinche ojona Geocoris sp.

Figura 29. Catarinita Hippodamia spp.

43

Figura 31. Chinche Asesina Figura 32. Chinche Asesina

Figura 34. Avispita Tamarixia triozae Figura 33. Araña depredadora

Figura 36. Avispita Eretmocerus Figura 35. Avispita Encarsia

44

Figura 38. Crisopa Crysopa spp.

Figura 39. Huevo de Crysopa Figura 40. Larva de Crysopa

Figura 37. Mosquita bailarina Drapetis sp.

Figura 41. Chinche pirata Orius sp Figura 42. Chinche Macrolophus

45

Figura 44. Avispita Aphelinus Figura 43. Avispita Aphidius

Figura 46. Avispita Diglyphus Figura 45. Diptero Aphidoletes

Figura 47. Avispita Dacnusa Figura 48. Avispita Opius

46

Figura 50. Avispita Bracon Figura 49. Avispita Catolacus

Figura 52. Acaro depredador Phytoseiulus

Figura 51. Acaro depredador Amblyseius

Figura 53. Avispita Trichogramma pretiosum

Figura 54. Avispa VESPIDAE

47

Figura 56. Trampa Blanca Figura 55. Trampa Amarilla

Figura 57. Trampa de Melaza Figura 58. Trampa con feromona para Barrenillo del chile

Figura 59. Trampa de ala para gusano alfiler Figura 60. Trampa de agua para gusano del fruto y gusano soldado

Financiamiento: FUNDACIÓN PRODUCE DE SAN LUIS POTOSÍ, A. C.

FUENTE DE LA INFORMACIÓN

La información de esta publicación fue generada por los Proyectos de Investigación y Transferencia de Tecnología

3101330A ESTUDIO Y MANEJO INTEGRADO DE LAS

PLAGAS DE CHILE Y JITOMATE EN EL ESTADO DE SAN LUIS POTOSI

3105684A

TRANSFERENCIA DE TECNOLOGIA DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS EN LOS CULTIVOS DE CHILE Y JITOMATE EN EL

ALTIPLANO POTOSINO En el proceso editorial de esta publicación participó el siguiente personal:

Revisión Técnica M.C. José Luis Barrón Contreras

Dr. Jorge Elizondo Barrón Dr. Jesús Loera Gallardo

Formación

M.C. José Luis Barrón Contreras

Tipografía T.S. Ma. Teresa de Jesús Castilleja Torres

Fotografías

M.C. Enrique Garza Urbina Ing. Ausencio Rivas Monge

A. B. S. King y J. L. Saunders Kooppert Biological Systems

Nippon Soda Co., Bayer de México

SAGARPA-INIFAP-CIRNE Sitio Experimental Ébano

Km 67 Carretera Valles-Tampico Apartado Postal # 87, Ébano, S.L.P. Teléfono y Fax: 01 (845) 263 30 90

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GOBIERNO DEL ESTADO DE SAN LUIS POTOSI

C.P. Marcelo de los Santos Fraga

Gobernador del Estado

Dr. Manuel D. Sánchez Hermosillo Secretario de Desarrollo Agropecuario y

Recursos Hidráulicos

DELEGACIÓN ESTATAL DE LA SAGARPA

Ing. José Manuel Rosillo Izquierdo Delegado en San Luís Potosí

FUNDACIÓN PRODUCE DE SAN LUIS POTOSÍ, A. C.

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Presidente

Lic. Guillermo Torres Sandoval Vicepresidente

M.C. José Luis Barrón Contreras

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Ing. Horacio A. Sánchez Pedroza

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