JORNADA DE CAPACITACIÓN EN SALUD PORCINA

Gustavo C. Zielinski, Med. Vet., MS, PhDSanidad animal, EEA Marcos Juárez

Proyectos “Enfermedades de la producción porcina”“Incremento de la productividad porcina”“Producción sustentable de ganado porcino”

Generalidades: nuevos conceptos en Salud porcina (¿cambios en los paradigmas?)

• Complejos (PRDC, PCVAD)

• Erradicación de enf-complejos (Auj, Resp.)

• Bioseguridad• Seguridad alimentaria• Evaluación del riesgo• Flujo de los animales• Pruebas clínicas• Verificación de procesos• Entrenamiento de RRHH

especializados

• Enfermedad

• Tratamiento, vacunación• Estab. extensivos• Trichinella• ???????• ????• Brucelosis, Auj. (?)• Registros (?)

• Generalistas

Principales afecciones infecciosas según categoría

• Lactancia– Diarrea neonatal

• Recría– Diarrea posdestete (E. coli)– Infecciones sistémicas (S. suis y H. parasuis)

• Desarrollo– Diarreas

• Ileitis• Salmonelosis

– Complejo respiratorio– PCVAD (PMWS, circovirus)

• Terminación– Complejo respiratorio– Diarreas

• Espiroquetosis• Disentería• Salmonelosis

– PCVAD (PDNS)• Pie de cría

– Brucelosis– Aujeszky– Parvovirosis– PCVAD

Argentina libre de PRRS. En duda: Influenza

Diarrea neonatal

• Procesos entéricos que producen diarrea en lechones hasta 10 días de edad

• Agentes etiológicos implicados Frecuencia– Escherichia coli +++– Rotavirus ?– Isospora suis +– Cl. perfringens tipos A y C ?– Clostridium difficile +

Diarrea neonatal por E. coli

• Multifactorial– Higiene Presión de infección– Alimentación madres Producción calostro– Calostrado Transferencia 6-12 horas PN– Temperatura Frío aletargamiento ingesta calostro– Ambiente (campo vs. confinamiento)

• Transmisión fecal-oral• E. coli etiología primaria + virus (Rotavirus) (o

viceversa)

Escherichia coli: factores de virulencia

• Pili– K88(F4), K99(F5), 987P(F6), F41, otros

• Antigénicos, no inmunidad cruzada

• Toxinas– LT, STa, STb, citotoxinas (Shiga-like,

VERO, Vt1, Vt2, otras)• + antigénicas, no inmunidad cruzada

• Cápsula– LPS

Síntomas y lesiones

• Hallazgos clínicos– Diarrea acuosa muy abundante– Deshidratación, acidosis, muerte– A VECES, colapso y muerte sin diarrea

• Lesiones – Distensión de int. delgado, color amarillento,

contenido mucoide, congestión vascular mesentérica.

– Colon similar– Porción fúndica del estomago hiperémica

Diagnostico

• Obvio• Laboratorio

Muestra:Int. Delgado

Hisopado rectal

E. coli

Sensibilidad antibiótica

Patotipo

STa, F4, F5, F4 + F5, F6, F6 + F41STa + STb F4, F4 +F5LT + STb F4, F4 + F6LT + STa + STb F4, F4 + F6STb F4, F6, no conocidos

Diagnostico diferencial

• Clostridiums– Tipo C: sanguinolenta, hiperaguda, alta letalidad– Tipo A: baja mortalidad, parecida a la E. coli: cultivo o tinción

de MF con Giemsa• Rotavirus

– Mic. Electrónica Centros de alta tecnología– ELISA antígeno Caro

• Isospora suis– Coproparasitológico– Histopatológico

• Cl. difficile– Histopatológico– Detección toxinas

Tratamiento

• Fluidoterapia• Antibióticos

– Antibiótico % de aislam sensibles (Quebec, 1994-96, Enf. cerdos)– Ampicilina 46– Apramicina 79– Ceftiofur 92– Enrofloxacina 100– Espectinomicina 41– Gentamicina 63– Tetraciclina 7– Tiamulina 5– Sulfa-trimetroprim 71

• Esquema de aplicación– Brotes agudos

• Madres 1 día pre-parto• Lechones: al nacimiento

• ¡CUIDADO CON LAS DISBACTERIOSIS Y LA GENERACIÓN DE RESISTENCIA!!!!!!!!!!!!!

Prevención• Vacunación

– Cachorras primíparas: 45 y 15 días pre-parto– Multíparas: 1 dosis 15 días pre-parto

• Bacterinas comerciales– Litterguard LT-C (F4, F5, F41, tox. Clost)– Suvaxyn EC (F4, F5, F41)– Etc.

• Bacterinas autógenas– Buen concepto teórico

» ¿Elaboración? ¿aislamiento con atributos de virulencia?

• Manejo de la higiene y ambiente– Confinamiento

• Establecer protocolos de higienización de instalaciones y cumplirlos• Controlar la temperatura, atención de partos, ambiente de la maternidad

– A campo• Remover la cama y lugar de localización de las parideras• Limpieza de comederos y bebederos

Diarreas pos-destete

• Causas predisponentes– Cambio de la dieta

• Proteína animal Proteína vegetal Potencial cambio de la flora Proliferación bacteriana anormal Patógeno

– Temperatura• Ideal: 30ºC a los 21 días

– Frío: cambio brusco

• Etiología– E. coli

• Lt, F4, F5 Diarrea• Vt1, Vt2, F18 Diarrea, enf. de los edemas

– Lawsonia intracelullaris (ileitis)

DIARREA

Diagnostico (sospecha E. coli)

Historia, síntomas y lesiones

Muestra:Intestino delgado

Escherichia coli β hemolítico

Siembra

Mc Conkey Agar Sangre

Sensibilidad antibiótica

Tratamiento y control

• Difícil el tratamiento del brote• Acostumbramiento pre-destete a la dieta

– Adición de suplementos dietarios• Oxido de Zinc (prohibido por cuest. ambientales CE)• Ácidos orgánicos

• Antibiótico preventivo a sucesivos destetes– 48 hs antes– 24-48-72 hs después

• No hay vacunas en el país

INFECCIONES POR Streptococcus suis y Haemophilus parasuis

Patologías ¿nuevas? ¿viejas? ¿emergentes? ¿re-emergentes?Sistemas intensivos vs. extensivos“All in-all out”Destete precozMas evidentes en manejos intensivos, aumento de la densidad animal

Colonizadores tempranos !!!!

Vías de entrada y transmisión

• Directa– Vertical

• Cerda canal del parto camada– Calostro: inmunidad protectiva lechones protegidos bajo %

de infectados eliminadores– Serotipos patogénicos o no patogénicos

– Horizontal• Mezcla de animales

– Destete, desarrollo– Acopiadores

• Indirecta– Fomites– Resistentes en el ambiente

• FLORA NORMAL

Consideraciones etiopatogénicas

• Streptococcus suis– 32 serotipos capsulares diferentes

• 1, ½-9, 14 patógenos, pero variables• No reaccionan inmunologicamente en forma cruzada• Existencia de portadores sanos

• Haemophilus parasuis– 15 serotipos conocidos

• Muy alta virulencia: 1, 5, 10, 12, 13, 14.• Alta virulencia: 2, 4, 15.

• Baja virulencia o avirulentos: 3, 6, 7, 8, 9, 11.

INFECCIONES POR Streptococcus suis y Haemophilus parasuis

• Producen

Meningitis Artritis Pericarditis Pleuritis Peritonitis

Encefalitis Endocarditis

Poliserositis

Diagnóstico

• Presuntivo: Signos clínicos y lesiones macro (Gottschalk, 2002).• Definitivo

* Signos clínicos compatibles* Aislamiento

*órganos blanco*cultivos puros o netamente preponderantes

* Serotipificación• Diferencial:

* Otras causales de poliserositis (erisipelas, Mycoplasma hyosinoviae), de muerte súbita (pseudorabia, intox. por sal) , de enf. septicémicas (salmonelosis)

None particularly obvious. Meningeal congestion and tags are suspicious but most veterinarians examine so few brains it would be difficult for them to differentiate between the normal range ofmeningeal changes.

Lesiones macroscópicas

Diagnostico (cont.)

• Toma de muestras– Streptococcus: LCR, encéfalo, liq. sinovial, hígado, bazo,

pulmón– Haemophilus: liq. pericárdico, hisopado pleural, pulmón,

encefalo• Serología

– No existen pruebas serológicas para uso granjas convencionales

– Haemophilus: ELISA especie especifico para núcleos genéticos

Control y prevención

• Manejo– Evitar el “stress”

• Cambios de categoría traslados• Densidad animal• Mezcla de grupos

• Terapia antibiótica– Inyectable individual– Metafiláctica en ración o agua

• Terapia de choque ante cambio de categoría

• Vacunación– Bacterinas comerciales– Bacterinas autógenas

Sensibilidad de Streptococcus suis aislados en brotes de Argentina(INTA-Marcos Juárez, 1995-2007)

14/162/16Oxitetraciclina

16/16Lincomicina

13/163/16Eritromicina

13/163/16Tilmicosin

6/1610/16Sulfamet-trim.

1/1615/16Enrofloxacina

1/1615/16Ampicilina

16/16Florfenicol

16/16Gentamicina

16/16Ceftiofur

ResistenteIntermediaSensibleDroga

3/112/116/11Sulfa-trimet.

11/11Oxitetraciclina

11/11Florfenicol

11/11Gentamicina

11/11Spectinomicina

11/110/11Lincomicina

10/111/11Eritromicina

10/111/11Tilosina

11/11Tilmicosina

11/11Ampicilina

11/11Ceftiofur

7/115/11Enrofloxacina

ResistenteMedianamente sensible

SensibleAntibióticoSensibilidad

Sensibilidad antibiótica de los aislamientos de H parasuis(INTA M. Juárez, 2006-2008, no publicado)

Susceptibilidad a los antibióticos de aislamientos de H. parasuisdel Laboratorio de Diagnostico Veterinario, Univ. de Minnesota

J. Swine Health and Production, 15(2) 99-103, 2007

Vacunación

– Bacterinas comerciales• No existen para S. suis• Serotipo especificas para H. parasuis

– Suvaxyn Respifend MH/HPS (sero. 4 y 5)– No se conocen los serotipos prevalentes.

– Bacterinas autógenas• Ventajas:

– Cepas autóctonas de la granja• Desventajas:

– Aislamiento certero del agente patogénico– Serotipificación dificultosa– Elaboración correcta

Generalidades

• Cuidado con los cambios de genética.

• Ante un brote: medicación, aislamiento bacteriológico y elaboración de bacterina autógena

Cuadros digestivos en recría-terminación: enteropatía proliferativa y salmonelosis

• Enteropatía proliferativa– Etiología: Lawsonia intracelullaris

– Vía de entrada: oral• Animales portadores inaparentes: reposición, cachorros

– Dos presentaciones principales:• Adenomatosis intestinal: curso agudo a crónico lechones 6-20

semanas. Diarrea variable, pérdida de estado corporal. Necropsia: engrosamiento de la pared del ileon

• Enteropatía hemorrágica: curso agudo, animales mayores, alta mortalidad. Muerte súbita, diarrea hemorrágica. Necropsia:engrosamiento pared ileon terminal y colon, presencia de coágulos.

Diagnostico

• Necropsia– Histopatología: muestras ileon en formol al 10%

• Serológico– IFI: permite conocer prevalencia y dinámica de infección– ELISA: mas sensible y especifico.

• Bacteriológico– Cultivo no es posible– PCR de materia fecal

• Diferencial– Diarreas pos-destete, disenterias por B. hyodisenteriae y

pilosicoli, salmonelosis

Enteropatía proliferativa: tratamiento y control

– EP aguda en granjas libres de sintomatología• Medicación en ración durante 14 días: Tiamulina 120 ppm; tilosina

100 ppm, clortetraciclina 400 ppm

– Reposición de stock en granjas infectadas• 1ro:Acostumbramiento de animales por contacto• 2do: esquema anterior para evitar sintomatología

– Control de sintomatología en granjas endémicas• Medicación continua: tiamulina 50 ppm; clotetraciclina 200ppm;

lincomicina 110 ppm;

– Drogas ineficaces• Neomicina, gentamicina, apramicina, bacitracina, salinomicina

Vacunación

• Vacuna viva atenuada (Enterisol Ileitis® BoheringerIngelheim)– Liofilizada– Administración:

• A lechones a partir de 3 semanas (flujo continuo)• Mas grandes dependiendo dinámica de infección (múltiples

sitios)– En agua de bebida o dosificación individual– Sin administración de antibióticos 3 días antes y

después de vacunación– No impide la infección, pero mejora los parámetros

productivos

Salmonelosis• En cerdos: principal causal de zoonosis en Europa y

USA

• Categorías afectadas– Cachorros desarrollo-terminación

• Etiología– Salmonella cholerasuis– Salmonella typhimurium– Otros serotipos

• Curso clínico– Septicémica– Enteritis aguda– Enteritis crónica

• Lesiones– Septicémica: hemorragias submucosas y subserosas– Aguda: enteritis mucoide a seudomembranosa– Crónica: necrosis del ciego, ulceras, linfoadenomegalia

DiagnosticoHistoria, edad

Lesiones sospechosas

Muestras:GLM, hígado, bazo

Cultivo bacteriológico

Positivo

Sensibilidad antibiótica Serotipificación

Diagnóstico diferencial de la enterocolitis producidas por Salmonella typhimurium y Lawsonia

intracellularis según las características de la materia fecal

Idemanterior, hasta con sangre

+ (ID) forma EN

-+ (ID) forma EPHEnteropatíaproliferativa

Semisólida sin sangre

+++ (ID/IG)Salmonelosis

ConsistenciaFibrina (ID/IG)

Mucus (IG)

Sangre (ES/ID/IG)

Entidad

ES: estomago; ID: int. delgado; IG: int. grueso; EPH: enteropatía hemorrágica; EN: enteropatía necrótica

2/20/2Estreptomicina6/82/8Oxitetraciclina2/31/3Florfenicol2/53/5Cloranfenicol3/30/3Spectinomicina3/30/3Tilmicosin4/81/83/8Ampicilina1/43/4Ceftiofur

1/71/75/7Sulfa-trimetroprim

0/66/6Gentamicina

0/66/6Enrofloxacina(cipro)

ResistenteSens. Intermedia

SensibleAntibiótico

Sensibilidad antibiótica de una serie de 8aislamientos de S. typhimurium ( INTA Ms Juarez, no

publicado)

Tratamiento y control

• Medidas de higiene y desinfección• Administración prolongada de antibióticos en

ración e inyectables• Reposición de animales de establecimientos

libres• Erradicación difícil

Disenterias porcinas (Brachyspirahyodisenteriae y B. pilosicoli)

• Perdidas graves en invernaderos

• Afecta a desarrollo y terminación

• Diarreas mucofibrinosas con estrías de sangre

• Lesiones localizadas en Intestino grueso: colon y ciego.(Importante para diferencial)

• Diagnostico: lesiones características. Cultivo: difícil. PCR: posible

• Tratamiento: Antibióticos inyectables, en agua o ración: clortetraciclina- tiamulina, lincomicina, tilosina.

• Posible erradicación: todo adentro-todo afuera, limpieza, antibióticos continuados por un cierto tiempo.

Circovirus (PCVAD, porcine circovirus associated diseases)

• Asociado a múltiples síndromes:– SMDP (PMWS) síndrome multisistémico de

desmejoramiento porcino– SDNP (PDNS) Síndrome de dermopatía y

nefropatía porcina– CRP (PRDC) complejo respiratorio porcino– Fallas reproductivas– Enteritis granulomatosa– Linfadenitis necrotizante– Temblores congénitos ?

Circovirus

• Epidemiología– 1ra descripción en Canadá, 1991– En todo el mundo, 1996– En Argentina, 2000, 1ra comunicación escrita, 2002

(Sarradell y cols)– Recién 2001 se cumplen los postulados de Koch– 98% de las granjas del Mundo INFECTADAS con PCV 2– Hay granjas CON infección, SIN enfermedad– Se transmite HORIZONTALMENTE x contacto directo e

indirecto– Anticuerpos calostrales protectores– Virus ADN, MUY RESISTENTE en el ambiente y

desinfectantes

Patogenia del circovirus (L.Batista, 2008)

Diferencias encepas PCV2

Coinfecciones Estimulación inmune Susceptibilidadhuésped

PCV2

PCV2

Infección tejidolinfoide

Depleción linfoide +Reemplazo histiocitico

Viremia alta y leucopenia

Seroconversión +

Dispersión sistémica

Sintomatología clínica

Viremia baja

Seroconversión +

Libre de infección

Subclínica

70-80 % letalidad

5-20%

Signos clínicos y lesiones macroscopicas

• PMWS=SMDP sindrome multisistemico de desmedro porcino– En lechones posdestete: 6 semanas en adelante– Enflaquecimiento progresivo– Anemia– Ictericia– Diarrea– Sintomatología respiratoria– Ganglios linfáticos hipertroficos y congestivos (inguinal sup.)– Ulceras gástricas– Neumonía intersticial– Nefritis

Signos clínicos y lesiones macroscopicas

• SDNP: síndrome de dermopatia y nefropatia porcina– En animales de mas edad 14 semanas en adelante– Lesiones cutaneas– Frecuentemente muerte– Menor prevalencia que el PMWS

Diagnostico

• Existe un criterio a cumplir:– Signos clínicos compatibles– Lesiones macroscópicas compatibles– Lesiones microscópicas compatibles– Visualización del agente (IHQ, IF, etc)

Control

• 20 puntos de Madec (Investigador francés especialista en cerdos)– Maternidad

• 1 todo adentro-todo afuera, lavado, desinfectado• 2 Lavar y desinfectar a las hembras antes de entrar, control

parásitos• 3 Evitar transferencias o hacerlas antes de 24 hs

– Destete• 4 Uso de corrales con paredes solidas, no mas de 20/corral• 5 Todo adentro todo afuera, lavado, desinfección entre partidas• 6 Correcta densidad animal (0.38 m2 lechón)• 7 Correcto espacio en comederos ( + de 7 cm/lechón)• 8 Buena ventilación• 9 Correcta temperatura• 10 No mezclar edades en los corrales

Control

• 20 puntos de Madec (cont.)– Engorde

• 11 Uso de corrales pequeños (mismos de engorde ideal)• 12 Todo adentro-todo afuera, lavado y desinfección• 13 No mezclar animales del destete• 14 No mezclar animales de distintos grupos de engorde• 15 Evitar altas densidades (0.85 m2/cerdo)• 16 Controlar temperatura y ventilación

– Adicionalmente• 17 Programa de vacunación apropiado• 18 Respetar medidas de bioseguridad internas y externas• 19 Higiene estricta (agujas, jeringas, botas, escobas, etc)• 20 Eliminar de la línea cerdos sintomáticos (a enfermería o sacrificio)

2Diluvactocopherol

Capsido viralLechónPorcilisPCV

Intervet

1SL_CDacuoso

Inactivada + agrecombinante

PCV1 y 2

Lechón + de 4 semanas

SuvaxynPCV2 One

Dose

Fort Dodge

1Polímero acuoso

Capsido viralLechones 3 semanas

IngelvacCircoflex

Boehringer* Ingelheim

2 + refuerzo

Aceite mineral

PCV2 InactivadaMadresCircovacMerial*

Nº de dosis

AdyvanteTipo de vacuna

Administración a:

NombreLaboratorio

Vacunación

* En proceso de registro en el País !!!!!!!

Vacunación contra circovirus

Eficacia de la vacunación (?)

Otras alternativas de control

• “Suero-terapia”– Inyección de suero hiperinmune a PCV2 a lactantes– Resultados inciertos– Inoculación inmediatamente antes de la viremia

• Inoculación de autovacunas– Licuado, filtrado e inactivado de ganglios linfáticos de

animales enfermos– Material debe tener alta carga viral (?)– Dificultades para la inactivación viral (¿transmisión de enf?)– A veces buenos resultados (¿Cómo se evalúan?)

Neumonía enzoótica porcina (NEP)

Mycoplasma hyopneumoniae

Epidemiología: Vías de transmisión

• Vía directa: – Contacto cerdo a cerdo

• Madre a lechón– Excreción en la cerda es paridad dependiente

• Entre cerdos de la misma edad– Transmisión horizontal muy eficiente

• Mezcla de diferentes edades– Idem concepto anterior

Epidemiología: Vías de transmisión

• Vía indirecta– Aire (?) 3,2 km?

• Dependiente de área geográfica, condiciones climáticas, etc. Concepto relativo.

– Objetos infectados• Personas, vehículos, utensilios.• Consideraciones en cuanto a bioseguridad

Epidemiología: formas de presentación

• Diferente presentación en:– Un sitio/flujo continuo presentación temprana– AI/AO un sitio presentación tardía (¿aguda?)– Tres sitios y multisitios idem anterior

• Dependiente de:– Prevalencia de la infección al destete– Nivel de inmunidad materna

Presión de infección al destete

Diagnóstico: objetivos y métodos

• Conocer la etiología de la enf. respiratoria– Sintomatológico: tos– Anatomopatológico

• Cualitativo: necropsia, histopatología, IFD.– Bacteriológico: cultivo (M hyop. muy difícil), PCR.

• Evaluar el impacto productivo en la granja– Anatomopatológico

• Cuantitativo (?): inspección en frigorífico

• Contribuir a la planificación del programa de control– Serológico: ELISA

Obtención de score neumónico anteroventral

Score Severidad0 Ausente1-14 Media15-29 Moderada30-55 Severa

Cuantitativo: Evaluación de lesiones en tropas (inspección de faena)Evaluación del impacto productivo de la NEP

Inspección en frigorífico: planilla resumen de datos

Manchas leche

Ot.PericardOtrosAbscesoPleuritisPleuropneumScore micoplasma

HHíígado gado CorazCorazóón n PulmonesPulmonesCatCat..

1

5

2

Score total pulmón derecho: 8

6

8

2

Score total pulmón derecho: 16

1) Scores neumónicos de lesiones anteroventralesScores mayores a 15 podrían significar perdidas económicas por retraso de crecimiento(Vet. Diagn. Lab., Iowa State University)

9.89,21230-557.316915-295542,7681-142632320

HoyAnterior (15-2-07)

Porcentaje animalesNumero/total animales

Scores

2) Resultados inspección para pleuroneumonía, pleuritis, abcesos pulmonares, pericarditis,manchas de leche en hígado.

-----Severa--1--Moderada--52-Leve

Manchas de leche

PericarditisAbcesoPleuritisPleuropneumoniaCantidad de animales afectadosSeveridad

Variación estacional de los scores neumónicos en frigorífico

010203040506070

Nov. ´06 Feb. ´07 Junio ´07

Fecha Inspección

% a

nim

ales S/L

LeveModeradaSevera

Contribuir a la planificación de los programas de control

• Serología– Fijación del complemento (no se usa)– ELISA

• Idexx• Dako• Hipra

– Determinación de perfiles serológicos» Tasas de prevalencia intrapredial» Dinámica de la infección intrapredial

Perfil serológico granja A (Casilda)

0

5

10

15

20

25

Adultas Recría Desarrollo

n an

imal

es

Positivos

Sospechosos

Negativos

Perfil serológico granja B (Laspiur)

0

2

4

6

8

10

12

Cach. 1erparto

Cach.2do

parto

Adultas Destete Destetegrande

Cach. 4meses

Gordos

n an

imales

Positivos

Sospechosos

Negativos

Perfil serologico granja C (Chivilcoy)

02468

10121416

Hembras 10 sem 14 sem 20 sem 23 sem

n an

imal

es Positivo

Sospech.

Negativo

Perfil serológico de la línea de producción Granja D (Corral de Bustos)

0

1

2

3

4

5

6

48 d 68 d 76 d 90 d 105 d 142 d 150 d 165 d

Positivos

Sospech.

Negativos

Estrategias de control de la NEP

• Modificar los factores de manejo, ambientales y nutricionales que obran como predisponentes.– Enfermedades “accidentales”– Enfermedades enzoóticas

• Manejo de “LA VACUNA” tratando de estabilizar inmunologicamente el pie de cría y la línea de producción.

• Medicación estratégica– Fluoroquinolonas, ceftiofur, tilmicosin, clortetraciclina.– ¡¡¡¡¡¡¡Ayudan a eliminar contaminantes secundarios!!!!!!

Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim

1) Vacunación de hembras pre parto sin vacunación de la línea– Reduce los índices de prevalencia al destete

• Para granjas con sitios múltiples• Sin riesgo de transmisión horizontal• Con grandes medidas de bioseguridad (personal,

utensilios, etc)

Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim

2) Vacunación de hembras pre parto y lechones 5-6 semanas– Granjas con severos problemas clínicos.– Programa para granjas con flujos continuos

3) Vacunación temprana de lechones sin vacunación de hembras– Granjas con bajos índices de prevalencia al destete

y altos índices de estabilidad inmunológica del pie de cría.

Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim

4) Vacunación temprana de lechones CON medicación de hembras– Reduce la transmisión hembra-lechón

• Por tanto reduce prevalencia al destete– Reduce la circulación en la línea

– Exige medidas de bioseguridad– Altos costos

Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: elaboración propia

5) O una combinación de las anteriores a la medida de cada granja, en cada situación particular y de acuerdo a las metas de productividad que le sean adecuadas.

PLEURONEUMONIA INFECCIOSA

Pleuroneumonía por App: actualización epidemiológica, serotipos actuantes en Argentina (Gottschalk, 2005, com. personal)

SiSiI15

NoNoII14NoNoII13SiSiI12

NoNoI11

NoSiI10NoNoI y II9SiSiI8

SiSiI y II7

NoSiI6SicSiI5b

SicSiI5ª

NoSiI y II4

SiSiI3NoSiI y II2

SiSiI1

ArgentinaUSA yCanadáBiotipoSerotipo

Ninguno12

Ninguno10

Ninguno5

74

6, 8 y 153

Ninguno2

9 y 111

Reacciona cruzadamente conSerotipo

Reacción inmunológica cruzada entre serotipos

XXX15

XX12

XXX11

XX10

XXX9

XXX8

XX7

XXX6

XXX5

XXX4

XXX3

XXX2

XXX1

Especifica de App

-Hemolítica-++citotóxica

+ hemolítica+ citotóxica

++ hemolítica++citotóxica

ApxIVApxIIIApxIIApxI

Expresión de citotoxinas según serotipo(Bosse y cols, 2002, Blackall y cols, 2002)

Dinámica de la infección: transmisión

• Idem neumonía enzoótica• Contacto directo

– Madre-lechón: • anticuerpos calostrales protectivos• colonizadores tardíos pero lechón puede infectarse a partir de

los 11 días (bajo nº)• Seroconversión + en cachorros a partir de 12 semanas, pero

variable según manejo

– Entre cachorros• Mezcla de edades• Mezcla de serotipos

– Pueden coexistir mas de 2 serotipos distintos en la misma granja

Dinámica de la infección

• En granjas multisitio con producción en bandas o “todo adentro-todo afuera” la infección de las hembras condiciona la infección de la línea.

• En granjas de un solo sitio con flujo contínuo y producción en bandas la dinámica es similar a la anterior.

• En granjas de flujo continuo tradicionales, las hembras y el estado de infección de la línea es mas importante.

• En engordaderos la transmisión horizontal entre cachorros es determinante

Diagnóstico: objetivos, medios y métodos

• Diagnóstico clínico-patológico

• Diagnóstico etiológico– Bacteriología convencional– Separación inmunomagnética y cultivo

• Permite serotipificación– Manipulación genética

• PCR y variantes.– Permite identificación taxonómica y serotipificación.– Muy sensible apta en planteos de control de erradicación

• Diagnóstico serológico– Determinación de la dinámica de infección, contribuye a la vigilancia

y optimiza programas de control• ELISA

– Especie-específica anticuerpos contra toxina apxIV– Serotipo-específica anticuerpos contra # serotipos capsulares

Diagnostico clínico patológicoLesiones

Diagnostico bacteriológico: Bacteriología convencional

Manipulación genética: PCR y variantes.

05/07/07Pcr Apx OmlA. Extracción: CTAB.Muestras: OmlA S1, P 876 , P741-06M1, P741-06M2

Apx S1, P 876 , P741-06M1, P741-06M2Gel: 1%Resultados: OmlA: positivo. Serotipos: S1 positivo, P876: S3, P741-06M1, P741-06M2: S7

Ser. 1 Ser. 3 Ser. 7 Ser. 7

S1, P 876 P741-06M1, P741-06M2

Resultados preliminares: Determinación del serotipo de aislamientos autóctonos de App a través de la amplificación de fragmentos

génicos que codifican toxinas (Zbrun, Zielinski y cols. IX Cong. Nac. Prod. Porc. San Luis, 2008)

• Introducción– Cada serotipo o grupo de serotipos de App tiene un perfil de expresión de

toxinas propio.– Las diferentes toxinas están codificadas por genes que se pueden identificar

a través de la amplificación de secuencias propias y únicas (primers) de cada una.

• M & M– Se utilizaron aislamientos de App de brotes de pleuroneumonía los cuales se

identificaron por técnicas bacteriológicas convencionales– Se amplificaron primers de las distintas toxinas en un sistema de PCR

multiplex• Resultados

– De un total estudiado de 17 aislamientos de distintos brotes en distintas ubicaciones geográficas (Córdoba, Santa Fé, Bs Aires) se identificaron a

• 13 pertenecientes al serotipo 1, 9 ú 11• 2 pertenecientes al serotipo 7• 1 pertenecientes al serotipo 5• 1 perteneciente al serotipo 3

Diagnóstico serológico: diferentes ELISAs, ventajas y desventajas

• ELISA especie-específico – Idexx labs (ex Bommeli). Determinación de anticuerpos anti-toxina

ApxIV• Detecta portadores tonsilares• Una sola determinación para cada suero• No discrimina serotipos• No se conoce con exactitud la sensibilidad y especificidad

• ELISA serotipo-específico– Biovet labs (Canada). Determinación de anticuerpos anti-LPS de

cadena larga y exopolisacáridos• Test mas probado que el anterior• Permite determinar serotipo infectante• Cada suero debe ser procesado por 6 kits distintos ($$$$$ y

tiempo) para ser considerado NEGATIVO

Diagnóstico serológico: para que sirve?

• Determinación de existencia de infección subclínica– Ayuda a la vigilancia epidemiológica– Categorización de las granjas respecto al status-infección

enfermedad (Marsteller y Fenwick, 1999)

• Determinación de la dinámica de la infección– Contribuye a planificar programas de control– Contribuye a monitorear la marcha de esos programas

++IV-+III+-II--I

SerologíaSint. clínicaCategoría

Diagnóstico serológico: como combinar las distintas pruebas?

Muestra: no menos de 30 sueros/categoría

ELISA ApxIV

Negativos Positivos

ELISA Biovet

Negativos Positivos.Serotipos

Screening

Ejemplo: dinámica de infección por App en una granja en confinamiento total (Cat. I), partos semanales, AI/AO por

corral, subclínica

Virg. 1erparto

2doparto

3erparto

mas 3partos

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

% s

erop

ositi

vas

Reactividad de una cohorte de hembras contra toxina ApxIV de App, según nº ordinal de parto

0

20

40

60

80

100

% r

eact

oras

Ago-Dic. 0́4 n=4 Ene-Ago. 0́5 n=4

Reactividad serológica en cachorras de reposiciónPositivos

Sospechosos

Negativos

010

2030

40

5060

70

8090

% r

eact

ores

Julio 0́4 Setiembre 0́6

Reactividad serológica en recría (en periodo de enf. subclinica y clínica)

Positivo

Sospechoso

Negativo

0

20

40

60

80

100

% r

eact

ores

Destete Recría Terminación

Reactividad serológica de la linea de producción (Dic. 2005, enf. subclinica)

Positivo

Sospechoso

Negativo

0

20

40

60

80

100

% r

eact

ores

Jul-Dic ´04 n=5 Ene-Oct.´05 n=2 Set. ´06

Reactividad serológica en terminación (en período subclínico y clínico)

Positivos

Sospechosos

Negativos

18,5254412,5

% de sueros negativos a los

4 serotipos anteriores

% de sueros positivos a los serotipos 3, 6,

8 y 15

% de sueros positivos al serotipo 5

% de sueros positivos a los serotipos 1, 9

y 11

Reactividad serológica utilizando la prueba de ELISA serotipo-especifico(Biovet) en una cohorte de hembras positivas al ELISA ApxIV

Circulación de varios serotipos de App!!!????

End of story

• En Agosto de 2006 se aisló App serotipo 7 a partir de pulmones con lesiones necro-hemorrágicas muertos en granja. Total muertos con lesiones compatibles con App: 5 animales.

• En Febrero 2007 se aisló App serotipo 7 a partir de pulmones de frigorífico con lesiones de consolidación anteroventral

• En Abril de 2007 se repitió el aislamiento de esta especie en las mismas condiciones que en Febrero (frigorífico).

Tratamiento y control

• Brote agudo– Medicación metafiláctica

• Inyectable• Contínua en ración o agua

– Terapia de sostenimiento (AINE´s)– Manejo

• Situación endémica– Manejo– Medicación pulsátil

• Como continuación del esquema anterior• Terapia de choque

1189STM3466OTC0100GEN2575FFN2179SPC85411ERY496TIM1981AMP0100CEF34361ENR

Resisten.IntermediaSensible Droga%/total aislamientos

Sensibilidad antibiótica de una colección de aislamientosde campo (Zielinski, Zbrun y cols, IX Cong. Nac. Prod. Porcina, San Luis, 2008)

Prevención inmunológica: vacunas

• Convencionales– Bacterinas inactivadas y adyuvantadas– Serotipo especificas– Disminuyen mortalidad– Disminuyen índice lesional– Mejoran perfomance productiva– No impiden la infección– No impiden la enfermedad

• Nueva generación– Constituidas por subunidades bacterianas– Toxoides– Especie especificas– Mejoran perfomance productiva– No impiden la infección– No impiden la enfermedad

Parámetro Nivel normal Nivel deinterferencia

% madres enestro, 10 días

Pos-parto

90% 85%

Retorno al estroregular

4% 10%

Retorno al estroirregular

1% 2.5%

Diag. preñeznegativo

4% >4%

Abortos 1% 2.5%Tasa de parición 90% 85%

Enfermedades que afectan al pie de Cría

PARÁMETROS REPRODUCTIVOS NORMALES

Enfermedades que afectan al pie de Cría

PARÁMETROS REPRODUCTIVOS NORMALES (cont.)

Nacidosvivos/camada

10.5 10

Natimortos 5% 8%Momificados 0.5% 1%

<8lechones/camada

10% 15%

Nºdestet/camada

9.5 9

Mortalidadpredestete

8% 12%

Camadas/madre/año

2.2 2

Capones/madre/año

20 18

(Thacker, BJ. Current Therapy in Theriogenology, 1986)

Brucelosis: transmisión

• Eliminación durante parto o aborto infección vía oral

• Semen contaminado eyaculación intrauterina infección vía venérea

• A campo: fauna silvestre portadora: liebre, jabalí.

BRUCELOSIS: diagnóstico

• PRUEBAS DE LABORATORIO• Sangrado de los reproductores:• BPA →→(-) Negativo. Animal NEGATIVO • →→(+) Positivo→SAT• →2-Mercaptoetanol

• SAT 2-mercapto Animal• + + POSITIVO• + - NEGATIVO

BRUCELOSIS: control y prevención

• Eliminación de POSITIVOS

• Control serológico de NEGATIVOS

• Desinfección de instalaciones

• Control de la reposición

• BIOSEGURIDAD

ENFERMEDAD DE AUJESZKY

(PSEUDORABIA)

Transmisión de la enfermedad

Cerdo infectado eliminador

Cerdo susceptible: se infecta

Saliva, sec. nasales,orina, leche

Virus

Cama, agua, comederos, desperdicios

Cerdo susceptible: se infecta

Cerdo susceptible: se infecta

Gatos, perros, otros.Virus

Muerte

Enferma o no

Enferma o no

Enferma o no

Latencia

Latencia

Latencia

Síntomas de la enfermedad• Lechones recién nacidos y lactantes

– Falta de apetito, apatía, fiebre (41ºC)– Síntomas nerviosos (temblores, convulsiones, etc.)– Muerte

• Lechones destetados (3-9 semanas)– Falta de apetito, apatía, fiebre– Síntomas respiratorios, tos, descargas nasales– Síntomas nerviosos (temblores, etc.) con muerte o no.

• Cachorros recría-desarrollo-terminación– Síntomas respiratorios leves a graves (contam. 2rias)– Algunos con sint. nerviosos, baja mortalidad (1-2%)– Retraso en el crecimiento y engorde

• Adultos– Algunos síntomas respiratorios– En hembras: trastornos reproductivos

• Infección en 1 mes de gestación: muerte embrionaria• Infección 2 y 3 mes de gestación: aborto• Infección cercana al parto: lechones débiles, muerte 1-2 días pos-nacimiento

Diagnostico

• Clínico y por lesiones: poco confiable• Análisis complementarios en laboratorio

– Aislamiento e identificación del virus– Inoculación en conejo– Inmunofluorescencia en tejidos– Serología: análisis de los sueros é

identificación de anticuerpos• ELISA• Aglutinación en látex• Seroneutralización

ELISA

• NO para animales con síntomas agudos (aborto)

• NO para animales menores de 4 meses (anticuerpos maternos)

• SI para animales portadores asintomáticos (latentes)

• Animales vacunados ELISA diferencial• ELISA PRVgp1 lab. Bommeli, distribuido por

Biotay

• CONTROL– Eliminación de reactores positivos y/o

vacunación de todo el plantel reproductor.• PREVENCIÓN

– BIOSEGURIDAD• Ingreso de negativos• Barreras de contención• Personas• Fauna silvestre• Equipos y vehículos

ENFERMEDAD DE AUJEZSKY:CONTROL Y PREVENCION

Parvovirosis porcina

• Etiología: parvovirus porcino 2 (PPV-2)• Transmisión

– Muy resistente en el medio ambiente Transmisión fecal-oral

• Signos Clínicos– Adultos: inaparente– Cachorras: muerte embrionaria o fetal, repetición

de celos regular o irregular- Momificación, disminución nº nacidos vivos, a veces:

aborto

Parvovirosis porcina

Diagnostico• Fetos: inmunofluorescencia• Sueros madres: serología: inhibición de la

hemoaglutinación.– Verificar seroconversión

– Control y prevención• Acostumbramiento de la cachorra (inmunización

natural)• Vacunación pre-servicio: vacuna combinada

parvovirosis-leptospirosis