karta modułu/przedmiotu...materiały do zajęć zagadnienia do przygotowania na seminaria 20.3....
TRANSCRIPT
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: analityka medyczna
2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: MARKERY MOLEKULARNE W DIAGNOSTYCE I TERAPII
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab.n.med. Urszula Mazurek [email protected] 10. Cel kształcenia: Zapoznanie studentów z grupami markerów molekularnych stosowanych w diagnostyce i terapii oraz w wykrywaniu organizmów transgenicznych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza: Student posiada wiedzę z zakresu biologii molekularnej oraz biochemii Umiejętności: Potrafi interpretować wyniki badań uzyskanych technikami biologii molekularnej w podstawowym zakresie Inne kompetencje: Potrafi pracować w zespole
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Wskazuje i charakteryzuje markery molekularne chorób nowotworowych, metabolicznych, infekcyjnych
K_W13 M2_W02
M2_W03
M2_W05
M2_W07
02 Ocenia potencjalne zagrożeń zdrowia na podstawie wyników oznaczeń biomarkerów wrażliwości
K_W09
K_W11
M2_W04
M2_W06
M2_W04
M2_W06
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
W2
Łącznie
14.2. Forma zajęć:
S1 Markery molekularne w badaniach in vitro i in situ. 2
S2 Biomarkery w ocenie narażenia środowiskowego populacji. 2
S3 Markery i metody stosowane w ocenie genotoksyczności 2
S4
Markery molekularne schorzeń nowotworowych. Metody typowania
genów różnicujących tkanki prawidłowe i patologiczne w terapii
molekularnie ukierunkowanej
2
S5 Biomarkery schorzeń metabolicznych. 2
S6 Markery molekularne w diagnostyce zaburzeń czynności gruczołów wydzielania wewnętrznego.
2
S7 Biomarkery wirusowego zapalenia wątroby – diagnostyka różnicowa czynników infekcyjnych
2
S8 Molekularne markery wrażliwości osobniczej na działanie ksenobiotyków. 2
S9 Markery molekularne w medycynie regeneracyjnej 2
S10 Markery molekularne oraz cele terapii genowej w schorzeniach układu
sercowo-naczyniowego
2
S11 Markery molekularne w personalizacji osiągnięć sportowych i
wykrywaniu dopingu genetycznego
2
S12 Zastosowanie markerów molekularnych w wykrywaniu żywności
modyfikowanej genetycznie
2
S13 Markery molekularne w ksenotransplantacji 2
S14 Kody kreskowe DNA jako markery molekularne w ekologii 2
S15 Projektowanie analizy molekularnej w odpowiedzi na postawiony
problem
2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia …
C1
C2
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu
15. Metody kształcenia
15.1. seminaria Narzędzia bioinformatyczne, prezentacje multimedialne, metody przypadków, metody sytuacyjne, dyskusje dydaktyczne
15.2.
15.3.
15.4.
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
02 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
obecność na teście zaliczeniowym 1
konsultacje 3
…
łącznie 34
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do zajęć seminaryjnych 10
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 10
…
…
łącznie 20
Łącznie 54
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Ciechanowicz A., Kokot F. (red): Genetyka molekularna w chorobach wewnętrznych. PZWL, Warszawa
2009
2. Bal J. (red): Biologia molekularna w medycynie, elementy genetyki klinicznej. PWN, Warszawa 2006
3. Dembińska-Kieć A., Naskalski J. (red): Diagnostyka Laboratoryjna z elementami biochemii klinicznej.
Urban&Partner, Wrocław 2002
19.2. Uzupełniająca 1. Nishevitha NS, Angeline T, Nirmala Jeyaraj. Endothelial nitric oxide synthase (eNOS) Glu298 Asp
polymorphism (G894T) among south Indians. Indian J Med Res 129, January 2009, pp 68-71 2. Żebrowski M, Dębiec R. Współczesne badania genetycznego podłoża choroby wieńcowej. Polski
przegląd kardiologiczny 2005, 7(3):261-264 3. Ewa Straburzyńska-Migaj. Czy nadszedł już czas na diagnostykę genetyczną w niewydolności serca?
Kardiol Pol 2007; 65: 63-70 4. Schmidt M. Comet Assay. www.kucharczyk.com.pl
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna maksymalnie 20 osób
20.2. Materiały do zajęć zagadnienia do przygotowania na seminaria
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8.
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8 – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie internetowej Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5 Na ocenę celującą
Efekt 01
poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Efekt 02
poniżej 70% poprawnych
odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych
odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: NOWE WYZWANIA MEDYCYNY LABORATORYJNEJ (TESTY
POINT OF CARE, POCT) 7. Status modułu/przedmiotu: DO WYBORU
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Chemii Klinicznej i Diagnostyki Laboratoryjnej [email protected] 32/364 11 50 , ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec www. chemklin.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): dr n. farm. Paweł Olczyk; [email protected]
10. Cel kształcenia: Przygotowanie studentów do implementacji badań przyłóżkowych w medycznym laboratorium
diagnostycznym. Nabycie umiejętności wyboru optymalnego testu czy analizatora POCt, oraz metod
pobierania i przygotowania materiału biologicznego do badań przyłóżkowych. Nauczenie wykonywania
pomiarów i analiz oraz interpretacji uzyskanych wyników badań rozproszonych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Znajomość: struktury oraz funkcjonowania poszczególnych tkanek, układów i narządów; podstawowych zjawisk fizykochemicznych oraz ich implikacji dla wybranych procesów biochemicznych; wpływu zaburzeń ustrojowego metabolizmu na funkcjonowanie narządów i układów, rutynowych parametrów laboratoryjnych w diagnostyce i monitorowaniu przebiegu chorób.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
01
Potrafi interpretować wyniki podstawowych badań laboratoryjnych
M2_U06
M2_U13
02 Posiada praktyczne umiejętności wykonania szybkich testów
diagnostycznych
M2_W07
M2_W09
M2_W10
03 Posiada praktyczne umiejętnościw dziedzinie obsługi
„przyłóżkowych” aparatów diagnostycznych
M2_W07
M2_W09
M2_W10
04 Potrafi rozpoznawać i eliminować wpływ leków na wyniki badań
laboratoryjnych
M2_U02
M2_U05
M2_U07
M2_U08
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu Forma zajęć dydaktycznych
kształcenia wykład seminarium
ćwiczenia laboratoryjne
ćwiczenia praktyczne
inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: … Liczba godzin
W1
W2
W3
Łącznie
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Testy ciążowe 2
S2 Testy owulacyjne 2
S3 Szybka diagnostyka urologiczna 2
S4 Szybka diagnostyka kardiologiczna – Accutrend Plus, Cardiac
marker test kits 2
S5 Szybka diagnostyka koagulologiczna, CoaguChek 2
S6 Szybka diagnostyka gastroenterologiczna część I – testy
wykrywające obecność H.P 2
S7 Szybka diagnostyka gastroenterologiczna część II – testy
wykrywające obecność krwi utajonej w kale 2
S8 Nycocard Reader 2
S9 Szybka diagnostyka gazometryczna krwi, DCA, RapidLab 2
S10 Szybka kontrola glikemii – glukometry 2
S11 Szybka diagnostyka zakażeń 2
S12 Szybka diagnostyka uzależnień 2
S13 Szybka diagnostyka zaburzeń hormonalnych – menopauzy 2
S14 Szybka diagnostyka zaburzeń hormonalnych – andropauzy 2
S15 Szybka diagnostyka fazy zapalnej 2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: …
C1
C2
C3
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. seminaria Prezentacja multimedialna i dyskusja problemowa, pokazy oraz praktyczna nauka obsługi analizatorów oraz testów POCT
15.2. …
15.3. …
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 kolowium
60% poprawnych odpowiedzi w teście
02 kolowium
60% poprawnych odpowiedzi w teście
03 kolowium
60% poprawnych odpowiedzi w teście
04 kolowium
60% poprawnych odpowiedzi w teście
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15 x 2h = 30h
obecność na egzaminie pisemnym 1 x 2h = 2h
konsultacje 2 x 1h = 2h
łącznie 34 h
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 15 x 1h = 15h
przygotowanie do egzaminu pisemnego z przedmiotu 1 x 15h = 15h
łącznie 30 h
Łącznie 64 h
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
19. Literatura
19.1. Podstawowa
1.Marshall W., Bangert S.: Clinical chemistry. Mosby Elsevier, 2008.
2.Young D.S.: Effects of preanalytical variables on clinical laboratory tests. AACC Press, 2007.
3.Baynes J.W., Dominiczak M.H.: Medical biochemistry. Elsevier Mosby, 2005.
4.Dembińska-Kieć A., Naskalski J.W.(red): Diagnostyka Laboratoryjna
z elementami biochemii klinicznej. Volumed. Wrocław, 2010.
5.Lieberman M., Marks A.: Marks' basic medical biochemistry. Wolters Kluwer/Lippincott
Williams & Wilkins, 2009. 19.2. Uzupełniająca
1. Gajewski P.,Szczeklik A. (red.): Interna Szczeklika 2013 - Podręcznik chorób wewnętrznych.
Medycyna Praktyczna. Kraków 2013.
2.Dembińska-Kieć A., Naskalski J.W.(red): Diagnostyka Laboratoryjna z elementami biochemii
klinicznej. Volumed. Wrocław, 2010.
3.Farmaceutyczne i medyczne czasopisma – polsko i angielsko języczne.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 10-12 osób
20.2. Materiały do zajęć Zeszyt seminaryjny, instrukcje szybkich testów i aparatów diagnostycznych, biały fartuch
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Sala seminaryjna Katedry i Zakładu Chemii Klinicznej i Diagnostyki Laboratoryjnej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Chemii Klinicznej i Diagnostyki Laboratoryjnej Wydziały Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej, godzina konsultacji ustalana na pierwszych ćwiczeniach z przedmiotu
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 nie ma podstawowej wiedzy z zakresu interpretacji wyników podstawowych badań laboratoryjnych
posiada wiedzę z zakresu interpretacji wyników podstawowych badań laboratoryjnych
posiada wiedzę szerszą i pogłębioną z zakresu interpretacji wyników podstawowych badań laboratoryjnych
posiada ugruntowaną wiedzę i przejawia umiejętność krytycznej analizy z zakresu interpretacji wyników podstawowych badań laboratoryjnych
Efekt 02 nie ma podstawowej wiedzy z zakresu metodyki wykonania szybkich testów dostępnych w aptece
posiada wiedzę z zakresu metodyki wykonania szybkich testów dostępnych w aptece
posiada szerszą i pogłębioną wiedzę oraz potrafi zademonstrować obsługę szybkich testów dostępnych w aptece
posiada szerszą i pogłębioną wiedzę oraz potrafi zademonstrować obsługę jak i samodzielnie zinterpretować wynik oznaczenia przy użyciu szybkich testów dostępnych w aptece
Efekt 03 nie ma podstawowej wiedzy z zakresu obsługi aparatów diagnostycznych dostępych w aptece
posiada wiedzę z zakresu obsługi aparatów diagnostycznych dostępych w aptece
posiada szerszą i pogłębioną wiedzę oraz potrafi zademonstrować obsługę aparatów diagnostycznych dostępych w aptece
posiada szerszą i pogłębioną wiedzę oraz potrafi zademonstrować obsługę jak i samodzielnie zinterpretować wynik oznaczenia przy użyciu aparatów diagnostycznych dostępych w aptece
Efekt 04 nie ma podstawowej wiedzy z zakresu wpływu leków na wyniki badań laboratoryjnych
posiada wiedzę z zakresu wpływu leków na wyniki badań laboratoryjnych
posiada wiedzę szerszą i pogłębioną z zakresu wpływu leków na wyniki badań laboratoryjnych
posiada ugruntowaną wiedzę i przejawia umiejętność krytycznej analizy z zakresu wpływu leków na wyniki badań laboratoryjnych
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: ALERGIE
7. Status modułu/przedmiotu: fakultatywny
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Immunologii i Serologii
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Zdzisława Kondera-Anasz [email protected]
10. Cel kształcenia: Celem tych seminariów jest poszerzenie wiedzy z zakresu patologii układu odpornościowego. Zapoznanie studentów ze złóżonymi przyczynami i mechanizmami procesów alergicznych. Wykształcenie umiejętności właściwego doboru badań, a następnie ich interpretacji w diagnostyce i monitorowaniu terapii chorób alergicznych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Podstawowe pojęcia i zagadnienia z immunologii i immunopatologii
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Zna i potrafi opisać mechanizmy reakcji nadwrażliwości
K_W01 K_W02 K_W09 K_W11 K_W16 K_W17 K_W26
M2_W01 M2_W02 M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W09 M2_W10
02 Zna i potrafi scharakteryzować mechanizmy alergii skórnych
K_W01 K_W02 K_W09 K_W11 K_W16 K_W17 K_W26 K_W27
M2_W01 M2_W02 M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W09 M2_W10
03 Zna i potrafi scharakteryzować mechanizmy alergii pokarmowych
K_W01 K_W02 K_W09 K_W11 K_W16 K_W17 K_W26 K_W27
M2_W01 M2_W02 M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W09 M2_W10
04 Zna i potrafi scharakteryzować mechanizmy alergii wziewnych
K_W01 K_W02 K_W09
M2_W01 M2_W02 M2_W03
K_W11 K_W16 K_W17 K_W26 K_W27
M2_W05 M2_W07 M2_W09 M2_W10
05 Zna testy stosowane w diagnostyce chorób alergicznych oraz potrafi je interpretować
K_W01 K_W02 K_W09 K_W11 K_W16 K_W17 K_W26 K_W27
M2_W01 M2_W02 M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W09 M2_W10
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
05 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1 0
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: seminaria
S1 Mechanizmy procesów alergicznych. 2
S2 Atopowe zapalenie skóry. 2
S3 Pokrzywka i obrzęk naczynioruchowy. 2
S4 Alergiczny nieżyt nosa. 2
S5 Astma oskrzelowa. 2
S6 Choroby alergiczne płuc wywołane pyłami organicznymi. 2
S7 Alergiczna aspergiloza oskrzelowo-płucna. 2
S8 Alergiczne zapalenie spojówek. 2
S9 Rośliny wywołujące alergie. 2
S10 Rola zwierząt w powstawaniu alergii. 2
S11 Alergia na leki. 2
S12 Alergie pokarmowe. 2
S13 Diagnostyka alergii. 2
S14 Immunoprofilaktyka. 2
S15 Immunoterapia alergii. 2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia
C1 0
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminaria Wykład informacyjny, wykład problemowy, dyskusja, metody programowe
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 -05 Przygotowanie prezentacji i pracy poglądowej, czynny udział w dyskusji, ocena i interpretacja wyników badań
Wygłoszenie prezentacji i złożenie pracy poglądowej
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15 x 2
konsultacje 5
łącznie 35
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 15 x 1
Przygotowanie prezentacji 5
Przygotowanie pracy poglądowej 5
łącznie 25
Łącznie 60
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
0
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T: Immunologia. Wydawnictwo Naukowe PWN,
Warszawa 2012. 2. Male D., Brostoff J., Roth D.B., Roitt I., red. wyd. pol. Żeromski J.: Immunologia. Elsevier Urban &
Partner, Warszawa 2008. 3. Kowalski M. (red.): Immunologia kliniczna. Mediton Oficyna Wydawnicza 2000. 4. Chapel H, Haeney M, Misbah S, Snowden N, [red. wyd. pol.] Senatorski G: Immunologia
kliniczna. Wydawnictwo Czelej, Lublin 2009
19.2. Uzupełniająca 1. Ptak W., Ptak M. Szczepanik M: Podstawy immunologii. Wydawnictwo Lekarskie PZWL,
Warszawa 2008. 2. Pawliczak R. Alergologia-kompendium. Termedia, Poznań 2013
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 20 studentów
20.2. Materiały do zajęć Protokoły i wyniki badań
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Katedra i Zakład Immunologii i Serologii ul. Jedności 8 Sosnowiec Sala ćwiczeń
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Immunologii i Serologii ul. Jedności 8 Sosnowiec Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 3,5 Na ocenę 4 Na ocenę 4,5 Na ocenę 5 Na ocenę celującą
Efekt 01-05
Student nie przygotował prezentacji, pracy poglądowej, nie brał czynnego udziału w dyskusji, nie potrafi zinterpretować wyników badań pacjentów z chorobami alergicznymi.
Przygotowanie prezentacji.
Przygotowanie prezentacji i czynny udział w dyskusji.
Przygotowanie prezentacji, czynny udział w dyskusji i przygotowanie pracy poglądowej.
Przygotowanie prezentacji, czynny udział w dyskusji, przygotowanie pracy poglądowej i interpretacja wyników badań pacjentów z chorobami alergicznymi.
Przygotowanie prezentacji, czynny udział w dyskusji, przygotowanie pracy poglądowej w oparciu o dane literaturowe z recenzowanych czasopism naukowych oraz interpretacja wyników badań pacjentów z chorobami alergicznymi.
Przygotowanie prezentacji, czynny udział w dyskusji, przygotowanie pracy poglądowej w oparciu o dane literaturowe z recenzowanych czasopism naukowych oraz interpretacja wyników badań pacjentów z chorobami alergicznymi. Zna molekularne mechanizmy działania leków alergicznych oraz metody odczulania pacjentów.
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: ANALIZA DNA W MEDYCYNIE SĄDOWEJ
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab.n.med. Urszula Mazurek [email protected]
10. Cel kształcenia: Opanowanie przez studenta wiedzy i umiejętności w zakresie analizy DNA w medycynie sądowej w aspekcie
prawnym, metodycznym i orzeczniczym
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza: Student posiada wiedzę z zakresu biologii molekularnej oraz biochemii Umiejętności: Potrafi interpretować wyniki badań uzyskanych technikami biologii molekularnej w podstawowym zakresie Inne kompetencje: Potrafi pracować w zespole
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Zna podstawy prawne analizy DNA i zasady akredytacji
laboratoriów medycyny sądowej K_W36
M2_W05
M2_W08
M2_W12
02 Zna sekwencje polimorficzne genomu człowieka i zastosowanie
genetyki populacyjnej K_W04
M2_W02
M2_W03
03 Definiuje i opisuje metody badań stosowane w analizie DNA na
potrzeby medycyny sądowej K_W14
M2_W03
M2_W07
04 Interpretuje wyniki analizy DNA w aspekcie śladów biologicznych
i ustalania ojcostwa, potrafi wydać opinię w sprawie K_U46
M2_U01
M2_U05
M2_U07
M2_U14
M2_U15
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia K2_K09
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
W2
Łącznie 15 godzin
14.2. Forma zajęć:
S1 Ustawodawstwo dotyczące śladów biologicznych. 2
S2 Etapy badania śladów biologicznych, działy kryminalistyki. 2
S3 Rola badań laboratoryjnych w toku śledztwa. 2
S4 Polimorfizmy sekwencji DNA jądrowego w badaniach kryminalistycznych. 2
S5 Polimorfizm YSTR, SNP oraz polimorfizmy sekwencji mtDNA 2
S6 Genetyka populacyjna w medycynie sądowej. 2
S7 Przygotowanie materiału dowodowego do analizy DNA. 2
S8 Metodyka wyznaczania profilu DNA w zależności od typu badanego materiału. 2
S9 Metody oznaczania DNA w próbkach wątpliwych 2
S10 Analiza DNA w identyfikacji zwłok i szczątków ludzkich. 2
S11 Problemy interpretacyjne wyników analizy DNA w medycynie sądowej. 2
S12 Identyfikacja materiału genetycznego w wykrywaniu ataku bioterrorystycznego.
Zastosowanie znaczników genetycznych w wykrywaniu fałszerstw i podróbek
towarów. 2
S13 Aspekt prawny zastosowania analizy DNA w sądowych sprawach spornego
ojcostwa 2
S14 Zasady opiniowania w sprawach spornego ojcostwa 2
S15 Opiniowanie w nietypowych sprawach spornego ojcostwa na podstawie
przykładów. Trudności opiniodawcze i możliwości ich rozwiązania 2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia …
C1
C2
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu
15. Metody kształcenia
15.1. seminaria wykłady informacyjne, wykłady problemowe, metody przypadków, metody sytuacyjne,
dyskusje dydaktyczne
15.2.
15.3.
15.4.
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
02 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
03 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
04 zadania otwarte Test zaliczeniowy
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
udział w konsultacjach 3
udział w teście zaliczeniowym 1
udział w …
…
łącznie 34
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 15
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 10
…
…
łącznie 25
Łącznie 59
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. . John M. Butler. Forensic DNA typing. Biology, technology, and genetics of STR markers. Second edition. Elsevier
Academic Press, UK, 2005
2. Gola J., Mazurek U., Raczek E. Analiza DNA w medycynie sądowej. Śląski Uniwersytet Medyczny 2012 19.2. Uzupełniająca
1. Willerslev E, Cooper A. Ancient DNA. Proc R Soc B, 2005; 272:3–16
2. Niemcunowicz-Janica A i wsp. Oznaczanie loci zestawu PowerPlex Y w wybranych tkankach przechowywanych w
zróżnicowanych warunkach środowiska zewnętrznego. Arch Med Sąd Krym, 2007; 57:385-388
3. Grubwieser P. i wsp. Airbag contact in traffic accidents: DNA detection to determine the driver identity. Int J Legal
Med, 2004 118 : 9–13)
4. Castello i wsp. DNA from a Computer Keyboard. Forensic Science Communications, 2004; 6
5. Sołtyszewski i wsp. Kryminalistyczne i sądowo-lekarskie metody identyfikacji zwłok i szczątków ludzkich. Problemy
kryminalistyki 2003; nr 239
6. Ruitberg C.M., Reeder D.J., Butler J.M. STRBase: a short tandem repeat DNA database for the human identity testing
community. Nucleic Acids Research, 2001, 29 (1):320-322
7. Kleinowska M. 2006a. Analiza śladów genetycznych jako dowód w procesie karnym – cz. I. Problemy kryminalistyki,
252:13-20
8. Kleinowska M. 2006b. Analiza śladów genetycznych jako dowód w procesie karnym – cz. II. Problemy
kryminalistyki, 253:9-14
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup maksymalnie 10 osób
20.2. Materiały do zajęć instrukcje do ćwiczeń, zagadnienia do przygotowania na ćwiczenia
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8 (seminaria)
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8 (seminaria) – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5 Na ocenę celującą
Efekt 01 poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Efekt 02 poniżej 70% poprawnych
odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym
Efekt 03 poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Efekt 04 poniżej 70% poprawnych
odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: LABORATORYJNA DIAGNOSTYKA CHORÓB REUMATYCZNYCH
7. Status modułu/przedmiotu: Fakultatywny
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Chemii Klinicznej i Diagnostyki Laboratoryjnej ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec (32) 364 11 50, e-mail: [email protected] http://chemklin.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Krystyna Olczyk, [email protected]
10. Cel kształcenia: Poznanie cech klinicznych i immunologicznych wybranych chorób reumatycznych oraz podstawowych i specjalistycznych badań diagnostycznych, niezbędnych do prawidłowego rozpoznania chorób reumatycznych i monitorowania ich efektów leczenia.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Podstawowe wiadomości z zakresu: Podstaw fizjologii człowieka, histologii, biochemii, immunologii, chemii klinicznej.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów
kształcenia dla obszaru
01 rozumie cechy kliniczne i immunologiczne wybranych chorób reumatycznych
K_W09 M2_W01 M2_W02
02 zna uwarunkowania środowiskowe i epidemiologiczne najczęściej występujących chorób reumatycznych
K_W10 M2_W04 M2_W06
03 wskazuje zależności pomiędzy nieprawidłowościami morfologicznymi a funkcją zmienionych tkanek, narządów i układów objawami klinicznymi, strategią diagnostyczną i farmakologiczną wybranych chorób reumatycznych
K_W11 M2_W03 M2_W10
04 zna rolę, kryteria doboru oraz metodologię badań laboratoryjnych stosowanych w rozpoznawaniu, rokowaniu, terapii i monitorowaniu wybranych chorób reumatycznych
K_W16 M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W10
05 umie określić przydatność diagnostyczną badania laboratoryjnego w rozpoznaniu, rokowaniu, monitorowaniu terapii wybranych chorób reumatycznych
K_U10 M2_U05 M2_U06 M2_U08
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
…
Wn
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Zajęcia organizacyjne. Zapoznanie studentów z programem i sposobem zaliczenia fakultetu. Materiał biologiczny i metody badawcze wykorzystywane w diagnostyce chorób reumatycznych.
3
S2 Etiopatogeneza, obraz kliniczny oraz diagnostyka reumatoidalnego zapalenia stawów.
3
S3 Etiopatogeneza, obraz kliniczny oraz diagnostyka młodzieńczego idiopatycznego zapalenia stawów. 3
S4 Etiopatogeneza, obraz kliniczny oraz diagnostyka tocznia rumieniowatego układowego.
3
S5 Etiopatogeneza, obraz kliniczny oraz diagnostyka twardziny układowej.
3
S6 Etiopatogeneza, obraz kliniczny oraz diagnostyka choroby zwyrodnieniowej stawów.
3
S7 Rola podstawowych badań laboratoryjnych oraz diagnostyki serologicznej w rozpoznaniu chorób reumatycznych.
3
S8 Badanie płynu stawowego w diagnostyce chorób reumatycznych.
3
S9 Biochemiczne wskaźniki syntezy i degradacji układu kostno-stawowego wykorzystywane w diagnostyce i monitorowaniu terapii chorób reumatycznych.
3
S10 Test zaliczeniowy. 3
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia laboratoryjne
C1
…
Cn 0
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminarium Studenci przygotowują się do zajęć w trakcie, których wygłaszają prelekcję multimedialną i odbywa się dyskusja nadzorowana przez nauczyciela akademickiego.
15.3. Ćwiczenia laboratoryjne
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
kształcenia
01 Ocena przygotowanego referatu i udziału w zajęciach. Końcowy test zaliczeniowy
Powyżej 50% poprawnych odpowiedzi
02 Ocena przygotowanego referatu i udziału w zajęciach. Końcowy test zaliczeniowy
Powyżej 50% poprawnych odpowiedzi
03 Ocena przygotowanego referatu i udziału w zajęciach. Końcowy test zaliczeniowy
Powyżej 50% poprawnych odpowiedzi
04 Ocena przygotowanego referatu i udziału w zajęciach. Końcowy test zaliczeniowy
Powyżej 50% poprawnych odpowiedzi
05 Ocena przygotowanego referatu i udziału w zajęciach. Końcowy test zaliczeniowy
Powyżej 50% poprawnych odpowiedzi
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
udział w seminariach 30 godz.
udział w konsultacjach 1 godz.
łącznie 31 godz.
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 8 x 3 godz. = 24 godz.
przygotowanie do końcowego testu zaliczeniowego 5 godz.
łącznie 31 godz.
Łącznie 60 godz.
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
0
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Zimmermann-Górska I. (red.): Reumatologia Kliniczna. Tom I i II. PZWL, Warszawa 2009. 2. Odrowąż-Sypniewska G. (red.): Diagnostyka laboratoryjna wybranych chorób reumatycznych.
MedPharm Polska, Wrocław 2011. 3. Kokot F. (red.): Choroby wewnętrzne. PZWL, Warszawa 2004. 4. Dębińska-Kieć A., Naskalski J.W.: Diagnostyka Laboratoryjna z elementami biochemii klinicznej.
Urban & Partner, Wrocław 2009.
5. Solnica B. (red.): Diagnostyka Laboratoryjna. PZWL, Warszawa 2014.
6. Kokot F., Kokot S.: Badania laboratoryjne. Zakres norm i interpretacja. PZWL, Warszawa 2005.
19.2. Uzupełniająca Artykuły publikowane w czasopismach kierunkowych, związane z tematyką przedmiotu.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 20
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się Sala seminaryjna Katedry i Zakładu Chemii Klinicznej i Diagnostyki
zajęć Laboratoryjnej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Katedra i Zakład Chemii Klinicznej i Diagnostyki Laboratoryjnej Wydziały Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, godzina konsultacji ustalana na pierwszych zajęciach z przedmiotu.
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01 Brak zaliczenia seminariów. Test zaliczeniowy poniżej 50%
Zaliczenie seminariów. Test zaliczeniowy 50 – 75%
Zaliczenie seminariów. Test zaliczeniowy 75 – 90%
Zaliczenie seminariów. Test zaliczeniowy 90 – 100%
02 Brak zaliczenia seminariów. Test zaliczeniowy poniżej 50%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 50 – 75%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 75 –
90%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 90 –
100%
03 Brak zaliczenia seminariów. Test zaliczeniowy poniżej 50%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 50 – 75%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 75 –
90%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 90 –
100%
04 Brak zaliczenia seminariów. Test zaliczeniowy poniżej 50%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 50 – 75%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 75 –
90%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 90 –
100%
05 Brak zaliczenia seminariów. Test zaliczeniowy poniżej 50%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 50 – 75%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 75 –
90%
Zaliczenie
seminariów. Test
zaliczeniowy 90 –
100%
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: analityka medyczna 2. Poziom kształcenia:
3. Forma studiów:
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: “LET’S TALK AGAIN” - KONWERSATORIUM W JĘZYKU
ANGIELSKIM
7. Status modułu/przedmiotu: fakultatywny
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot:
Studium Języków Obcych Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej, ul.
Ostrogórska 30, 41-200 Sosnowiec, Tel. (32) 364 13 30, e-mail: [email protected],
http://sjo.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail):
Dr n. hum. Agata Sitko, [email protected]
10. Cel kształcenia:
Kształtowanie umiejętności aktywnego udziału w dyskusji na wybrane zagadnienia.
Doskonalenie umiejętności swobodnej komunikacji.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji:
grupy o poziomie średniozaawansowanym: znajomość języka angielskiego na poziomie B1
12. Efekty kształcenia
Numer
efektu
kształcenia
Efekty kształcenia
Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie
do efektów
kształcenia
dla
programu
Odniesienie
do efektów
kształcenia
dla obszaru
EK_U01 Posługuje się efektywnymi technikami komunikowania
interpersonalnego w języku angielskim w stopniu
określonym dla poziomu B2 Europejskiego Systemu Opisu
Kształcenia Językowego.
K_U43 M2_U01
M2_U04
M2_U03
M2_U15
EK_K01 Posiada nawyk i umiejętność stałego dokształcania się. K_K11 M2_K01
03
…
0n
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne
ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
EK_U01 x
EK_K01 x
03
…
0n
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba
godzin
W1
W2
W3
…
Wn
Łącznie
14.2. Forma zajęć: …
S1
S2
S3
…
Sn
Łącznie
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia
C1 Rola organizacji studenckich w akcjach profilaktycznych 2
C2 Studiowanie za granicą 4
C3 Kształcenie podyplomowe absolwentów kierunku analityka
medyczna 2
C4 Rynek pracy dla absolwentów kierunku analityka medyczna 2
C5 Praca w laboratorium a praca z pacjentem 10
C6 Bioetyka 2
C7 System opieki zdrowotnej w Wielkiej Brytanii 2
C8 System opieki zdrowotnej w Stanach Zjednoczonych 2
C9 Epidemie 2
C10 Choroby cywilizacyjne - nowe sposoby leczenia 2
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. ćwiczenia praca z tekstami, objaśnianie słownictwa, dyskusja, film, ćwiczenia w parach,
ćwiczenie rozumienia ze słuchu (nagrania audio)
15.2. …
15.3. …
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
EK_U01 wypowiedź ustna, praca pisemna
zaliczenie ustne, sprawdzian
pisemny,
EK_K01 praca własna studenta ocena pracy domowej
03
…
0n
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe
z nauczycielem
akademickim:
udział w wykładach
udział w ćwiczeniach 30
udział w …
udział w …
…
łącznie 30
Samodzielna praca
studenta
przygotowanie do …
ćwiczeń 30
kolokwiów z ćwiczeń 6
…
…
…
łącznie 36
Łącznie 66
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających
bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich 1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze
praktycznym 1
19. Literatura
19.1. Podstawowa
1. Materiały autorskie lektorów
2.
19.2. Uzupełniająca
1.
2.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup
20.2. Materiały do zajęć teksty, audio CD, video
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Studium Języków Obcych
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Studium Języków Obcych, godziny ustalane na początku każdego
semestru dla poszczególnych lektorów
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
EK_U01 Student nie posiada
umiejętności
komunikowania się w
języku angielskim.
Popełnia liczne błędy
gramatycznie i
leksykalne.
Student posiada
umiejętność
podstawowego
komunikowania się w
języku angielskim.
Popełnia błędy
gramatycznie i
leksykalne.
Student posiada
umiejętność
komunikowania się w
języku angielskim.
Popełnia drobne
błędy gramatycznie i
leksykalne.
Student posiada
umiejętność
komunikowania się w
języku angielskim.
Posługuje się
zaawansowanymi
strukturami
gramatycznymi i
bogatym
słownictwem.
EK_K01 Student nie
wykazuje aktywności
w procesie
samodzielnego
uczenia się oraz nie
odrabia prac
domowych.
Student wykazuje w
niewielkim stopniu
aktywność w procesie
samodzielnego
uczenia się oraz
sporadycznie odrabia
prace domowe.
Student wykazuje
aktywność w procesie
samodzielnego
uczenia się oraz
często odrabia prace
domowe.
Student wykazuje
dużą aktywność w
procesie
samodzielnego
uczenia się oraz
zawsze odrabia prace
domowe.
…
Efekt 0n
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: SUROWICE I SZCZEPIONKI
7. Status modułu/przedmiotu: fakultatywny
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii, Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4, Tel. (32)3641621, [email protected]
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): dr hab. n. med. Tomasz Wąsik Prof. SUM, [email protected]
10. Cel kształcenia: Przedstawienie różnych rodzajów szczepionek, sposobów ich opracowania, od projektu badawczego poprzez proces biotechnologiczny po rynek farmaceutyczny oraz ich szczególnej roli na światowym rynku farmaceutycznym i aktualnych problemów związanych z rozwojem wakcyno logii. Zapoznanie ze sposobami pozyskiwania i znaczeniem surowic diagnostycznych i odpornościowych
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Podstawy biochemii, immunologii, biologii mikroorganizmów
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
01 zna i rozumie szczególną rolę surowic i szczepionek na światowym rynku farmaceutycznym oraz aktualną sytuację epidemiologiczną i problematykę w zakresie leczenia chorób zakaźnych, zna działania niepożądane szczepionek i aktualne kontrowersje związane ze szczepieniami ochronnymi, prawidłowo je interpretuje
A.W6 A.W14 A.W29
02 zna i rozumie historię rozwoju wakcynologii, rodzaje i budowę szczepionek przeciwbakteryjnych i przeciwwirusowych, nowe kierunki rozwoju wakcynologii oraz aktualny kalendarz szczepień obowiązkowych i dodatkowych
A.W27 C.W9 C.W31 E.W45
03 zna i rozumie procesy biotechnologiczne wytwarzania szczepionek przeciwbakteryjnych i przeciwwirusowych oraz surowic odpornościowych i diagnostycznych
A.W27 C.W15
04 zna i rozumie rolę adiuwantów jako substancji pomocniczych oraz działania niepożądane związane z ich stosowaniem
C.W27
05 zna zasady opracowania, produkcji, kontroli i dopuszczenia szczepionek na rynek farmaceutyczny
C.W.29 E.W10 E.W28 E.W.29
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia ćwiczenia inne e-learning
laboratoryjne praktyczne
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Podstawy prawne, program szczepień, zasady dystrybucji szczepionek 2
S2 Aktualny kalendarz szczepień obowiązkowych i dodatkowych. Sczepienia dla podróżujących za granicę.
2
S3 Immunologiczne podstawy wakcynologii – cz. I 2
S4 Immunologiczne podstawy wakcynologii – cz. II 2
S5 Nowe kierunki rozwoju wakcynologii oraz szczepionki nowej generacji: podjednostkowe, DNA, jadalne
2
S6 Szczepionki przeciwko odrze, śwince, różyczce 2
S7 Szczepionki przeciwko HIV, HBV i HAV 2
S8 Szczepionki przeciwko HPV 2
S9 Szczepionki przeciwko grypie
S10 Szczepionki przeciwko błonicy, tężcowi i krztuścowi 2
S11 Szczepionki przeciwko gruźlicy, cholerze i durowi brzusznemu 2
S12 Szczepionki przeciw pneumokokom i meningokokom 2
S13 Reakcje niepożądane i odczyn poszczepienne, ruchy antyszczepionkowe 2
S14 Surowice odpornościowe i diagnostyczne 2
S15 Kolokwium zaliczeniowe 2
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminaria Wykład konwersatoryjny, pokaz z użyciem komputera, dyskusja, klasyczna metoda problemowa
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Sprawdzian pisemny opisowy z pytaniami 60% poprawnych odpowiedzi
02 Sprawdzian pisemny opisowy z pytaniami 60% poprawnych odpowiedzi
03 Sprawdzian pisemny opisowy z pytaniami 60% poprawnych odpowiedzi
… Sprawdzian pisemny opisowy z pytaniami 60% poprawnych odpowiedzi
0n Sprawdzian pisemny opisowy z pytaniami 60% poprawnych odpowiedzi
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach 0
udział w seminariach 30
udział w ćwiczeniach 0
obecność na egzaminie 0
konsultacje 2
łącznie 32
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 30
przygotowanie do ćwiczeń 0
przygotowanie do kolokwiów z ćwiczeń 0
przygotowanie do egzaminu ustnego 0
łącznie 30
Łącznie 62
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. "Wakcynologia praktyczna" - Dorota Mrożek - Budzyn, alfa-medica press, 2012, ISBN 978-83-7522-082-7 2. "Wakcynologia" pod. red. Wiesław Magdzik, Danuta Naruszewicz - Lesiuk, Andrzej Zieliński. alfa-medica press, 2007, ISBN 83-88778-26-9
19.2. Uzupełniająca 1. DZIENNIK URZĘDOWY MINISTRA ZDROWIA dnia 31 października 2014 r. Poz. 72 - KOMUNIKAT GŁÓWNEGO INSPEKTORA SANITARNEGO z dnia 30 października 2014 r. w sprawie Programu Szczepień Ochronnych na rok 2015 2. USTAWA z dnia 5 grudnia 2008 r. o zapobieganiu oraz zwalczaniu zakażeń i chorób zakaźnych u ludzi Dz. U. Nr 234, poz. 1570 - OBWIESZCZENIE MARSZAŁKA SEJMU RZECZYPOSPOLITEJ POLSKIEJ z dnia 19 kwietnia 2013 r. Poz. 947 w sprawie ogłoszenia jednolitego tekstu ustawy o zapobieganiu oraz zwalczaniu zakażeń i chorób zakaźnych u ludzi
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 20 osób
20.2. Materiały do zajęć podręczniki, zeszyt
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach, 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach, 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01-05
Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Odpowiedź zawierająca część wymaganych informacji 60 -74%)
Odpowiedź zwięzła, zawierająca większość 75 – 89%) wymaganych informacji
Odpowiedź samodzielna, pełna, swobodna i spójna, zawierająca wszystkie (90 – 100%) wymagane informacje
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Analityka medyczna 2. Poziom kształcenia: jednolite studia magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VIII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: BADANIA CYTOGENETYCZNE W PRAKTYCE KLINICZNEJ
7. Status modułu/przedmiotu: fakultatywny
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Genetyki Medycznej, ul. Jedności 8 (kampus B), 41-200 Sosnowiec, tel. 32 364 12 45; e-mail: [email protected]
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Jan Kowalski, e-mail: [email protected]
10. Cel kształcenia: Cel ogólny przedmiotu: przekazanie podstaw teoretycznych oraz wiedzy odnośnie zastosowania technik cytogenetyki klasycznej i molekularnej w praktyce klinicznej. Ogólna informacja o przedmiocie: Przedmiot badania cytogenetyczne w praktyce klinicznej zaznajamia studentów z obowiązującymi standardami cytogenetycznymi oraz z technikami powalającymi badać liczbę i strukturę chromosomów w celu określenia prawidłowości kariotypu. Student uczy się rozpoznawać chromosomy na podstawie różnicowych wzorów prążkowych, rozróżniania zmian polimorficznych od aberracji, zostaje zapoznany z technikami molekularnymi wykorzystywanymi w ocenie kariotypu. Intencje nauczyciela akademickiego prowadzącego przedmiot: intencją nauczyciela jest jak najlepsze przekazanie wiedzy w zakresie technik wykorzystywanych w badaniach cytogenetycznych oraz ich praktycznego zastosowania klinicznego.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Pojęcie genu; organizacja genomu człowieka; budowa i funkcja chromosomu; klasyfikacja i morfologia chromosomów człowieka; typy chromatyny; mitoza, mejoza i ich znaczenie genetyczne; podstawowe pojęcia z dziedziny cytogenetyki; pojęcie aberracji chromosomowych, typy aberracji chromosomowych; determinacja płci; typy i mechanizmy dziedziczenia.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów
kształcenia dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Student potrafi wskazać standardy, których należy przestrzegać podczas wykonywania badania cytogenetycznego oraz porównać normy obowiązujące w Polsce i innych krajach UE.
K_W17 K_W18 K_W24 K_W34 K_W38 K_U38 K_U41
M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W08 M2_W10 M2_W11 M2_W12 M2_U01 M2_U03 M2_U04 M2_U05 M2_U07 M2_U08 M2_U10
02 Student zna klasyczne techniki cytogenetyczne (hodowli, K_W12 M2_W02
barwień), potrafi interpretować wyniki badań uzyskanych po zastosowaniu technik cytogenetyki klasycznej. Potrafi dobrać rodzaj technik badawczych (hodowla komórkowa, barwienie) oraz poziom analizy (ilość płytek metafazowych, rozdzielczość prążkowa) do wskazania do wykonania badania kariotypu.
K_W13 K_U07 K_U10 K_U23 K_U34 K_U36 K_U40 K_K10 K_K11
M2_W03 M2_W06 M2_W07 M2_U01 M2_U02 M2_U03 M2_U04 M2_U05 M2_U06 M2_U07 M2_U08 M2_U13 M2_U14 M2_K02 M2_K01
03 Student zna molekularne techniki wykorzystywane w diagnostyce cytogenetycznej i potrafi interpretować wyniki badań molekularnych.
K_W12 K_W13 K_U10 K_U22 K_U36 K_U40 K_K10 K_K11
M2_W02 M2_W03 M2_W06 M2_W07 M2_U01 M2_U02 M2_U04 M2_U05 M2_U06 M2_U07 M2_U08 M2_U13 M2_U14 M2_K02 M2_K01
04 Student potrafi rozróżniać chromosomy o różnej rozdzielczości prążkowej oraz rozpoznawać aberracje chromosomowe i zmiany polimorficzne w chromosomach w oparciu o wzór prążków G.
K_W03 K_W13 K_U23 K_U36 K_K10
M2_W02 M2_W03 M2_W07 M2_U01 M2_U02 M2_U03 M2_U04 M2_U05 M2_U07 M2_U08 M2_K02
05 Student odróżnia aberracje strukturalne proste od złożonych oraz mozaikowatość od chimeryzmu. Zna przykłady zespołów związanych z disomią jednorodzicielską i niestabilnością chromosomową oraz zaburzeniami imprintingu genomowego.
K_W09 K_U23 K_K11
M2_W01 M2_W02 M2_U02 M2_U04 M2_U05 M2_U07 M2_U08 M2_K01
06 Student potrafi zanalizować wynik badania cytogenetycznego i zaproponować dalsze postępowanie diagnostyczne.
K_W24 K_U23
M2_W03 M2_W05
K_U40 M2_U01 M2_U02 M2_U04 M2_U05 M2_U07 M2_U08 M2_U13 M2_U14
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
05 x
06 x
07 x
08 x
14. Treści programowe
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Polskie normy obowiązujące w badaniach cytogenetycznych vs. normy obowiązujące w innych krajach UE.
2
S2 Identyfikacja chromosomów o różnej rozdzielczości prążków G w oparciu o analizę płytek metafazowych.
2
S3 Omówienie i porównanie technik hodowli limfocytów, amniocytów, trofoblastu, fibroblastów skóry, szpiku do badań cytogenetycznych.
2
S4 Techniki cytogenetyki klasycznej cz I (barwienie prążków euchromatynowych, zasady analizy preparatów po barwieniu).
2
S5 Techniki cytogenetyki klasycznej cz II (barwienie prążków heterochromatynowych, barwienie AgNOR, zasady analizy preparatów po barwieniu).
2
S6 Główne założenia technik molekularnych. Fluorescencyjna hybrydyzacja in situ i jej wykorzystanie w cytogenetyce klinicznej
2
S8 Wybrane techniki cytogenetyki molekularnej oparte o FISH i ich zastosowania w praktyce klinicznej. Zasady interpretacji wyników.
2
S9 Techniki cytogenetyki molekularnej oparte o PCR. Zasady interpretacji wyników.
2
S10
Analiza wskazań do wykonania badania kariotypu pod kątem aberracji liczbowych oraz przegląd wybranych przypadków klinicznych. Problem mozaikowatości i disomii jednorodzicielskiej w praktyce klinicznej. Elementy poradnictwa genetycznego.
2
S11 Analiza wskazań do wykonania badania kariotypu pod kątem aberracji strukturalnych oraz przegląd wybranych przypadków klinicznych. Chromosomy markerowe – trudny problem diagnostyczny.
2
S12 Zmiany polimorficzne w chromosomach oraz „aberracje” bez konsekwencji fenotypowych. Rozróżnianie zmian polimorficznych od aberracji.
2
S13 Zapis i interpretacja wyników badań cytogenetycznych wykonywanych technikami: GTG, FISH, CGH oraz array-CGH.
2
S14 Markery cytogenetyczne w diagnostyce onkologicznej. Zmiany w kariotypie a 2
rokowanie.
S15 Referaty studentów polegające na analizie ciekawych przypadków literaturowych.
2
Łącznie 30 godzin 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium Seminarium z wykorzystaniem prezentacji multimedialnej, dyskusja, referat, film, pokaz, zadania problemowe.
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
02 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
03 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
04 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
05 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
06 Obecność na zajęciach, aktywny udział w dyskusji, rozwiązanie zadań problemowych, przygotowanie referatu na zadany temat.
Udział w dyskusji, wygłoszony referat oraz 50% poprawnie udzielonych odpowiedzi ustnych.
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30h
konsultacje 2h
łącznie 32h
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 30h
łącznie 30h
Łącznie 62h
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2 (średnio 2,3)
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1 (średnio 1,2)
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym 1 (średnio 1,1)
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Srebniak MI, Tomaszewska A. Badania cytogenetyczne w praktyce klinicznej. PZWL 2008
2. E. Tobias, M. Connor, M. Ferguson-Smith. “Genetyka medyczna”. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, 2013.
3. Jorde LB i in. Genetyka medyczna, Elsevier Urban&Partner, 2013.
4. Drewa G, Ferenc T. Genetyka medyczna. Podręcznik dla studentów. Elsevier Urban&Partner 2011
5. Shaffer LG, Slovak ML, Campbell LJ, eds (2009) ISCN 2009: An International System for Human Cytogenetic
Nomenclature. Basel, S. Karger.
19.2. Uzupełniająca 1. Wybrane artykuły naukowe polsko- lub angielskojęzyczne wskazywane na bieżąco przez asystentów 2. Gardner RJM, Sutherland GR, Shaffer LG. Chromosome Abnormalities and Genetic Counseling. Oxford University Press, 2011.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 20 osób
20.2. Materiały do zajęć preparaty cytogenetyczne przedstawiające różne techniki barwienia chromosomów, preparaty po fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ, wydrukowane płytki metafazowe przedstawiające kariotypy prawidłowe oraz z różnymi aberracjami liczbowymi i strukturalnymi chromosomów, wydrukowane schematy służące do analizy mechanizmów powstawania aberracji chromosomowych, zestawy nieprawidłowych ideogramów służące do rozpoznawanie poszczególnych aberracji strukturalnych, wydrukowane wyniki analiz technikami CGH, array-CGH i MLPA
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Sala seminaryjna wewnątrz Katedry i Zakładu Genetyki Medycznej, ul Jedności 8, Kampus B (III p.)
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Pokój asystentów i adiunktów, godzina konsultacji jest ustalana ze studentami tak, aby nie kolidowała z ich planem zajęć oraz obowiązkami pracowników.
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Brak znajomości standardów obowiązujących w badaniach cytogenetycznych.
Student zna podstawowe zalecenia dotyczące funkcjonowania laboratorium cytogenetycznego.
Student zna większość standardów dotyczących postępowania z materiałem do badań, poszczególnych etapów wykonywania badania, zasad oceny jakości preparatów.
Student dodatkowo zna zasady wewnętrznej i zewnętrznej kontroli jakości badań w laboratorium cytogenetycznym oraz minimalne standardy dotyczące skuteczności metod badań cytogenetycznych.
Efekt 02
Brak dostatecznej znajomości technik hodowli komórek do badań cytogenetycznych, klasycznych technik barwienia chromosomów oraz znajomości zasad analizy cytogenetycznej.
Student potrafi wymienić typy hodowli komórek do badań cytogenetycznych oraz omówić hodowle prowadzone rutynowo, zna podstawowe techniki klasycznego barwienia chromosomów i potrafi interpretować wyniki barwienia oraz zna podstawowe zasady analizy cytogenetycznej.
Student potrafi krótko scharakteryzować hodowle inne niż prowadzone rutynowo, zna wszystkie klasyczne techniki barwienia chromosomów, potrafi interpretować wyniki barwienia oraz dobrać ilość analizowanych płytek i odpowiednią rozdzielczość prążkową
Student potrafi bezbłędnie dopasować techniki badań chromosomów do omawianych przypadków literaturowych, bardzo dobrze ocenia rozdzielczość prążkową chromosomów oraz interpretuje wyniki badań, potrafi omówić więcej niż jedną procedurę wybarwiania prążków
chromosomów dla większości badań.
R.
Efekt 03
Student wykazuje brak dostatecznej znajomości technik molekularnych wykorzystywanych w diagnostyce cytogenetycznej i nie potrafi poprawnie interpretować wyników badań opartych o techniki molekularne.
Student posiada podstawową wiedzę na temat technik molekularnych wykorzystywanych w diagnostyce cytogenetycznej , potrafi dokonywać interpretacji prostych wyników.
Student wykazuje się dobrą wiedzą na temat technik molekularnych wykorzystywanych w diagnostyce cytogenetycznej, potrafi zinterpretować większość wyników, także analiz opartych o techniki CGH, array-CGH i MLPA.
Student posiada bardzo dużą wiedzę na temat technik molekularnych wykorzystywanych w diagnostyce cytogenetycznej, potrafi bardzo dobrze interpretować wyniki badań molekularnych oraz potrafi powiązać wyniki uzyskane drogą klasycznej diagnostyki cytogenetycznej z wynikami badań molekularnych (FISH, M-FISH, micro-FISH, CGH, array-CGH, MLPA).
Efekt 04
Student nie potrafi rozróżnić najbardziej charakterystycznych chromosomów (1, 2, 21), nie rozróżnia poszczególnych aberracji chromosomowych oraz nie potrafi wskazać polimorficznych regionów w chromosomach w oparciu o wzór prążków G.
Student potrafi rozróżnić chromosomy z grup A, D i G w oparciu o wzór prążków G, rozpoznaje podstawowe aberracje chromosomowe liczbowe i strukturalne oraz potrafi wskazać polimorficzne regiony w chromosomach
Student rozróżnia większość chromosomów, rozpoznaje większość aberracji liczbowych i strukturalnych chromosomów i potrafi powiązać je z określonym zespołem klinicznym, potrafi odróżnić zmianę polimorficzną od aberracji.
Student rozróżnia wszystkie chromosomy, potrafi wytypować płytkę metafazową do analizy wykorzystując całą zdobytą wiedzę, potrafi dodatkowo rozpoznawać bardziej złożone aberracje strukturalne chromosomów oraz posiada bardzo dużą wiedzę na temat polimorfizmu chromosomów.
Efekt 05
Student nie posiada podstawowej wiedzy odnośnie aberracji liczbowych i strukturalnych chromosomów oraz mechanizmy ich powstawania. Nie odróżnia mozaikowatości od chimeryzmu.
Student posiada dostateczną wiedzę odnośnie aberracji liczbowych i strukturalnych chromosomów, potrafi wskazać i krótko scharakteryzować mechanizmy powstawania aberracji liczbowych oraz większości aberracji strukturalnych. Potrafi wskazać różnice
Student posiada dobrą wiedzę odnośnie aberracji liczbowych i strukturalnych chromosomów, potrafi wyjaśnić mechanizmy powstawania wszystkich aberracji liczbowych i prostych aberracji strukturalnych chromosomów.
Student posiada bardzo dobrą wiedzę odnośnie aberracji liczbowych i strukturalnych chromosomów, potrafi wyjaśnić mechanizmy powstawania wszystkich aberracji liczbowych oraz prostych i złożonych aberracji strukturalnych chromosomów. Potrafi
pomiędzy mozaikowatością i chimeryzmem. Zna pojęcie niestabilności chromosomowej.
Potrafi wskazać różnice pomiędzy mozaikowatością i chimeryzmem oraz dokładnie omówić mechanizmy ich powstawania. Zna pojęcie niestabilności chromosomowej i potrafi wskazać jej konsekwencje.
wskazać różnice pomiędzy mozaikowatością i chimeryzmem, dokładnie omówić mechanizmy ich powstawania oraz zasady analizy cytogenetycznej w przypadku stwierdzenia mozaikowatości w badanym materiale. Zna pojęcie niestabilności chromosomowej, potrafi wskazać jej konsekwencje kliniczne z uwzględnieniem nazw zespołów spowodowanych niestabilnością chromosomową.
Efekt 06
Student nie zna podstawowych zasad zapisu kariotypu, nie potrafi poprawnie wykonać zapisu kariotypu oraz dokonać jego poprawnej interpretacji.
Student potrafi zapisać kariotyp prawidłowy, zna podstawowe symbole i zasady zapisu wszystkich aberracji liczbowych i ważniejszych aberracji strukturalnych chromosomów, potrafi dokonywać interpretacji prostych zapisów.
Student zna większość symboli używanych w zapisie kariotypu po barwieniu GTG oraz po zastosowaniu technik molekularnych, potrafi zapisywać kariotyp na podstawie opisu, dobrze interpretuje większość zapisów, potrafi wskazać większość błędów w zapisie.
Student posiada szeroką wiedzę odnośnie zasad zapisu kariotypu, bezbłędnie (lub z niewielkimi błędami) dokonuje zapisów kariotypu, słownych opisów zapisu kariotypu oraz potrafi wyszczególnić błędy w zapisie. Trudności nie sprawia mu zapis wyniku badań przy wykorzystaniu technik cytogenetyki molekularnej (FISH, CGH, array-CGH) oraz zapis zmian polimorficznych w chromosomach.
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta modułu/przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: analityka medyczna
2. Poziom kształcenia: jednolite magisterskie 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: IV 5. Semestr: VIII
6. Nazwa modułu/przedmiotu: ANALIZA KWASÓW NUKLEINOWYCH W DIAGNOSTYCE KLINICZNEJ
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, email: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. Urszula Mazurek [email protected]
10. Cel kształcenia: Opanowanie przez studenta wiedzy i umiejętności w zakresie zastosowania i planowania strategii badań z wykorzystaniem technik biologii molekularnej w rozwiązywaniu problemów diagnostycznych w różnych patologiach.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Student posiada wiedzę i umiejętności z zakresu biologii molekularnej i genetyki
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Definiuje i opisuje metody badań stosowane w diagnostyce molekularnej
K_W13 M2_W03
M2_W07
02 Wykazuje znajomość i zrozumienie molekularnego podłoża procesów patologicznych
K_W12 M2_W02
M2_W03
03 Planuje proces diagnostyczny z wykorzystaniem technik biologii molekularnej; dobiera metody badań molekularnych stosownie do problemu diagnostycznego, wskazuje metody weryfikacji wyników w przebiegu analizy molekularnej
K_U45
K_U10
M2_U05
M2_U08
04 Interpretuje wyniki analizy molekularnej K_U40 M2_U07
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
W2
W3
W4
W5
W……
Łącznie
14.2. Forma zajęć: seminaria
S1
Biologia molekularna w diagnostyce klinicznej – wprowadzenie do przedmiotu Zasady pracy w laboratorium biologii molekularnej - regulamin pracowni, zasady bezpiecznego
postępowania z odczynnikami szkodliwymi. Zasady przygotowania i pobierania materiału biologicznego od człowieka do badań molekularnych.
2
S2 Zabezpieczanie materiału biologicznego do analizy molekularnej.
2
S3
Diagnostyka molekularna chorób nowotworowych Planowanie założeń i przebiegu analizy ilościowej kwasów nukleinowych w wykrywaniu czynników
infekcyjnych. Przygotowanie materiału molekularnego do badań
2
S4 znaczenie badań genomicznych w badaniach mutacji i polimorfizmów Ocena specyficzności i
wydajności QRT-PCR. Interpretacja wyników dla prób kontrolnych w przebiegu analizy
molekularnej, interpretacja uzyskanych wyników badań ilościowych w analizie kwasów nuleinowych
2
S5 . Enzymy restrykcyjne w analizie RFLP. Techniki elektroforetyczne w analizie kwasów nukleinowych
2
S6 Sekwencjonowanie kwasów nukleinowych metodami : chemiczną, enzymatyczną i pirosekwencjonowania.
2
S7 Diagnostyka molekularna chorób zakaźnych na przykładzie diagnostyki wirusowego zapalenia wątroby
2
S8
Wyznaczanie liczby kopii DNA i RNA w badanym materiale. Znaczenie kontroli endogennej w analizie kwasów nukleinowych. Ilościowe metody analizy kwasów nukleinowych. Zasady
obliczania protokołu amplifikacji z uwzględnieniem stężenia wyjściowego matrycy, kontrole ujemne i
dodatnie w przebiegu analizy molekularnej, zasady optymalizacji warunków chemicznych i termicznych - rozwiązywanie problemu kontaminacji próbek
2
S9 Strategie genotypowania na podstawie analizy DNA. - detekcja DNA z zastosowaniem
hybrydyzacji. Interpretacja uzyskanych wyników 2
S10 Hybrydyzacja in vitro i in situ – rodzaje sond hybrydyzacyjnych 2
S11
Wyznaczanie transkryptomów techniką mikromacierzy oligonukleotydowych. Planowanie
testów screeningowych w badaniach transkryptomicznych.Technika mikromacierzy oligonukleotydowych (zastosowanie w diagnostyce molekularnej, ocena jakości uzyskanych
wyników, analiza i interpretacja wyników)
2
S12 Strategie typowania genów różnicujących tkanki prawidłowe od patologicznych. Interpretacja wyników badań transkryptomicznych
2
S13 Wyznaczanie plejotropowej aktywności cytokin i hormonów i ich znaczenie patogenezie schorzeń
2
S14 Modelowanie aktywności transkrypcyjnej genów zastosowaniem: interferencyjnego RNA, mikroRNA lub czynników epigenetycznych.
2
S15 Diagnostyka molekularna w indywidualizacji leczenia. Strategie interpretacji wyników analizy
molekularnej w medycynie. Rozwiązywanie problemów metodycznych 2
Łącznie: 30 godzin
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia …
C1 .
C2
C3
C4
C…..
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład wykłady informacyjne, wykłady problemowe, wykłady konwersatoryjne
15.2. ćwiczenia ćwiczenia laboratoryjne, pokazy, symulacje, metody przypadków, metody sytuacyjne,
dyskusje dydaktyczne
15.3.
15.4.
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
02 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
03 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
04 Przygotowanie projektu badań
Przedstawienie projektu badań
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
udział w seminariach 29
obecność na teście zaliczeniowym 1
…
łącznie 30
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 20
Przygotowanie projektu 5
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 5
…
…
łącznie 30
Łącznie 60
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Słomski R. (red.): Przykłady analiz DNA. Wydawnictwo Akademii Rolniczej, Poznań 2004
2. Słomski R. (red.): Analiza DNA teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego, Poznań 2008
3. Bal J. (red): Biologia molekularna w medycynie, elementy genetyki klinicznej. PWN, Warszawa 2006
19.2. Uzupełniająca 1. Pierzchalski P, Zazula M, Stój A, Wójcik P, Sińczak-Kuta A, Klimkowska A. Czy onkologiczna diagnostyka
molekularna jest potrzebna? Kardiochirurgia i Torakochirurgia Polska 2009; 6 (1): 65-67
2. Bartkowiak J. Badania molekularne w rozpoznawaniu i różnicowaniu chorób zakaźnych. Przegl Epidemiol
2003;57:381-9
3. Kozak-Cięszczyk M. Diagnostyka molekularna w parazytologii. KOSMOS 2005; 54 (1):49–60
4. Dmitrzak-Węglarz M, Hauser J. Wykorzystanie badań proteomicznych w poszukiwaniu markerów biologicznych dla
chorób psychicznych. Psychiatria 2006; 3 (3):118–127
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup maksymalnie 20 osób
20.2. Materiały do zajęć instrukcje do seminariów - zagadnienia do przygotowania
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8, indywidualne spotkania ze studentami – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5 Na ocenę celującą
Efekt 01 Nie potrafi definiować i
opisywać większości z
omówionych metod
badań stosowanych w
diagnostyce molekularnej
(poniżej 70%
poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym)
Potrafi w stopniu podstawowym
definiować i opisywać większość z
omówionych metod badań
stosowanych w diagnostyce
molekularnej (powyżej 70%
poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Definiuje i opisuje omówione
metody badań stosowane w
diagnostyce molekularnej,
popełnia nieliczne błędy (powyżej
80% poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym)
Bezbłędnie definiuje i opisuje
omówione metody badań
stosowane w diagnostyce
molekularnej (powyżej 90%
poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym)
Efekt 02 Nie zna i nie rozumie
molekularnego podłoża
procesów patologicznych
(poniżej 70%
poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym)
Wykazuje w stopniu podstawowym
znajomość molekularnego podłoża
procesów patologicznych, nie potrafi
wyjaśnić wszystkich aspektów
omawianej tematyki (powyżej 70%
poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Wykazuje znajomość i
zrozumienie molekularnego
podłoża procesów patologicznych,
ma problemy ze zrozumieniem
tylko nielicznych aspektów
tematyki (powyżej 80%
poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Wykazuje znajomość i
zrozumienie molekularnego
podłoża procesów
patologicznych
(powyżej 90% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Efekt 03 Nie potrafi zaplanować
procesu diagnostycznego
z wykorzystaniem technik
biologii molekularnej jak
również dobrać metod
badań molekularnych
stosownie do problemu
diagnostycznego, nie
potrafi wskazać metod
weryfikacji wyników w
przebiegu analizy
molekularnej
(poniżej 70%
poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym,
nie przedstawia projektu
Z trudnością planuje proces
diagnostyczny z wykorzystaniem
technik biologii molekularnej, nie
wszystkie metody badań
molekularnych i metody weryfikacji
wyników dobiera stosownie do
problemu diagnostycznego (powyżej
70% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym, przedstawiony projekt
zawiera błędy lub jest niekompletny,
np. nie zawiera metod weryfikacji)
Potrafi zaplanować proces
diagnostyczny z wykorzystaniem
technik biologii molekularnej,
dobór metod badań molekularnych
i metod weryfikacji wyników
stosownie do problemu
diagnostycznego sprawia mu
niewielkie trudności (powyżej
80% poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym;
przedstawiony projekt jest
kompletny, ale zawiera nieliczne
błędy dotyczące weryfikacji
wyników)
Planuje proces diagnostyczny
z wykorzystaniem technik
biologii molekularnej; dobiera
metody badań molekularnych
stosownie do problemu
diagnostycznego, potrafi
wskazać bezbłędnie metody
weryfikacji wyników w
przebiegu analizy
molekularnej
(powyżej 90% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym, przedstawiony
projekt jest w pełni kompletny
i bezbłędnie przygotowany)
badań lub projekt jest
przygotowany w całości
błędnie)
Efekt 04 , nie potrafi interpretować
wyników analizy
molekularnej (poniżej
70% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
nie zawsze prawidłowo interpretuje
uzyskane wyniki
(przedstawia niekompletne
sprawozdania, powyżej 70%
poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
interpretuje uzyskane wyniki
(powyżej 80% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
interpretuje uzyskane wyniki
(, powyżej 90% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)