limitazioni all’uso di sostanze fumiganti, nuovo...
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Problemi recenti
Limitazioni all’uso di sostanze fumiganti
Nuovo regolamento agrofarmaci
Non completa resistenza di piante innestate
Progetto cofinanziato dal
programma LIFE+
Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Prof. Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi Angelo Garibaldi -------- UniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitUniversitàààààààà di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino di Torino
Problematiche emergenti su pomodoro innestato
Le alterazioni causate da
Phytophthora nicotianae e
Rhizoctonia solani sono
state osservate su piante
innestate e trapiantate da
pochi giorni o, comunque
mai oltre le 5-6 settimane
dall’impianto della coltura.
Colletotrichum coccodes è
responsabile di alterazioni
radicali anche di piante
innestate. Gli attacchi sono
visibili a cominciare dalla 9
settimana dal trapianto.
Phytophthora nicotianae
Rhizoctonia solani
C. coccodes
Resistenza dichiarata
Fusarium oxysporum f.sp.
lycopersici
Verticillium dahliae
F. oxysporum f.sp. radicis-
lycopersici
Pyrenochaeta lycopersici
Nematodi
Effetto dell'impiego di diversi portainnesti in terreni naturalmente
infetti da Colletotrichum coccodes e da nematodi galligeni
(Meloidogyne spp.).
Cuo
re di b
uePro
sper
oBrig
eor
Big F
orce
King Kon
gHe Man
Max
ifort
Bea
ufor
t
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
C. coccodes (% apparato radicale infetto) % piante infestate da nematodi
Effetto dell’inoculazione artificiale effettuata mediante immersione
radicale in una sospensione conidica (titolo 1x107 CFU/ml) su
selezioni di Solanum torvum e melanzana cv Black bell espressa
come percentuale di piante infette.
Specie % piante colpite da V.dahliae
Solanum torvum 26
Melanzana cv Black bell 100 Piante di melanzana non innestate 87 Testimone non inoculato 0
Isolati di Isolati di V. V. dahliaedahliae ottenuti da ottenuti da
portainnesto di marza di piante di portainnesto di marza di piante di
melanzana innestate su melanzana innestate su S. S. torvumtorvum
0
20
40
60
80
100
120
Dinero Camel
Force
Macis Siltosa Strog Tosa RS 841
portainnesto
Phytophthora capsici
Rhizoctonia solani
Reazione di differenti portainnesti a Phytophthora capsici
e Rhizoctonia solani in condizioni controllate.
Portainnesto Genotipo
Dinero Hybrid F1
Camel Force C.moschata x C.maxima
Macis Hybrid from Lagenaria
Siltosa C.moschata x C.maxima
Strog Tosa C.moschata x C.maxima
RS 841 C.moschata x C.maxima
0
20
40
60
80
100
120
Dinero Camel
Force
Macis Siltosa Strog
Tosa
RS 841
Rootstock
Dis
ease index
Phytophthora capsici
Rhizoctonia solani
Reazione di differenti portainnesti di cucurbitacee a
Phytophthora capsici e Rhizoctonia solani in condizioni
controllate
Portainnesto Genotipo
Dinero Ibrido F1
Camel Force C.moschata x C.maxima
Macis Hybrid from Lagenaria
Siltosa C.moschata x C.maxima
Strog Tosa C.moschata x C.maxima
RS 841 C.moschata x C.maxima
Portainnesti
Ind
ice
di
ma
latt
ia
Reazione di differenti portainnesti di pomodoro a F.
oxysporum f.sp. lycopersici Razza1 in condizioni controllate
Cultivar
Suscettibilità di diversi portainnesti a diversi isolati di F.oxysporum
f.sp.lycopersici
Fol Panero 6 Fol DMDS Fol Pallara Fol SIS Sardegna
IM0-
100 R°
IM0-
100 R
IM0-
100 R
IM0-
100 R
He-man 8,33 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R
Maxfort 4,17 R 0,0 R 0,0 R 8,3 R
Beaufort 4,17 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R
Unifort 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R
Natalya 25,00 PR 0,0 R 0,0 R 16,7 PR
Spirit 0,00 R 4,2 R 0,0 R 4,2 R
Arnold 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R
500292 0,00 R 0,0 R 0,0 R 0,0 R
Cuor di Bue* 79,17 HS 62,5 HS 83,3 HS 75,0 HS
°°ReazioneReazione = R = R =resistente=resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto su; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibilescettibile
Reazione di differenti portainnesti di pomodoro a F.
oxysporum f.sp. radicis-lycopersici (FORL)e Verticillium
dahliae in condizioni controllate
°°ReazioneReazione = R = R =resistente=resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto su; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibilescettibile
Cultivar I.M. 0-100 Reazione
He Man 0,0 R
Maxfort 0,0 R
Beaufort 0,0 R
500292 0,0 R
Nathalia 0,0 R
Arnold 0,0 R
Spirit 0,0 R
Cuor di bue 66,7 HS
Cultivar I.M. 0-100 Reazione
He Man 0,0 R
Maxfort 0,0 R
Beaufort 0,0 R
500292 0,0 R
Nathalia 0,0 R
Arnold 0,0 R
Spirit 0,0 R
Cuor di bue 45,0 S
Suscettibililità a FORL Suscettibililità a V.dahliae
Biofumigazione
Come si applica
Efficacia
Limiti
Integrazione con altri metodi
Effetto dell’adozione del sovescio con Brassica juncea ISCI20 sulle infezioni di Verticillium dahliae su melanzana.
Testimone Testimone +
pacciamatura
B. junceaB. juncea +
pacciamatura
trapianto 04/07
trapianto 26/07
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
% piante infette
b
ab
a
b
F. oxysporum f. sp.
conglutinans
F. oxysporum f. sp.
raphani
F. oxysporum
f.sp. matthioli
Specie ATCC
16600
Fus Vale
5/04
Fus
Ruc
6
ATCC
64105
Fus Ruc
13/03
Fus
Ruc 9A
ATCC
16602
Brassica juncea (ISCI 61) S R R° PR R R R
Brassica juncea (ISCI 99) HS R R R R R R
Brassica juncea (ISCI 20) HS R R R R R PR
Eruca sativa (Nemat) HS S S S S S PR
Brassica nigra (ISCI 27) HS R PR HS HS R R
Crambe abissinica HS S PR HS HS S R
Rapistrum rugosum HS PR PR S S PR R
Brassica carinata (ISCI 7) S R R R R R R
Lepidium campestre (ISCI 15) S R R S R R R
Lepidium sativum (ISCI 101) S S PR S S PR PR
Brassica rapa (Silla) HS PR PR S PR PR S
Diplotaxis tenuifolia HS PR PR S S PR R
Sinapis alba HS R R PR R R PR
Barbarea verna (ISCI 100) R R R PR HS R R
Rapistrum rugosum (ISCI 03) HS PR R S S PR R
Brassica juncea (Poggiolo) HS R R R PR R PR
Sinapis arvensis (Iberina) HS PR R S PR R R
°°R= resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; R= resistente; PR = parzialmente resistente; S = suscettibile; HS = molto suscettibileHS = molto suscettibile
Suscettibilita’ di brassicacee utilizzate nella biofumigazione
a Fusarium oxysporum f.sp. raphani, conglutinans e
matthioli.
Resistenza genetica
Cultivar resistenti ed esempi pratici
Elenco delle cultivar di lattuga resistenti a
Fusarium oxysporum f.sp. lactucae Razza 1
Cv di lattuga resistenti a F.oxysporum f.sp. lactucae razza1 Ditta sementiera
Edmonton, Antigua, Campari, Gentilina Rs 2735, Luberon, Red salad bowl,
Casabella Rs 8886535, Bionda di Parigi
Royal Sluis
Lentissima a montare, Salad bowl rossa Agrisem
Lattuga Lesolina, Rubin Asgrow
Rubin, Duna, Romabella Olter
ISI 45036, ISI 45268, ISI 45270, ISI 45903, ISI 44272, ISI 45124, ISI 44038,
Gentilina, ISI 49999, ISI 45125
ISI sementi
Bentley, Irazu, Teide, Solace, Bavert, Rebato Nunhems
Romana lentissima a montare, Romana Grettona Four
Lattuga Bionda Parigi Franchi
Signorella, Lentissima a montare 3 La SemiOrto
1) Tutte le cultivar di lattuga tipologia cappuccina sono molto
suscettibili;
2) Il 30% delle cv di lattuga della tipologia batavia sono resistenti;
3) Il 70% delle cv di lattuga “lollo”hanno un buon livello di resistenza;
4) variabile è il comportamento delle varietà della tipologia romana.
Reazione °°di diverse cv agli isolati di
F. oxysporum
f. sp.
conglutinans
f. sp. raphani Codice Specie cv
ATCC
16600
FUS RUC
6
ATCC
64105
FUS
RUC
13/03
FUS
RUC
9/03
2\03 Diplotaxis
tenuifolia
Rucola
selvatica MS R MS PR PR
15\03 Diplotaxis
tenuifolia
Selvatica
extra S MS MS MS PR
20\03 Diplotaxis
tenuifolia
Foglia frastagliata
SAZH789
MS PR MS PR PR
6\04 Diplotaxis
tenuifolia
Foglia
frastagliata S - MS PR PR
8\04 Eruca sativa
Rucola coltivata
S - S MS MS
19\03 Eruca
sativa
Foglia
largaSAAL20
5
S MS S MS MS
22\03 Eruca sativa
Foglia lobata SAAL110
S - S MS MS
MS99 Diplotaxis
tenuifolia - PR PR PR R R
MS 02 Diplotaxis
tenuifolia - S PR MS PR PR
Reazione di diverse cultivar di rucola a diversi isolati di Fusarium
oxysporum ff. spp conglutinans e raphani
(°°)Reazione R = Resistente (indice di malattia compreso tra 1-10); PR = parzialmente resistenti (indice di malattia compreso tra 11-30);
MS = mediamente suscettibile (indice di malattia compreso tra 31-60); S = Suscettibile (indice di malattia compreso tra 61-100).
LOTTA BIOLOGICA
0,05,0
10,015,020,025,030,035,040,045,050,0
FC-6
B 1
X10
7
FC-9
B 1
X10
7
FC-2
4B 1
X107
AC-M
SA35 1
X107
Serra
tia 1
X107
FC-7
B 1
X10
7
FC-8
B 1
X10
7
FC-6
B 1
X10
8
FC-9
B 1
X10
8
FC-2
4B 1
X108
AC-M
SA35 1
X108
Serra
tia 1
X108
FC-7
B 1
X10
8
FC-8
B 1
X10
8R
S (3g/
l)
Ced
omon
7.5
x106
Testim
one
inoc
ulat
o
Testim
one
sano
Prova 1 con ATCC 64105
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
FC-6
B 1
X10
7
FC-9
B 1
X10
7
FC-2
4B 1
X107
AC
-MS
A35
1X
107
Ser
ratia
1X
107
FC-7
B 1
X10
7
FC-8
B 1
X10
7
FC-6
B 1
X10
8
FC-9
B 1
X10
8
FC-2
4B 1
X108
AC
-MS
A35
1X
108
Ser
ratia
1X
108
FC-7
B 1
X10
8
FC-8
B 1
X10
8R
S (3
g/l)
Cedo
mon
7.5
x106
Testim
one
inoc
ulato
Testim
one
sano
Prova 2 con ATCC 16600
I diversi batteri - ottenuti
da un substrato di lana di
roccia riciclato da un
sistema fuorisuolo -sono
stati applicati per
miscelazione al terreno 7
giorni prima del trapianto
della rucola.
Indice di malattia 0-100
Indice di malattia 0-100
Efficacia di diversi isolati batterici nei confronti della
tracheofusariosi della rucola causate da Fusarium oxysporum f. sp.
conglutinans (ATCC16600) e f. sp. raphani (ATCC64105)
Sintomi: alterazione dell’apparato radicale e del colletto, rapido
avvizzimento e morte della pianta.
Il patogeno può colpire anche la parte epigea della
pianta, arrestandone lo sviluppo.
Marciume dei frutti in campo e in conservazione.
Attacchi emergenti di Phytophthora capsici su zucchino.
Difesa dello zucchino da Phytophthora capsici
(anno 2008-2009)
Tesi TrattamentoDose Applicazione in vivaio
(miscelazione al terriccio)*
Applicazione
al trapianto**ml o g/l
Testimone inoculato - - - -
Serenade Bacillus subtilis 0,058 Si Si
Rootshield Trichoderma harzianum 0,046 Si Si
Remedier T.harzianum +T.viride 0,04+0,04 Si Si
Cedomon Pseudomonas chlororaphis 0,087 Si Si
Micostop Streptomyces griseoviridis 0,033 Si Si
Radimix
Streptomyces+Trichoderma +N
organico 3% 1 Si Si
Previcur propamocarb 5,32 ml/m2** - Si
Cilus Plus Bacillus velenzensis 0,016 Si Si
Bion Acibenzolar S methil 0, 025 Si Si
Alliette Fosetyl Al 1,6 Si Si
*Trattamento al terriccio alla semina, 14 e 7 giorni prima del trapianto della coltura, volume d’acqua di
1 l /alveolo/cv. ** Trattamento degli alveoli al trapianto della coltura (volume d’acqua di 5 l/m2)
•Inoculazione artificiale di P.capsici (100g/m2) alla stesura dei teli;
•Disegno sperimentale: 3 replicazioni a blocchi randomizzati, 10 piante / replicazione,
occupando 5 m2 / parcella;
• I dati sono stati sottoposti all’analisi della varianza (ANOVA) e al test di Duncan (P<0,05).
Effetto di diversi microrganismi nei confronti di
Phytophthora capsici su zucchino (prova in campo 2008)
Trattamento Microrganismo Dose p.a. g/l
Percentuale
piante morte
cv Xsara (cv a
frutto Scuro)
Percentuale
piante morte
cv Altea (cv a
frutto chiaro)
Testimone
inoculato- - 58,3 cd* 35,42 b*
Serenade Bacillus subtilis 0,058 42,7 abcd 30,21 b
RootshieldTrichoderma
harzianum 220,046 55,2 bcd 51,04 b
RemedierT.harzianum
+T.viride0,04+0,04 64,6 d 39,58 b
CedomonPseudomonas
chlororaphis0,087 36,5 abcd 42,71 b
MicostopStreptomyces
griseoviridis0,033 27,1 abc 41,67 b
Radimix
Streptomyces+Tricho
derma +N
organico 3%
1 16,7 ab 29,17 b
Previcur Propamocarb 5,32 ml/m2 7,3 a 8,33 a
Effetto di diversi microrganismi nei confronti di
Phytophthora capsici su zucchino
Tesi Trattamento
Dose
p.a.
g/l
Indice di malattia al 3/09/09
Cv Lipari (cv a frutto
chiaro)
Cv Syros (cv a
frutto scuro)
Testimone inoculato - - 54,2 c 41,7 ab
Serenade Bacillus subtilis 0,58 54,2 c 45,8 ab
Cilus Plus Bacillus
velenzensis
0,016 45,8 bc 58,3 b
Remedier T.harzianum
+T.viride
0,01
+0,01
25,0 ab 33,3 ab
Bion Acibenzolar S
methil
0, 025 29,2 ab 20,8 a
Micostop Streptomyces
griseoviridis
0,033 29,2 ab 50,0 ab
Alliette Fosetyl Al 1,6 54,2 c 33,3 ab
Radimix Streptomyces+Tri
choderma +N
organico 3%
1 37,5 abc 25,0 ab
Previcur propamocarb 5,32
ml/m2
12,5 a 15,0 a
CONCIA DEI SEMI
Metodi alternativi di concia per il contenimento di
Ascochyta pisi su seme di pisello
In prove condotte in ambiente protetto in vaso e su bancale attraverso concia
umida o secca di seme naturalmente infetto (tasso di infezione: 20%) sono stati
saggiati i seguenti trattamenti, valutando % di emergenza, incidenza e indice di
malattia:
• impiego di acqua calda, vapore aerato, elettroni;
• uso di formulati commerciali a base di 4 microorganismi (Bacillus subtilis,
Pseudomonas chlororaphis, Fusarium oxysporum e Streptomyces griseoviridis);
• applicazione di isolati di microrganismi selezionati per la loro capacità
antagonistica;
• concia con estratto di timo e farina di crucifere;
• impiego di induttori di resistenza.
Metodi alternativi di concia per il contenimento di
Ascochyta pisi su seme di pisello
Trattamento fisico Parametri Efficacia
Acqua calda 48 °C
10 min
+
Vapore aerato 74 °C
90 % U.R. 2 min
+
Elettroni 140 kV
12 kGy
+
Efficacia:
+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram)
++ effetto apprezzabile, ma inferiore al trattamento chimico
+ effetto non apprezzabile
Metodi alternativi di concia per il contenimento di Ascochyta pisi su seme di
pisello
Efficacia:
+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram)
++ effetto apprezzabile, ma inferiore al trattamento chimico
+ effetto non apprezzabile
Microrganismo (formulato) Dose/10 g seme Efficacia
Bacillus subtilis (FZB 24) 100 mg +
Streptomyces griseoviridis(Mycostop)
50 mg +
Fusarium oxysporum 251/2 100 mg +
Bacillus subtilis (MBI 600) 100 mg +
Bacillus subtilis (Serenade) 100 mg +
Pseudomonas chlororaphis(BA 2552)
300 µl +
Metodi alternativi di concia per il contenimento di
Ascochyta pisi su seme di pisello
Efficacia:+++ paragonabile al trattamento chimico di riferimento (Thiram); ++ effetto apprezzabile, ma
inferiore al trattamento chimico; + effetto non apprezzabile
Microrganismo/estratto Dose/
concentrazione
Efficacia
Pseudomonas spp. (6 ceppi) 1x108 UFC/ml +
Bacillus spp. (2 ceppi) 1x108 UFC/ml +
Serratia plymuthica 1x108 UFC/ml +
Curtobacterium sp. 1x108 UFC/ml +
Pichia guilliermondii 1x108 UFC/ml +
Burckholderia sp. 1x108 UFC/ml +
Trichoderma viride 1x106 UFC/ml +
Fusarium oxysporum antagonista 1x106 UFC/ml +
Clonostachys rosea IK726 1x109 UFC/g ++
Tillecur (farina brassicacee) 20 % +
Olio di timo 0,1 % +++
Efficacia dell’impiego di microrganismi e diversi fungicidi in trattamenti di concia del seme di lattuga nei confronti della tracheofusariosi.
Trattamento° Dose /g seme Efficacia°°
Bacillus subtilis (Serenade WP) 0,01 mg +
Bacillus subtilis (FZB24) 0,01 mg ±
Bacillus subtilis (MB1 600) 0,01 mg ±
Streptomyces griseoviridis (Micostop) 0,002 mg ±
Fusarium oxysporum 251/2 1x107 CFU* +
Pseudomonas chlororaphis (Cedomon) 0,3 mg ±
Fusarium oxysporum MSA 35 1x107 CFU ++
Mancozeb (Mazeb 80) 4,8 mg ++++
Tiram (Pomarsol 50) 1,5 mg +
Testimone inoculato non trattato - ±
°(±) efficacia rispetto al testimone 0-20%; (+) efficacia rispetto al testimone 21-40%; (++) efficacia rispetto al testimone 41-60%; (+++) efficacia rispetto al testimone 61-80%; (++++) efficacia rispetto al testimone 81-100%;
Integrazioni
Mezzi chimici + solarizzazione
Mezzi chimici + piante resistenti o innestate
Solarizzazione + biofumigazione
Fuori suolo + mezzi biologici….
Rhizoctonia
solaniFORL
FOL
P.
lycopersiciTotale
Testimone
Mycostop
SS
SS + Mycostop
0
10
20
30
40
Effetto dell’applicazione di S. griseoviridis (Mycostop) in combinazione a solarizzazione (SS) sulla % di piante di pomodoro (cv Cuore di bue) colpite da parassiti vascolari, basali e radicali dopo 150 giorni dal trapianto.
% di piante infette
a
ab
b
a
TestimoneTestimone
PyronochaetaPyronochaeta lycopersicilycopersici
FusariumFusarium oxysporumoxysporum f.sp.f.sp.
lycopersicilycopersiciF. F. oxysporumoxysporum f.sp.f.sp. radicisradicis
lycopersicilycopersici
RhizoctoniaRhizoctonia solanisolani
Sfarinato incorporato
nel terreno (g/l)
Periodo di solarizzazione
(settimane)
% piante morte
0 2
4 0 1 2 3 lattuga basilico
X X 100,0 d 11,7 f
X X 77,8 bcd 9,9 ef
X X 97,6 bcd 6,3 bcdef
X X 17,9 ab 0,0 a
X X 100,0 d 4,3 abcde
X X 46,7 abc 2,0 abcd
X X 4,2 a 0,7 abc
X X 19,4 ab 1,8 abcd
X X 97,0 bcd 2,4 abcd
X X 0,0 a 6,3 bcdef
X X 0,0 a 2,0 abcd
X X 0,0 a 0,4 ab
Effetto dell’impiego di farine disoleate di Brassica carinata
applicate da sole o in combinazione con periodi differenti di solarizzazione (45°C ± 2°C) sulla diffusione degli attacchi di
Fusarium oxysporum f. sp. lactucae e f. sp. basilici rispettivamente su lattuga (cv Mehari) e su basilico (cv
Genovese gigante).
La farina La farina èè stata incorporata a due diverse dosi (2 e 4g/l). stata incorporata a due diverse dosi (2 e 4g/l).
Diffusione (% piante infette) ed incidenza (% di apparato
radicale alterato) di attacchi di C. coccodes su pomodoro
allevato su diversi portinnesti in terreni trattati con
metham sodio e cloropicrina.
Principio attivo Dose
(g.p.a./m2)
Portainnesto % apparato
radicale
infetto
% piante
infette/totale
- - “He Man” 59,0 bc* 100,0 d*
- - “Beaufort” 43,3 b 100,0 d
- - “Maxifort” 62,3 bc 100,0 d
metham sodio 96 “He Man” 4,3 a 53,3 b
metham sodio 96 “Beaufort” 2,8 a 86,7 cd
metham sodio 96 “Maxifort” 3,3 a 93,3 d
metham sodio 192 “He Man” 10,2 a 70,0 bc
metham sodio 192 “Beaufort” 7,4 a 100,0 d
metham sodio 192 “Maxifort” 1,2 a 21,7 a
cloropicrina 40 “He Man” 70,0 c 100,0 d
cloropicrina 40 “Beaufort” 46,1 b 100,0 d
cloropicrina 40 “Maxifort” 70,0 c 100,0 d
cloropicrina 20 “He Man” 54,7 bc 100,0 d
cloropicrina 20 “Beaufort” 42,0 b 100,0 d
cloropicrina 20 “Maxifort” 69,3 c 100,0 d
Principio attivo dose
(g p.a/m2)
Portainnesto n°frutti
/pianta
Kg
produzione
/pianta
- - “Maxifort” 113 ab* 6,1 bc*
- - “Beaufort” 99 b 5,6 bc
metham sodio 96 “Maxifort” 160 a 7,8 a
metham sodio 96 “Beaufort” 132 ab 4,9 c
metham sodio 192 “Maxifort” 136 ab 6,9 ab
metham sodio 192 “Beaufort” 138 ab 6,9 ab
cloropicrina 40 “Maxifort” 112 ab 5,8 bc
cloropicrina 40 “Beaufort” 111 ab 5,8 bc
cloropicrina 20 “Maxifort” 110 b 6,1 abc
cloropicrina 20 “Beaufort” 109 b 5,3 bc
Effetto dei diversi trattamenti/strategie sulla produzione
di pomodoro (cv Cuore di bue) allevato su terreno
trattato da diversi principi attivi.
Portainnesto Trattamento con B. juncea
Trattamento q/ha
% apparato
radicale infetto da
C. coccodes
% piante infette da
C.
coccodes
Non innestato - - 97,9 d 100,0 a
“Beaufort” - - 41,7 ab 100,0 a*
“King Kong” - - 60,0 abc 100,0 a
“Brigeor” - - 56,3 abc 100,0 a
“Big Force” - - 76,5 cd 100,0 a
“Maxifort” - - 39,3 ab 100,0 a
“Beaufort” sfarinato 30 43,8 abc 100,0 a
“King Kong” sfarinato 30 60,0 abc 91,7 a
“Brigeor” sfarinato 30 33,3 a 100,0 a
“Big Force” sfarinato 30 55,4 abc 100,0 a
“Maxifort” sfarinato 30 49,9 abc 100,0 a
Non innestato sfarinato 30 95,8 d 100,0 a
Non innestato pellet 30 97,1 d 100,0 a
“Beaufort” pellet 30 41,6 ab 100,0 a
“King Kong” pellet 30 59,1 abc 100,0 a
“Brigeor” pellet 30 48,6 abc 100,0 a
“Big Force” pellet 30 67,8 bcd 100,0 a
“Maxifort” pellet 30 51,8 abc 100,0 a
Effetto del portainnesto del trattamento con sfarinato e pellet di B.
juncea sulla diffusione (% piante infette) ed incidenza (% di apparato
radicale alterato) di attacchi di C. coccodes su “Cuore di bue” innestato
e non innestato.
Conclusioni
La disinfestazione del terreno e dei
substrati resta la pratica di difesa più
complessa e problematica per gli
agricoltori, il settore più critico da
affrontare per l’industria agrochimica e
uno dei temi di ricerca più interessanti e
stimolanti per i ricercatori.