reporte 2 anatomia e histologia humanas
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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES CUAUTITLÁN
DEPARTAMENTO-CIENCIAS BIOLÓGICAS
SECCIÓN-BIOQUÍMICA Y FARMACOLOGÍA HUMANAS
“MANEJO DE TÉCNICAS HISTOLÓGICAS I
NECROPSIA Y TOMA DE MUESTRA PARA PROCESAMIENTO
HISTOLÓGICO”
Anatomía e Histología Humanas
Equipo: 4 Grupo: 1302
Integrantes:
Fuentes Bautista Jesús UrielLuna Flores Oscar Medina Velázquez Laura QuetzallyRivero Alcalá Víctor Daniel
Profesores: Nopal Guerrero TaisVázquez Verónica Fecha: lunes 20 de agosto de 2012
OBJETIVOS
a) Distinguir tipo de corte realizado con distintos instrumentos.
b) Identificar, observar y describir partes anatómicas u órganos.
c) Pasos a seguir en la realización de anestesia por inhalación.
d) Identificar las etapas de la anestesia.
e) Aprender a dividir y subdividir a los órganos.
f) Pasos a seguir en la necropsia de un animal de laboratorio.
g) Aprender a identificar órganos con ayuda de algún modelo o esquema.
h) Aprender a realizar fijaciones y su importancia.
i) Distinguir semejanza o diferencias entre órganos del animal estudiado y el humano.
j) Identificar sistemas y aparatos que componen al animal de estudio.
INTRODUCCIÓN
El término eutanasia deriva del griego: "eu" (bien) y "thánatos" (muerte). Los animales
se sacrifican en los laboratorios o establecimientos de cría por varios motivos:
al final de un experimento o cuando pudieran proseguir con efectos adversos;
para obtener sangre y otros tejidos con un fin científico;
cuando los niveles de dolor, angustia y sufrimiento es probable que sobrepasen
el nivel previsto;
cuando el campo de estudio sea la salud o el bienestar de los animales;
cuando ya no sean aptos para la cría;
animales no utilizados, o aquellos con sus características no adecuadas, por
ejemplo el tipo de animal o el sexo y que por ello no son necesarios.
Los criterios primordiales para la eutanasia en términos de bienestar animal, son que
el método sea indoloro, consiga una rápida inconsciencia y muerte, requiera una
mínima inmovilización, evite la excitación, sea apropiado para la edad, especie y salud
del animal, debe de minimizar el miedo y el estrés en el animal, ser fiable,
reproducible, irreversible, sencillo de administrar (en dosis pequeñas si es posible) y
seguro para el operador. Y en la medida de lo posible, debe ser estéticamente
aceptable para el operador.
Métodos físicos
Estos métodos deben producir la inmediata pérdida de consciencia a través del trauma
físico del cerebro.
Métodos químicos
Muchos anestésicos se utilizan en sobredosis como agentes eutanásicos. Un
anestésico es un agente que produce, de un modo controlado, la ausencia de
percepción de cualquier sensación.
Produce inconsciencia, analgesia y relajación muscular suficiente para realizar los
procedimientos sin dolor.
Agentes inhalatorios
Los agentes inhalatorios son, o bien vaporizados, o bien conducidos como gas hasta
cámaras o circuitos anestésicos. Las cámaras que se utilicen para la distribución de
estos agentes, deben estar diseñadas adecuadamente, de modo que aseguren la
distribución uniforme del gas y la rápida exposición de los animales a una
concentración alta del agente. Su utilización es de gran interés en muchos animales
pequeños, por ejemplo aves, roedores, gatos y perros pequeños (Smith et al. 1986).
Se debe confirmar la muerte.
La anestesia es un acto médico controlado en el que se usan fármacos para bloquear
la sensibilidad táctil y dolorosa de un paciente, sea en todo o parte de su cuerpo y sea
con o sin compromiso de conciencia.
La anestesia general se caracteriza por brindar hipnosis, amnesia, analgesia,
relajación muscular y abolición de reflejos.
Etapas de la anestesia general:
1 . - I nducc ión o ana lges ia :
Empieza cuando se aplica el fármaco y consiste en analgesia y amnesia, se conserva
la actividad refleja y termina cuando se pierde la conciencia.
2 . -Exc i t ac ión o de l i r i o :
Com ienza con l a pe r d ida de l a conc ienc ia . La ac t i v i da d re f l e j a es t á
aumentada, hay respiración irregular, amnesia, pero el paciente puede
presentar delirios, forcejeos… Esta etapa termina cuando la respiración se vuelve
regular.
3 . - Ane s tes ia qu i r ú rg i ca
Com ienza con l a r egu la r i zac ión de l a r es p i rac i ón .
4 . - P a r á l i s i s b u l b a r :
El centro vasomotor y respiratorio del bulbo se deprimen intensamente y la respiración
espontánea se detiene y hay colapso cardiovascular. Si no se toman medidas para
reducir las dosis el paciente fallece rápidamente.
Por ultimo es importante conocer las diferencias y similitudes entre la anatomía de la
rata y la del humano:
Peso Color Ubicación Tamaño #
Cerebro
1300-1400gr
Gris la capa externa, y gris casi negro el interior
Distal, superiorLa corteza cerebral extendida, cubriría entre 1.800 y 2.300 cm2
1
2gr Rosa claro, Distal, superior 6 cm2 1
muy pálido casi blanco
Estomago
Rosa Abdomen25 cm del cardias al píloro y el diámetro transverso es de 12cm.
1
Blanco Abdomen 1
Riñón150 g rojo parduzca Abdomen
Aproximadamente, el tamaño de un puño cerrado.
2
0,71gr Café claro Abdomen 2
Vejiga
En la excavación de la pelvis
350 cc de volumen líquido en su interior
1
transparenteEn la excavación de la pelvis
1
Hígado
2 kg. Rojo pardo
la totalidad de la región del hipocondrio derecho
26 cm (horizontal) por 15 cm (vertical) en sentido anteroposterior, y 8 cm de espesor a nivel del lóbulo derecho.
1
0,139Café muy obscuro
la totalidad de la región del hipocondrio derecho
1,34cc 1
Corazón
300gr Rojo pardo
En la parte inferior del mediastino medio, entre el segundo y quinto espacio intercostal, izquierdo.
Unos 12 cm de longitud, 9 cm de anchura y 6 cm de grosor máximo.
1
1.3grCafé obscuro casi rojo
tóraxEs al tamaño de lo que es el tamaño de su mano.(0,498cc)
1
DIAGRAMA DE FLUJO
Elije el o los organos de tu interes, separalos y
retiralos con cuidado con ayuda de un bisturi y
tijeras.
Colocalo en el vidrio de reloj y lavalo
perfectamente con SSF y con la jeringa
Obten una muestra de 1cc con bisturii, colocalo en la rejilla para fijacion y
etiquetalo.
Colocalo en un frasco gerber que contenga
formol al 10% en buffer de fosfatos y etiqueta tu
frasco
Observa la apariencia externa de la rata.Haz observaciones
Tomar la rata por la cola y colocarla en una campana de
vidrio, anestesiarla con alcohol etilico hasta provocarle la muerte
Se coloca la rata con la parte ventral hacia arriba y se sujeta con cinta adhesiva
Levanta la piel de la zona abdominal con ayuda de una pinza y realiza con el bisturi
una incision en la linea media ventral
Realiza el corte de la linea ventral hacia abajo , observa
e identifica los organos abdominales.
Continua la insicion hasta la zona genital, identifica las
gonadas sexuales.
Regresa a la zona abdominal, identifica el musculo
diafragmatico y cortalo al igual que las costillas con ayuda de unas tijeras de
diseccion.
Continua con el corte de la capa muscular hacia arriba hasta llegar a la traquea.
Corta la piel de la cabeza por la linea media y retirala hacia
los costados, corta los huesos del craneo por la
linea media.
Retira con pinza los nervios craneales coloca el cerebro
en una caja petri. Comparalo con el cerebro humano.
Extrae otros organos y realiza su comparacion
anatomica de aquellos que tambien se tengan en la
coleccion.
METODOLOGÍA
La metodología fue seguida como se indica en el manual, solo se agregó el siguiente
paso en el punto 3:
Si la rata no muere por completo, se procede con el procedimiento de la dislocación
cervical. Se toma al animal de la parte delos hombros con los dedos índice y pulgar
con la cola atorada entre los dedos meñique y anular, y con la otra mano con el dedo
índice y pulgar se toma la cabeza. Se localiza la epiglotis del animal para realizar la
dislocación. Con un jalón, fuerte y único, se tira del cuerpo y de la cabeza al mismo
tiempo para lograr la separación del cerebro con el resto del cuerpo.
Toma una barra de plastilina, realiza un corte con bisturi y
observa la zona de corte, anota tus observaciones.
Toma un trozo de barra de plastilina y realiza un
corte con tijeras de bisturi.
Compara la zona de corte realizada con los
dos instrumentes, anota tus observaciones.
OBSERVACIONES Y RESULTADOS
Eutanasia y Necropsia de una Rata Wistar
Previo al proceso de Eutanasia, se realizó una observación intensiva de la apariencia
física de la rata con la que se trabajaría obteniéndose lo siguiente
Tabla No.1 Apariencia Física de la externa de una rata Wistar
Observaciones
Ojos Redondos rojos color de rubí
Orejas Color rosadas cónicas
Nariz En forma de M rosácea
PelajeLigeramente largo de color ligeramente amarillento,
grueso algo áspero
Afecciones de la piel y/o
heridasCola lastimada de la punta, lesión cerca del ojo izquierdo
Diarrea Eses normales un poco flojas
Sexo Hembra
En el proceso de Eutanasia se observaron las etapas de la Anestesia.
Etapa 1 Analgésica o de relajación. La rata se ve en un estado de relajación, en
calma, perece somnolienta, pero aun despierta (Figura 1).
Figura 1
Rata Wistar en la Primera Etapa de la Anestesia
Etapa 2 Excitación o Delirio. El pulso es rápido y la respiración puede ser irregular
acompañado de una serie de movimientos involuntarios, como levantarse en dos
patas, levantar la cabeza, correr a través de la campana (Figura 2).
Figura 2
Rata Wistar en la segunda Etapa de la Anestesia
Etapa 3. Quirúrgica. La rata se encuentra en un estado total de relajación. Su pulso es
normal y sus latidos son lentos (Figura 3).
Figura 3
Rata Wistar en la tercera Etapa de la Anestesia
A pesar de los datos anteriores, no se logró la muerte de la rata por simple inhalación
de éter etílico, por lo que se procedió a la dislocación cervical, por el método indicado
por las asesoras. Así se le dio muerte si dolor al roedor, es decir, se le practicó la
eutanasia. Entonces se procedió a colocar al objeto de estudio sobre la charola de
disección para comenzar con la misma. Al levantar la piel (Figura 4a) y después el
musculo de la zona (Figura 4b) ventral se pudieron observar los órganos abdominales,
entre ellos el hígado, el estómago, los intestinos por mencionar algunos (Figura 5 y
Tabla No.2). En muchos de estos órganos se observó amplio parecido con los
presentes en el ser humano, tanto en color, como en forma (Tabla No.2).
Tabla No.2 Tabla que recopila las observaciones a los órganos del objeto de estudio y
Órgano Observaciones (color,
medidas, consistencia,
etc.,)
Semejanzas con los
órganos humanos
Baso Negro de
aproximadamente de 1 a 2
cm
Cerebro Grisáceo en forma de nuez No muy parecido, pues el
del ser humano sólo se
divide en dos hemisferios y
el del roedor en 5
Corazón Aun latía, de color rojo
intenso aproximadamente
de 2 x 1.5 cm
Muy parecido en color,
forma y función.
Estómago En forma parecida a una
“U” de un color entre gris y
café, aun lleno de alimento
de 3 x 2.5cm aprox.
Muy parecido al del ser
humano
Glándulas suprarrenales Sobre los riñones, café
oscuro, muy pequeños
Hígado Es el órgano más grande
del cuerpo de la rata, color
vino de gran medida
Muy parecido al del ser
humano
Intestinos De color café claro y muy
largos
Parecidos a los del ser
humano
Ovarios Muy pequeños de color
morado
Parecidos en forma, pero
no en color
Pulmones Color rosa pálido de 3 x 2
cm
Parecidos en color y
forma, pero no en tamaño
en relación con el humano
Riñón En forma de frijol, café
oscuro, pequeños, de 1 a
1.5 cm aprox.
Parecidos en color y
forma, pero no en tamaño
en relación con el humano
Vejiga Color transparente de
forma de gota de aprox. 1
cm
Figura 4 Corte de piel y musculo para ver óganos internos
Figura 5 Órganos internos del objeto de estudio
Toma de muestra y fijación de órganos de rata Wistar
En el equipo se tomó la decisión de extraer el estómago del cuerpo del roedor, para lo
cual se hizo el corte para separarlo del intestino (Figura 6a). Después, al ser necesario
abrir el órgano para tomar la muestra, desprendió un aroma muy fuerte por su
contenido (restos de alimento) (Figura 6b). Dicha muestra fue colocada en una rejilla
de fijación, etiquetado y puesto en un frasco Gerber® con formol al 10% en Buffer de
fosfatos.
Figura 6 Toma de mustra de estómago de rata
a) Separación del estomago b) interior del estómago
Cortes en plastilina
Tras el corte con el bisturí y con las tijeras en la barra de plastilina se observó que el
corte realizado con bisturí casi no lastima ni maltrata el objeto de estudio, cosa que
con las tijeras si sucede
ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Eutanasia y necropsia de una rata Wistar
Primeramente fue observada la rata y se fueron identificando algunos aspectos
superficiales que pueden ser de gran ayuda para predecir si el animal pudiera padecer
alguna enfermedad, golpe interno, heridas o alguna otra lesión que pudiera afectar el
estudio realizado. Después se procedió a la anestesia de la rata, permitiendo observar
las etapas de inducción, excitación, anestesia quirúrgica, aunque ya no se pudo
observar la fase de sueño profundo, ya que el tiempo de exposición ante el éter etílico
fue prolongado, pero suficiente para reconocer la etapa adecuada para comenzar la
realización de la necropsia.
Para comenzar la necropsia fueron de utilidad los conocimientos anteriores respecto a
los cortes anatómicos, ya que para realizar el primer corte se tomo como base un corte
sagital, permitiendo que los órganos no fueran dañados. Se comprobó que la primera
capa está conformada por una capa de tejido epitelial, el cual presentó una pequeña
resistencia ante el bisturí, el cual era de esperarse, sabiendo que está estructurado de
tejido epitelial y tejido conjuntivo adiposo. Una vez pasada esa capa se encontró el
tejido muscular que recubría la parte abdominal y le da soporte a los órganos internos,
observando una gran semejanza ante los esquemas de la rata y el humano,
incluyendo el peritoneo que protege a los órganos y les da un soporte, previniendo que
estos pierdan su posición anatómica.
Una vez cortado el peritoneo se pudieron apreciar algunos órganos tales como el
estómago, intestinos delgado y grueso, hígado, pulmones, vejiga y riñones, los cuales
presentaban un gran parentesco ante los esquemas del humano, tanto en color y
forma, dando a entender que la anatomía de los órganos no es muy distinta y que son
fácilmente reconocibles. El corte sagital se extendió hasta la parte supra posterior de
la cavidad craneal, el cual se requirió de la ayuda de las tijeras, sin importar el daño al
tejido epitelial, ya que la muestra de interés era el cerebro y no podía ser cortada tan
fácilmente. Una vez identificados los sistemas y órganos, se tomó la muestra de
estómago aunque provocó olores desagradables, demostrando que la rata se
encontraba en proceso de degradación de los alimentos el cual también se asemeja al
del humano. Como la muestra presentaba un aspecto blando y de fácil corte, fue
requerido el bisturí para no dañar el tejido epitelial y no rasgar ese tejido. La muestra
fue lavada con SSF para evitar algún resto de alimento u otros componentes
gastrointestinales. Para su fijación fue puesta la muestra en un saco compuesto de
gasas para evitar que pudiese haber pequeñas fracciones flotando, la sustancia
requerida fue el formol al 10% para evitar que las células fueran destruidas por
microorganismos y que ellas mismas tuvieran un proceso de autolisis.
Cortes realizados en plastilina
Los cortes realizados en las barras de plastilina permitieron identificar la utilidad y
zonas en donde pueden ser ocupados algunos instrumentos de corte, tal es el caso
del bisturí, ya que en la barra permitió un corte suave, recto y sin mayores
complicaciones, tomando en cuenta que se tomo una barra delgada, pero al momento
de hacer un corte más profundo, el bisturí perdió esa facilidad, razonando la situación,
nos da a entender que es útil para cortes superficiales y que no son de alta dureza.
Por otro lado al realizar los cortes con las tijeras se comprobó que maltrata demasiado
la muestra, debido a que la longitud de corte no es tan amplia, por lo tanto, requiere de
más cortes. Aunque los cortes realizados a mayor profundidad fueron de mayor
facilidad, al igual que el esfuerzo realizado para el corte fue menor, esto permite saber
que esta herramienta puede ser de mayor utilidad para cortes profundos y con un
grado de dureza mayor, aunque tengan que ser cortes no tan extensos para no causar
lesiones o maltratar muestras.
CONCLUSIONES
Al final de la práctica se aprendió como se utiliza la anestesia por inhalación de gases
en ratas, así como identificar cada fase de la misma observando los síntomas que
mostraba dicho animal, también se aprendió un método de eutanasia.
Posteriormente se aprendió a realizar una necropsia a una rata de laboratorio con lo
cual, cada miembro del equipo tuvo la oportunidad de identificar cada órgano que
compone los diferentes aparatos y sistemas que componen a un ser vivo así como
nombrar e identificar los tejidos que se pudieron observar a simple vista.
Finalmente, todos los miembros del equipo pudieron realizar una correcta extracción
de un órgano específico así como una toma de muestra del mismo.
BIBLIOGRAFÍA
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