Évaluation de calica+ sur la coccidiose chez le poulet de...
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Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair.
Rapport préparé par : Carl Julien, Ph.D., chargé de projets, CRSAD En collaboration avec : Caroline Decaux, M.Sc., agr., responsable R&D, Ceresco Nutrition Yan Martel-Kennes, M.Sc., agr., directeur scientifique, CRSAD
Mars 2019
ÉQUIPE DE RÉALISATION Responsables scientifiques et répondants du projet : Carl Julien et Yan Martel-Kennes, CRSAD Techniciens : Hélène Lavallée Ouvrières : Édith Desmarais et David Matte Stagiaires : Sonia Yacini et Stéphanie Dion Collaborateur : Ceresco Nutrition PARTENAIRES FINANCIERS Ceresco Nutrition Centre de recherche en sciences animales de Deschambault (CRSAD) ÉQUIPE D’ANALYSES ET DE RÉDACTION Carl Julien, Ph.D., CRSAD
Yan Martel-Kennes, M.Sc., agr., CRSAD Caroline Decaux, M.Sc., agr., Ceresco Nutrition SITE EXPÉRIMENTAL Centre de recherche en sciences animales de Deschambault
TABLE DES MATIÈRES
Pages
1. Mise en contexte ......................................................................................................... 1
2. Objectif ........................................................................................................................ 3 2.1 Objectif principal ............................................................................................................ 3 2.2 Objectifs spécifiques ..................................................................................................... 3
3. Méthodologie .............................................................................................................. 3 3.1 Animaux ........................................................................................................................ 3 3.2 Traitements alimentaires ............................................................................................... 4 3.3 Challenge coccidien ...................................................................................................... 6 3.4 Mesures et observations ............................................................................................... 6 3.5 Analyses statistiques ..................................................................................................... 7
4. Résultats et discussion ............................................................................................... 8 4.1 Performances de croissance et mortalité ...................................................................... 8 4.2 Oocystes et coccidiose ............................................................................................... 12 4.3 Ostéodensitométrie et composition corporelle ............................................................ 15
5. Conclusion ................................................................................................................ 18
6. Références ............................................................................................................... 19
TABLE DES TABLEAUX
Pages
Tableau 1. Traitements expérimentaux. ....................................................................................... 4
Tableau 2. Programme alimentaire. ............................................................................................. 4
Tableau 3. Composition et concentrations nutritives de l’aliment de base ................................... 5
TABLE DES FIGURES
Figure 1. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 1 de 0 à 10 jours
d’âge.. ...................................................................................................................................... 8
Figure 2. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 2 de 10 à 20
jours d’âge.. ............................................................................................................................. 9 Figure 3. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 3 de 20 à 36
jours d’âge. ............................................................................................................................ 10 Figure 4. Données de performances zootechniques et mortalités durant l’essai, de 0 à 36 jours
d’âge.. .................................................................................................................................... 11
Figure 5. Décompte des oocystes totaux dans les fientes au J20.. ............................................ 12 Figure 6. Mesures par PCR quantitative des espèces d’Eimeria dans les fientes. ..................... 13
Figure 7. Lésions de coccidiose et d’entérite nécrotique ............................................................. 14 Figure 8. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 10 jours d’âge. ............ 15 Figure 9. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 20 jours d’âge. ............ 16
Figure 10. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 36 jours d’âge.. ......... 17
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ........................................... 1
1. MISE EN CONTEXTE
Les consommateurs recherchent de plus en plus des produits d’alimentation certifiés biologiques,
qui ne sont pas génétiquement modifiés et qui sont exempts de médicaments. La production de
poulet de chair n’échappe pas à ce courant, entraînant ainsi des contraintes d’élevage pour les
producteurs. Ainsi, le développement d’alternatives naturelles aux médicaments est nécessaire
pour la filière avicole afin de limiter l’impact des infections communes chez le poulet de chair.
Parmi ces dernières, la coccidiose aviaire engendre des pertes totalisant plus de 3 milliards de
dollars à l’échelle mondiale pour la production avicole (Quiroz-Castañeda and Dantán-González,
2015). La coccidiose aviaire affecte la santé digestive et la conversion alimentaire des poulets,
est le principal facteur de risque de l’entérite nécrotique, cause des excréments liquides, et peut
mener à des taux de mortalité importants (Chapman, 2014). Neuf espèces Eimeria, E.
acervulina, E. brunetti, E. maxima, E. necatrix, E. praecox, E. mitis, E. tenella, E. mivati, et E.
hagani, ont été identifiées comme responsables de la coccidiose chez le poulet (Joyner and Long,
1974). Ces parasites peuvent infecter et se multiplier dans l’épithélium muqueux à différents
endroits de l’intestin selon l’espèce (Conway and McKenzie, 2007). En plus de n’être pas
compatible avec une production biologique, les anticoccidiens chimiques, les coccidiostats, et les
ionophores, bien qu’encore largement utilisés en production avicole, peuvent entraîner de la
résistance aux médicaments (Chapman et al., 2010). La vaccination, composée d’une ou de
plusieurs souches sauvages ou atténuées d’espèces Eimeria s’est développée au cours des
années pour contrer la coccidiose, mais son efficacité n’est pas optimale et est difficile à exploiter
en raison, notamment, du bas âge des poulets à l’abattage (Muthamilselvan et al., 2016).
Les produits naturels représentent une alternative pour combattre la coccidiose. Ces dernières
années, des produits d’extrait de plante ont été développés spécifiquement pour la coccidiose,
comme le Cocci-Guard (DPI Global, É-U), l’Apacox (GreenVet, Italie), un mélange de Quercus
infectoria, Rhus chinensis et Terminalia chebula (Kemin Industries, É-U), et une formulation de
Bidens pilosa et d’autres plantes (Ta-Fong, Taiwan) (Thangavel et al., 2014; Yang et al., 2015).
L’effervescence des produits certifiés biologiques se constate aussi par plusieurs travaux de
recherche qui ont rapporté des effets anticoccidiens d’extraits de plus d’une trentaine de plantes
(Muthamilselvan et al., 2016). Des travaux récents rapportent des effets anticoccidiens de Beta
vulgaris (Abbas et al., 2017), d’Areca catechu (Wang et al., 2017) et de Artemisia annua (Fatemi
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ........................................... 2
et al., 2017) et de Allium hookeri (Lee et al., 2018). L’inhibition de la sporulation, la destruction
protéolytique des oocystes, la stimulation de la réponse immunitaire de l’hôte et des effets sur
l’oxydation ont été rapportés comme mécanismes sous-jacents l’effet anticoccidien d’extraits de
plantes (Wang et al., 2008; Lateef Molan et al., 2009; Akhtar et al., 2012; Nghonjuyi, 2015;
Muthamilselvan et al., 2016; Wang et al., 2017; Lee et al., 2018). Plus spécifiquement, les niveaux
des transcrits des cytokines IL-8, IL-17α, iNOS et LITAF ont été en diminués par un extrait d’Allium
hookeri chez des poulets soumis à un challenge à E. maxima suivi de C. perfringens (Lee et al.,
2018), et les niveaux d’IL-2 ont été augmentés par un extrait d’Areca catechu chez des poulets
infectés avec E. tenella (Wang et al., 2017) .
Un autre produit naturel, l’huile de coque de noix de cajou (Anacardium occidentale) (CNSL, pour
Cashew nut shell liquid) a montré des effets bénéfiques sur les performances de croissance et
sur la concentration d’E. coli intestinale chez le poulet de chair en croissance (López et al., 2012).
L’acide anacardique qu’il contient, agit comme ionophore dans la mitochondrie (Toyomizu et al.,
2000) et ses niveaux de cardanol et de cardol lui confèrent une activité antioxydante (Andrade et
al., 2011; Oliveira et al., 2011). Ces propriétés suggèrent donc que le CNSL puisse présenter des
activités anticoccidiennes. D’ailleurs, un essai chez le poulet de chair rapporte des effets
anticoccidiens d’un mélange de CNSL et d’huile de ricin (Murakami et al., 2014). Un autre produit,
le dioxyde de silicium a montré des effets positifs sur la conversion alimentaire et sur le gain de
poids corporel chez les dindes (Tran et al., 2015).
Récemment, nous avons démontré que le Calica+, un nouveau produit qui combine le CNSL et le
dioxyde de silicium, possède des effets bénéfiques sur les performances zootechniques et des
effets anticoccidiens chez des poulets de chair soumis à un challenge léger de souches d’Eimeria
vaccinales (Julien, 2018). Cette étude a aussi démontré que le Calica+ a augmenté les niveaux
plasmatiques d’IL-1β, suggérant que le Calica+ pourrait agir en modulant le système immunitaire
des poulets. Nos résultats préliminaires laissent croire que le Calica+ pourrait représenter une
alternative aux anticoccidiens classiques, en diminuant le développement de résistance, en plus
de représenter une alternative naturelle aux anticoccidiens chez le poulet de chair. Cependant,
les effets de Calica+ chez des poulets soumis à un challenge représentatif d’un poulailler avec
des souches d’Eimeria de champs n’ont pas été évalué et les mécanismes, comme la réponse
immunitaire, restent à étudier.
Cette étude vise à étudier l’efficacité du CNSL et du Calica+ contre la coccidiose chez le poulet
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de chair en conditions d’élevage, comprendre leurs mécanismes d’action et évaluer leur
rentabilité. Le CNSL et le Calica+ pourrait représenter des alternatives aux anticoccidiens, tout en
diminuant le développement de résistance, en plus de représenter des alternatives naturelles aux
anticoccidiens chez le poulet de chair. Si nos hypothèses se confirment, les résultats de cette
étude permettront d’offrir aux producteurs avicoles des alternatives aux anticoccidiens qui sont
compatibles en production biologique.
2. OBJECTIF
2.1 Objectif principal
Évaluer l’effet anticoccidien de Calica+ dans un essai de coccidiose aiguë.
2.2 Objectifs spécifiques
Plus spécifiquement, l'essai vise à :
1) Évaluer l’effet anticoccidien de Calica+ dans un essai de coccidiose d’espèces mixtes d’Eimeria de champs.
2) Déterminer l’effet de Calica+ sur les performances zootechniques des poulets infectés.
3. MÉTHODOLOGIE
3.1 Animaux
L’utilisation des animaux devra être approuvée par le comité de protection des animaux du
CRSAD (CPA-CRSAD). Trois mille neuf cent soixante (3960) poulets de chair (Cobb 500) mâles
de 0 jour d’âge seront distribués aléatoirement à l’un des 9 traitements expérimentaux, selon un
plan complet en 8 blocs, à raison de 55 oiseaux par parquet, pour un total de 72 parquets. Les
blocs seront désignés par section du bâtiment pour tenir en compte les effets du bâtiment. Les
oiseaux seront hébergés pendant 35 jours au poulailler DC-0149 du CRSAD selon les conditions
d’élevage suivantes : la température sera initialement fixée à 33°C et puis progressivement réduite
de 1 à 2°C chaque semaine pour atteindre 20,5°C à 35 jours d'âge. Les poussins seront exposés
à la lumière pendant 24 heures le 1er jour, 23 h au 2e jour, 20 h du 3e au 10e jour, 18 h du 11e
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au 25e jour et 20 h du 26e au 35e jour. La moulée à servir aux animaux sera formulée de sorte à
répondre aux besoins nutritionnels des poulets de chair.
3.2 Traitements alimentaires
Les traitements sont résumés au Tableau 1, selon le programme alimentaire en trois phases
résumé au Tableau 2. Les aliments de base ont été fabriqués en granules chez Agri-Marché
(Saint-Isidore, QC, Canada) et les traitements expérimentaux ont été formulés à l’aide de
prémélanges 40X au CRSAD.
Tableau 1. Traitements expérimentaux.
Traitements Challenge coccidiose Description
T1 Non Témoin blanc (non infecté, non médicamenté) T2 Oui Témoin négatif (infecté, non médicamenté)
T3 Oui Témoin positif (infecté, médicamenté au Nicarb (J0-J20) puis Monensin (J20-J36))
T4 Oui CNSL1 T5 Oui Calica+ T6 Oui CNSL2 T7 Oui CNSL3 T8 Oui CNSL4 T9 Oui CNSL5
Tableau 2. Programme alimentaire.
Phase
Durée en
jours Phase
alimentaire 1 10 Début 2 10 Croissance 3 16 Finition
De sorte à limiter les variations dues à la fabrication, les traitements alimentaires ont été formulés
avec le même aliment de base dont la composition et les concentrations nutritives sont détaillées
au Tableau 3.
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ........................................... 5
Tableau 3. Composition et concentrations nutritives de l’aliment de base
Phase 1 (0-14 jours)
Phase 2 (14-21 jours)
Phase 3 (21-36 jours) Ingrédient, %
Maïs moulu 49,6 52,2 52.3 Tourteau de soya Trituro 44% 13,8 18,0 20,0 Blé 10,0 10,0 10,0 Tourteau de soya 11,0 4,7 1,9 Gru de blé rouge 7,5 7,5 7,5 Farine de viande 5,0 4,8 4,2 Fin gluten de maïs 60% 1,0 - 2,9 Gras animal 0,80 2,1 Pierre à chaux 0,65 0,65 0,68 Sulfate de lysine 70% 0,311 0,273 0,267 Bicarbonate de sodium 0,310 0,210 0,220 DL-Méthionine 0,253 0,244 0,251 Sel 0,23 0,22 0,23 PX poulet 0,2 0,2 0,2 Chlorure de choline 75% 0,061 0,061 0,054 Vitamine E 100 000 UI 0,050 0,030 0,045 HY D Premix 0,027 0,036 0,036 L-Thréonine 98% 0,028 0,038 0,045 Axtra Phytase 0,006 0,006 0,006
Composition, %
Phase 1 (0-14 jours)
Phase 2 (14-21 jours)
Phase 3 (21-35 jours)
Matière sèche 91,1 90,5 88,5 Protéine brute 21,5 20,9 18,2 Fibre NDF 11,2 11,6 11,5 Gras 4,1 4,8 6,0 Calcium total 1,07 1,08 1,01 Phosphore total 0,80 0,77 0,71 Potassium total 0,94 0,85 0,78 Magnésium total 0,20 0,19 0,18 Cendres 5,4 5,2 4,7
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3.3 Challenge coccidien
Tous les animaux, à l’exception de ceux soumis au témoin non infecté et non médicamenté, ont
reçu au J14 un inoculât d’isolats mixtes de champs mélangé à l’aliment, après une mise à jeun
d’une heure. Les dilutions de l’inoculât de coccidies ont été préparées de sorte à atteindre les
niveaux d’oocystes suivants par oiseau : 1,5 x 105 d’Eimeria acervulina et 5 x 104 d’Eimeria tenella
(pour un total de 2 x 105 oocystes par oiseau). Ces inoculations devraient être suffisantes pour
réduire le gain de poids d’au moins 15% en plus d’entraîner des lésions de coccidiose (Conway
and McKenzie, 2007). Des études récentes ont rapporté des utilisations de 2,0 x 105 (Perez-
Carbajal et al., 2010), 2,05 x 105 (Murakami et al., 2014) et 2,5 x 105 (Tian et al., 2017) oocystes
par oiseau d’espèces mixtes d’Eimeria dans les mêmes proportions. Les oocystes d’espèces
mixtes d’Eimeria ont été isolés à partir d’échantillons de fiente d’oiseaux non infectés au poulailler
du CRSAD en 2018. Les oocystes ont été propagés dans des poulets sains, sporulés à 30°C dans
2% de dichromate de potassium pendant 48 heures et lavés 3 fois avec de l’eau, avant d’être
inoculés aux oiseaux. Pour chaque enclos, 1,8 kg d’aliment a été mouillé avec 1,3 L d’eau. La
suspension d’oocystes à 1 x 105 oocystes/ml a été ajoutée à l’aliment mouillé, à raison de 2 ml
par oiseau, afin d’obtenir une inoculation de 2 x 105 oocystes par oiseau. Par exemple, pour 50
oiseaux, 100 ml de la suspension d’oocystes a été ajouté à l’aliment mouillé. Les oiseaux ont eu
accès à seulement cette nourriture jusqu’à ce qu’elle soit complètement consommée (environ 7h
après). 3.4 Mesures et observations
Performances zootechniques et suivi de l’état de santé Tous les oiseaux et l’aliment par parquet ont été pesés au début et à la fin de chaque phase
alimentaire pour déterminer le poids, l'apport alimentaire, la conversion alimentaire et le gain
moyen quotidien (GMQ). De plus, quatre oiseaux représentatifs par parquet ont été euthanasiés
à la fin de chaque phase alimentaire pour évaluer les masses graisseuse et musculaire et le
contenu minéral osseux par ostéodensitométrie (Discovery W, Hologic, Bedford, MA, États-Unis).
Les aliments ont été échantillonnés pour analyse afin de déterminer leur composition. Les oiseaux
ont été inspectés au moins deux fois par jour pour l'enregistrement de la santé générale et de la
mortalité des oiseaux.
Oocytes et coccidiose Un suivi du décompte des coccidies a été assuré grâce à la collecte d’échantillons de fientes
fécales et cæcales (3 :1) collectés dans les huit parquets par traitement deux fois par semaine.
Les échantillons ont été groupés par traitement et le décompte d’oocystes a été réalisé par
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microscopie grâce à des lames McMaster. Aux J17, J20, J23 et J27, des échantillons de fiente
ont été collectés pour des décomptes coccidiens par parquet. Au J21, deux oiseaux par parquet
(un total de 140 oiseaux) ont été euthanasiés pour évaluer les lésions de coccidiose (Services
Vétérinaires Ambulatoires Triple-V inc.). Des analyses par qPCR ont été réalisées à partir
d’échantillons de fientes des oiseaux qui ont été euthanasiés au J21 et à partir d’échantillons de
fientes au moment du pic de coccidies, pour déterminer les populations d’Eimeria acervulina,
Eimeria maxima et Eimeria tenella, selon Vrba et al. (2010) et Peek et al. (2017). Pour les valeurs
plus faibles que le seuil de quantification, la moitié du seuil de quantification a été utilisée. Les
courbes standard ont été construites grâce à des dilutions de 100, 101, 102, 103, 104 et 105 des
amplicons de chaque espèce.
3.5 Analyses statistiques
Les données zootechniques et les décomptes des oocystes ont été analysés à l’aide d’un modèle
mixte incluant l’effet fixe du traitement, et le bloc, représentant la section du bâtiment, comme effet
aléatoire. La procédure Modèle linéaire et la méthode des moindres carrés standard et du
maximum de vraisemblance restreint (REML) du logiciel JMP Pro (version 14.0, The SAS Institute,
Cary, NY, États-Unis) ont été utilisées. La normalité des résidus, l’homogénéité de la variance et
l’absence de données aberrantes (résidus studentisés ± 3,0) ont été vérifiées pour toutes les
variables. Des comparaisons entre les paires ont été réalisées à l’aide de test Student. Les
données des scores lésionnels de coccidiose et d’entérite nécrotique ont été analysées par une
analyse catégorielle et des tests de khi-deux de Pearson ont été utilisés pour les comparaisons
des fréquences pour chaque score entre les traitements, grâce au logiciel JMP Pro.
Les données présentées dans ce rapport sont les moyennes ajustées par le modèle statistique
(moyennes des moindres carrées) accompagnées de leurs erreurs standard, sauf indication
contraire. Les unités expérimentales pour les données de performances zootechniques et les
décomptes d’oocytes sont les parquets.
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4. RÉSULTATS ET DISCUSSION
4.1 Performances de croissance et mortalité
Performances zootechniques et mortalités durant la phase 1 de 0 à 10 jours d’âge Les données de performances zootechniques et de mortalités de la première phase (de 0 à 10
jours d’âge) sont résumées à la Figure 1.
Figure 1. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 1 de 0 à 10 jours d’âge. Poids au J10 (A), poids du parquet au J10 (B), gain moyen quotidien (GMQ) (C), consommation quotidienne (D), conversion alimentaire (E) et mortalités (F) pendant la phase 1, du J0 au J10. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.21
0.22
0.23
0.24
0.25
0.26
Poids J10
Poi
ds (k
g) CC
D
A A
BCABC
AB
C
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T923.0
23.5
24.0
24.5
25.0
25.5
26.0
Consommation J0-J10
Con
som
mat
ion
(g/t/
j)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T911.0
11.5
12.0
12.5
13.0
13.5
14.0
Poids Parquet J10
Poi
ds (k
g) C C
D
ABA
BCABC
AB
C
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T91.15
1.20
1.25
1.30
1.35
1.40
Conversion alimentaire J0-J10
Con
vers
ion
alim
enta
ire
B B
A
E
BC BC
DE DECD
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T917
18
19
20
21
22
GMQ J0-J10
Gai
n m
oyen
quo
tidie
n (g
/t/j)
CDD
E
A A
BCDABC
AB
CD
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.00
0.01
0.02
0.03
0.04
Mor
talit
é Mortalité et euthanasie J0-J10
A B C
D E F
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Performances zootechniques et mortalités durant la phase 2 de 10 à 20 jours d’âge
Les données de performances zootechniques et de mortalités de la deuxième phase (de 10 à 20
jours d’âge) sont résumées à la Figure 2.
Figure 2. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 2 de 10 à 20 jours d’âge. Poids au J20 (A), Poids du parquet au J20 (B), gain moyen quotidien (GMQ) (C), consommation quotidienne (D), conversion alimentaire (E) et mortalités (E) pendant la phase 2, du J10 au J20. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.75
0.80
0.85
0.90
Poids J20
Poi
ds (k
g)
A
CDBC
B
CDD
BCCD CD
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T970
75
80
85
90
Consommation J10-J20
Con
som
mat
ion
(g/t/
j) A
CDB B
DBCD
B
CD
BC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T936
38
40
42
44
Poids Parquet J20
Poi
ds (k
g)
A
CDBC
B
BCD
D
BC BCCD
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T91.30
1.35
1.40
1.45
1.50
Con
vers
ion
alim
enta
ire
Conversion alimentaire J10-J20
CBC
C
ABC
BC
AAB
BC
A
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T950
55
60
65
GMQ J10-J20
Gai
n m
oyen
quo
tidie
n (g
/t/j) A
CDE
BBC
CDEE
CDCD DE
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.00
0.01
0.02
0.03
0.04
Mor
talit
é
Mortalité et euthanasie J10-J20
AB
BB
AB
BBB B
A
A B C
D E F
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Performances zootechniques et mortalités durant la phase 3 de 20 à 36 jours d’âge Les données de performances zootechniques et de mortalités de la troisième phase (de 20 à 36
jours d’âge) sont résumées à la Figure 3.
Figure 3. Données de performances zootechniques et mortalités durant la phase 3 de 20 à 36 jours d’âge. Poids au J36 (A), poids du parquet au J36 (B), gain moyen quotidien (GMQ) (C), consommation quotidienne (D), conversion alimentaire (E) et mortalités (F) pendant la phase 3, du J20 au J36. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T92.35
2.40
2.45
2.50
2.55
2.60
2.65
Poids J36
Poi
ds (k
g)
CDD
A
AB
BCD BCD
ABABC AB
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9160
165
170
175
180
Consommation J20-J36
Con
som
mat
ion
(g/t/
j)
CBC
ABCABC AB
BC
A A A
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9100
105
110
115
Poids Parquet J36
Poi
ds (k
g)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T91.45
1.50
1.55
1.60
1.65
1.70
1.75
Conversion alimentaire J20-J36
Con
vers
ion
alim
enta
ire A
AB
C
BCAB
BC
AB B B
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T995
100
105
110
115
GMQ J20-J36
Gai
n m
oyen
quo
tidie
n (g
/t/j)
D
CD
A
ABBC
ABCAB AB AB
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.00
0.01
0.02
0.03
0.04
Mor
talit
é
Mortalité et euthanasie J20-J36
A B C
D E F
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 11
Performances zootechniques et mortalités durant l’essai, de 0 à 36 jours d’âge Les données de performances zootechniques et de mortalités pendant la durée de l’essai (de 0
à 36 jours d’âge) sont résumées à la Figure 4.
Figure 4. Données de performances zootechniques et mortalités durant l’essai, de 0 à 36 jours d’âge. Gain moyen quotidien (GMQ) (A), consommation quotidienne (B), conversion alimentaire (C) et mortalités (D) pendant l’essai, du J0 au J36. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T964
66
68
70
72
GMQ J0-J36
Gai
n m
oyen
quo
tidie
n (g
/t/j)
CDD
A
AB
BCD BCD
ABABC AB
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T91.35
1.40
1.45
1.50
1.55
Conversion alimentaire J0-J36
Con
vers
ion
alim
enta
ire
AAB
C
BAB
BAB B B
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T994
96
98
100
102
Consommation J0-J36
Con
som
mat
ion
(g/t/
j)
ABC
BC
AB
ABC
C
A
ABC
ABCABC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.00
0.02
0.04
0.06
0.08
Mor
talit
é
Mortalité et euthanasie J0-J36
A B
C D
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 12
4.2 Oocystes et coccidiose
Afin d’étudier les propriétés anticoccidiennes des traitements expérimentaux, les décomptes des oocystes dans les fientes et les lésions de coccidiose ont été analysés. Les décomptes bihebdomadaires des oocystes à partir de composites par traitement ont révélé que le pic d’oocystes est survenu autour du jour 20 pour les traitements, à l’exception des oiseaux non infectés (T1). Les décomptes des oocystes totaux dans les fientes au J20 pour les traitements T1, T2 et T5 sont résumés à la Figure 5.
Figure 5. Décompte des oocystes totaux dans les fientes au J20. Les données présentées sont des mesures d’échantillons par parquet. Les barres représentent les moyennes ± l’erreur type. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5. Afin de distinguer et de quantifier les espèces d’Eimeria présentes dans les échantillons de fiente, des mesures par PCR quantitative (qPCR) ont été réalisées au J20. Ces mesures, présentées sous forme de nombre de copies d’ADN, sont résumées à la Figure 6.
T1 T2 T50
1×106
2×106
3×106
Ooc
yste
s (p
ar g
de
fient
e)
AA
B
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 13
Figure 6. Mesures par PCR quantitative des espèces d’Eimeria dans les fientes. Dénombrement au J20 d’Eimeria acervulina (A), d’Eimeria maxima (B), d’Eimeria tenella (C) et de la somme des trois (D). Les données présentées sont les nombres de copies d’ADN correspondant à l’espèce d’échantillons par parquet. Les barres représentent les moyennes ± l’erreur type. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5. Les scores de lésions de coccidiose aux jours 21 et 22 sont présentés à la Figure 7.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
2×106
4×106
6×106
Eimeria acervulinaO
ocys
tes
(cop
ies/
g de
fien
te) A
AAABAB
ABC
CC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
1×105
2×105
3×105
4×105
Ooc
yste
s (c
opie
s/g
de fi
ente
)
Eimeria tenella
B
A
BB B
ABABABAB
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.0
5.0×104
1.0×105
1.5×105
Ooc
yste
s (c
opie
s/g
de fi
ente
)
Eimeria maxima
A
BCBCD
CDDD
BCB
BCD
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
2×106
4×106
6×106
Eimeria acervulina, maxima et tenella
Ooc
yste
s (c
opie
s/g
de fi
ente
) A
ABABAB ABC
BCDCDE
EDE
A B
C D
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 14
Figure 7. Lésions de coccidiose. Lésions caractéristiques d’Eimeria acervulina (A), d’Eimeria maxima (B) et d’Eimeria tenella (C) aux J21 et J22. Les données présentées sont les fréquences pour chaque score lésionnel. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
20
40
60
80
100
Fréq
uenc
e (%
)
Score acervulina
0
1
2A ABC BC BC BCC BC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
20
40
60
80
100
Fréq
uenc
e (%
)
Score maxima
0
1
A AABC C BC CCAB BC
T2 tendance vs T1, T3 et T6
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90
20
40
60
80
100
Fréq
uenc
e (%
)
Score tenella
0
1
2AB ABAB AB AB BABA A
A B C
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 15
4.3 Ostéodensitométrie et composition corporelle
Afin d’étudier par ostéodensitométrie le contenu minéral osseux et la composition corporelle, quatre oiseaux représentatifs par parquet ont été euthanasiés au J10, J20 et J36. Les mesures sont résumées aux Figures 8, 9 et 10, respectivement.
Figure 8. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 10 jours d’âge. Contenu minéral osseux (A), rapport contenu minéral osseux (BMC) sur le poids des oiseaux (B), densité minérale osseuse (C), masse maigre (D), masse grasse (E), et pourcentage de gras (F) au J10. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T92.0
2.2
2.4
2.6
2.8
3.0
Contenu minéral osseux J10
Con
tenu
min
éral
oss
eux
(g)
AB AB
C
A
BC
ABAB
AAB
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9150
160
170
180
190
200
Masse maigre J10
Mai
sse
mai
gre
(g)
ABCCD
D
AB
BCDABCD
AABCABC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T99.0
9.5
10.0
10.5
11.0
11.5
BMC/poids J10
BM
C/p
oids
(g/k
g)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T945
50
55
60
65
Masse grasse J10
Mas
se g
rass
e (g
)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.054
0.056
0.058
0.060
0.062
0.064
0.066
Densité minérale osseuse J10
Den
sité
min
éral
e os
seus
e (g
/cm
2 )
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T920
22
24
26
28
Pourcentage de gras J10
Pou
rcen
tage
de
gras
(%)
A B C
D E F
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 16
Figure 9. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 20 jours d’âge. Contenu minéral osseux (A), rapport contenu minéral osseux (BMC) sur le poids des oiseaux (B), densité minérale osseuse (C), masse maigre (D), masse grasse (E), et pourcentage de gras (F) au J20. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T98.0
8.5
9.0
9.5
10.0
10.5
11.0
Contenu minéral osseux J20
Con
tenu
min
éral
oss
eux
(g)
A
B B AB
BBB B B
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9500
550
600
650
700
Masse maigre J20
Mai
sse
mai
gre
(g) A
ABCBCAB
BC BCC
BC BC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T911.0
11.5
12.0
12.5
13.0
BMC/poids J20
BM
C/p
oids
(g/k
g)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9120
140
160
180
200
Masse grasse J20M
asse
gra
sse
(g)
A
C
AB
CC
BCC C C
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.085
0.090
0.095
0.100
Densité minérale osseuse J20
Den
sité
min
éral
e os
seus
e (g
/cm
2 )
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T918
19
20
21
22
23
24
Pourcentage de gras J20
Pou
rcen
tage
de
gras
(%)
A
B
A
B B
ABAB AB AB
A B C
D E F
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 17
Figure 10. Mesures d’ostéodensitométrie et de composition corporelle à 36 jours d’âge. Contenu minéral osseux (A), rapport contenu minéral osseux (BMC) sur le poids des oiseaux (B), densité minérale osseuse (C), masse maigre (D), masse grasse (E), et pourcentage de gras (F) au J36. Les barres représentent les moyennes des moindres carrées ± l’erreur standard. Les traitements non connectés par la même lettre sont significativement différents, selon une valeur de p < 0,05. T1, oiseaux témoins blancs, non infectés et non médicamentés ; T2, oiseaux témoins négatifs, infectés et non médicamentés ; T3, oiseaux témoins positifs, Nicarb (J0-J20) suivi du Monensin (J20-J36); T4, CNSL1; T5, Calica+; T6, CNSL2 ; T7, CNSL3 ; T8, CNSL4 ; T9, CNSL5.
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T933
34
35
36
37
38
Contenu minéral osseux J36
Con
tenu
min
éral
oss
eux
(g)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T92000
2100
2200
2300
2400
Masse maigre J36
Mai
sse
mai
gre
(g)
C BC
AB AABC
ABC
ABABC
ABC
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T912.5
13.0
13.5
14.0
14.5
BMC/poids J36
BM
C/p
oids
(g/k
g)
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9400
420
440
460
480
500
Masse grasse J36M
asse
gra
sse
(g)
A
BB B B
BBB B
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T90.130
0.135
0.140
0.145
Densité minérale osseuse J36
Den
sité
min
éral
e os
seus
e (g
/cm
2 )
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T915
16
17
18
19
Pourcentage de gras J36
Pou
rcen
tage
de
gras
(%) A
BB B
B BB
BB
A B C
D E F
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 18
5. CONCLUSION En résumé, les résultats de cette étude ont montré que, lors d’un challenge de coccidiose
d’espèces mixtes d’Eimeria de champs, 1) le Calica+ et plusieurs formulations à base de CNSL
ont amélioré les performances de croissance, 2) le CNSL5 (T9) a montré un effet anticoccidien
(−46%, comparativement aux oiseaux non-traités), 3) le Calica+ a augmenté la masse maigre
des oiseaux à la fin de l’essai, au J36, 4) le Calica+ et plusieurs formulations à base de CNSL ont
présenté des performances de croissance comparables au traitement nicarbazin-monensin,
même si les données de conversion alimentaire de ce dernier étaient plus faibles.
En résumé, le Calica+ et des formulations de CNSL ont montré des effets bénéfiques sur la
croissance et des effets anticoccidiens. Ces suppléments alimentaires pourraient être impliqués
dans une stratégie visant à réduire l’utilisation d’anticoccidiens dans la production de poulets de
chair.
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 19
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Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 22
ANNEXE
Évaluation de Calica+ sur la coccidiose chez le poulet de chair ......................................... 23
Effet TxMesures T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9 Erreur std Valeur de p T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9
Poids (kg/t) J0 0.041 0.041 0.040 0.040 0.040 0.040 0.040 0.040 0.041 0.0003 0.5436 J10 0.237 0.233 0.219 0.248 0.249 0.238 0.241 0.245 0.236 0.003 <.0001 C C D A A BC ABC AB C J20 0.865 0.782 0.798 0.801 0.811 0.778 0.784 0.784 0.766 0.009 <.0001 A CD BC BC B CD CD CD D J36 2.442 2.426 2.566 2.524 2.527 2.463 2.511 2.521 2.466 0.027 0.0063 CD D A AB AB BCD ABC AB BCD
Poids du parquet (kg) J0 2.24 2.23 2.22 2.21 2.19 2.23 2.21 2.22 2.24 0.02 0.5437 J10 12.71 12.59 11.79 13.28 13.54 12.92 13.08 13.36 12.68 0.19 <.0001 C C D AB A BC ABC AB C J20 42.59 38.82 39.49 39.13 40.34 38.92 39.31 38.60 37.60 0.56 <.0001 A CD BC BC B BCD BC CD D J36 105.67 106.13 108.08 106.25 110.45 106.79 108.65 106.77 104.49 1.73 0.4271
Gain moyen quotidien (g/t/j) J0-J10 (Phase 1) 19.63 19.26 17.89 20.81 20.92 19.70 20.09 20.48 19.52 0.30 <.0001 CD D E A A BCD ABC AB CD J10-J20 (Phase 2) 62.79 54.89 57.82 55.27 56.19 54.08 54.32 53.86 52.98 0.77 <.0001 A CDE B CD BC CDE CDE DE E J20-J36 (Phase 3) 98.57 102.76 110.53 107.72 107.28 105.30 107.93 108.54 106.27 1.64 <.0001 D CD A AB AB BC AB AB ABC J0-J20 41.21 37.07 37.86 38.04 38.56 36.89 37.21 37.17 36.25 0.44 <.0001 A CD BC BC B CD CD CD D J10-J36 84.81 84.35 90.26 87.54 87.63 85.60 87.31 87.51 85.77 1.00 0.0023 CD D A ABC AB BCD BC ABC BCD J0-J36 66.70 66.27 70.16 69.01 69.10 67.29 68.64 68.89 67.37 0.75 0.0057 CD D A AB AB BCD ABC AB BCD
Consommation (g/t/j) J0-J10 (Phase 1) 25.04 24.59 23.98 25.26 25.26 24.78 24.64 25.37 24.76 0.37 0.1829 J10-J20 (Phase 2) 85.03 75.58 78.49 78.85 78.76 74.23 75.12 77.95 76.78 1.04 <.0001 A CD B B B D CD BC BCD J20-J36 (Phase 3) 165.24 166.71 168.35 173.22 170.06 170.58 173.11 172.78 167.39 1.80 0.0146 C BC ABC A ABC AB A A BC J0-J20 53.71 48.93 49.99 50.73 50.85 48.43 48.81 50.46 49.54 0.62 <.0001 A CD BCD B B D CD BC BCD J10-J36 131.99 129.04 130.63 133.67 132.15 130.46 132.21 132.63 129.38 1.18 0.1004 ABC C ABC A ABC ABC ABC AB BC J0-J36 98.65 96.52 97.06 99.38 98.83 97.43 98.61 98.66 96.37 0.86 0.0991 ABC BC ABC A AB ABC ABC ABC C
Conversion alimentaire J0-J10 (Phase 1) 1.276 1.278 1.340 1.215 1.208 1.258 1.227 1.240 1.268 0.011 <.0001 B B A DE E BC DE CD BC J10-J20 (Phase 2) 1.355 1.377 1.357 1.429 1.402 1.376 1.384 1.447 1.450 0.018 0.0011 C BC C AB ABC BC BC A A J20-J36 (Phase 3) 1.677 1.623 1.524 1.617 1.586 1.622 1.608 1.592 1.576 0.025 0.0045 A AB C AB BC AB B B BC J0-J20 1.304 1.320 1.320 1.335 1.319 1.314 1.312 1.358 1.367 0.013 0.0148 B B B AB B B B A A J10-J36 1.557 1.530 1.448 1.530 1.509 1.525 1.517 1.516 1.509 0.017 0.0024 A AB C AB B AB AB AB B J0-J36 1.479 1.457 1.384 1.443 1.431 1.448 1.438 1.432 1.431 0.016 0.0038 A AB C AB B AB B B B
Mortalités (%) J0-J10 (Phase 1) 2.21% 1.96% 1.72% 2.70% 1.47% 1.23% 1.47% 0.98% 1.96% 0.69% 0.7741 J10-J20 (Phase 2) 0.56% 0.00% 0.27% 0.83% 1.08% 0.27% 0.27% 2.16% 0.82% 0.43% 0.0271 B B B B AB B B A B J20-J36 (Phase 3) 1.28% 0.94% 1.95% 1.27% 1.85% 1.90% 1.57% 1.28% 1.26% 0.75% 0.9844 J0-J36 4.57% 3.35% 4.27% 5.49% 4.88% 3.66% 3.66% 4.88% 4.57% 1.27% 0.9577
Mortalités et euthanasies (%) J0-J10 (Phase 1) 2.21% 1.96% 2.21% 2.70% 1.47% 1.23% 1.47% 0.98% 2.21% 0.76% 0.7988 J10-J20 (Phase 2) 1.09% 0.27% 0.53% 0.83% 1.35% 0.27% 0.54% 2.44% 0.82% 0.49% 0.0752 AB B B B AB B B A B J20-J36 (Phase 3) 1.28% 0.94% 2.57% 1.60% 2.17% 2.22% 1.57% 1.28% 1.57% 0.78% 0.8781 J0-J36 5.18% 3.66% 5.79% 5.79% 5.49% 3.96% 3.96% 5.18% 5.18% 1.36% 0.9324
Contenu minéral osseux (g/t) J10 2.58 2.61 2.27 2.54 2.72 2.39 2.72 2.58 2.54 0.10 0.0168 AB AB C AB A BC A AB AB J20 10.15 9.11 9.22 8.93 9.37 8.73 9.12 9.23 8.95 0.29 0.0552 A B B B AB B B B B J36 35.12 35.19 35.14 35.69 34.82 36.14 34.77 34.19 34.56 0.87 0.8651
Contenu minéral osseux/poids (g/kg) J10 10.32 10.69 9.73 9.81 10.46 9.64 10.46 10.12 10.22 0.36 0.2630 J20 12.12 11.82 11.83 12.14 12.09 11.64 12.09 12.27 11.87 0.29 0.8772 J36 13.76 13.93 13.34 13.54 13.10 13.86 13.38 13.43 13.63 0.29 0.5254
Densité minérale osseuse (g/cm2) J10 0.062 0.059 0.057 0.058 0.061 0.059 0.062 0.060 0.061 0.002 0.2640 J20 0.095 0.094 0.091 0.092 0.096 0.091 0.092 0.094 0.091 0.002 0.2018 J36 0.136 0.139 0.138 0.139 0.136 0.139 0.136 0.134 0.138 0.002 0.5287
Masse maigre (g/t) J10 175.8 169.5 162.5 185.6 183.0 171.5 179.4 176.1 173.7 4.4 0.0232 ABC CD D A AB BCD ABC ABC ABCD J20 640.5 606.6 596.1 568.9 614.2 592.8 588.1 586.9 584.5 14.4 0.0461 A ABC BC C AB BC BC BC BC J36 2100.5 2121.8 2227.4 2232.8 2250.6 2206.7 2185.0 2136.3 2136.1 43.6 0.0916 C BC AB AB A ABC ABC ABC ABC
Masse grasse (g/t) J10 56.8 56.4 51.1 56.2 59.4 57.4 60.3 60.0 59.1 3.3 0.5659 J20 180.1 150.5 169.5 148.9 147.2 141.7 152.3 153.6 154.7 5.6 0.0002 A C AB C C C C C BC J36 470.7 419.2 430.2 422.2 428.8 434.0 429.9 429.2 421.1 10.7 0.0400 A B B B B B B B B
Pourcentage de matière grasse (%) J10 24.4 24.9 23.8 23.3 24.6 25.0 25.1 25.4 25.4 1.3 0.9352 J20 22.0 19.9 22.1 20.9 19.3 19.3 20.5 20.8 20.9 0.7 0.0463 A B A AB B B AB AB AB J36 18.3 16.5 16.2 15.9 16.0 16.5 16.5 16.7 16.5 0.4 0.0115 A B B B B B B B B
Traitements Comparaisons
Tableau A1. Données de performances zootechniques, mortalités et décomptes d’oocystes dans les fientes