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Universidad de Puerto RicoRecinto Universitario de MayagüezColegio de Ciencias AgrícolasDepartamento de Industria Pecuaria

Inseminación Artificial en Aves

Héctor L. Santiago, Ph.D.Investigador Asistente

Mireille ArgüellesEstudiante Graduada

Historia

• 1677 - Leeuwenhoek– Observó espermatozoides por

primera vez bajo el microscopio

• 1780 - Spallanzani– Perros– Semen podía fertilizar – Espermatozoides

• Efecto de temperatura en el metabolismo de los espermatozoides

Historia

• 1900 - Ivanov– Rusia– Desarrolló un

programa de IA en caballos

• 1933– Desarrolló métodos de

colección de semen e inseminación en caballos, ganado vacuno, ovejas y cerdos.

• 1933 - Sorenson• Dinamarca

– Estableció la primera cooperativa de IA

• 1937 - USA– Comienzo de IA

comercial en USA• 1937 -USA

– Primera cooperativa de IA

• 1939 - USA– 7 cooperativas de IA

Historia

• 1960 - Presente– Consolidación de

cooperativas– Grandes empresas de IA

• Select Sires• American Breeders

Service Goal• 1960 – Presente

– IA en pavos• 1990

– Aumento en el uso de IA en caballos y cerdos

Uso Actual Inseminación Artificial

7 millones50 %

1.3 millones3%

20 – 30 %

100%

Inseminación Artificial

• Herramienta• Acelerar el mejoramiento

genético• Un macho altamente

seleccionado es apareado con miles de hembras

• Aves– 10 % superior de ♂– 40 % superior de ♀

Ventajas del uso de IA

• en el número de ♀/♂ servidas bajo IA cuando se compara con monta natural

• Mantener ♂ de alta calidad

• Aumento en presión de selección para rasgos de importancia económica

Ventajas

• Rápido mejoramiento genético

• Ahorro indirecto en costos de alimentación– Menor cantidad de ♂– Confinamiento en

jaulas– Concepto de “Stud

Farms” utilizado en pavos

Ventajas

• Mejor garantía de fertilidad en ♀

• Se asegura la inseminación de todas las ♀

• Se asegura que todas las ♀ están en postura

• Transportar semen a otras localidades

• Disminuir enfermedades transmitidas sexualmente

Desventajas

• Costo de labor adicional requerida para la IA de ♀es mas alto

• Necesidad de tener empleados cualificados manejando los galpones de IA

• Labor intensiva, repetitiva, además de ser un trabajo tedioso y aburrido

Desventajas

• Posibilidad de alterar el comportamiento de apareamiento y anidado de parentales en piso

• Percepción pública negativa

• En la industria de pollos parrilleros solo se utiliza en algunas compañías genéticas a nivel de pedigrí

Consideraciones ♂

• Recorte de plumaje alrededor de la cloaca

• Deben ser entrenados• Masajeados de 7-10 d

para facilitar la eyaculación

• Alimentar después de la colección de semen para reducir la contaminación fecal

• Control peso corporal

Consideraciones ♀

• 75% ♀ en 75% producción

• Inseminar en la tarde para minimizar el número de h con huevos en el tracto reproductivo

• Obstruye el paso de semen (reflujo)

• Semen debe ser colectado en la tarde

• Comúnmente utilizado en 45 min para maximizar su viabilidad

Preservación de semen

• Uso de semen congelado• Problemas para mantener

calidad• Logrado grandes avances en

crío preservación• En pollos se ha obtenido

niveles de fertilidad ≥ 90% inseminando con semen congelado en nitrógeno líquido

• Sin embargo, en pavos raramente son obtenidos niveles ≥ 10%

Diluyentes y Extensores de Semen

• Comunes en aves• Solución de 1% NaCl• La mayoría son mezclas

de amortiguadores de diferentes sales

• Razón de dilución comúnmente utilizada es de 1:4 (semen : diluyente)

• Inseminar de 30 a 45 minluego de colectar el semen

• Permiten almacenar semen hasta por 24 h sin ningún efecto en fertilidad

• Fertilidad excelente ha sido obtenida con semen almacenado por 6, 12, 18 y 24 h

• La dilución de semen aumenta la razón de ♂:♀

• Monta natural 1:10 (♂:♀)• IA con semen diluido 1:20

(♂:♀)

Determinación de Fertilidad

Evaluación de Fertilidad

• Evaluación de semen– Tinte de vivos y muertos

“Live & Dead”– Tintes de Eosina y

Nigrosina– Vivos – N0 tinte– Muertos – Color rosado

• Contaje de espermatozoides– Hemacitómetro

• Hematocríto– “Cell-Pack Volume”

Evaluación de Fertilidad

• Mobilidad– Procedimiento “Accudenz”– Solución viscosa– Espectrofotómetro– Mide paso de luz

• Interacción de espermatozoide : óvulo– Contaje de espermatozoides

entre el espacio de las membranas vitelinas

– Contaje de orificios en la membrana vitelina

Membrana Vitelina

Pollos: 50 / mm2 Pavos: 100/ mm2

Contaje de Espermatozolides

Determinación de fertilidad en huevos frescos

Preguntas