Dra. Olaya Pirene Castellanos OnorioManual de Laboratorio de Microbiologa

Manual de Practicas de Laboratorio de MicrobiologaAutor: Dra. Olaya Pirene Castellanos OnorioTipo de libro: Material didctico de LaboratorioDra. Olaya Pirene Castellanos Onorio, Microbiologia

A los alumnos y a los profesores:Este Manual de Prcticas del Laboratorio de Microbiologa General est diseado como material didctico de laboratorio para cursar la Unidad de Esenianza y Aprendizaje (UEA) en Microbiologa General, que forma parte de los planes de estudio de la carrera de Ingeniera Bioqumica, impartidas en el Instituto Tecnologico de Veracruz (ITVer).Como estudiantes que inician su experiencia en el manejo de microorganismos, se les darn las indicaciones bsicas del trabajo en este tipo de laboratorios para que comprendan la importancia de realizar un trabajo seguro y eficiente.Este manual inicia con un captulo sobre Seguridad en el laboratorio, con los antecedentes y reglas de seguridad ms importantes que debern conocer y practicar siempre. Es recomendable resolver el cuestionario de este captulo, as como losde las prcticas incluidas para reflexionar sobre el trabajo realizado, profundizar en los contenidos y mejorar su aprendizaje.Las diez prcticas que contiene este manual son de realizacin sencilla y comprobada en numerosos cursos impartidos. Las prcticas propuestas tratan sobre el manejo de bacterias, hongos y algas, porque son los grupos microbianos de mayor aplicacin en biotecnologa y son suficientes para que los alumnos aprendan las bases de trabajo que necesitarn en sus cursos posteriores. Cada prctica se estructura en secciones: primero, los Objetivos y la Introduccin para facilitar la comprensin de los fundamentos de las prcticas. Luego se indican los Materiales que se requieren y los Procedimientos a realizar en forma de instrucciones numeradas, que se complementan con figuras. Al final de cada prctica se proponen cuadros de recopilacin de Resultados y un espacio para que el alumno redacte una breve Discusin de sus resultados y su Conclusin con base en los resultados y a los objetivos planteados. De igual forma, encontrarn en este manual los Anexos 1 y 2, con instrucciones para la preparacin de soluciones y medios de cultivo que se requieren en las prcticas, as como las Referencias bibliogrficas de apoyo.Los invitamos a consultar este manual y sobre todo a realizar los experimentos propuestos con inters y entusiasmo para adquirir los conocimientos y habilidades de trabajo que se requiere de los profesionales capacitados en estas disciplinas.

ndice

Prctica 0Seguridad en el laboratorio

Prctica 1Esterilizacin de materiales y medios de cultivo

Prctica 2Tcnicas de siembra y aislamiento de bacterias y levaduras

Prctica 3 Tcnicas de tincin simple, diferencial y selectiva

Prctica 4. Pruebas de diferenciacin bioqumica

Prctica 5. Cultivo y morfologa de hongos filamentosos

Prctica 6. Cultivo y morfologa de microalgas

Prctica 7Cuantificacin de microorganismos

Prctica 8. Efecto de factores ambientales en la curva de crecimiento

Prctica 9. Efecto de la actividad de agua sobre el crecimiento microbiano

Prctica 10Evaluacin de agentes antimicrobianos

Anexos

Anexo 1. Preparacin de soluciones y colorantes

Anexo 2. Preparacin de medios de cultivo.

Bibliografa

Seguridad en el laboratorioAntecedentesDesde hace tiempo la Organizacin Mundial de la Salud (OMS) reconoce que la seguridad y, en particular, la seguridad biolgicason importantes cuestiones de inters internacional. En 1983, la OMS public la primera edicin del Manual de bioseguridaden el laboratorio; en la que se alentaba a los pases a aceptar y aplicar conceptos bsicos en materia de seguridad biolgica, ascomo elaborar cdigos nacionales de prcticas para la manipulacin sin riesgo de microorganismos patgenos en los laboratoriosque se encuentran dentro de sus fronteras nacionales.La tercera edicin del Manual de bioseguridad en el laboratorio de la OMS (2005) proporciona la informacin ms actualizadapara abordar los aspectos de la seguridad y la proteccin biolgica que se plantean en el nuevo milenio. Asimismo, subrayala importancia de la responsabilidad personal. Adems, hace reflexionar sobre los recientes acontecimientos mundiales quehacen evidente los peligros para la salud pblica derivados de la liberacin o el uso indebido de agentes y toxinas microbianos.Como profesionales de estas disciplinas, es importante conocer los principios bsicos de seguridad en el trabajo con microorganismos,considerando los peligros relativos que implican su manejo. De acuerdo con el potencial que tienen los microorganismospara infectar al ser humano y los animales, se les ha clasificado en grupos de riesgo, que se presentan en la Tabla 1.

La OMS y los NationalInstitutes of Health(NIH) de los Estados Unidos, han propuesto las bases para la jerarquizacin de loslaboratorios en funcin del grupo de riesgo al que pertenecen los microorganismos que manejan, indicando las condiciones deacceso, tipo de personal, equipo especial y diseo especfico de las instalaciones.Normas de seguridad en los laboratorios de docenciaEl Consejo Divisional de CBS aprob un Instructivo del Funcionamiento Interno y Operativo para Regular el Uso de los Serviciose Instalaciones de los Laboratorios de Docencia que fue aprobado por el Consejo Acadmico en la Sesin nmero 314 del 9de noviembre de 2009.

Tabla 1. Clasificacin de microorganismos infecciosos por grupos de riesgo.Grupo de riesgo 1 (riesgo individual y poblacional escaso o nulo)Microorganismos que tienen pocas probabilidades de provocar enfermedadesen el ser humano o los animales.

Grupo de riesgo 2(riesgo individual moderado, riesgo poblacionalbajo)Agentes patgenos que pueden provocar enfermedades humanaso animales pero que tienen pocas probabilidades de entraar unriesgo grave para el personal de laboratorio, la poblacin, animales oel medio ambiente. La exposicin en el laboratorio puede provocaruna infeccin grave, pero existen medidas preventivas y teraputicaseficaces y el riesgo de propagacin es limitado.

Grupo de riesgo 3(riesgo individual elevado, riesgo poblacional bajo)Agentes patgenos que suelen provocar enfermedades humanas oanimales graves, pero que de ordinario no se propagan de un individuoa otro. Existen medidas preventivas y teraputicas eficaces.

Grupo de riesgo 4(riesgo individual y poblacional elevado)Agentes patgenos que suelen provocar enfermedades graves en elser humano o los animales y que se transmiten con facilidad de unindividuo a otro, directa o indirectamente. Por lo regular no existenmedidas preventivas y teraputicas eficaces

Un aspecto muy importante que se incluye en este instructivo es el de cumplir en forma estricta las normas de seguridadpara evitar accidentes en el laboratorio, de manera particular en el captulo IV de las Normas de Seguridad Artculo17 que dice:En el trabajo de laboratorio es fundamental la seguridad e integridad fsica de las personas involucradas; por ello, no podrrealizarse ninguna prctica o actividad experimental si el ejecutante no cuenta con los elementos de proteccin indispensablespara su desarrollo o no cumple con las disposiciones normativas aplicables, para lo cual se debern cumplir siempre lassiguientes reglas.1. El uso de bata en el laboratorio es obligatorio cuando se realizan experimentos. Es recomendable vestir ropa sencilla, queproteja la mayor parte del cuerpo, de preferencia de algodn, zapatos cerrados, con suelas gruesas y sin tacones o plataformas,as como traer el pelo recogido.2. No introducir ni consumir alimentos o bebidas en el laboratorio. No fumar, ni tocarse la cara o los ojos con las manos.3. Lavarse de manera meticulosa las manos con jabn y agua antes de salir del laboratorio, incluso cuando salgan por brevesperiodos.4. Al manipular sustancias qumicas corrosivas o peligrosas se utilizarn guantes, lentes protectores y/o mascarillas. No sedeber pipetear oralmente ningn tipo de solucin o cultivo microbiano. Siempre se utilizarn propipetas adecuadas paraeste fin.5. No se admitirn visitas personales ni el uso de aparatos que distraigan la atencin y pongan en riesgo la seguridad en eltrabajo.6. Evitar la acumulacin de materiales innecesarios en las mesas de trabajo. Realizar las actividades de manera ordenada y ensilencio para evitar accidentes.7. Localizar extintores, botiqun y salidas de emergencia.Sobre los procedimientos1. Antes y despus de cada sesin prctica, los alumnos limpiarn las mesas de trabajo con el desinfectante que se le proporcionar.2. Cuando se utilice el mechero, este ser colocado en un lugar alejado del microscopio y otros equipos.3. En el caso de derrame de cultivos o ruptura de recipientes con cultivos activos, tratar de conservar la calma, inmediatamenteinformar al profesor y/o realizar el siguiente procedimiento:a. Colocar toallas de papel sobre el material derramado para evitar su dispersin.b. Agregar abundante solucin desinfectante sobre las toallas.c. Dejar transcurrir al menos 15 minutos, retirar las toallas y tirarlas en el receptculo destinado a la eliminacin de materialescontaminados.4. Al concluir cada sesin prctica, el estudiante se asegurar de que los materiales de desecho u objetos contaminados seancolocados en recipientes especficos para ello, as como en lugares apropiados. Debern esterilizarse tal y como indique elprofesor.Sobre el uso de instalaciones y equipos de laboratorio1. Operar un instrumento o aparato solamente cuando se sabe hacerlo, de otra manera, solicitar la ayuda del profesor, delayudante o del tcnico del laboratorio, para adquirir la destreza necesaria.2. Una vez concluido el uso de un aparato o instrumento, seguir el procedimiento adecuado para apagarlo, desconectarlo,guardarlo y entregarlo al responsable de su custodia.3. Siempre dejar perfectamente limpios todos los equipos utilizados (microscopios, balanzas analticas, autoclave, potencimetros,etc.) y reportar al maestro cualquier irregularidad en el funcionamiento.4. Verificar que las tomas de agua, gas y aire en el lugar de trabajo estn bien cerradas. Dejar limpias y secas las mesas detrabajo.Materiales indispensables en cada sesin de laboratorio1. El Manual de laboratorio.2. 2 cubre bocas y 1 par de guantes de ltex .3. Un pedazo de tela sin pelusa, cerillos, tijeras, cinta de enmarcar (masking-tape), marcador indeleble o etiquetas pequeas,jabn para manos.

Cuestionario1. Qu es la bioseguridad, de cuntos niveles consta y qu caractersticas posee cada uno de estos niveles?2. Mencione las diferencias entre un laboratorio de microbiologa y un laboratorio convencional.3. Mencione los pasos a seguir cuando un cultivo lquido bacteriano se derrama sobre una superficie.4. Cules son los riesgos y problemticas en el grupo que se tendrn al no seguir las indicaciones recomendadas?

Prctica 1Esterilizacin de materiales y medios de cultivoObjetivosQue el alumno conozca los principios generales de la preparacin y tcnicas de esterilizacin de diversos materiales y mediosde cultivo de uso comn en Microbiologa. Conocer el efecto de las condiciones de asepsia en el control de la contaminacinmicrobiana en el laboratorio.IntroduccinLa esterilizacin es un mtodo de eliminacin total de todo tipo de organismo que asegura la ausencia absoluta de cualquierforma viviente. Una esterilizacin deficiente o manipulacin incorrecta de materiales y medios de cultivo conlleva a contaminaciones, resultados errneos o prdida del material biolgico. Por ello, se requieren buenas prcticas de laboratorio para suadecuado manejo.La esterilizacin por calor seco o hmedo son los mtodos que se utilizan con mayor frecuencia en el Laboratorio de Microbiologa.El calor seco destruye a los microorganismos por oxidacin, por ejemplo, al exponerlos directamente a la flama de unmechero o en horno a 150-180C durante 2 horas. Estos mtodos se aplican en la esterilizacin de asas de inoculacin y paratodo tipo de material de vidrio y quirrgico.Los procesos con calor hmedo afectan la estabilidad de estructuras celulares y protenas; se aplican para esterilizar mediosde cultivo, soluciones termoestables, materiales de vidrio y cultivos bacterianos que se desechan.El equipo de uso comn es la autoclave, que utiliza vapor de agua a presin (15 lb/in2); con esta presin el material alcanzauna temperatura de 121 C y si se mantiene durante 15 minutos se asegurar la inactivacin de endosporas, que son las estructurasbacterianas ms resistentes al calor.Como en los estudios de microbiologa se requiere la esterilizacin de espacios, superficies y materiales de naturaleza diversa (plstico, vidrio, instrumentos, medios de cultivo, cultivos para desechar, etc.), hay diferentes mtodos que se aplicarn deacuerdo con el tipo de materiales requeridos, tal como se observa en la Tabla 2.

Tabla 2. Mtodos de esterilizacin.HmedoVapor a presin (autoclave)

CalorAire caliente (horno)

SecoFlameado

Incineracin

Mtodos fsicosFiltracinFiltros de membranas o filtros absolutos

Flujo laminar

No ionizantesRayos ultravioleta

Rayos infrarrojos

RadiacionesRayos X

IonizantesRayos (cobalto-60)

Radiacin electrnica de alta energa

gasesxido de etileno

Mtodos qumicosFormaldehido

lquidosBeta propiolactona

MaterialesPor equipoPor grupo

12 tubos de cultivo de 16 x 150 mm con rosca2 autoclaves con base, canastilla y vlvula

4 tubos de cultivo de 16 x 150 mm sin rosca2 balanzas analticas

15 cajas Petri de vidrio1 horno (temperatura>150C)

10 pipetas serolgicas de 1.0 mL1 incubadora

5 pipetas serolgicas de 10 mL1 refrigerador

2 pipetas Pasteur2 pares de guantes de asbesto

4 matraces Erlenmeyer de 500 mLescobillones, fibra, detergente y toallas de papel

1 matraz Erlenmeyer de 1000 mL

1 matraz volumtrico de 100 mLMedios y Reactivos

3 vasos de precipitados de 100 mLcaldo nutritivo (CN)

1 probeta de 250 mLagar bacteriolgico

2 parrillas de calentamiento con agitacinagar papa dextrosa (PDA)

2 agitadores magnticosagar eosina azul de metileno (EMB)

1 gradillaSoluciones amortiguadoras pH 4 y 7

3 propipetas mecnicas (1.0, 5.0, 10 mL)HCl

3 esptulasNaOH

2 mecheros Fisher

1 piceta con agua destilada

1 piceta con alcohol al 70%

1 potencimetro

Papel manila o estraza para envolver

Algodn y gasa

ProcedimientosEl profesor har la demostracin para: envolver las cajas Petri y pipetas con papel estraza, as como elaborar tapones y capuchonespara tubos y matraces.

Preparacin del material de vidrio y medios de cultivo1. Lavar en forma respectiva el material de vidrio y enjuagar con abundante agua corriente.

2. Escurrir el exceso de agua y enjuagar el material con agua destilada. Dejar escurrir el material sobre una toalla o papel deenvolver.

3. Preparar 200 mL de CN en un matraz Erlenmeyer de 500 mL y ajustar el pH a 6.5-7.0 con un potencimetro, agregando conuna pipeta Pasteur poco a poco solucin de HCl 0.1M o solucin de NaOH 0.1M en caso de que el pH sea ms alcalino ocido respectivamente. Vaciar 5 mL en cuatro tubos de cultivo con tapn de rosca que se cerrarn sin llegar al tope.

4. Preparar agar nutritivo (AN) agregando 2.7 g a los 180 mL del CN restante (15 g/L).5. Calentar el medio en una parrilla con agitacin constante hasta ebullicin (cuidar que no se proyecte) y vaciar 5 mL de medio en cuatro tubos con tapn de rosca. Enjuagar de inmediato la pipeta para evitar que se solidifique el agar.6. Preparar 200 mL de medio de cultivo PDA en un matraz Erlenmeyer de 500 mL, ajustar el pH del medio a 5.6. Colocar unagitador magntico y calentar hasta ebullicin, cuidando que no se proyecte o derrame. Vaciar 5 mL de medio en cuatrotubos sin rosca que se taparn con tapn de algodn y gasa.

7. Preparar 200 mL de medio de cultivo EMB en un matraz Erlenmeyer de 500 mL. Colocar un agitador magntico y calentar hasta ebullicin. NOTA: Cuidar que no se derrame!

Esterilizacin de materiales y medios de cultivo1. Las cajas Petri y pipetas envueltas con papel estraza se colocarn en un horno a 150C durante 2 horas. Despus de sacarlas,dejar enfriar y abrir los paquetes nicamente en rea asptica (cerca del mechero).2. Los medios de cultivo se esterilizarn en autoclave de acuerdo con las siguientes instrucciones:a. Revisar que el agua en la autoclave est limpia y el nivel coincida con la marca en el tubo indicador. En caso necesariocambiar o aadir agua destilada.b. Conectarla y poner la perilla de control en calentamiento mximo. Con el uso de guantes de asbesto, acomodar losmedios y materiales en la canasta de la autoclave y colocarla dentro.c. Cerrar la tapa, apretar las manijas de dos en dos en posicin encontrada y esperar a que salga el vapor por el orificiode purga, despus cerrarlo con la vlvula.d. Dejar que el equipo se caliente hasta alcanzar los 121C o 15 lbs /in2 de presin y mantener estas condiciones durante15 minutos. Revisar continuamente el manmetro y regular el control de temperatura a valor medio o mnimo.e. Apagar la autoclave y dejar que la presin baje al valor de cero. Quitar la vlvula y con la ayuda de guantes de asbesto,abrir cuidadosamente la tapa, desde la parte trasera para evitar que el vapor caliente cause quemaduras.

Vertido de los medios en cajas Petri y solidificacin.1. Cerrar los tubos con tapn de rosca, los que contienen agar se colocarn en una superficie inclinada para que el mediosolidifique a una distancia aproximada de 1-2 cm de la boca del tubo.2. Enfriar los medios de cultivo de los matraces hasta una temperatura aproximada de 45-50C, que coincide con la posibilidadde sostener el matraz en la palma de la mano sin quemarse.3. Limpiar la mesa con solucin de alcohol al 70% (v/v), encender mecheros y colocarlos a una distancia de 50 cm. Verterentre 20 y 25 mL de cada uno de los medios en tres cajas Petri en esta zona asptica. Dejar que los medios solidifiquen.

Prueba de esterilidad de materiales1. Abrir una caja Petri de AN, EMB y PDA, as como un tubo de CN y PDA durante 1 minuto en zonas no aspticas (patio, aulas, comedor) y etiquetarlas.2. Abrir una caja Petri de AN, EMB y PDA, as como un tubo de CN y PDA durante 1 minuto en zona aspticas (cerca delmechero) y etiquetarlas.3. Colocar los tubos y las cajas Petri en una incubadora ajustada a 30C durante 24-48 horas. Las cajas Petri se colocarn conla tapa hacia abajo.4. Revisar los tubos y cajas Petri para detectar la presencia de contaminantes, por la aparicin de turbidez, nata superficialy/o depsito de material en el fondo de los tubos con medio lquido, as como la formacin de colonias microbianas en lasuperficie de los medios slidos.ResultadosA. Reportar el crecimiento en forma cualitativa: (-) no hay crecimiento, (+) poco crecimiento, (++) crecimiento regular y (+++) crecimiento abundante.B. Describir la morfologa de las colonias en el Cuadro 1.C. Discutir los resultados con base en la efectividad de la esterilizacin y manejo de los materiales.Cuadro 1. Descripcin del crecimiento de colonias en cajas Petri y apariencia de tubos con medios de cultivo.Medio de cultivoEn el rea no aspticaEn el rea acptica

Agar nutritivoCaja

Tubo

Agar Papa Dextroza (PDA)Caja

Tubo

EMB agarCaja

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Qu caractersticas de un material o sustancia se requieren conocer para elegir el mtodo adecuado de esterilizacin?2. Qu diferencias observ en los resultados obtenidos en tubos y en cajas de Petri? Explique.3. Describa el tipo de contaminantes microbianos que se encuentran con mayor frecuencia en las cajas de Petri. Cmo explican estos resultados?4. Cules son las tres principales recomendaciones de uso correcto de la autoclave?

Prctica 2Tcnicas de siembra y aislamiento de bacterias y levadurasObjetivosQue el alumno aplique diferentes tcnicas de siembra y aislamiento de cultivos de bacterias y levaduras en medios slidos.Comprobar la utilidad que tienen los medios de cultivos de uso general, diferenciales y selectivos.IntroduccinEl cultivo de microorganismos es una actividad que requiere del conocimiento de tcnicas de siembra o inoculacin y de aislamiento para transferirlos de un medio a otro, o mantener su crecimiento y actividad. Es indispensable para realizar diversos estudios morfolgicos, de identificacin, bioqumicos, de patogenicidad y ecolgicos, entre otros.Existen diferentes tcnicas de siembra: por suspensin de la muestra en medios lquidos; extensin de diluciones de un cultivo en superficie de medios en caja de Petri; por estra en caja de Petri y tubos con medios solidificados en forma inclinada; por piquete o picadura en tubos con medios slidos o semislidos. Con la aplicacin de cada tcnica se obtiene informacin de importancia para el estudio bsico o aplicado de los microorganismos de inters.En la naturaleza, los microorganismos generalmente se encuentran en poblaciones, formando parte de comunidades de gran complejidad, por lo que uno de los objetivos de estudio ms importantes en microbiologa es aislarlos. El aislamiento de bacterias a partir de muestras naturales se realiza, en la mayora de los casos, mediante la tcnica de estra cruzada para producir colonias aisladas en cultivos slidos y as, obtener un cultivo puro o axnico, tambin conocido como cepa, que contiene un solo tipo de microorganismo con la misma composicin gentica.Cuando la tcnica por estra se aplica para aislar un microorganismo de inters a partir de mezclas donde se encuentra en pequeas cantidades, generalmente se obtendrn las bacterias dominantes. En este caso, se utilizan medios selectivos o de enriquecimiento, los que contienen nutrientes especiales, antibiticos, altas concentraciones de sales y/o condiciones de pH, luz o temperatura que incrementarn la poblacin del microorganismo de inters y se facilitar su aislamiento.Si se agregan a los medios de cultivo otros componentes como: sangre, colorantes, indicadores, es posible distinguir entre especies bacterianas por la forma en que metabolizan los sustratos y que se manifiesta por cambios en la apariencia del pH del medio de cultivo. Estos medios se conocen como medios diferenciales y son de gran utilidad para la caracterizacin e identificacin de especies bacterianas.

ProcedimientosEl profesor proporcionar cultivos puros (cepas) de bacterias Gram (+): Bacillussp., Micrococcussp., Gram (-): Escherichiacoli y un cultivo de la levadura Saccharomycescerevisiae, as como una muestra problema (con al menos dos microorganismos diferentes). Cada equipo de trabajo inocular E. coli, una bacteria Gram +, la levadura y un cultivo problema en una caja de cada medio.Tcnica de estra cruzada (Figura 1)A. Dividir cada una de las cajas Petri por la parte de atrs en cuatro cuadrantes. Esterilizar el asa con calor en el mechero.B. Dejar enfriar el asa y tomar la muestra de una colonia.C. Inocular la muestra haciendo 4 o 5 estras simples muy juntas de lado a lado sobre el primer cuadrante de la caja, cerrar la caja. Flamear el asa de inoculacin y hacer girar la caja Petri un cuarto de vuelta.D. Abrir nuevamente la caja y con el asa de siembra esterilizada y fra, tocar la superficie del de estras recin hechas en un punto alejado del inicio. Hacer un segundo grupo de estras como en el caso anterior. Realizar el mismo procedimiento en el tercer cuadrante y en el ltimo cuadrante, sin flamear el asa de siembra har una estra ms abierta (simple).F. Las cajas con la base hacia arriba se incuban a 35C durante 24-48 horas.

Siembra en tubos y condiciones de incubacin (Figura 2)A. Despus de la incubacin de los cultivos, seleccionar, de las cajas Petri con AN, la colonia ms aislada de cada cepa.B. Transferir con el asa, previamente esterilizada y fra, una pequea muestra de la colonia a un tubo de CN.C. Transferir de la misma forma una muestra de la misma colonia inoculando por estra los tubos inclinados con AN y PDA.D. Incubar los tubos a 35C durante 24-48 hrs. Observar la aparicin de colonias y reportar la forma de crecimiento de los microorganismos.

ResultadosA. Reportar en el Cuadro 2, sus resultados de siembra de las cepas en cada medio de cultivo.B. Describir la morfologa colonial representativa de cada cultivo microbiano de acuerdo con los criterios indicados en los cuadros 3 a 6.C. Verificar el tipo de microorganismos que corresponden a la muestra problema, en comparacin con los cultivos puros.

Cuadro 2. Resultados de crecimiento (C) y aislamiento (A) de cepas en medios de cultivo. (-) no hay crecimiento o no se aisl; (+) hay crecimiento, s se aisl.

Cuadro 3. Morfologa colonial de cultivos microbianos en AN

Cuadro 4. Morfologa colonial de cultivos microbianos en EMB agar

Cuadro 5. Morfologa colonial de cultivos microbianos en PDA

Cuadro 6. Descripcin de cultivos en tubos con CN, AN y PDA

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Por qu se considera que un cultivo puro supone condiciones no naturales? Qu reflexiones hara sobre los resultados obtenidos en laboratorio con este tipo de cultivo?2. Cules son las ventajas y desventajas de la tcnica de estra cruzada? Proponga otras tcnicas de aislamiento en medios slidos que se aplican en microbiologa.3. Para qu se inocularon tubos con medios lquidos y tubos con medios slidos por estra?4. Investigue la composicin qumica de los medios AN, EMB y PDA. Explique qu tipo de medios son con base en composicin y uso.

Prctica 3Tcnicas de tincin simple, diferencial y selectivaObjetivosQue el alumno aprenda las tcnicas de preparacin de frotis, fijacin y tincin ms utilizadas en el estudio microscpico de cultivos microbianos. Que obtenga la informacin bsica para hacer la descripcin inicial de los microorganismos.IntroduccinLos microorganismos vivos o activos son por lo general incoloros (excepto algas y cianobacterias), por los que no se observarn con facilidad en un microscopio ptico de campo claro por la falta de contraste entre las clulas y el medio circundante, por lo que es necesario fijarlos y teirlos en un frotis.Un frotis se prepara distribuyendo una pequea suspensin de los microorganismos sobre una superficie transparente que, posteriormente, se fija a la superficie con calor o solventes orgnicos; lo que causar la inactivacin o muerte celular y algunas modificaciones de sus caractersticas.Existen diferentes tipos de tinciones: simple, diferencial y selectiva, de acuerdo con el nmero y tipo de colorantes utilizados y de los objetivos de estudio. La tincin que hace uso de un solo colorante es la simple.Las tinciones diferenciales permiten diferenciar microorganismos con caractersticas superficiales distintas, por lo que requieren ms de un colorante. La ms utilizada en bacteriologa es la propuesta por el mdico dans Christian Gram en 1884, que clasifica los cultivos bacterianos de menos de 24 horas en Gram positivas y Gram negativas.Las tinciones selectivas permiten observar estructuras especializadas que son tiles para la clasificacin taxonmica de bacterias.Por ejemplo, la tincin de endosporas permite identificar bacterias de tipo Bacillusy Clostridium.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar cultivos lquidos y slidos de cada una de las cepas de estudio y un cultivo problema. El equipo de trabajo preparar frotis de los dos tipos de cultivos y har tincin simple de S. cerevisiae; tincin de Gram de Micrococcussp.,Escherichiacoli., Bacillussp., as como la tincin selectiva de endosporas en cultivos de Bacillussp. Tambin aplicarn estas tcnicas en el cultivo problema.Preparacin de frotis (Figura 3)A. Lavar perfectamente los portaobjetos, secarlos con papel y etiquetarlos.B. Encender el mechero y esterilizar el asa en la flama hasta que se ponga al rojo vivo. Dejar enfriar el asa para evitar la quema y destruccin de los microorganismos. Si los frotis son de cultivos slidos, se colocar en el centro del portaobjetos una gota de agua destilada.C. Acercar la caja de Petri con el cultivo o el tubo, quitar el tapn del tubo, flamear la boca e introducir el asa para tomar la muestra. Colocar la muestra en el centro del portaobjetos, extenderla suavemente en rea circular de ms o menos 2 cm de dimetro y esterilizar el asa. Dejar secar el frotis al aire.D. En el caso de cultivos lquidos, se toma la muestra del tubo: de manera directa y se realiza el mismo procedimiento antes descrito.Fijacin del frotisE. Los frotis de cultivos slidos se fijarn con calor, pasando el portaobjetos rpidamente 2-3 veces por la flama del mechero.F. Los frotis de medios lquidos se fijarn colocando dos gotas de etanol absoluto, que se dejarn secar al aire (precaucin: hacer esto en zona alejada del mechero).

Tincin simple1. Cubrir el frotis de S. cerevisiaey de la muestra problema con 1 gota de azul de metileno durante 60 segundos.2. Eliminar el exceso de colorante con la piceta de agua destilada y dejar secar al aire.Tincin de Gram1. Cubrir el frotis de Micrococcussp., E. coli, Bacillussp. y de la muestra problema con 2 gotas de cristal violeta durante 60 segundos. Lavar cuidadosamente el frotis con agua destilada para eliminar el exceso de colorante.2. Eliminar el exceso de agua y cubrir el frotis con 2 gotas de lugol por 30 segundos. Lavar con precaucin el frotis con agua.3. Inclinar el portaobjetos y aplicar gota a gota el decolorante hasta que no fluya ms colorante. Lavar de inmediato con agua.4. Aplicar 2 gotas de safranina durante 30 segundos. Lavar de nuevo con agua, quitar el exceso de agua y dejar secar al aire.Tincin selectiva de endosporas1. Colocar un pequeo trozo de papel filtro sobre un frotis de Bacillus sp.2. Agregar verde de malaquita sobre el papel filtro de tal manera que cubra toda la preparacin.3. Colocar el portaobjetos sobre un vaso de precipitados con agua en ebullicin.4. Dejar durante 5 minutos evitando que se seque el colorante (agregar un poco ms, si es necesario).5. Eliminar el colorante con agua destilada y cubrir con safranina durante 30 segundos.6. Lavar nuevamente, quitar el exceso de agua y dejar secar al aire.Observacin al microscopio.1. Limpiar con precaucin los objetivos y el ocular del microscopio con papel seda.2. Ajustar el haz de luz en el centro del campo de observacin (iluminacin Khler), siguiendo las indicaciones del profesor.3. Colocar los portaobjetos en la platina y localizar la preparacin con el objetivo de 10X, despus pasar al de 40X. Para la observacin con el objetivo de 100X colocar previamente una pequea gota de aceite de inmersin sobre la preparacin.4. Al finalizar las observaciones, limpiar el objetivo con papel seda para eliminar el exceso de aceite y evitar incrustaciones que daan estos sistemas.ResultadosA. Reportar las observaciones microscpicas en los Cuadros 7- 9.B. Comparar sus observaciones con la informacin reportada en la literatura.

Cuadro 7. Observaciones microscpicas de cultivos con tincin simple.

Cuadro 8. Observaciones microscpicas de cultivos con tincin de Gram

Cuadro 9. Descripcion microscpica de endosporas

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Cules son las fuentes de error ms frecuentes en la preparacin y fijacin de frotis?2. Cul es la descripcin general de un microorganismo que puede reportar en un estudio microscpico aplicando lastcnicas de la prctica?3. Cules son las fuentes de error ms frecuentes en la tincin de Gram?4. Si se aplica la tincin de Gram de Bacillussp. conendosporas Cmo se observaran la clula vegetativa y la endospora?Por qu?

Prctica 4Pruebas de diferenciacin bioqumicaObjetivosQue el alumno demuestre los tipos de metabolismo bacteriano utilizando las pruebas bioqumicas. Observar la capacidad deutilizacin de diferentes sustratos y condiciones de oxgeno por las bacterias, de importancia para su caracterizacin bioqumica.IntroduccinEl metabolismo es el conjunto de reacciones que ocurren en los seres vivos, que incluye procesos de obtencin de energa,tales como, descomposicin de molculas orgnicas en los quimitrofos (catabolismo) o la captacin de luz para el caso de losfottrofos. Asimismo, se encuentran las de sntesis de material celular a partir de nutrientes esenciales (anabolismo).Todas las reacciones metablicas son catalizadas por enzimas que en su mayora son intracelulares aunque hay tambinextracelulares, sobre todo hidrolticas, que son liberadas por la clula para catalizar reacciones fuera de esta.Es posible conocer las caractersticas metablicas de los microorganismos por su inoculacin en medios de cultivo con diversossustratos que puedan ser utilizados como fuentes de energa, carbono, donadores de electrones, as como de otros nutrientesesenciales necesarios para su crecimiento.Existen numerosas pruebas bioqumicas con medios de cultivo adicionados de indicadores de pH para detectar la produccinde cido o lcali, con inhibidores selectivos como bilis, cianuro o con colorantes, sulfuros, etc. que facilitan la determinacinde diferentes actividades metablicas. Las actividades que se evalan con mayor frecuencia son: capacidad para fermentarcarbohidratos (glucosa, lactosa, sacarosa), paracatabolizar aminocidos y urea, la produccin de enzimas hidrolticas especficasde tipo endo o exo como oxidasas, reductasas, amilasas, lipasas, etctera.Por la importancia que tienen estas pruebas bioqumicas para la identificacin de especies bacterianas en reas de alimentos,clnica y ambiental, se han desarrollado sistemas bioqumicos miniaturizados (Api), Micro ID, Microgen que se realizan en formams rpida y segura pero que mantienen los criterios de evaluacin de las pruebas bioqumicas convencionales.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar cultivos puros de Bacillus subtilis, Escherichia coli, Pseudomonas fluorescens y Klebsiella sp. Cada equipo trabajar con un cultivo puro y un cultivo problema, que inocularn en diferentes medios de cultivo para evaluar diferentes actividades metablicas. Compartirn sus cuadros de resultados con los otros equipos.Nota: Los tubos con medio TSI y medio de citrato de Simmons se dejan solidificar en forma inclinada; los tubos con agar gelatina nutritiva y medio SIM en forma recta. Uno de los tubos de cada medio se etiqueta como control y no se inocular pero se incubarn de la misma forma que los tubos inoculados.Fermentacin de carbohidratos1. Inocular cada cepa en una serie de tubos de caldo rojo fenol con glucosa, lactosa, sacarosa y manitol.

2. Incubar los tubos a 35C durante 24 a 48 horas. 3. Hacer observaciones a las 24 y 48 horas de incubacin. Determinar si hay crecimiento, cambios en el color del indicador y produccin de gas en la campana de Durham (medios de glucosa, lactosa, sacarosa y manitol rojo de fenol).

Criterios de evaluacin:Produccin de cidoPrueba positiva (+): color amarilloPrueba negativa (-): color rojoProduccin de gasPrueba positiva (+): Burbujas en campana de DurhamPrueba negativa (-): Sin burbujasUtilizacin de urea, azcares, protenas y produccin de sulfuros1. Inocular cada cepa en tubos de caldo urea, leche tornasolada. Los tubos con TSI Agar se inoculan primero por picadura en el fondo del tubo y terminar con estra simple en la superficie.2. Incubar los tubos a 35C durante 24 a 48 horas.3. Hacer observaciones a las 24 y 48 horas de incubacin.Criterios de evaluacin:Caldo ureaPrueba positiva (+): rojo cerezaPrueba negativa (-): rosaTSI-Para la produccin de H2SPrueba positiva (+): ennegrecimiento del medioPrueba negativa (-): no hay ennegrecimiento-Fermentacin de azcares:Sin fermentacin de azcares: Medio alcalino, color rojo en pico de flauta sin cambio en profundidad-Fermentacin de los azcares: Medio cido, color amarillo en pico de flauta y profundidadFermentacin de glucosa: Alcalino/cido, color rojo en pico de flauta y amarillo en profundidadProduccin de gasPrueba positiva (+): Separacin ruptura del agarPrueba negativa (-): Sin cambioLeche tornasolada-Cambio de color:Fermentacin de la lactosa: cido color rosaFormacin de CO2 e H2: gasLiberacin de amonaco: alcalino color azul prpura Reduccin del tornasol: Incoloro (blanco)Formacin de coaguloPeptonizacin (digestin): licuefaccinProduccin de sulfuros, indol y movilidad1. Inocular por picadura hasta el fondo del tubo cada uno de los tubos con agar SIM.2. Incubar los tubos a 35C durante 24 a 48 horas.3. Realizar observaciones a las 24 horas.Criterios de evaluacin:Produccin de H2SPrueba positiva (+): ennegrecimiento del medioPrueba negativa (-): no hay ennegrecimientoMovilidadPrueba positiva: hay una turbidez difusa del medio, Prueba negativa: slo hay crecimiento a lo largo de la picadura.Produccin de indolPrueba positiva: aparicin de color rojo cuando se agrega el reactivo de Kovacs, Prueba negativa: no hay aparicin de color.Asimilacin de citrato como fuente de carbono1. Inocular primero por picadura en el fondo del tubo y terminar con estra simple en la superficie.2. Incubar los tubos a 35C durante 24 a 48 horas.3. Realizar observaciones a las 24 y 48 horas.Criterios de evaluacin:Prueba positiva (+) viraje del medio a azulPrueba negativa (-) sin cambioActividades hidrolticas1. Inocular cada cepa por picadura (con el asa recta) en los tubos con gelatina nutritiva y por estra simple en la mitad de una caja de Petri con agar almidn.2. Incubar los tubos y la caja a 35C durante 24 a 48 horas.3. En los tubos de agar gelatina, observar si hubo licuefaccin del medio y despus agregar cuidadosamente 1-2 gotas de solucin de cido tricloroactico al 5%, observar la aparicin de zonas claras o turbidez en el medio.4. Observar la actividad de amilasas en la caja de agar almidn por el crecimiento de colonias y aparicin de zonas claras alrededor de la misma. Para mejor observacin, agregar unas gotas de lugol y localizar zonas claras cerca de las colonias y el color azul en la parte no inoculada del medio como indicativo de prueba (+).Actividad de catalasa1. Preparar en una gota de agua sobre un portaobjetos una suspensin de una colonia obtenida en medio de agar almidn.2. Agregar unas gotas de perxido de hidrgeno al 30%. Observar la formacin de burbujas que indican una prueba de catalasa (+).ResultadosA. Reportar los resultados en el Cuadro 10 con la notacin siguiente:Crecimiento: no hay crecimiento (-), crece un poco (+), crecimiento medio (++), crecimiento abundante (+++).Actividad metablica: Positiva (+), Negativa (-)B. Investigar los resultados bibliogrficos de cada una de las cepas y compararlos con los obtenidos en la prctica.C. Con base en sus resultados y la informacin bibliogrfica, identifique la especie bacteriana que corresponde a su cultivo problema.

Cuadro 10. Resultados de pruebas de diferenciacin bioqumica

Cuadro 10 (Cont.) Resultados de pruebas de diferenciacin bioqumica

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Describa las actividades enzimticas que se evalan en cada uno de los medios de cultivo utilizados en la prctica, indicando la reaccin bioqumica general.2. Por qu se recomienda evaluar las pruebas bioqumicas primero a las 24 horas y despus de 48 horas?3. Qu pruebas bioqumicas le permitieron comprobar la capacidad de oxidacin completa de la glucosa? Porque?4. Por qu se busca la precipitacin de sulfuros en el fondo del tubo de TSI y no en la superficie?

Prctica 5Cultivo y morfologa de hongos filamentososObjetivosQue el alumno adquiera los conocimientos bsicos para la manipulacin de hongos filamentosos y tcnicas de cultivo. Que describa las caractersticas morfolgicas macroscpicas y microscpicas e identifique algunas especies de hongos.IntroduccinLos hongos son organismos eucariotas, de mayor tamao y complejidad que las bacterias. Se distinguen de otros eucariontes, como los animales, por ser inmviles y, de las algas y plantas, por carecer de pigmentos fotosintticos. Son de nutricin hetertrofa; es decir, dependen de nutrientes orgnicos disueltos por sistemas enzimticos especficos, que son absorbidos a travs de su pared celular y membrana plasmtica.En este grupo de organismos se encuentran formas unicelulares (levaduras) o pluricelulares (filamentosos). Las levaduras son clulas de forma esfrica u oval, ampliamente distribuidas en la naturaleza; con frecuencia se encuentran formando una cubierta pulverulenta fina sobre frutos y hojas. Las levaduras se reproducen en forma asexual por gemacin, un proceso por el cual brota una protuberancia o yema de la clula madre que, posteriormente se separa como clula individual.Los hongos filamentosos (mohos) tienen una estructura vegetativa caracterstica denominada hifa. El conjunto de hifas ramificadas constituye el micelio. Las hifas de algunos hongos presentan tabiques transversales o septos, aunque en el caso de los hongos que pertenecen al grupo Zygomycota, las hifas no presentan estos septos y se conocen como hifas cenocticas.El principal mecanismo de reproduccin de los hongos es asexual por fragmentacin de hifas vegetativas o por la produccin de esporas en conidiforos y esporangiforos, formados en hifas areas, llamadas reproductivas.La presencia de estructuras de reproduccin sexual, es el principal criterio de clasificacin que permite ubicar a los hongos en tres divisiones o phyla: Zygomycota, Ascomycota y Basidiomycota. Otros criterios importantes para la clasificacin de los hongos son las caractersticas de las hifas y las estructuras de produccin de esporas asexuales.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar a los alumnos cultivos de: Aspergillus niger, Penicillium chrysogenum, Rhizopus oligosporus, Fusarium sp.Cada equipo de trabajo, inocular tres cepas en cajas de Petri con PDA y har la descripcin macroscpica y microscpica de cada especie. Compartirn sus cuadros de resultados con los otros equipos.Preparacin de materiales e inoculacin1. Lavar y preparar todo el material para esterilizar.2. Preparar medio PDA, esterilizar a 15 lb/pulg2 a 121C durante 15 min, enfriar el medio hasta aproximadamente 45C y vaciarlo en las cajas Petri.Siembra de hongos filamentosos1. Para sembrar los hongos filamentosos, se separa una parte de micelio de los hongos proporcionados por el profesor con asa de siembra, previamente esterilizada en la flama del mechero.2. Se coloca el micelio en el centro de una caja de Petri con medio por inoculacin por piquete.3. Se incuban las cajas de Petri en forma invertida, envueltas en papel o en una bolsa de plstico, a 28-30 C durante 3-5 das.Descripcin macroscpicaObservar las siguientes caractersticas de los hongos filamentosos:a) Forma, tamao y tipo de coloniab) Aspecto del micelio: algodonoso, aterciopelado, velloso, areo o pegado al medioc) Color del micelio y color de las esporasd) Cambios en el medio de cultivoDescripcin microscpica en montaje con cinta adhesiva1. Colocar una gota de azul de lactofenol en el centro de un portaobjetos limpio.2. Cortar una tira de 4-5 cm de cinta adhesiva transparente; con pinzas de diseccin doblar la cinta en U con el adhesivo hacia afuera.3. Abrir la caja Petri cerca del mechero y presionar suavemente la cinta adhesiva sobre la periferia de la colonia.4. Colocar suavemente la cinta con la muestra sobre la gota de azul de lactofenol, evitando la formacin de burbujas para no alterar las estructuras. La cinta funciona como cubreobjetos, no es necesario colocar uno.5. Dejar reposar durante 3-5 minutos y hacer observaciones en el microscopio con los objetivos de 10X y 40X. Localizar y observar hifas, estructuras especializadas como esporangiforos, esporangios, conidiforos, conidias y rizoides; determinar si las hifas presentan divisiones (septos).

ResultadosA. Reportar en el Cuadro 11 las observaciones macroscpicas y microscpicas de las cepas, indicando el nombre de cada una.B. Comparar las observaciones realizadas con la bibliografa.C. Investigar en la literatura cmo se clasifican los hongos estudiados en la prctica.

Cuadro 11. Descripcin morfolgica de hongos en medio PDA

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario

1. Qu diferencias hay entre los procedimientos de observacin e identificacin de bacterias, levaduras y hongos filamentosos?2. Cules son los principales criterios de identificacin de los hongos?3. Describa los tipos de esporas sexuales y asexuales que caracterizan a los diferentes phyla de hongos.4. Describa de manera breve tres problemticas causadas al hombre por hongos y tres ejemplos de sus aplicaciones industriales.

Prctica 6Cultivo y morfologa de microalgasObjetivoQue el alumno describa las caractersticas morfolgicas de las microalgas y conozca la diversidad de especies en muestras naturales.Que evale el crecimiento de microalgas en cultivos.IntroduccinLas microalgas son organismos eucariotas, acuticos, fotosintticos, que se encuentran en casi todos los ambientes iluminados y representan uno de los sistemas ms eficientes para la bioconversin de energa solar en molculas complejas y productores de oxgeno.Existen gneros representativos de agua dulce, salobre y marina, as como de aguas residuales y de embalses. Hoy en da, existen ms de 3000 especies de microalgas, las cuales han sido objeto de estudios taxonmicos y algunos enfocados a aspectos fisiolgicos y bioqumicos.El crecimiento de las microalgas en los sistemas acuticos se relaciona con la disposicin de nutrientes minerales, como nitratos y fosfatos, por lo que su crecimiento puede ser indicador de la calidad del agua. De esta manera, ms de 1 x 103 clulas/ mL de microalgas indican una cantidad excesiva de nutrientes.El inters de estudio de estos microorganismos se ha dirigido al cultivo para la produccin de compuestos biolgicamente activos, como es el caso de las toxinas, antibiticos, antifngicos, aminocidos, lpidos, hidrocarburos, biocombustibles, pigmentos, vitaminas y polisacridos, los cuales tienen aplicacin en la industria de cosmticos, diettica, farmacutica, agricultura, acuicultura y avicultura.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar una muestra de un cultivo puro de Chlorella. El profesor solicitar a cada equipo de trabajo, colectar en un frasco limpio y seco una muestra de agua de embalse de: canales de Xochimilco, Cuemanco, Lago de Chapultepec o de Aragn. Se inocularn las muestras de agua en medios de cultivo mineral. Compartirn sus cuadros de resultados con los otros equipos.Preparacin de materiales e inoculacin1. Cada equipo preparar 350 ml de medio mineral, vaciarn 150 ml de medio en 2 matraces Erlenmeyer de 250 mL; a uno de los matraces le agregarn 0.4 g NaNO3. Los 50 mL restantes se colocan en un matraz Erlenmeyer de 125 mL. Esterilizar los medios a 15 lb/pulg2 a121C durante 15 min.2. En condiciones aspticas, uno de los equipos inocular sus 2 matraces Erlenemeyer de 250 mL con 15 mL del cultivo de Chorella. Los otros equipos inocularn de la misma forma una muestra de embalse.3. Homogeneizar el cultivo agitando suavemente y tomar en condiciones aspticas, 2 ml de muestra de cada uno de los matraces (tiempo 0).4. Leer la densidad ptica a 660 nm calibrando el espectrofotmetro con medio de cultivo estril del matraz Erlenmeyer de 125 mL.5. Hacer preparaciones en fresco de las muestras de estudio y observar en el microscopio a 40X la morfologa de las microalgas.6. Incubar los matraces a 25-28 C, en agitador orbital a 100 rpm, con iluminacin natural o artificial durante una semana. Leer la densidad ptica a 660 nm y observar la morfologa de las microalgas en preparaciones en fresco.ResultadosA. Anotar los resultados de densidad ptica de los cultivos de microalgas, identificando el origen de las muestras en el cuadro 12.B. Describir la morfologa de las microalgas en el cuadro 13.C. Analizar y discutir los resultados obtenidos comparando con los que se reportan en la bibliografaCuadro 12. Resultados de densidad ptica de cultivos de microalgas con respecto al tiempo

Cuadro 13. Descripcin microscpica de cultivos de microalgas con respecto al tiempo

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Cul fue el efecto del nitrato en el crecimiento de microalgas de su muestra de estudio?2. Cmo influy el tiempo de incubacin en los tipos de microalgas observadas en su muestra de estudio?3. Investigue las aplicaciones industriales de microalgas en reas de: alimentacin, tratamiento de aguas, acuacultura, cosmticos, etctera.4. Podra recomendar esta metodologa para conocer el efecto de factores ambientales en el crecimiento de las microalgas? Explique.

Prctica 7Cuantificacin de microorganismosObjetivoQue el alumno aprenda la tcnica de dilucin y cuenta en placa para cuantificar microorganismos viables y que compare susresultados de la cuenta viable con los de cuenta directa en el microscopio.IntroduccinEl crecimiento microbiano se define como el aumento del nmero de microorganismos o de biomasa en un periodo de tiempo determinado. Existen diferentes mtodos para detectar y medir el crecimiento de microorganismos.La forma de cuantificar clulas viables ms utilizada en microbiologa es la de recuento en placa con medios de cultivo especficos para la poblacin de inters. Consiste en inocular un volumen determinado de cultivo o muestra sobre un medio de cultivo slido adecuado para el crecimiento de colonias el crecimiento de colonias. Cada una de estas deriva de una clula aislada; es decir, una unidad formadora de colonia (UFC).Hay dos variaciones en la forma de realizar esta tcnica: la siembra en superficie o vertido en placa. En ambos casos, a la muestra a cuantificar se le aplica el mtodo de diluciones sucesivas y cada dilucin se deposita en cajas de Petri estriles.Es recomendable homogenizar las diluciones y hacer la adecuada inoculacin de las muestras para evitar resultados errneos.Si no se separan bien las clulas, se obtendrn valores bajos y los valores sern elevados si la toma de muestra se hace del fondo del tubo donde se concentran los microorganismos por gravedad.El recuento directo consiste en la observacin al microscopio de volmenes muy pequeos de suspensiones de bacterias.En portaobjetos especiales denominados cmaras de Petroff-Hausser o de Neubauer.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar un cultivo lquido de Saccharomyces cerevisiae; todos los equipos de trabajo determinarn las UFC por diluciones decimales y siembra en placas con medio de cultivo. Se compararn estos resultados con los de cuenta directa en cmara. Al final, compartirn sus cuadros de resultados, calcularn la desviacin estndar de los resultados y compararan los resultados del grupo.Tcnica de dilucin y siembra en placa (Figura 4)1. En condiciones aspticas, pipetear 1 mL del cultivo del microorganismo o de la muestra problema y depositarla en el matraz Erlenmeyer con 99 mL de SSI. Esta corresponder a la dilucin 10-2. Hacer diluciones decimales del cultivo hasta 10-7.2. Para la inoculacin por la tcnica de superficie, se deposita 0.1 mL de cada una de las diluciones 10-3-10-7. Distribuir cuidadosamente el inculo en toda la superficie de la caja con una varilla de vidrio doblada en L que previamente se sumergi en alcohol, se pas en la flama del mechero y se dej enfriar.3. Dejar absorber el lquido durante 5-10 minutos. En caso de utilizar la tcnica de vertido se deposita 1.0 mL de la dilucin en la caja de Petri a la cual se le aaden ca. 20 mL de medio fundido (48-50C).4. Incubar las cajas en forma invertida a 30C durante 72 horas y realizar la cuenta de colonias.

Tcnica de cuenta directa en cmara de Neubauer (Figura 5)1. Se coloca 1 mL de cultivo microbiano original en un tubo de ensaye y se agrega 1 gota de azul de metileno. Mezclar y dejar en reposo durante 5-10 minutos.2. Lavar cuidadosamente la cmara de Neubauer sin frotar la zona brillante del centro y el portaobjetos. Secar con papel suave. Colocar el cubreobjetos sobre la zona central limitada por dos excavaciones laterales, donde se aprecia una zona cuadriculada en forma de cruz.3. Homogeneizar la muestra en vrtex, tomar de inmediato una alcuota con pipeta Pasteur de punta fina y depositar una gota entre la cmara y el cubreobjetos por el borde de la cmara, evitando el exceso, dejando que la muestra se distribuya por capilaridad.4. Reposar durante 5 minutos, colocar la cmara en la platina del microscopio y localizar con el objetivo seco dbil (10X) la zona de cuenta que se muestra en la Figura 5. El cuadro central mide 1.0 mm por lado y al observar en objetivo seco fuerte (40X) se encuentra dividido en 5X5 cuadros pequeos de 0.2 mm por lado.5. Observar que las clulas que se tien de azul son las no viables y las que no se tien son las viables. La cuantificacin de clulas se hace generalmente en el cuadro central a 40X, contando en diagonal las clulas de 9 cuadros (que a su vez estn divididos en 16 cuadros ms pequeos). Al dividir el nmero de clulas entre 9, se obtiene el # clulas/cuadro de 0.2 mm de lado.6. Se multiplica el # clulas/cuadro (de 0.2 mm) X 25 para obtener el # total de clulas/0.1 mm3 (1 mm x 1 mm de cada lado del cuadrante central x 0.1 mm de profundidad de la cmara), que se multiplicar por 104 para obtener el # clulas/mL.Hacer esta cuenta por duplicado.7. En el caso de que el cultivo est muy concentrado, se recomienda hacer diluciones (1:2, 1:5, 1:10 etc. segn sea necesario) para facilitar el conteo.

ResultadosA. Para calcular las UFC, clulas viables y no viables por mL de muestra original, se aplicar lo siguiente:En cajas de Petri:- Nmero de colonias promedio X (FD)= UFC/ mL, El factor de dilucin (FD) se calcula tomando en cuenta la dilucin que se seleccion como vlida para la cuenta (que tenga entre 30-300 colonias) y el volumen de muestra inoculado en cada caja.FD = 1Dilucin x Vol. inoculadoEn la cmara de Neubauer:- Nmero de clulas promedio/cuadro central X (Fd)= # clulas/ mLEl factor de dilucin (Fd) se aplicar solamente en casos de cultivos con alta densidad de clulas, en las que se hicieron diluciones de la muestra original para hacer una cuenta confiable.

B. Reportar los resultados de cuantificacin en los cuadros 14 y 15.C. Recopilar los resultados de los otros equipos y calcular la desviacin estndar y coeficiente de variacin de todos los datos.

Cuadro 14. Cuenta viable de Saccharomyces cerevisiae en placa.

Cuadro 15. Cuenta de Saccharomyces cerevisiae en cmara de Neubauer .

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Comparando el mtodo de dilucin en placa con el mtodo de cuenta directa en cmara de Neubauer para la cuantificacin de microorganismos Qu ventajas y desventajas tiene cada uno?2. Explique cules la importancia de realizar anlisis estadsticos de los resultados en este tipo de mtodos de cuantificacin de microorganismos.3. Explique la importancia de considerar el factor de dilucin en el clculo de UFC/mL.4. Investigue algunas aplicaciones de estas metodologas en reas de alimentos y microbiologa industrial.

Prctica 8Efecto de factores ambientales en la curva de crecimientoObjetivosQue el estudiante identifique las fases de una curva de crecimiento bacteriano en cultivo por lote. Que el alumno calcule y compare los parmetros cinticos y td en curvas de crecimiento obtenidas en diferentes condiciones ambientales.IntroduccinCuando se inoculan clulas bacterianas en un volumen finito de medio de cultivo apropiado, despus de cierto tiempo experimentarn un aumento del tamao y posterior divisin celular, por lo que se incrementar el nmero de clulas microbianas. El tiempo que requiere una clula para que a partir de esta se formen dos se llama tiempo de duplicacin (td).As, las clulas cultivadas van utilizando los nutrientes que tienen disponibles con la mayor eficiencia y rapidez, sintetizando sus componentes celulares y dividindose a una tasa de crecimiento especfico () hasta alcanzar un incremento mximo de biomasa celular denominado crecimiento total (Xt).Si se grfica el nmero de clulas o la cantidad de biomasa con respecto al tiempo, se obtendr una curva de crecimiento caracterstica con cuatro fases.El nmero de clulas y el tiempo de duracin de cada fase depender de la especie de microorganismo, la preparacin y estado fisiolgico del inculo, la composicin qumica del medio de cultivo y las condiciones ambientales de incubacin (T, pH, NaCl, O2).

Materiales

ProcedimientosEl profesor preparar un cultivo de Escherichia coli en un matraz Erlenmeyer con CN con 0.1 % de extracto de levadura y pH = 6.5; 12 horas antes de iniciar la prctica. Este cultivo (matraz A) se utilizar como inculo.El crecimiento se cuantificar, midiendo la turbidez del cultivo durante 4 horas de incubacin. Cada equipo trabajar diferentes condiciones de pH y temperatura.Preparacin de material y medios de cultivoa. Cada equipo preparar 120 mL de CN con 0.1% de extracto de levadura en un matraz de 250 mL. Ajustar al pH del medio a pH = 5.0 o pH = 7.0. segn corresponde.b. Colocar en 2 tubos de ensaye 10 mL del mismo medio que prepararon antes.c. Esterilizar en autoclave (15 lb/in2 por 15 min) las pipetas, medios de cultivo y tubos de ensaye vacos.Inoculacin de matraces y tratamiento de muestras (Figura 6)a. En condiciones aspticas, inocular 10 mL del cultivo de E. coli (del matraz A) en un matraz Erlenmeyer de 250 mL con 100 mL de caldo nutritivo (matraz B).b. Homogeneizar el cultivo agitando suavemente y tomar de inmediato, con pipeta estril, 3 mL que se pasan a un tubo de ensaye estril. Esta muestra corresponde al tiempo cero (t=0).c. Colocar el matraz B en un agitador orbital a una velocidad de 100 rpm, incubando a la temperatura correspondiente. De la misma forma, se tomarn muestras de 3 mL cada 30 min hasta completar 4 horas de incubacin.d. Leer la densidad ptica (D.O.) de cada muestra en un espectrofotmetro a 560 nm, previamente calibrado con medio de cultivo estril. Cuando las muestras reporten una D.O. igual o mayor a 0.8, se prepararn diluciones con caldo de cultivo estril. (Fd)

ResultadosA. Registrar los datos de D.O. del cultivo de E. coli para cada condicin de pH y temperatura con respecto al tiempo en el Cuadro 16.B. Elaborar una grfica de D.O. vs tiempo para cada condicin de pH y temperatura e identificar las fases de crecimiento y la duracin (t) de cada una. C. Elaborar una grfica de ln D.O. vs tiempo para cada condicin de pH y temperatura e identificar la fase de crecimiento exponencial.D. Determinar la tasa especfica de crecimiento () con los datos de la fase exponencial y calcular el tiempo de duplicacin de E. coli en cada condicin de pH y temperatura.E. Discutir cmo influyeron las condiciones estudiadas en la duracin de las fases de crecimiento, en el td y en la de crecimiento.

Cuadro 16. Resultados de crecimiento de E. coli cultivada en diferentes condiciones de pH y temperatura.

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Explique los eventos que ocurren a nivel celular en cada una de las fases del crecimiento bacteriano.2. Qu hara para disminuir o eliminar la fase de adaptacin en la curva de crecimiento?3. Cules fueron las condiciones ptimas de crecimiento de E. coli? Cmo relaciona estos resultados con los reportados en la bibliografa?4. Cul es la importancia y aplicacin de los estudios de cintica del crecimiento microbiano?

Prctica 9Efecto de la actividad de agua sobre el crecimiento microbianoObjetivosQue el alumno observe y comprenda el efecto de la adicin de altas concentraciones de solutos en el crecimiento de bacterias y hongos. Que el alumno establezca la relacin entre la concentracin de solutos, la actividad de agua y el crecimiento microbiano.IntroduccinCualquier solucin est formada por un soluto y por el solvente en el cual este se disuelve. La concentracin del soluto se relaciona con un fenmeno conocido como presin osmtica; que es la fuerza con la que el solvente se mueve de una solucin de baja concentracin de soluto a una mayor concentracin a travs de una membrana semipermeable, por lo que tambin se define como la presin que se debe aplicar a una solucin para detener el flujo neto de solvente.El aumento en la concentracin de solutos en la fase acuosa de un alimento, por ejemplo, mediante su deshidratacin o por la adicin de nuevos solutos, tambin provoca una disminucin en la actividad de agua (aw). Cuando se disuelve un soluto en agua pura, la cantidad de agua disponible o agua libre se reduce, conduciendo a una disminucin en el valor de aw. La aw se define como la relacin entre la presin de vapor de una solucin o un material (P) y la presin de vapor del agua pura (P0) a la misma temperatura, a travs de la siguiente ecuacin:

Donde n1 y n2 son el nmero de moles de soluto y solvente respectivamente.

Como una alta concentracin de solutos reduce la aw, al establecerse estas condiciones se limitar el crecimiento de muchas bacterias por el efecto osmtico en sus membranas.Este efecto se utiliza de manera amplia para la conservacin de alimentos, debido a que la mayora de los microorganismos no toleran estas acondiciones adversas, sin embargo, existen algunos que toleran o incluso requieren para su desarrollo bajos valores de aw (xerfilos), con altas concentraciones de azcares (osmfilos) o de sales (halfilos), por tener mecanismos de adaptacin especficos por cada tipo de microorganismo.Los microorganismos tolerantes a estas condiciones se encuentran principalmente en: mermeladas, carnes y frutos secos; tambin habitarn en lagos salados, en desiertos y salinas condiciones donde la mayora de los microorganismos se deshidrataran rpidamente.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar cultivos de: Bacillus subtilis, Staphylococcus sp. Saccharomyces rouxii y Aspergillus niger. Los equipos de trabajo inocularn las cuatro cepas en diferentes medios y se observar la respuesta. Compartirn sus cuadros de resultados de crecimiento con el grupo para calcular la desviacin estndar y el coeficiente de variacin de los resultados.Preparacin y esterilizacin de medios de cultivo1. Cada equipo preparar 200 mL de cada uno de los siguientes medios: AN con NaCl 0, 5 y 10% (p/v) o AN con sacarosa 0,10 y 20% (p/v).2. Esterilizar los medios preparados en autoclave a 15 lb/in2 durante 15 min.3. En condiciones aspticas, vaciar en cada caja de Petri entre 20 y 25 mL de cada medio. Dejar que los medios enfren y solidifiquen.4. Etiquetar las cajas con la concentracin de sal o azcar correspondiente.5. Dividir cada caja en cuatro cuadrantes con el uso de un plumn indeleble e indicar el nombre de cada microorganismo a inocular.Inoculacin de microorganismos (Figura 7)1. Con el asa estril, inocular en lnea el microorganismo correspondiente en cada cuadrante de la caja. Cada equipo inocular cada una de las cepas en cada caja con los diferentes medios.2. Incubar las cajas en forma invertida a 30C durante 48 horas y observar el crecimiento.

Observacin y medicin del crecimiento1. Medir el ancho promedio de cada lnea inoculada y registrarla. El ancho de las lneas crecidas en las cajas con 0 % de sacarosa sern el control de crecimiento (+++).2. Describir la morfologa de un microorganismo de cada tipo (bacterias, levadura y hongo).ResultadosA. Reportar el crecimiento microbiano en el Cuadro 17.B. En el Cuadro 18 se reportarn las observaciones macroscpicas y microscpicas de cada tipo de microorganismo.C. Discutir los resultados con base en la capacidad de cada microorganismo para crecer en diferentes concentraciones de NaCl o sacarosa. Comparar los resultados obtenidos con la literatura.Cuadro 17. Crecimiento de cepas microbianas en medios con NaCl y sacarosa.

* Registre la densidad relativa, considerando como control (+++) el crecimiento observado en la caja con 0 % del soluto.Cuadro 18. Descripcin macroscpica (Macro) y microscpica (Micro) de cepas en medios con NaCl y sacarosa.

*Observar en preparaciones con tincin de Gram.**Observar en preparaciones con cinta adhesiva transparente y azul de lactofenol.

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. Qu relacin hay entre la aw y la concentracin de solutos de un medio?2. Qu diferencias observaron en las respuestas de crecimiento de bacterias y hongos en los medios de cultivo con altas concentraciones de solutos?3. Explique el efecto de altos niveles de NaCl y de sacarosa a nivel celular El efecto es igual en bacterias y hongos?4. Explique los mecanismos de adaptacin de los microorganismos osmfilos y halfilos para sobrevivir.

Prctica 10Evaluacin de agentes antimicrobianosObjetivoQue el alumno conozca las tcnicas microbiolgicas comnmente utilizadas en la evaluacin de agentes antimicrobianos sobre cepas bacterianas y observe la respuesta frente a diferentes tipos de compuestos.IntroduccinLos antimicrobianos son compuestos que se obtienen a partir de bacterias, hongos y levaduras o de forma sinttica. Los de origen microbiano por lo general son metabolitos secundarios producidos durante la fase estacionaria de crecimiento.Los agentes antimicrobianos presentan toxicidad selectiva, son muy efectivos contra los microorganismos, por lo que se utilizan como agentes quimioteraputicos para el tratamiento de enfermedades infecciosas en seres humanos y animales.Los antimicrobianos afectan el crecimiento microbiano en diferentes niveles y etapas del crecimiento causando un efecto microbiosttico. Un efecto microbiosttico es cuando se inhibe el crecimiento pero no se produce la muerte, solamente hay inhibicin de procesos, como la sntesis de protenas por unirse a los ribosomas. Un agente bacterioltico induce la muerte mediante lisis celular y un bactericida elimina completamente a la clula sin producir lisis o ruptura celular.Los antibiticos que inhiben la sntesis de la pared celular y/o de la membrana plasmtica son de gran aplicacin para la eliminacin de especies bacterianas.El efecto particular de los antibiticos sobre grupos de bacterias especficas se le conoce como espectro de accin. En general, las bacterias Gram positivas son ms sensibles que las Gram negativas; sin embargo, existen antibiticos de amplio espectro que actan sobre ambos tipos de bacterias.La eficiencia de un antibitico se establece determinando la concentracin mnima inhibitoria (CMI) que nos indica la concentracin mnima en mg/mL de antibitico necesaria para inhibir el crecimiento microbiano.Otro parmetro de evaluacin de antimicrobianos es la cantidad mnima bactericida (CMB), que se refiere a la concentracin de agente antibitico necesaria para producir una disminucin del tamao original del inculo bacteriano en un porcentaje mayor o igual al 99.9%. Muchas veces, el CMI es equivalente la CMB.

Materiales

ProcedimientosEl profesor proporcionar cultivos en CN de: Staphylococcus sp, Escherichia coli y Pseudomonas sp. Los cuadros de resultados se compartirn en el grupo para calcular la desviacin estndar y el coeficiente de variacin.Preparacin de solucionesSoluciones de: ampicilina, penicilina G y ketoconazol con 100, 1500 y 5000 g/mL Soluciones de desinfectante comercial de verduras o para limpieza: 1:10, 1:100 y 1:1000

Preparacin de medios de cultivo1. Preparar 350 mL de AN en un matraz Erlenmeyer de 500 mL. Esterilizar en autoclave a 15 lb/in2 durante 15 min.2. En condiciones aspticas, preparar 12 cajas de Petri con 20 -25 mL de ANInoculacin de microorganismos (Figura 8)1. Dividir la base de cada caja en cuatro cuadrantes con el uso de un plumn indeleble y rotular en cada cuadrante las concentraciones a probar.2. Introducir un hisopo estril en la suspensin de la cepa correspondiente y sembrar las placas con la cepa correspondiente arrastrando el hisopo sobre toda la superficie.3. Con las pinzas de diseccin previamente flameadas y fras tomar un disco de papel filtro que se sumerge en agua destilada estril y se deja escurrir. Colocarlo cuidadosamente en el centro del cuadrante control, asegurando el contacto del disco sobre el agar.4. De la misma manera se sumergen discos de papel en las diferentes concentraciones de los antibiticos.5. Realizar el mismo procedimiento para cada una de las cepas y diluciones correspondientes de cada agente. Incubar las placas a 37C durante 24 hrs.

Observacin y medicin del efectoRetirar con la pinza de diseccin los discos y medir el dimetro (mm) de las zonas de inhibicin del crecimiento microbiano en relacin al control.ResultadosA. Reportar el dimetro de inhibicin del crecimiento microbiano en el Cuadro 19.B. Discutir los resultados con base en la capacidad de cada microorganismo para crecer en diferentes concentraciones de agente antimicrobiano.C. Comparar los resultados de CMI obtenidos con los reportes de la literatura.Dimetrode inhibicin(mm)

Concentracin deantibitico (g/mL)ControlStaphylococcus spE. coliPseudomonas spCMI (mg/mL)

Ampicilina

0

100

1500

5000

Penicilina G

0

100

1500

5000

Ketokonazol

0

100

1500

5000

Desinfectante comercial

0

1:10

1:100

1:1000

Discusin de resultados

Conclusin

Cuestionario1. De los antimicrobianos utilizados Cul present mayor espectro de inhibicin?2. Explique el mecanismo bioqumico de inhibicin de cada uno de los antimicrobianos probados.3. Cul fue la CMI del ketokonazol sobre Staphylococcus sp? Explique sus resultados.4. Cul fue la CMI del desinfectante comercial sobre las cepas bacterianas estudiadas? Explique sus resultados.

Anexo 1. Preparacin de soluciones y colorantes1. Azul de lactofenolDisolver cuidadosamente 10 g de fenol (cristales) en 20 ml de agua destilada, agregar 20 g de cido lctico y 40 g de glicerol.Posteriormente disolver 0.05 G de azul de metilo.

2. Azul de metileno alcalinoDisolver 0.3 g de azul de metileno en 30 ml de alcohol etlico al 95% y mezclarlo con 100 ml de solucin de hidrxido de potasio al 0.01%.

3. Cristal violetaEste colorante se prepara en dos partes,a. Solucin A: en un vaso de precipitados de 50 ml colocar 10 ml de alcohol etlico y disolver 1 g de cristal violeta.Solucin B: en otro vaso se disuelven 0.4 g de oxalato de amonio en 40 ml de agua destilada.b. Mezclar cuidadosamente las soluciones a). y b).c. Guardar la mezcla en un frasco mbar en obscuridad durante 24 hrs. Filtrar en papel Whatman no. 1 antes de utilizarlo.

5. Verde de malaquitaDisolver 5.0 g del colorante verde de malaquita en 100 ml de agua destilada.

6. Solucin de lugolEn un matraz aforado de 50 ml, disolver 0.333 g de yoduro de potasio en 20 ml de agua destilada y enseguida agregar lentamente 0.166 g de yodo, mezclar por completo y aforar con agua destilada.

7. Solucin decolorante alcohol-acetonaColocar en una probeta de 50 ml, 30 ml de alcohol etlico y 20 ml de acetona, mezclar perfectamente.

8. SafraninaEn un matraz aforado de 50 ml colocar 5 ml de alcohol etilico y disolver 0.125 g de safranina. Aforar con agua destilada.

9. Reactivo de KovacsDisolver 5.0 g de p-dimetil-amino-benzaldehdo en 75 ml de alcohol amlico y agregar lenta y cuidadosamente 25 ml de HCl concentrado. Almacenar en frasco mbar.

Anexo 2. Preparacin de medios de cultivo1. Caldo nutritivo (CN). Es un medio lquido complejo de uso general para el cultivo de bacterias.Ingredientes(g/L)

Peptona de casena5.0

NaCl8.0

Extracto de carne3.0

pH6.5-7.0

a. Disolver cuidadosamente los ingredientes en el orden indicado y ajustar el pH.b. Distribuir en tubos de ensaye o matraces.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

2. Agar nutritivo (AN). Es un medio slido complejo de uso general para el cultivo de bacterias.Ingredientes(g/L)

Peptona de casena5.0

NaCl8.0

Extracto de carne3.0

Agar 15.0

pH6.5-7.0

a. Disolver cuidadosamente los ingredientes en el orden indicado y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

3. Agar de eosina azul de metileno (EMB-agar). Es un medio de cultivo comercial utilizado para identificacin y diferenciacin de enterobacterias.Ingredientes(g/L)

Peptona de gelatina 10.0

Lactosa5.0

Sacarosa5.0

K2HPO42.0

Agar13.5

Eosina0.4

Azul de metileno0.065

pH6.8-7.0

a. Disolver cuidadosamente cada componente o pesar la cantidad indicada en el frasco comercial y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

4. Agar para estafilococos No. 110. Es un medio slido selectivo para aislar estafilococos.Ingredientes(g/L)

Extracto de levadura 2.5

Peptona de casena10.0

Gelatina30.0

Lactrosa2.0

D-Manitol10.0

NaCl75.0

K2HPO45.0

Agar15.0

pH7.0

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

5. Agar papa-dextrosa (PDA). Es un medio slido complejo de uso general para el cultivo de hongos.Ingredientes(g/L)

Glucosa 20.0

Extracto de papa4.0

Agar15.0

pH5.6

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco y ajustar el pHb. Calentar a ebullicin durante 1 minutoc. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos

6. Caldo rojo de fenol. Medio base para hacer pruebas de fermentacin de azcaresIngredientes(g/L)

Azcar 20.0

KH2PO49.1

Extracto de Levadura0.1

K2HPO49.5

Rojo de fenol0.01

pH6.8-7.0

a. Disolver cuidadosamente las sustancias y ajustar el pH.b. Colocar un tubo de Durham invertido.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

7. Agar citrato de Simmons. Medio complejo para prueba de utilizacin de citrato por enterobacterias.

Ingredientes(g/L)

Citrato de Sodio2.0

KH2PO41.0

MgSO4 7H2O0.2

NH4H2PO41.0

NaCl5.0

FeSO4 7H2O0.01

Agar15.0

Azul de bromotimol0.08

pH7.0

a. Disolver cuidadosamente las sustancias y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.d. Dejar solidificar el medio en forma inclinada.

8. Caldo urea. Se emplea para la identificacin de bacterias, particularmente para diferenciar los miembros del gnero Proteus de la Salmonella y ShigellaIngredientes(g/L)

Urea 20.0

KH2PO49.1

Extracto de levadura0.1

K2H2PO49.5

Rojo de fenol0.01

pH6.8

a. Disolver cuidadosamente las sustacias o cantidad indicada en el frasco y ajustar el pH.b. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

9. Medio SIM. Medio semislido de uso rutinario para la diferenciacin e identificacin de cultivos de enterobacterias. Se detecta la produccin de sulfuros, indol y movilidad.Ingredientes(g/L)

Peptona de casena20.0

Peptona de carne6.1

Sulfato de hierro y amonio0.2

Tiosulfato de sodio0.2

Agar3.5

pH7.3

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco y ajustar el pH.b. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

10. Agar almidn. Para determinar actividad amiloltica.Ingredientes(g/L)

Almidn10.0

Peptona de casena5.0

NaCl8.0

Extracto de carne3.0

Agar15.0

pH6.5-7.0

a. Disolver cuidadosamente las sustancias y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

11. Medio de leche con tornasol. Para diferenciar microorganismos con capacidad de realizar diferentes reacciones metablicas en un medio lcteo.

Ingredientes(g/L)

Leche descremada deshidratada 100.0

Polvo de tornasol 0.75

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco.b. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

12. Agar de hierro y triple azcar (TSI). Para identificar y diferenciar enterobacterias. Se basa en la formacin de sulfuros y fermentacin de glucosa, sacarosa y lactosa.Ingredientes(g/L)

Mezcla de peptonas20.0

Lactosa10.0

NaCl5.0

Sacarosa10.0

Dextrosa1.0

Sulfato de amonio frrico0.2

Tiosulfato de sodio0.2

Rojo fenol0.025

Agar13.0

pH7.3

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco y ajustar el pH.b. Calentar a ebullicin durante 1 minuto.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.d. Dejar solidificar el medio en forma inclinada.

13. Medio de gelatina. Para determinar actividad de proteasas.Ingredientes(g/L)

Peptona de gelatina5.0

Extracto de carne de res3.0

Gelatina120.0

pH6.8

a. Disolver cuidadosamente la cantidad indicada en el frasco y ajustar el pH.b. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

14. Medio mineral para microalgas. Es un medio lquido para cultivo de microalgas.

Ingredientes(g/L)

NaNO30.75

MgSO4.7H2O0.050

KH2PO40.075

K2HPO40.075

CaCl2.2H2O0.050

pH6.5-7.0

a. Disolver cuidadosamente los ingredientes en el orden indicado y ajustar el pH.b. Distribuir en tubos de ensaye o matraces.c. Esterilizar en autoclave a 121C durante 15 minutos.

Bibliografa

Balows, A., Trper, H.G., Dworkin, M., Harder, W. y Schleifer, K.H. (2007). The Prokaryotes. 3nd Ed. Springer-Verlag. USA. Brooks, G.F., Jawetz, E., Butel, J.S., Melnick, JL, Orston, L.N. y Adelberg, E.A. (1991). Microbiologa Mdica de Jawetz, Melnick yAdelberg. Manual Moderno. 14a Ed. Mxico. De Vos, P., Garrity, G., Jones, D., Krieg, N. R., Ludwing, W., Rainey, F. A., Schleifer, K.H. and Whitman, W. B. (2009). BergeysManual of Systematic Bacteriology. 2nd Ed. Springer Verlag. USA. Herrera, T. y Ulloa, M. (2004). El reino de los Hongos. Micologa bsica y aplicada. Fondo de Cultura Econmica-UNAM.Mxico. Madigan, M.T., Martinko, J. M., Dunlap, P.V., Clark, D.P. (2009). Brock. Biologa de los Microorganismos. 12 ed. Pearson PrenticeHall. Espaa. Manual de Bioseguridad en el Laboratorio (2005). Organizacin Mundial de la Salud. 3. Edicin. Ginebra. Suiza Pelczar, M.J., Reid, R.D. y Chan, E.C.S. (2000). Microbiologa. 6 ed. McGraw Hill. Mxico. Prescott L.M., Harley J.P. y Klein D.A. (2003). Microbiologa. 5 ed. McGraw Hill. Espaa. Stanier, R.Y., Ingraham, J.L., Wheelis, M.L. y Painter, P.R. (1996). Microbiologa. 4 ed. Revert. Espaa.Pgina1

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