prÁcticas l’oceanografic - facultad de...
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| Paula González Alonso
PRÁCTICAS
EN
EMPRESA L’OCEANOGRAFIC
ÍNDICE
1. INTRODUCCIÓN……………………………………………………………………………….……………….…2
2. LABORATORIO…………………………………………………………………………………………………….3
3. MEDITERRÁNEO………………………………………………………………………………………………….6
4. CUARENTENA……………………………………………………………………………………………………..9
5. OCÉANOS……………………………………………………………………………………………………………12
6. TROPICAL……………………………………………………………………………………………………………15
7. AVES………………………………………………………………………………………………………………..…18
8. ANEXOS……………………………………………………………………………………………………………..20
9. C0NCLUSIÓN PERSONAL……………………………………………………………………………………..30
10. AGRADECIMIENTOS…………………………………………………………………………………………….31
1. INTRODUCCIÓN
Mi paso por L’Oceanogràfic, de Parques Reunidos de Valencia, resultó una agradable
experiencia tanto laboral como personal.. Las prácticas consistieron en una rotación por las
diferentes secciones del Departamento de Biología, divididas en Peces y Aves, incluyendo
también el Laboratorio del Parque.
Mi jornada comenzaba a las 8:00h y finalizaba a las 17:00h, al igual que cualquier
trabajador del centro. Se dispone además, de un descanso de 15 minutos para el almuerzo y 1
hora para la comida. Mi horario era el siguiente:
Se trata del acuario más grande de Europa, con un total de más de 40 millones de litros
de agua, aportados directamente desde la playa de la Malvarrosa, canalizados por tuberías de
5 km de longitud. En sus instalaciones habitan más de 45.000 individuos de unas 500 especies
diferentes. Inaugurado en el año 2002 y diseñado por el arquitecto Félix Candela, representa
los principales mares y océanos, así como los humedales del planeta. Su principal misión es la
divulgación de la importancia de la conservación del medio marino y la exhibición de su amplia
biodiversidad, además de participar en la recuperación de tortugas, en conjunto con la
Generalitat Valenciana y en diversos proyectos de investigación.
A continuación, queda detallada la rutina de trabajo en los diferentes sectores en los
que transcurrió mi período de prácticas.
MARZO 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 L M X J V S D L M X J V S D L M X J V S D L M X J V S D L M X Paula González
ABRIL 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 J V S D L M X J V S D L M X J V S D L M X J V S D L M X J V Paula González
MAYO 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 S D L M X J V S D L M X J V S D L M X J V S D L M X J V S D L Paula González
AVES LABORATORIO CUARENTENA MEDITERRÁNEO TROPICAL OCÉANOS
2. LABORATORIO
Consta de 2 divisiones: la parte de la que se encarga Veterinaria y la parte Técnica, siendo
esta última la adecuada para las prácticas de Biólogos.
- RUTINA DIARIA:
A primera hora se lleva a cabo la ronda por los diferentes
tanques para comprobar la calidad y los parámetros de sus aguas.
Para ello se utiliza una sonda multiparamétrica, que aporta, al
instante, los siguientes datos: el pH del agua, el potencial redox, la
concentración de oxígeno, la temperatura y la salinidad. A partir de
estos dos últimos parámetros, se calcula la densidad del agua,
gracias a una tabla que permite la rápida identificación de este valor.
Además realizamos otras tareas para mantener un control de la calidad de las aguas
correspondientes a los diferentes sistemas de filtración, así como del agua de restauración (del
comedor social y del Restaurante Submarino). Para ello, los responsables de cada sección
recogen las muestras de cada sistema. Se utiliza un fotómetro que, por colorimetría y
trabajando a diferentes longitudes de onda, indica los valores de los siguientes parámetros:
amonio, nitratos, fosfatos, alcalinidad, pH, sulfatos, cobre y calcio.
También se lleva a cabo la preparación de medios de
cultivo y agua de peptona o agua de mar artificial (PBS), en
función de los requerimientos diarios, tanto por parte de los
técnicos, como de los veterinarios. Además, se limpian los
diferentes aparatos del laboratorio, como el autoclave, las
estufas, etc.
- CONTROL MICROBIOLÓGICO DEL AGUA (mensual):
De las instalaciones de peces y mamíferos. Para ello se utilizan los medios de cultivo:
TCB’S CHOLERA MEDIUM Agar (para crecimiento de Vibrio) y MARINE Agar (para crecimiento
de Aerobios mesófilos). Además, es necesario el siguiente material: PBS, Rampa de filtrado,
Embudos estériles, Filtros de celulosa con tamaño de poro de 0,22 µm, Pinzas, Mechero
bunsen, Micropipetas y puntas estériles.
El procedimiento es el siguiente:
1- Limpiar superficie de trabajo con alcohol y encender mechero Bunsen.
2- Colocar embudos estériles sobre la rampa de filtrado y colocar en su posición los
filtros de celulosa, con las pinzas esterilizadas.
3- Poner en el embudo la cantidad de muestra a analizar en función de la dilución
elegida (comprobando los datos del mes anterior) y añadir PBS hasta los 100ml.
4- Encender la bomba de succión de la rampa de filtrado, abrir las llaves y esperar que
toda la muestra pase por el filtro. A continuación cerrar las llaves y apagar la bomba.
5- Con las pinzas previamente esterilizadas, coger el filtro y colocarlo sobre el medio de
cultivo con cuidado, evitando la formación de burbujas de aire.
6- Repetir el proceso para cada medio y para cada muestra de agua, teniendo en cuenta
el cambio del embudo estéril cada vez que tomemos una muestra diferente.
7- Cultivar las placas invertidas:
- Peces: 22°C durante 48 h.
- Mamíferos: 37°C durante 24h.
8- Lectura de las placas, contando las que tengan un número de UFC (Unidades
Formadoras de Colonias) entre 30 y 300. Además se ha de tener en cuenta el color y
la forma de las UFC para su identificación.
- CONTROL DE CALIDAD DEL ALIMENTO:
Compuesto por un conjunto de técnicas analíticas con las que obtendremos finalmente
los valores guía, por lo que nos regimos para dar apto para el consumo un determinado lote de
alimentos.
1- Control microbiológico: mediante el crecimiento de Enterobacterias en el medio
Violet Red Bile Agar y el de Aerobios mesófilos, con el medio de cultivo Plate Count
Agar. Para ello se tritura el alimento en la picadora y se preparan diluciones seriadas
de 100ml en Agua de Peptona, que a continuación se homogenizan, para cultivarlas a
37°C durante 24h, en los medios anteriormente indicados. Se hacen las lecturas de las
placas en las que el número de UFC está entre 30 y 300, anotando color y morfología
de las colonias.
2- Extracción de la humedad: en cápsulas de aluminio de 95mm de diámetro, con arena
de mar purificada y calcinada (peso conocido). Sobre ellas se colocan 10g de muestra
de alimento triturado y se homogeniza con toda la arena de la cápsula. Se introducen
en la estufa de 100°C durante 4h y se pesan de nuevo. De esta forma obtenemos el
EXTRACTO SECO y la HUMEDAD DEL ALIMENTO en %.
3- Extracción de la materia grasa: a partir de muestras de alimento sin humedad de peso
conocido. Para ello utilizamos balones de fondo plano y el Extractor Soxhlet. La
muestra se introduce dentro de un paquete de papel de filtro que se colocan en los
extractores Soxhlet y se cubren con éter. A continuación se extrae toda la grasa
mediante la manta calefactora y se sacan los paquetes. Se vacía el éter y se
introducen los balones con la materia grasa en la estufa de 100°C, durante 1h. Una
vez fríos, se pesan entonces los balones.
Obtenemos entonces la MATERIA GRASA EN EXTRACTO SECO y la MATERIA GRASA EN
EXTRACTO HÚMEDO, en %. Con este último, podríamos aproximar un valor energético
para el alimento.
4- Determinación del índice de peróxidos: a partir de una muestra de grasa extraída en
frío, ya que altas temperaturas incrementan el valor de peróxidos, a veces hasta tal
punto, que podemos medir un punto al final de la curva de peróxidos dándonos un
valor más bajo que el que realmente puede tener la muestra. Para ello preparamos
una solución de 0.002N de Tiosulfato Sódico con agua destilada y lavamos la bureta
con ella. Tenemos la muestra en un balón de vidrio y le añadimos 10 ml de cloroformo
para disolverla. A continuación añadimos 15ml de ácido acético y agitamos. Ahora
1ml de una solución saturada de yoduro potásico y mantenemos el balón en
oscuridad durante 5min.
La valoración se realiza añadiendo 1ml de una solución de almidón. Si se produce un
cambio de color inmediato a negro o violeta, la muestra contiene peróxidos. Entonces
añadimos poco a poco la solución de tiosulfato sódico, agitando de forma continua,
hasta que se produzca el cambio de color. Consideramos que la valoración ha
terminado cuando se produce el cambio y la solución pierde la tonalidad violeta o
negruzca. Con la siguiente fórmula obtenemos el ÍNDICE DE PERÓXIDOS:
IP= (V*N*1000)/p
V= volumen gastado de tiosulfato sódico
N= Normalidad de la solución de tiosulfato
P= cantidad de grasa que había en el balón
3. MEDITERRÁNEO
En este sector encontramos los diferentes tanques que acogen las especies más
características de la biodiversidad de nuestras costas, como podemos observar en las tablas de
biomasa adjuntas. Los sistemas que incluye son los siguientes, dispuestos en un orden acorde
al medio natural, según nos vamos adentrando en las profundidades del mar Mediterráneo:
� JARDINES DE POSIDONIA: incluye las especies más comunes en los jardines de posidonia,
como diferentes Symphodus, además de alguna estrella de mar.
� ROMPIENTE: este tanque refleja las olas rompiendo sobre las rocas. En él vemos multitud
de Diplodus y también varias cigarras.
� CONTACTO: en este pequeño tanque vemos varias holoturias, ofiuras y erizos, además de
las crías de Raja undulata, que nacen en el acuario.
� CEFALÓPODOS: debe su nombre a la presencia de una sepia. Además incluye varias plumas
de mar, de los géneros Pteroides y Veretillum. Conviven también con la llamativa “vaquita
suiza” o Peltodoris atromaculata.
� INVERTEBRADOS: es un pequeño tanque muy bien organizado,
en el que se aprecia la gran diversidad de invertebrados
característicos de nuestras costas, como Gorgonias, Espirógrafos
y Corynactis. Aquí observamos varias especies de corales, tanto
fotosintéticos como no fotosintéticos, además de pequeños
peces que ayudan a mantener este mini ecosistema.
� MESOLITORAL: lo más característico en este pequeño sistema
son las llamativas y coloridas anémonas y los tomates de mar, que requieren algún especial
cuidado, como la suplementación de sus dietas con β-caroteno, para mantener vivos sus
colores.
� INFRALITORAL: contiene varias especies del género Labrus y Symphodus, además también
aquí encontramos anémonas.
� PUERTO: en este tanque encontramos, entre otras especies, al único pulpo presente en el
acuario y varios individuos de Raja undulata, de las que encontramos varias puestas de
huevos en el tanque y se sacan a un pequeño acuario, donde nacen y se desarrollan sus
crías hasta alcanzar un tamaño suficiente para pasar a exhibición.
� CORALÍGENO: lo más abundante aquí son los Anthias anthias, llamativos por su colorido y
también varias especies de rayas. Es el tanque de mayor volumen del sector.
� CONTINENTALES: este sistema comprende dos tanques, que se
encuentran dentro del recinto del aviario; reflejan las
características típicas del MANGLAR y el MARJAL continental, de
aguas salobres, con carpas, lisas y anguilas. Además incluye un
pequeño tanque que contiene individuos de FARTET, comunes en
la Albufera valenciana.
� ARCA DEL MAR: Área de Recuperación de Animales del Mar. Aquí llegan, sobre todo,
tortugas de la especie Caretta caretta, que son víctimas de enmallamientos o de ataques de
tiburones, entre otras causas. En sus tanques se recuperan y se tratan hasta que están listas
para liberarse en el tanque de Océanos, donde siguen su recuperación y comienzan a
nadar, antes de su suelta en mar abierto. De esta sección se ocupan, plenamente,
estudiantes en prácticas de la Universidad de Valencia.
- RUTINA DIARIA:
Comprende la ronda de supervisión, a primera hora, en la que se comprueban las posibles
bajas y alteraciones que pueda haber en el decorado de los tanques, para restablecer el
correcto estado de los mismos antes de la apertura al público. A la vez se toman las muestras
de cada sistema para su posterior análisis en el laboratorio. Además se lleva a cabo la
exhaustiva supervisión de los animales que se encuentran aislados, como las crías de raya o de
sepia, algún animal que esté enfermo pero no requiera cuarentena, así como las tortugas que
están en los tanques de cuarentena (no en el Arca).
En cuanto al buceo, las tareas diarias son el sifonado de tanques, (en los de menor
tamaño, esta tarea se hace desde la superficie), con las campanas de sifonado y las bombas y
mangueras diseñadas para tal fin. Además, se lleva a cabo la limpieza de acrílicos y decorados y
se recogen los restos de valvas que se han tirado anteriormente como alimento. También se
aprovecha para alimentar a los animales que requieran esta técnica. Se trata de una ventaja
para su control y seguimiento, ya que se alimenta a cada individuo por separado, teniendo en
cuenta la cantidad de alimento ingerida por cada uno y observando comportamientos
anómalos, si los hubiera.
Por otra parte, se dan dos tomas de alimento desde superficie al día, de mañana y tarde, a
todos los tanques (excepto el fin de semana, que mantienen ayuno). El alimento es variado en
función de las especies que habitan en cada uno, desde plancton (Nauplio, Metanauplio,
Mysis, Cyclops, Larva de mosquito, Krill) para los tanques que contienen invertebrados o
estados juveniles de ciertas especies, hasta papillas o picados en trozos de diferente tamaño,
para los tanques en los que los individuos son más grandes. Incluso piezas enteras de pescado,
como en el caso de la alimentación del pulpo.
Es por tanto necesario, que cada día se encargue una o más personas de la recogida de los
alimentos preparados previamente por el personal de cocina. Además de tareas adicionales
como añadir los complejos vitamínicos a dichos alimentos y preparar otros de los que se
encarga cada sector particularmente, como abrir las valvas de chirla o extraer el mejillón que
posteriormente se utiliza como alimento.
Además, la carga de botellas en el compresor, es una tarea que se reparte entre los
diferentes sectores que las utilizan para sus inmersiones, de manera que cada dos o tres días
se encargan los trabajadores de Mediterráneo.
4. CUARENTENA
La instalación consta de 25 cubas, adecuadas a las condiciones de los diferentes sectores
del acuario. Su función es la aclimatación y mantenimiento de nuevos individuos que llegan al
acuario, el tratamiento de enfermos que ya están en exhibición y la cría de las nuevas altas de
diferentes puestas. El protocolo de trabajo es el siguiente:
- RUTINA DIARIA:
A.M.
Encendido de luces, progresivamente, para simular el amanecer con el fin de no estresar a
los animales y toma de muestras de agua..
Adición de cloruros de amonio a los sistemas que lo requieran.
Ronda de supervisión de los diferentes tanques. Se
suben las posibles bajas a veterinaria y se toman medidas de
las longitudes estándar y total.
Sifonado de tanques de caballitos, dragones, sepias,
guppies y kreissels. Puesto que se trata de especies bastante
delicadas, esta tarea se realiza en ellos dos veces al día.
Cultivos auxiliares: en esta sección se lleva a cabo el
propio cultivo de alimento vivo que se utiliza en el parque. A
primera hora de la mañana se cosecha el nauplio, metanauplio
y la artemia adulta (zooplancton), así como el rotífero
(fitoplancton).
Alimentación: Descongelado y reparto de plancton (mysis, artemia o kril), mediante varias
tomas al día, para caballitos, peces pipa, dragones y guppies.
Además, se recoge la caja de comida que se encuentra preparada en cocina y se
suplementa con vitaminas (Calfostonic y Chicktonic) y/o tratamientos orales que requiera cada
individuo, de manera que si alguno no se lo toma, se lo daremos intramuscular. Se procede
entonces al reparto de la comida según la tabla de alimentación.
Ronda de sistemas: En cuarentena se realiza cada día la
supervisión de los sistemas de filtración que mantienen sus
tanques en funcionamiento, de manera que, si algún filtro de
arena requiere retrolavado, se informa de inmediato al
personal de mantenimiento para que lo lleve a cabo. Además
se comprueba que las temperaturas estén en el rango correcto, así como los niveles de
inyección de ozono y el funcionamiento de las bombas y las lámparas ultravioleta.
P.M.
Se reparte la última toma de alimento congelado y se sifonan todos los tanques y se
barren los que lo requieran (especialmente los de caballitos y dragones).
Se procede a la medicación subcutánea/intramuscular de los individuos que la requieren.
Además se añade sosa o triple buffer a los sistemas que lo requieran, en función de los
resultados del laboratorio.
Por último se retira la basura y se apagan las luces, de manera progresiva, al igual que en
el encendido.
- AZUL PROFUNDO
Durante mi estancia en este sector, se abrió al público este nuevo acuario, que consta de
4 tanques, de los que se encargaba el personal de cuarentena. El protocolo a seguir era similar
a otros tanques de exhibición, prestando mayor atención tanto al funcionamiento de la parte
técnica, por el hecho de ser nuevo, como al estado de los individuos allí introducidos.
A primera hora, se hace la ronda de apertura para verificar el encendido de luces, estado
de los animales, niveles y aireación de los tanques y posibles manchas de acrílicos, así como el
funcionamiento de la filtración. A continuación se procede a la limpieza de los acrílicos y
decorados y sifonado de los posibles restos de comida del día anterior. A continuación, se
alimentan los animales, previamente a la hora de apertura al público.
- PROTOCOLO ESTÁNDAR DE CUARENTENA:
Cada vez que llegan nuevos animales al parque, han de pasar por el período establecido
de cuarentena, en el que se someten a diferentes tratamientos.
Previo a llegada: se prepara el tanque de destino en cuarentena. Se controla la temperatura,
salinidad y la concentración de cobre (0 ppm).
Primer día: - llegada de peces.
- aclimatación.
- baño antiparasitario: PRAZIQUANTEL (1hora, 20 ppm).
- Baño antiparasitario: AGUA DULCE (5min), excepcionalmente.
Día 1 (tras llegada): comienza alimentación.
Día 2: Tratamiento antibiótico (ENROFLOXACINA) durante 10 días mínimo (según estado
general y biomasa) y administración oral de inmunoestimulantes (ERGOSÁN: 5g/kg de
alimento) durante 5 días.
Día 12: PAUSA.
Día 13: desparasitación oral con PRACIQUANTEL (15mg/kg* de animal en dosis única), contra
trematodos y cestodos del aparato digestivo. En este
momento, hay que prestar especial atención al
aporte de oxígeno, puesto que el praciquantel es un
compuesto que disminuye su concentración.
*Excepto elasmobranquios: 10ppm.
Día 14: PAUSA.
Día 15: desparasitación oral con FENBENDAZOL
(50mg/kg*, durante 3 días), contra nematodos del aparato digestivo.
*Excepto elasmobranquios: 8-12-15 ppm, respectivamente.
Día 18: PAUSA.
Día 19: desparasitación oral con METRONIDAZOL (50mg/kg, durante 5 días), contra protozoos.
Día 24: PAUSA.
Día 25: recuerdo de desparasitación oral con PRAZIQUANTEL (15mg/kg en dosis única)
Día 26: PAUSA.
Día 27: (finaliza el período de latencia de la mayoría de protozoos). Recuerdo de
desparasitación con FENBENDAZOL (50mg/kg en dosis única).
Los animales ya están listos para pasar a exhibición.
NOTA: - peces tropicales: a partir de la segunda semana tras la llegada se incrementa
el nivel de COBRE (contra protozoos ciliados, especialmente del género Cryptocarium), hasta
0.2ppm progresivamente, para mantenerlo durante 3 semanas. Es entonces cuando se pasan a
exhibición.
- peces de pesca: normalmente muy delicados, se estresan fácilmente, por lo
que el tratamiento oral se sustituye por OXYTETRACYCLINA añadida al agua del tanque, para
que lo consuman a través de las branquias.
5. OCÉANOS
Este sector tiene a su cargo dos tanques, uno de ellos, el mayor de todo el parque, con 7
millones de litros de agua; se trata del:
� TÚNEL DE OCÉANOS: en el que se encuentran la mayoría de elasmobranquios del acuario,
destacando los tiburones toro y los grises.
� PELÁGICOS: exclusivo del restaurante submarino, conlleva alguna tarea excepcional de
mantenimiento, como la alimentación mediante pienso y el tratamiento preventivo para la
tuberculosis.
- RUTINA DIARIA:
A.M.
Antes de la apertura al público se realiza la ronda de revisión de los tanques para localizar
posibles bajas o heridos y desperfectos en los decorados. En el caso de Pelágicos, se hace una
segunda ronda a partir de las 9:30, debido a que es el momento de encendido de luces de
dicho tanque. A su vez se toman las respectivas muestras de agua, para que el laboratorio las
analice.
A continuación parte del personal lleva a cabo la primera toma de alimentación en
océanos (desde superficie), de manera que se suplementan con calfostonic y chicktonic las
dietas correspondientes a pelágicos, caranx y jureles. Además, cada lunes se administra
yoduro potásico (IK) a todos los elasmobranquios, como medida preventiva frente al bocio. A
su vez, el resto de los trabajadores depositan el pienso en los dispensadores del tanque de
pelágicos. Además, se van preparando los equipos de buceo de todos aquellos que vayan a
entrar en el agua.
Tras el almuerzo, se comienzan las inmersiones, en primer lugar se lleva a cabo la
alimentación en la piscina médica, anexa al tanque, en la que se lleva a cabo la alimentación
para los animales que la requieran. Durante mi estancia, nos ocupábamos de las Aetobatus
narinari, puesto que al ser animales extremadamente
delicados, se alimentan de manera independiente al
resto, para que no sufran daños.
Entonces todo el personal, excepto el que se queda
haciendo los standby, se prepara para el buceo de
alimentación de labrus y chernas, por una parte, a los
peces luna, mediante targets visuales y sonoros, que
reconocen gracias al previo entrenamiento y, por último, a los bentónicos, en su zona propia
de alimentación en el tanque de océanos. Para estos últimos es necesario que uno de los
buceadores se quede en la parte superficial del agua, vigilando posibles acercamientos de
tiburones para no sufrir daños.
Además, se limpian acrílicos o se cepillan decorados, avanzando por tramos diferentes,
para ir manteniendo el tanque en las condiciones adecuadas, día a día.
* LUNES Y VIERNES: alimentación tiburones toro:
Para ello se colocan 3 personas, como unidad mínima de alimentación y seguridad, en el
túnel de océanos, lado filtración y una persona en el exterior del tanque, hace el standby y
lleva la cuenta de la cantidad de alimento y/o medicación que toma cada individuo; además
debe avisar a los buceadores si algún tiburón se acerca por la parte superior y ellos no lo
aprecian. Es imprescindible el reconocimiento de todos los tiburones por todos los integrantes
de la plantilla, para lo que nos servimos de los dibujos de referencia que adjunto en los anexos.
Los buceadores se disponen de espaldas al
túnel, con los bidones de alimentación entre
ellos. Además, deben estar lo suficientemente
cerca unos de otros, como para que ningún
tiburón pueda colocarse entre ellos. Cada
buceador lleva un palo de defensa de PVC, con el
que se mantienen alejados los tiburones. No se
debe alimentar a los tiburones que no se
acerquen por la parte frontal o laterales, evitando dar de comer fuera de la zona marcada por
los buceadores. Las dos personas que se encuentran a los dos lados de la fila, se ocupan de
controlar el frente y el lateral, mientras que la persona del medio se ocupará de controlar la
parte superior del túnel. De esta forma, se van dirigiendo a los tiburones hacia el palo de
alimentación de cada buceador, en el que se coloca el alimento. Si algún otro animal se acerca
para comer, debemos alejarlo del sitio de alimentación, para no reforzar esta presencia
dándole de comer, además de su seguridad y la del buceador.
P.M.
La primera tarea de la tarde es la segunda toma de alimentación por superficie. Se repite
el procedimiento de la mañana y, además se alimenta a través de tubos, a bentónicos, peces
sierra y a la única Squatina presente en el tanque.
Mientras tanto, se aprovecha que todos los animales están distraídos, para proceder a la
alimentación de tiburones grises y nodriza. El protocolo es el siguiente:
3 personas, como unidad mínima de alimentación, se sitúan en la pasarela destinada a tal
fin, utilizando como target los focos de luz blanca que reconocen los tiburones. Por superficie
y, mediante tubos de PVC con bridas en uno de los extremos, en los que se coloca el pescado
(alimento), evitando que quede sumergido en el agua. Según se van acercando los tiburones,
se les coloca el pescado frente a ellos y se tira con firmeza del palo según lo van cogiendo
entre sus dientes. Es también imprescindible el reconocimiento de cada tiburón, para anotar la
cantidad consumida por cada uno y la medicación, cuando corresponda; no debemos
alimentar a un individuo si previamente no se ha identificado.
Por último, se hace la ronda de cierre, supervisando nuevamente que todo está en
perfectas condiciones, antes de finalizar la jornada.
- RUTINA ESPECIAL DE TARDE:
Las tareas especiales, cuando se requieren, son las siguientes:
Adición de TRIPLE BUFFER en el flujo de los skimmers.
Apuntar los parámetros del laboratorio y los datos de comida.
Preparación de medicaciones en cápsulas.
Reparación de tuppers de alimentación y adecuación del material y las instalaciones.
6. TROPICAL
Esta es la sección que se ocupa de mayor número de tanques de diferentes
características, pero todos ellos simulan ecosistemas tropicales del planeta. A continuación, se
agrupan en función de su correspondencia con los sistemas de filtración:
� CARIBE e INDOPACÍFICO: en conjunto forman la sala oval, en ellos podemos observar
multitud de peces ángel, mariposa o cirujano, además
de alguna especie de pez globo y las llamativas
morenas. En los últimos días localizamos varias
puestas de huevos, que extrajimos del tanque para
comprobar si estaban fecundadas y así poder
mantenerlas en las condiciones adecuadas para su
desarrollo.
� KELP e IZÚ: este sistema corresponde a las aguas más frías de todo el acuario. Oscilan entre
los 14°C y los 16°C, por lo que las inmersiones suelen durar cortos períodos de tiempo. En
Kelp destacan los tiburones Triakis y en Izú la familia de centollos.
� MAR ROJO: este es el tanque que se encuentra en el auditorio del parque, que contiene
una gran diversidad de peces mariposa y cirujano, además de una pareja de tiburones de
puntas negras.
� TÚNEL: con una longitud total de 70 m, es el más largo de todos los acuarios de Europa. Se
distribuye en tres tramos diferentes, separando las
especies que habitan en ellos, destacando los diferentes
Diplodus, además de las morenas, un Rhinobato que se
aloja en el tramo medio y los “fósiles vivientes”, cangrejos
cacerola.
� CABALLITOS Y DRAGONES DE MAR: se trata de tres pequeños tanques, pero que requieren
el mayor cuidado de toda la sección (*), debido a la delicadeza de las especies que
contienen.
� MEDUSAS: un kreissel enorme contiene los individuos adultos de Aurelia aurita, criados
plenamente en el acuario, desde sus primeras etapas en forma de pólipo, pasando por las
éfiras que seguirán su desarrollo hasta formar las delicadas medusas adultas. En los
primeros estadios, se encuentran en pequeños acuarios situados en cuarentena, una vez
que se transforman en medusas, se pasan a los pequeños kreissels que hay en la sala de
filtración, hasta que adoptan la forma y el tamaño suficiente para pasar al kreissel de
exhibición.
� CORALES: se trata del tanque que requiere más
atención y cuidados. Contiene una gran variedad de
especies de corales blandos y duros, así como
diferentes anémonas, que se desarrollan en un
tanque especial, dedicado exclusivamente para su
cría, previamente a su traslado a exhibición.
Además podemos encontrar algún individuo de pez
payaso y de Takifugus y Zebrasoma, que favorecen el buen estado de los corales y ayudan a
mantener la limpieza del tanque.
- RUTINA DIARIA:
Las tareas generales de esta sección no varían mucho respecto a las otras. A primera hora
se realiza la ronda de supervisión, se preparan las vitaminas para suplementar las dietas de las
dos tomas de alimento y se toman las muestras de los diferentes sistemas para su posterior
análisis en el laboratorio. El personal se reparte las tareas de buceo para entrar a limpiar,
sifonar y alimentar en los diferentes tanques. Por último, se realiza la ronda previa al cierre y el
apagado de luces de las salas que lo requieren manualmente.
*Las tareas especiales son requeridas por los tanques más delicados, siendo las
siguientes:
Protocolo de medusas: a primera hora se comprueba el buen estado de todos los
acuarios, estado de los pólipos/éfiras/medusas, aireación, temperatura, densidad, nivel del
baño y turbidez del agua. Si hay algún acuario en
estrobilación, mirar si han aparecido éfiras y pasarlas a
un acuario a temperatura ambiente, con su
correspondiente aclimatación. Después de limpiar y
sifonar exhibición, dar la primera toma de alimento a
medusas. A continuación, limpiar los kreissel y los
acuarios de pólipos y éfiras, tareas que se dejará para
la tarde, en caso de que a la persona encargada le toque entrar al agua.
Los pólipos se alimentan 2 veces/semana: el lunes con nauplio y el jueves con rotíferos,
mediante 1 toma/día. Ambos recogidos de los cultivos auxiliares y lavados con agua salada.
Ciclo vital de las medusas
Protocolo de caballitos, dragones y kreissel de ponis: limpieza de acrílico y fondo azul con
estropajo y alargador. Sifonado de los acuarios, llenando el aljibe previamente, para evitar la
entrada de burbujas de aire, altamente perjudiciales
para estos animales. Entonces se va a exhibición para
comprobar que todo está correcto y contar los
animales. Cuando se observa una nueva puesta, se
sacan las crías y se pasan al kreissel de cuarentena,
hasta que son de un tamaño suficiente para
mantenerlas en el kreissel de la sala de filtración.
En el caso de los dragones, se entra al tanque a primera hora de la mañana, con ayuda del
standby, para limpiar primero el acrílico y el fondo azul. A continuación se saca todo el
decorado para limpiar y sifonar a conciencia. Tras recolocar, se comprueba desde exhibición la
correcta disposición de todos los elementos.
Tanque de corales: estos, los más delicados de todas las especies, requieren aportes de
químicos cada día, como TRIPLE BUFFER, que asegura la correcta concentración de calcio,
imprescindible en su metabolismo o RED IODIDE, para evitar el blanqueamiento del coral.
También se entra a bucear cuando es necesario, para asegurar aquellos corales que no están
bien fijados a la roca viva y extraer del tanque aquellos que no se encuentren en buenas
condiciones.
7. AVES
Es un sector a parte del departamento de peces, en él se trabaja en el mantenimiento de
diferentes instalaciones que se encuentran en el exterior del parque, además de las instalación
de pingüinos antárticos, los Gentoo, que requieren condiciones ambientales específicas.
- RUTINA DIARIA:
A.M.
A primera hora, se reparten las tareas en función del personal disponible, de manera que
un mínimo de una persona se quede en el aviario y otra se vaya a los lagos a cambiar las
bandejas de pienso y a pesar el pescado para la toma diaria de alimento. El trabajo es el
siguiente:
� AVIARIO: es una jaula esférica de 26 metros de altura, en la que se encuentran la mayoría
de las especies que corresponden al sector. Además hay
pequeñas cuarentenas, dedicadas exclusivamente a las
aves y a las tortugas leprosas y de california, que
también pertenecen a este sector. En su interior
también están los tanques de CONTINENTALES,
correspondientes al sector Mediterráneo.
Cada día se limpia el suelo de toda la instalación, quitando los tapones colocados el día
anterior, que lo mantienen inundado, evitando la aparición de clavos en las patas de las
aves y facilitando también la limpieza. Tras pasar la manguera con agua a presión y cepillar
los posibles restos, se limpia la parte exterior de los acrílicos de MARJAL y MANGLAR.
Además, si hay algún animal en cuarentena, también se limpiará este lugar. Por último, se
cambian las bandejas de comida y se limpian todas las bandejas del día anterior.
� HUMEDALES: comprende todos los lagos que ocupan la superficie del parque; de pelícanos
blancos y pardos, flamencos, cormoranes, cisnes cuellinegros, cisne chico y cisnes cantores.
Mientras se lleva a cabo la limpieza del aviario, el resto del
personal se dedica al pesado del pescado correspondiente a
la toma diaria de alimento y al cambio de bandejas de
pienso que se disponen en los lagos, como alimento de
anátidas y cisnes. Este es el momento en el que se cuentan
los individuos de cada especie y se controla que todo esté en perfecto estado.
� PINGÜINOS HUMBOLDT Y GENTOO: situados en el exterior, los primeros, comparten
instalación con la “GUARDERÍA DE AVES”, en la que hay una incubadora de huevos y una
nacedora de pollitos que se revisa cada día; los Gentoo, como explicaba, se sitúan en un
tanque especial, con una temperatura ambiental de 2°C-4°C y alrededor de 14°C en el agua.
Es imprescindible el reconocimiento de cada individuo, para anotar en el diario si todos
reciben la medicación y las vitaminas y, por supuesto, para controlar la cantidad de
alimento que es ingerido.
En primer lugar, se alimenta y vitamina a los Humboldt, individualmente, intentando que
ninguno se quede sin su toma; además se limpia y desinfecta su instalación.
A continuación se accede al pingüinario interior, donde
se limpia y desinfecta en primer lugar y se alimenta y
vitamina a los Gentoo. Durante mi estancia, se
encontraban en su período de reproducción, por lo que
no se limpiaba la zona de incubación de huevos, debido
a que esto podría ocasionar la pérdida de las crías.
Mientras me encontraba trabajando en el parque, tras mi período de prácticas, pude
observar a 3 crías que nacieron.
P.M.
Tras el descanso de la comida, la primera tarea es acceder al pingüinario de Gentoo y a la
instalación de Humboldt para darles la segunda toma diaria de alimento. En esta ocasión,
no se les administra vitaminas, por lo que se alimentan en el agua.
Por otra parte, el trabajo del aviario consiste en el cambio de las bandejas de alimento,
colocando la segunda toma diaria; la preparación de las bandejas de pienso y, por último, la
recolocación de tapones en los sumideros, para inundar a continuación el aviario.
8. ANEXOS: LISTADO DE ESPECIES POR SECTORES
• MEDITERRÁNEO
CORALÍGENO
Anthias anthias
Apogon imberbis
Capros aper
Dasyatis chrysonota
Helicolenus dactylopterus
Raja montagui
Raja undulate
Spicara maena
Charonia rubicund
Dardanus arrosor
Eriphia verrucosa
Eunicella cavolini
Maja squinado
Palinurus regius
Paramuricea clavata
Paromola cuvieri
Palinurus elephas
POSIDONIA
Bothus podas
Coris julis
Symphodus cinereus
Symphodus doderleini
Symphodus mediterraneus
Symphodus ocellatus
Symphodus tinca
Symphodus roissali
Symphodus rostratus
Serranus hepatus
Thalassoma pavo
Echinaster sepositus
PUERTO
Boops boops
Diplodus vulgaris
Liza sp.
Lithognathus mormyrus
Oblada melanura
Raja undulata
Sarpa salpa
Sardinella maderensis
Spondyliosoma cantharus
Octopus vulgaris
CEFALÓPODOS
Asterina gibbosa
Bonellia viridis
Ocnus planci
Peltodoris atromaculata
Petrosia ficiformis
Pteroides spinosum
Sepia officinalis
Veretillum cynomorium
Codium bursa
ROMPIENTE
Diplodus annularis
Parablennius sanguinolentus
Scorpaena porcus
Scyllarides latus
MANGLAR
Lepomis gibbosus
Micropterus salmoides
MARJAL
Aphanius Iberus
Anguilla anguilla
Cyprinus carpio
Cobitis palúdica
Liza sp.
Valencia hispanica
MESOLITORAL
Atherina boyeri
Gobius paganellus
Liprophis pavo
Parablennius pilicornis
Parablennius incognitus
Symphodus ocellatus
Tripterygion tripteronotus
Actinia equine
Actinia striata
Aplysina aerophoba
Agelas oroides
Axinella polypoides
Cerithium sp
Chondrilla nucula
Chondrosia reniformis
Cribinopsis crassa
Dardanus arrosor
Dromia personata
Eriphia verrucosa
Hexaplex trunculus
Holothuria sanctori
Ophioderma longicaudum
Ophiothrix fragilis
Pachygrapsus marmoratus
Pagurus prideaux + Adamsia palliate
Palaemon serratus
Pisidia longicornis
Scyllarus arctus
Thais haemastoma
CONTACTO
Gobius paganellus
Gobius niger
Parablennius gattorugine
Solea solea
Xyrichthys novacula
Arbacia lixula
Astropecten aranciacus
Calappa granulata
Cidaris cidaris
Holothuria forskali
Holothuria polii
Holothuria sanctori
Holothuria tubulosa
Ophioderma longicaudum
Pagurus prideaux + Adamsia palliata
Paracentrotus lividus
Sphaerechinus granularis
Xantho poressa
INFRALITORAL
Chromis chromis
Coris julis
Labrus merula
Labrus viridis
Mullus surmuletus
Serranus scriba
Serranus cabrilla
Symphodus tinca
Symphodus melops
Thalassoma pavo
Anemonia sulcata
Marthasterias glaciallis
INVERTEBRADOS
Alcyonium acaule
Alcyonium digitatum/palmatum
Aslia lefrevrei
Apogon imberbis
Arca noae
Balanophyllia europaea
Cladocora caespitosa
Corynactis viridis
Corallium rubrum
Chromis chromis
Dendrophyllia ramea
Dendrophyllia cornigera
Epizoanthus arenaceus
Eunicella singularis
Eunicella singularis + Al. coralloides
Eunicella verrucosa
Halocynthia papillosa
Leptogorgia sarmentosa
Leptopsammia pruvoti
Lysmata seticaudata
Parazoanthus axinellae
Spirographis spallanzani
Spondylus gaedeporus
Stenopus spinosus
• CUARENTENA
EXHIBICIÓN:
(AZUL PROFUNDO)
Anthias anthias
Bathynomus doederleinii
Liza sp.
Lythrypnus dalli
Monocentris japonicus
Solea solea
Takifugu niphobles
Zeus faber
Polyprion americanus
Rhinoptera bonasus
Sebastes joyneri
Sepia officinalis
Sphyrna sphyrna
Serranus scriba
Serranus cabrilla
Stegostoma fasciatum
Syngnathus acus
Takifugu niphobles
Zebrasoma xanthurum
Zeus faber
Aetobatus narinari
Anthias anthias
Arothron citrinelus
Caretta caretta
Chaetodon auriga
Chaetodon fasciatus
Chaetodon semilarvatus
Coris julis
Dasyatis americana
Dasyatis pastinaca
Diplodus cervinus
Diplodus puntazo
Diplodus vulgaris
Himanthura uarnak
Hippocampus hippocampus
Hippocampus reidi
Lythrypnus dalli
Mola mola
Muraena helena
Mustellus mustellus
Myliobatis Aquila
Naucrates ductor
Pagellus erythrinus
Pagrus auriga
Pagrus pagrus
Phyllopteryx taeniolatus
• OCÉANOS
RESTAURANTE SUBMARINO
Boops boops
Dasyatis pastinaca
Raja undulata
Rhinobatos rhinobatos
Scyliorhinus canicula
Scyliorhinus stellaris
Trachinotus ovatus
Trachurus trachurus
Lutjanus jocu
Megalops atlanticus
Mola mola
Mustelus mustelus
Myliobatis aquila
Pagellus acarne
Pagellus bogaraveo
Pagrus auriga
Pagrus pagrus
Polyprion americanus
Pristis zijsron
Pteromylaeus bovinus
Pteroplatytrygon violacea
Rhinobatos rhinobatos
Scomber japonicus
Selene vómer
Seriola rivoliana
Sparus aurata
Sphyraena barracuda
Squatina squatina
Taeniura grabata
Trachinotus falcatus
Trachinotus ovatus
Trachurus trachurus
OCÉANOS
Acanthurus bahianus
Aetobatus narinari
Albula vulpes
Argyrosomus regius
Bodianus rufus
Caranx crysos
Caranx hippos
Caranx latus
Carcharhinus plumbeus
Carcharias taurus
Dasyatis americana
Dasyatis pastinaca
Diplodus cervinus
Diplodus puntazo
Diplodus sargus
Diplodus vulgaris
Echeneis naucrates
Epinephelus itajara
Epinephelus marginatus
Gynglimostoma cirratum
Dyphosus sectator
Labrus bergylta
Lutjanus analis
Lutjanus griseus
• TROPICAL
EXHIBICIÓN:
MEDUSAS, CABALLITOS Y DRAGONES
Aurelia aurita
Hippocampus reidi
Hippocampus zosterae
Phylloptery taeniolatus
Rhinobatos rhinobatos
Seriola dumerelii
Abudefduf saxatilis
Acanthurus bahianus
Acanthurus chirurgus
Albula vulpes
Chaetodipterus faber
Chaetodon aculeatus
Gymnothorax funebris
Gymnothorax moringe
Holocanthus ciliaris
Limolus polyphemus
Lutjanus apodus
Lutjanus griseus
Mugil curema
Mulloidichthys martinicus
Ocyurus chrysurus
Paranthias furcifer
Selene vómer
Trachinotus carolinus
IZÚ
Girella punctata
Macrocheira kaempferi
Macroramphosus scolopax
Metridium giganteum
Microcanthus strigatus
Monocentris japonicus
Paralomis hystrix
Sakura margaritacea
Scorpaena onaria
Sebastes joyneri
Takifugu niphobles
TÚNEL
Balistes capriscus
Dactylopterus volitans
Dicentrarchus punctatus
Diplodus annularis
Diplodus cervinus
Diplodus puntazo
Diplodus sargus
Lithogmathus mormyrus
Muraena helena
Oblada melanura
Pagrus auriga
Pagrus pagrus
Plectorhinchus mediterraneum
Psetta máxima
Serranus scriba
Sparus aurata
Spondyliosoma cantharus
Balistes capriscus
Balises vetula
Caranx crysos
KELP
Asterinaminiata
Brachystius frenatus
Cephaloscyllium ventriosum
Chromis punctipinnis
Corinactis califórnica
Cymatogaster aggregata
Embiotoca jacksoni
Gibbonsia sp.
Girealla nigricans
Halichoeres semicinctus
Heterodontus francisci
Hipsypops rubicunda
Medialuna californiensis
Oxijulis califórnica
Oxilebius pictus
Pisaster brevispinus
Pisaster giganteus
Pisaster ochraceous
Pleuronichthys coenosos
Pycnopodia helianthoides
Triakis semifasciatus
Holocentrus ascensionis
Holocentrus rufus
Hypoplectus unicolor
Hypoplectus gemma
Hypoplectus guttavarius
Hypoplectus indigo
Hypoplectus puell
Lachnolaimus maximus
Melichtys niger
Microspathodon chrysurus
Myripristis jacobus
Naucrates ductor
Paranthias furcifer
Pomacanthus paru
Pomacanthus arcuatus
Rhinoptera bonassus
Sargocentron coruscum
Scarus iserti
Sparosoma sp.
Sphoerides testudineus
Thalasoma bifasciatum
CARIBE
Abudefduf saxatilis
Acanthurus coeruleus
Anisotremus virginicus
Bodianus pulchelus
Bodianus rufus
Canthehinus macroceros
Cantherhinus pullus
Chaetodon striatus
Clepticus parrae
Equetus lanceolatus
Equetus puntatus
Gymnothorax funebris
Haemulon aurolineatum
Haemulon flavolineatum
Haemulon macrostomum
Haemulonmelanurum
Haemulon plumieri
Haemulon sciurus
Halichoeres radiatus
Holocanthus ciliaris
Holocanthus tricolor
Caesio caerulaurea
Caesio cuning
Caesio teres
Caesio varilineata
Centropige bispinosus
Chaetodon auriga
Chaetodon collare
Chaetodon decussatus
Chaetodon ephippium
Chaetodon falcula
Chaetodon kleini
Chaetodon lunula
Chaetodon vagabundus
Chaetodon xantocephalus
INDOPACÍFICO
Acanthochromis polyacanthus
Acanthurus dussumieri
Acanthurus japonicas
Acanthurus leucosternon
Acanthurius lineatus
Acanthurus mata
Acanthurus tenneti
Acanthurus triostegus
Apolemichthys trimaculatus
Acanthurus triostegus
Arothon citrinelus
Balistoides conspicillum
Bodianus axilaris
Caesio caerulaurea
Caesio cuning
Caesio teres
Caesio varilineata
Centropige bispinosus
Chaetodon auriga
Chaetodon collare
Chaetodon decussatus
Chaetodon ephippium
Chaetodon falcula
Chaetodon kleini
Chaetodon lunula
Chaetodon vagabundus
Chaetodon xantocephalus
Larabicus quadrimaculatus
Ltjanus gibbus
Lutjanus kasmira
Monodactylus argenteus
Naso hexacanthus
Naso brevirostris
Naso lituratus
Naso unicornis
Odonus niger
Platax teira
Plectorinchus gaterinus
Pomacanthus asfur
Pomacanthus maculosus
Pomacentrus sulfurous
Pseudobalistoides flavimarginatus
Rhinecanthus assasi
Sargocentron caudimaculatum
Sargocentron spiniferum
Thalasoma kluzingeri
Thalasoma lunare
Zebrasoma desjardinii
Zebrasoma xanthurum
MAR ROJO
Acanthurus gahhm
Acanthurus sohal
Bodianus anthioides
Bodianus Diana
Canthigaster margaritata
Carcharinus melanopterus
Cephalopholis argus
Chaetodon auriga
Chaetodon fasciatus
Chaetodon fasciatus
Chaetodon lineolatus
Chaetodon paucifasciatus
Chaetodon semilarvatus
Cheilinus lunulatus
Cheilinus undulates
Ctenochaetus Striatus
Gnathonodon speciosus
Heniochus acuminatus
Heniochus diphreutes
Heniocus intermedius
Labroides dimidiatus
Chaetodon xanthurus
Chaetodontoplus duboulayi
Chelmon rostratus
Chilloscylium punctatum
Chromis dimidiata
Chromis viridis
Chrysiptera hemicyanea
Chrysiptera parasema
Ctenochaetus strigosus
Dascyllus aruanus
Dascyllus carneus
Dascyllus melanurus
Dascyllus reticulatus
Dascyllus trimaculatus
Euxiphipops xantomethapon
Forcipiger longisrostris
Gomphosus caeruleus
Gomphosus varius
Gymnothorax favagineus
Gymnothorax kidako
Hemitaurichthys polylepis
Hemitaurichthys zoster
Labroides dimidiatus
Naso lopezi
Naso vlamingi
Nemanthias carberryi
Paracanthurus hepatus
Parupeneus barbarinoides
Platax orbicularis
Plectorinchus orientalis
Pomacanthus anularis
Pomachanthus semicirculatus
Pomacentrus pavo
Pseudanthias evansi
Pseudanthias ignites
Pseudanthias squamipinnis
Ptereleotris zebra
Sargocentron diadema
Stegostoma fasciatum
Symphorichtys spilurus
Zanclus cornutus
Zebrasoma flavescens
Zebrasoma veliferum
• AVES
Himantopus himantopus
Mauremys leprosa
Mergus cucullatus
Mergus merganser-merganser
Mergus serrator serrator
Mycticorax mycticorax
Netta ruffian
Pelecanus nefescens
Pelecanus occidentalis
Pelecanus omocrotatus
Phelacrocorax carbo
Phoenicopteas chilensis
Phoenicopterus ruber
Phygosteris papua-papua
Platalea leurocorodia
Plegadis falcinellus
Porphyrio porphyrio
Spheniscus humboldti
Recurvirostra avosetta
Tadorna tadorna
Trachemys scripta elegans
Ajaja ajaja
Anas acuta
Anas clypeata
Anas crecca-crecca
Anas Formosa
Anas penelope
Aramides ypecaha
Aythya aythya
Aythya fuligula
Buceptala albeola
Butories striatus
Callonetta leucophrys
Cygnus columbianus
Cygnus cygnus cygnus
Cygnus metancoryphus
Dendrocygna viduata
Egretta garceta
Eudocimus ruber
Fulica atra
Gallinula chloropus
Haematopus ostralegus
9. CONCLUSIÓN PERSONAL
Me complace decir que el trabajo en esta empresa resulta muy gratificante, tanto por el
trato recibido por parte de los trabajadores, como por el hecho de trabajar directamente en el
cuidado de los animales. Tanto los unos como los otros han sido de lo más agradecido, lo cual
provocaba que mi motivación por el trabajo fuese en aumento, a medida que pasaba el
tiempo.
Como experiencia laboral, ha sido de gran ayuda para adaptarme al ámbito profesional,
formando parte de gran equipo. Además, tras mi estancia de prácticas me ofrecieron un
contrato de acuarista, para hacer guardias nocturnas, que acepté encantada, durante el
tiempo que pude permanecer en Valencia.
Como experiencia formativa, complementaria a la Licenciatura en Biología, resulta de
gran interés. Gracias a la gran diversidad de especies que hay en el parque y al paso por las
diferentes secciones, además del trabajo directo con los sistemas de filtración y el
mantenimiento del acuario, fueron muchos los nuevos conocimientos adquiridos por mi parte
y creo que es algo que puede abrirme muchas puertas en un futuro.
En cuanto a la impresión final de mi trabajo en el parque, destacar que los sectores de
mayor interés, por mi parte han sido:
- CUARENTENA: en el que más he aprendido, en cuanto al funcionamiento de un acuario y
el mantenimiento de las especies.
- OCÉANOS: es el sector en el que más me ha gustado trabajar, tanto por la organización de
sus rutinas, como por el contacto con las especies que en él habitan y la gran dimensión
de su tanque.
- AVES: donde más a gusto he trabajado, gracias al ambiente de trabajo del personal que lo
forma.
10. AGRADECIMIENTOS
He de agradecer, a todos y cada uno de los compañeros a los que he tenido el placer de
conocer y trabajar con ellos.
Haciendo especial hincapié, a Manuela Guimeráns, coordinadora del personal en
prácticas, además de jefa del sector de Cuarentena y gran persona, quien me ha ayudado en
todo lo que he necesitado.
Además, me siento especialmente agradecida, por el trato recibido por algunos de los
trabajadores de diferentes sectores, insistiendo una vez más, en los que forman la plantilla de
Aves: Noemí Sanchís, Rubén Mata, Rachael Gilsbert y, por supuesto, Gabriel Castillo, que me
ha ayudado a la hora de rematar este informe.