särskilt förorenande ämnen i ytvatten: förslag till …„...8 1 inledning denna rapport har på...

ITM-rapport 219

Särskilt förorenande ämnen i ytvatten:

förslag till gränsvärden

1

ITM-rapport 219

Förslag till gränsvärden för särskilda

förorenande ämnen (SFÄ)

Institutionen för tillämpad miljövetenskap, ITM Stockholms universitet

Maj 2013

3

Förkortningar och begrepp

AF

Assessment factor; säkerhetsfaktor

BCF Bioconcentration factor; biokoncentrationsfaktor

CCME Canadian Council of Ministers of the Environment

DOC Dissolved organic carbon; löst organiskt kol

EC Effect concentration; effektkoncentration

EP Equilibrium partitioning; jämviktsfördelning

EPA Environmental Protection Agency; myndighet motsvarande Natur- vårdsverket

EU European Union; Europeiska unionen

GV Gränsvärde

HC5 Den koncentration av ämnet som anses vara säker för 95 % av alla arter

KemI Kemikalieinspektionen

Koc Fördelningskoefficienten organiskt kol-vatten Kow Fördelningskoefficienten oktanol-vatten LC Lethal concentration; dödlig koncentration LOEC Lowest observed effect concentration; den lägsta testkoncentration

vid vilken effekter observerats

MATC Maximum allowable toxicant concentration NOEC No observed effect concentration; den högsta testkoncentration då

inga negativa effekter observerats

NIWA National Institute of Water & Atmospheric Research Ltd. OECD Organisation for economic co-operation and development

PNEC Predicted no effect concentration; den beräknade koncentration av ett ämne då inga negativa effekter förväntas uppträda

RAR Risk assessment report; riskbedömningsrapport

SSD Species sensitivity distribution; statistisk frekvensfördelning, statistisk metod som används för PNEC-bestämning för datarika ämnen

TGD Technical guidance document; tekniskt vägledningsdokument som används vid riskbedömningen av existerande ämnen enligt Rådets

4

förordning 793/93/EEG

WFD-UKTAG Water framework directive - United Kingdom technical advisory group WHO

World health organisation, Världshälsoorganisationen

5

Förkortningar och begrepp ...................................................................................................................... 3

1 Inledning ............................................................................................................................................... 8

2 Urval av ämnen .................................................................................................................................... 8

3 Metodik ................................................................................................................................................ 8

3.1 Allmänt .......................................................................................................................................... 8

3.2 Dataunderlag ................................................................................................................................. 8

3.3 GVvatten ........................................................................................................................................... 9

3.4 GVsediment ...................................................................................................................................... 10

3.5 Källor ........................................................................................................................................... 11

4 Föreslagna gränsvärden ...................................................................................................................... 12

5 Ämnesblad .......................................................................................................................................... 13

5.1 Ammoniak ................................................................................................................................... 13

5.1.1 Sammanfattning ................................................................................................................... 13

5.1.2 Toxicitet för vattenlevande organismer ................................................................................ 13

5.1.3 GVsötvatten akut .......................................................................................................................... 14

5.1.4 GVsötvatten kronisk ....................................................................................................................... 14

5.1.5 GVmarina vatten akut ..................................................................................................................... 14

5.1.6 GVmarina vatten kronisk .................................................................................................................. 14

5.1.7 Källor ..................................................................................................................................... 15

5.2 Koppar ......................................................................................................................................... 16

5.2.1 Sammanfattning .................................................................................................................... 16


5.2.4 GVsötvatten kronisk ...................................................................................................................... 16


5.2.7 Källor .................................................................................................................................... 17

5.3 Zink ............................................................................................................................................. 18



5.3.4 GVsötvatten kronisk ...................................................................................................................... 19



5.3.8 GVsediment ............................................................................................................................... 19

5.3.9 GVsediment med jämviktsfördelningsmetodik ......................................................................... 20

6

5.3.10 Källor .................................................................................................................................. 20

5.4 Arsenik ........................................................................................................................................ 21

5.4.1 Sammanfattning .................................................................................................................... 21





5.4.7 Källor .................................................................................................................................... 22

5.5 Nitrat ............................................................................................................................................ 23

5.5.1 Sammanfattning .................................................................................................................... 23




5.5.7 Källor .................................................................................................................................... 24

5.6 Uran ............................................................................................................................................. 25

5.6.1 Sammanfattning .................................................................................................................... 25





5.6.7 Källor .................................................................................................................................... 26

5.7 Bentazon ...................................................................................................................................... 27


5.7.3 GVsötvatten akut .................................................................................................................. 27


5.7.5 GVmarina vatten .......................................................................................................................... 28

5.7.6 Källor ..................................................................................................................................... 28

5.8 Bisfenol-A ................................................................................................................................... 29






5.8.7 Källor .................................................................................................................................... 30

7

6 Bilagor ................................................................................................................................................ 31

8

1 Inledning Denna rapport har på uppdrag av Naturvårdsverket och de fem vattenmyndigheterna utarbetats vid Institutionen för tillämpad miljövetenskap, Stockholms universitet. Syftet med arbetet har varit att ta fram gränsvärden i ytvatten för ett antal kemikalier (särskilt förorenande ämnen). Dessa gränsvärden ska kunna fungera som stöd vid klassificering av ekologisk status inom EGs ramdirektiv för vatten. Beräkning av gränsvärden följer så långt det varit möjligt de principer och metoder som accepterats på EU-nivå för beräkning av gränsvärden för de prioriterade ämnena. Metodiken i den här rapporten följer i stort också den som använts i en tidigare rapport utgiven av Naturvårdsverket (Rapport 5799- Förslag till gränsvärden för särskilt förorenande ämnen).

2 Urval av ämnen Urval av ämnen har gjorts i samråd med uppdragsgivarna Naturvårdsverket, Länsstyrelserna och de fem vattenmyndigheten och grundar sig i stort på en prioriteringslista sammanställd utifrån önskemål från Länsstyrelserna. Synpunkter på ämnesval har också tagits in från Kompetenscentrum för kemiska bekämpningsmedel på SLU. Flera av de ämnen som behandlas i den här rapporten finns också med i Naturvårdsverkets tidigare rapport 5799 från 2008. Gränsvärden för dessa ämnen beräknades igen eftersom de var högprioriterade av Länsstyrelserna och uppdragsgivarna därför ansåg det befogat att se över dess gränsvärden.

3 Metodik 3.1 Allmänt Framtagandet av gränsvärden (GV) följer i stort den arbetsgång som beskrivs i Naturvårdsverkets rapport 5799 från 2008. Så långt det har varit möjligt har därmed GV beräknats enligt de principer och metoder som används på EU-nivå för att beräkna miljökvalitetsnormer för prioriterade ämnen, identifierade i Europaparlamentets och rådets beslut 2455/2001/EG. Dessa principer och metoder beskrivs i dokumentet “Common implementation strategy for the Water Framework Directive (2000/60/EC), Guidance document No.27, Technical guidance for deriving Environmental Quality Standards Technical report 2011-055” (här kallad TGD no 27). En kortfattad beskrivning av metodiken följer nedan.

3.2 Dataunderlag För att effektivisera framtagandet av GV och på så sätt inkludera så många ämnen som möjligt har endast ett fåtal av originalstudierna granskats kritiskt. De framtagna GV som presenteras i den här rapporten är därför fastställda utifrån data som redan blivit kritiskt granskad och presenterad i rapporter av andra betrodda organisationer och myndigheter (ECHA, KemI, USEPA, Environment Canada, WFD-UKTAG, NIWA och Danska Miljöministeriet). För att komplettera med data för den period som tidigare granskad data inte

9

täcker in, har en litteratursökning gjorts i den öppna vetenskapliga litteraturen (Web of Science, sökning gjord under Januari-Mars 2013).

3.3 GVvatten Framtagna GV för vatten vid kronisk exponering (GVvatten kronisk) är beräknade utifrån toxicitetsdata från laboratorietester. Datasetet bör innehålla minst tre NOEC- (No Observed Effect Concentration) eller EC10-värden från studier med vattenlevande organismer som representerar olika trofiska nivåer, vanligtvis alg, kräftdjur och fisk (s.k. ”base set”). Om dessa krav uppfylls, kan ett PNEC-värde (Predicted No Effect Concentration) beräknas genom att dividera det lägsta NOEC- eller EC10-värdet (NOECmin) med en säkerhetsfaktor (AF). Kvalitet och kvantitet på tillgänglig data avgör hur stor säkerhetsfaktor som behöver användas (se Tabell 1 och 2). I den här rapporten har antingen NOEC- eller EC10-värden använts för att beräkna GV, beroende på tillgång till data.

GVvatten kronisk = PNECvatten kronisk = (NOEC eller EC10)min/AF

I de fall då det inte har rapporterats något NOEC- eller EC10-värde men istället ett LOEC-värde (Lowest Observed Effect Concentration), har det lägsta rapporterade LOEC-värdet använts för att beräkna NOEC under förutsättning att effekten i det aktuella testet inte överstiger 20 % jämfört med kontrollgruppen. I dessa fall har NOEC beräknats som LOEC/2 (i enlighet med TGD no 27 Table 5, p 144).

Om datasetet är tillräckligt stort och inkluderar minst 10 kritiskt granskade NOEC- eller EC10-värden från minst 8 taxonomiska grupper, kan ett PNEC-värde istället beräknas med hjälp av en statistisk metod. Metoden bygger på att arters känslighet för ett ämne kan beskrivas som en statistisk frekvensfördelning (SSD). Detta görs genom att beräkna den 5:e percentilen (HC5) av frekvensfördelningen och dividera med en AF. Enligt TGD no 27 ska en AF mellan 1 och 5 användas, beroende på datamängd och kvalitet. I samråd med Naturvårdsverket har dock ett mer konservativt intervall mellan 2 och 5 använts i denna rapport. Beräknad HC5 utgör den koncentration av ämnet som anses vara säker för 95 % av alla arter.

Gränsvärden för akut exponering beräknas som för kronisk exponering, genom att dividera det lägsta rapporterade LC50- eller EC50-värdet (eller framtaget HC5) med en AF.

Tabell 1. Kriterier (datakrav) för val av säkerhetsfaktor (AF) för beräkning av GVsötvatten

Tillgängliga data Säkerhetsfaktor (AF)

Åtminstone ett korttids L(E)C50-värde från varje trofisk nivå (fisk,

evertebrater -företrädesvis Daphnia och alg; d.v.s. ”base set”)

1000

Ett långtids NOEC- eller EC10-värde (antigen fisk eller Daphnia) 100

Två långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) från arter som representera två trofiska nivåer (fisk och/eller Daphnia och/eller alg)

50

Långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) från minst tre arter (vanligtvis fisk 10

10

Daphnia eller alg) som representerar två trofiska nivåer

SSD

2-5 (motiveras från fall till fall)

Fält- eller modellekosystem (mesokosm)

Granska från fall till fall

Tabell 2. Kriterier (datakrav) för val av säkerhetsfaktor (AF) för beräkning av GVmarina vatten

Tillgängliga data Säkerhetsfaktor

(AF)

Lägsta korttids L(E)C50 från tre taxonomiska grupper (alg, kräftdjur och fisk) som representerar tre trofiska nivåer antingen i sötvatten eller marina vatten

10 000

Lägsta korttids L(E)C50 från tre taxonomiska grupper (alg, kräftdjur och fisk) som representerar tre trofiska nivåer i antingen sötvatten eller marina vatten, plus två ytterligare marina taxonomiska grupper (t.ex. tagghudingar, blötdjur)

1000

Ett långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) från reproduktionsstudier med kräftdjur eller tillväxtstudier på fisk antingen i sötvatten eller marina vatten

1000

Två långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) med arter (vanligtvis alg och/eller kräftdjur och/eller fisk) som representerar två trofiska nivåer antingen i sötvatten eller marina vatten

500

Lägsta långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) med arter (vanligtvis alg och/eller kräftdjur och/eller fisk) som representerar tre trofiska nivåer antingen i sötvatten eller marina vatten

100

Två långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) med arter (alg och/eller kräftdjur och/eller fisk) som representerar två trofiska nivåer i sötvatten eller marina vatten, plus ett långtidsresultat från ytterligare en marin taxonomisk grupp (t.ex tagghudingar, blötdjur)

50

Lägsta långtidsresultat (t.ex. NOEC eller EC10) med arter (vanligtvis alg och/eller kräftdjur och/eller fisk) som representerar tre trofiska nivåer antingen i sötvatten eller marina vatten, plus två långtidsresultat från ytterligare marina taxonomiska grupper (t.ex. tagghudingar, blötdjur)

10

De GV som presenteras här för metaller är generiska ”worst-case”-värden, ingen modellering har gjorts för att ta hänsyn till komplexbindning.

3.4 GVsediment GV för sediment beräknas för ämnen med log Kow eller log Koc ≥ 3 eller som av andra anledningar kan antas ackumuleras i sediment. Beräkningen av GVsediment baseras på NOEC-

eller EC10-värden framtagna genom toxicitetstester med sedimentlevande organismer. Även här tillämpas olika säkerhetsfaktorer för att bestämma PNEC-värdet beroende på kvantitet och kvalitet på tillgänglig data (Tabell 3).

11

GVsediment = PNECsediment = (NOEC eller EC10)min/AF

Tabell 3. Kriterier för val av säkerhetsfaktor (AF) vid beräkning av GVsediment

Tillgängliga data Säkerhetsfaktor (AF)

Ett långtidstest (NOEC eller EC10) 100

Två långtidstest (NOEC eller EC10) med arter som representerar olika livs- och födostrategier

50

Tre långtidstest (NOEC eller EC10) med arter som representerar olika livs- och födostrategier

10

3.5 Källor 1) European commission 2011, Common implementation strategy for the Water Framework

Directive (2000/60/EC) Guidance document N0.27, Technical guidance for deriving Environmental Quality standards Technical report 2011-055.

12

4 Föreslagna gränsvärden

Tabell 4. Föreslagna GV för sötvatten (GVsötvatten) och marina vatten (GVmarina vatten), vid akut och kronisk exponering.

Ämne GVsötvatten akut (µg/l)

GVsötvatten kronisk (µg/l)

GVmarina vatten

akut (µg/l) GVmarina vatten

kronisk (µg/l) Ammoniak (NH3-N)

6.8 1.0 5.7 0.66

Koppar - 0.55 - 1.3 Zink - 7.9 - 3.4 Arsenik 7.9 0.50 1.1 0.55 Nitrat (NO3-N)

2000 160 - 960

Uran 2.3 0.07 2.3 0.07 Bentazon 4700 27 - - Bisfenol-A 2.7 1.6 0.11 -

13

5 Ämnesblad 5.1 Ammoniak

Ämne Ammoniak, NH3 CAS nr 7664-41-7 Molekylvikt (g/mol) 74.92

pKa 9.25 vid 25°C

5.1.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för ammoniak presenteras i Tabell 5.

Tabell 5. Gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för ammoniak (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.

GV Reviderat värde (µg NH3-N/l)

Tidigare publicerat värde (µg NH3-N/l)

Sötvatten akut 6.8 6.8*

Sötvatten kronisk 1.0 1.1*

Marina vatten akut 5.7 5.7*

Marina vatten kronisk 0.66 0.66*

* WFD-UKTAG, 2007

5.1.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Ammoniak används bl a i gödselmedel och bidrar till eutrofiering i både terrestra och akvatiska system. I vatten förekommer ammoniak (total-NH3) dels i joniserad form (NH4

+) och dels i neutral form (NH3). Proportionen mellan de två formerna i vatten styrs bland annat av temperatur och pH. Ammoniaks toxicitet ökar med höjd temperatur och pH, vilket beror på en ökad andel neutralt ammoniak (EPA, 1999). Den totala mängden ammoniak (total-NH3) har i den här rapporten räknats om till motsvarande mängd NH3-N (fneutral NH3) vid gällande temperatur och pH enligt ekvationerna 1 och 2 nedan (Emerson et al, 1975). Ammoniak är mest toxiskt för fisk. pKa = 0.0901821 +2729.92 / T (Ekvation 1) där T = Temperatur i K fneutral NH3 = 1 / [10 pKa - pH+1] (Ekvation 2)

14

Data för ammoniak som används i beräkningen av GV för sötvatten och marina vatten är tagna från WFD-UKTAG, 2007 samt från ytterligare studier som inte ingår i WFD-UKTAG (se Bilagor, Tabell B1-B4).

5.1.3 GVsötvatten akut Akuttoxicitetsdata finns tillgängligt för alg, hjuldjur, kräftdjur, blötdjur, ringmask, plattmask, insekter, fisk och groddjur (se Bilagor, Tabell B1). Lägsta tillförlitliga LC50-värde på 0.068 mg/l har rapporterats för fisk (Oncorhynchus gorbuscha). Detta LC50-värde användes för att beräkna GVsötvatten akut tillsammans med en AF på 10, eftersom data för minst tre trofiska nivåer finns tillgänglig.

GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = LC50-min/AF = (0.068/10) mg/l = 6.8 µg/l

Akuttoxicitetsdata finns tillgänglig endast för sex trofiska nivåer, vilket innebär att SSD egentligen inte bör användas. Som jämförelse beräknades ändå en HC5 med hjälp av SSD. En AF på 10 skall användas vid beräkning av GV från SSD för akuttoxicitet, i enlighet med TGD’n.

GVSSD sötvatten akut=PNECSSD sötvatten akut = HC5/AF = (0.105/10) mg/l = 11 µg/l

Beräknad GVsötvatten akut på 6.8 µg/l med hjälp av LC50-min och AF är det gränsvärde som rekommenderas.

5.1.4 GVsötvatten kronisk Kronisk toxicitetsdata finns tillgängligt för alg, kräftdjur, blötdjur, ringmask, plattmask, insekter, fisk och groddjur (se Bilagor, Tabell B2). Tillgänglig data visar att olika fiskarter är mest känsliga och alg minst känslig. Det lägsta rapporterade NOEC-värdet för total-NH3 är ett mindre-än-värde (< 0.13 mg/l) fastställt för musslor (Lampsilis siliquoidea och Lampsilis fasciola) i ett 28-dagars mortalitetstest. Denna koncentration motsvarar en NH3-N-koncentration på 0.0095 mg/l (ekvationer 1 och 2, ovan). En AF på 10 användes

för beräkning av GVsötvatten kronisk eftersom data finns för minst tre trofiska nivåer.

GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = NOECmin/AF = (0.0095 /10) mg/l = 1.0 µg/l

5.1.5 GVmarina vatten akut Akuttoxicitetsdata finns tillgänglig för alg, hjuldjur, kräftdjur, blötdjur, tagghudingar och fisk (se Bilagor, Tabell B3). Det lägsta rapporterade LC50-värdet är för tagghuding (Strongylocentrotus purpuratus) och är 0.057 mg/l. En AF på 10 användes för beräkning av GVmarina vatten akut (data finns för mollusk och mask; Tabell 2).

GVmarina vatten akut = PNECmarina vatten akut = LC50-min/AF = (0.057/10) mg/l = 5.7 µg/l

5.1.6 GVmarina vatten kronisk Antalet kroniska toxicitetsstudier med ammoniak i marina vatten är begränsat. Det finns endast data för alg, tre kräftdjursarter och två fiskarter (se Bilagor, Tabell B4), vilket gör det svårt att bedöma vilken art som är mest känslig. Det verkar däremot inte som om känsligheten för marina arter skiljer sig åt markant från motsvarande sötvattenlevande arter.

15

Det lägsta rapporterade och tillförlitliga NOEC-värdet från kronisk exponering med marina arter är från en tillväxtstudie på fisk (Solea solea) och ligger på 0.066 mg/l. Eftersom det finns data från korttidsstudier med andra marina arter som visar på högre toxicitet, har ett konservativt AF på 100 använts vid beräkningen av GVmarina vatten kronisk. GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk = NOECmin/AF = (0.066/100) mg/l = 0.66 µg/l

5.1.7 Källor

1) Emerson, K., R.E. Lund, R.V. Thurston and R.C. Russo. 1975. Aqueous ammonia equilibrium calculations: effect of pH and temperature. J. Fish. Res. Board Can. 32: 2379-2383.

2) US Environmental Protection Agency (EPA), 1999. Update of ambient water quality criteria for ammonia. EPA-822-R-99-014.

3) WFD-UKTAG, April 2007. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: ammonia (un-ionised)

16

5.2 Koppar

Ämne Koppar, Cu

CAS nr 7440-50-8

5.2.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för koppar presenteras i Tabell 6.

Tabell 6. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för koppar framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.

GV Reviderat värde (µg/l)

Tidigare publicerat värde (µg/l)

Sötvatten akut - -


Marina vatten akut - -

Marina vatten kronisk 1.3 1.3**

*Naturvårdverket, 2008; ** WFD-UKTAG, 2011

5.2.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Koppar är en essentiell metall som finns naturligt i miljön i form av oxider, sulfider, silikater eller karbonater. Vid förhöjda halter är koppar mycket giftigt för de flesta vattenlevande organismer. Koppars förekomstform, biotillgänglighet och toxicitet i vatten bestäms bland annat av vattnets hårdhet, pH, salthalt, DOC-halt samt koncentrationer av andra katjoner. Data som användes i beräkningen av GV för sötvatten hämtades från EFSA’s Scientific report (EFSA, 2010) och för marina vatten från WFD-UKTAG, 2011.

5.2.3 GVsötvatten akut

Det saknas tillförlitligt dataunderlag för att beräkna GVsötvatten akut.

5.2.4 GVsötvatten kronisk Det finns kroniska NOEC-värden för 25 arter (se Bilagor, Tabell B5) som täcker åtta taxonomiska grupper (encelliga och flercelliga alger, svampar, hjuldjur, blötdjur, kräftdjur, insekter, fiskar och groddjur).

Då koppars kroniska toxicitet påverkas av biotillgänglighet, vilket även påverkar resultaten vid ekotoxikologiska studier, bör biotillgänglighet beaktas även vid framtagandet av ett gränsvärde. I EFSA´s Scientific report (EFSA, 2010) presenteras normaliserade NOEC för ett flertal alger, evertebrater och fisk. Dessa återges i Tabell B6. En SSD baserad på normaliserade NOEC-värden genererar ett HC5-värde på 1.1 µg/l. Då underlaget är omfattande kan en AF på 2 användas.

17

GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = HC5/AF = (1.1/2) µg/l = 0.55 µg/l

Det GVsötvatten kronisk som presenteras här är därmed lägre än det gränsvärde på 3.9 µg/l som beräknades och presenterades i Naturvårdsverkets rapport 5799 (Narturvårdsverket, 2008). Skillnaden beror på att det värde som presenterades i rapport 5799 baseras på ett typscenario för en flod i Storbritannien där en tidigare version av BLM-modellen för att modellera koppars biotillgänglighet användes.

5.2.5 GVmarina vatten akut Det saknas dataunderlag för att beräkna GVmarina vatten akut.

5.2.6 GVmarina vatten kronisk

Det finns kroniska NOEC-värden för 29 arter (se Bilagor, Tabell B7) som täcker åtta taxonomiska grupper (encelliga och flercelliga alger, ringmaskar, sjöpungar, nässeldjur, tagghudingar, blötdjur, kräftdjur, och fisk). GVmarina vatten kronisk kunde därför beräknas med hjälp av SSD och en AF på 2. SSDn genererade ett HC5-värde på 2.6 µg/l.

GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk= HC5/AF = 2.6/2 = 1.3 µg/l

5.2.7 Källor 1) EFSA 2011. Monteiro S.C.; Lofts S. and Boxall A. B. 2010. Pre- assessment of

environmental impact of copper and zinc used in animal nutrition. Scientific/Technical report submitted to EFSA, Final 261010. Avialable on http://www.efsa.europa.eu/fr/supporting/doc/74e.pdf

2) WFD-UKTAG 2011. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: Copper (salt water) (for consultation)

3) Naturvårdsverket, Rapport 5799, April 2008. Förslag till gränsvärden för särskilda förorende ämnen. Stöd till vattenmyndigheterna vi statusklassificering och fastställande av MKN.

18

5.3 Zink

Ämne Zink, Zn

CAS nr 7440-66-6

5.3.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för zink presenteras i Tabell 7.

Tabell 7. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för zink framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.



Sötvatten akut - -



Marina vatten kronisk 3.4 3.1**

Sediment 49 m/kg dw 49 mg/kg dw*

*Naturvårdsverket, 2008. Detta gränsvärde gäller för hårda vatten (hårdhet > 24 mg/l CaCO3). För mjuka vatten (hårdhet < 24 mg/l CaCO3) bestämdes gränsvärdet 2008 till 3.1 µg/l. ** WFD-UKTAG, 2011

5.3.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Zink är en essentiell metall och finns naturligt i miljön i form av oxider, sulfider, silikater eller karbonater. Vid förhöjda halter kan zink vara giftigt för de flesta vattenlevande organismer. Zinks förekomstform, biotillgänglighet och toxicitet i vatten bestäms bland annat av vattnets hårdhet, pH, salthalt, DOC-halt samt koncentrationer av andra katjoner. Data som användes i beräkningen av gränsvärden för både sötvatten och marina vatten hämtades från WFD-UKTAG, 2011.

5.3.3 GVsötvatten akut

Akuttoxicitetsdata finns endast för alg, fisk och kräftdjur (Naturvårdsverket, 2008). Det lägsta rapporterade LC50-värdet är för Daphnia magna (0.07 mg/l) och har tillsammans med en AF på 10 använts för att beräkna GVsötvatten akut.

GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = LC50-min/AF= (0.07/10) mg/l = 7.0 µµµµg/l

Beräknat GVsötvatten akut är lägre än GVsötvatten kronisk. Detta kan förklaras av metodikskillnad vid framtagandet av gränsvärdena. GVsötvatten akut har beräknats med en säkerhetsfaktor till lägsta NOEC, medan GVsötvatten kronisk beräknats utifrån en SSD. Om det funnits tillräcklig mängd

19

data för att även beräkna GVsötvatten akut utifrån en SSD skulle detta sannolikt resultera i ett högre värde. Beräknat GVsötvatten akut bör därför ej användas.

5.3.4 GVsötvatten kronisk

Kroniska NOEC-värden för 25 arter (se Bilagor, Tabell B8) som täcker åtta taxonomiska grupper (encelliga och flercelliga alger, svampar, hjuldjur, blötdjur, kräftdjur, insekter, fiskar och groddjur) finns tillgängligt. Således kunde SSD användas för att ta fram ett HC5-värde på 15.8 µg/l. En AF på 2 användes för att beräkna ett generiskt GVsötvatten kronisk.

GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = HC5/AF = 15.8/2 = 7.9 µg/l

Om GVsötvatten kronisk hade beräknats på traditionellt sätt utifrån AF och NOECmin skulle en AF på 10 tillsammans med lägsta tillförlitliga NOEC-värde på 4.9 µg/l (för algerna Pseudokirchneriella subcapitata och Chlorella sp.) resultera i ett mer konservativt GVsötvatten

kronisk på 0.5 µg/l. GVsötvatten kronisk (AF) = NOECmin/AF = 4.91/10 = 0.5 µg/l


5.3.6 GVmarina vatten kronisk Data från kronisk exponering av 36 marina arter (Se Bilagor, Tabell B9) som täcker åtta taxonomiska nivåer (encelliga och flercelliga alger, ringmask, nässeldjur, kräftdjur, tagghudingar, blötdjur, fisk och rundmask) finns tillgängligt. Således kunde SSD användas för att ta fram ett HC5-värde på 6.8 µg/l. En AF på 2 användes för att beräkna ett generiskt GVmarina vatten kronisk. GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk = HC5/AF = (6.8/2) µg/l = 3.4 µg/l

Om GVmarina vatten kronisk hade beräknats på traditionellt sätt utifrån AF och NOECmin skulle en AF på 10 tillsammans med lägsta tillförlitliga NOEC-värde på 5.6 µg/l (från ett 24-dagarstest med kräftdjur, Holmesimyis costata) resultera i ett mer konservativt GVmarina vatten kronisk på 0.56 µg/l. GVmarina vatten kronisk (AF) = NOECmin/AF = (5.6/10) µg/l = 0.56 µg/l

5.3.8 GVsediment Det finns endast fyra rapporterade tillförlitliga kroniska NOEC-värden, vilka ligger mellan 488 och 1100 mg/kg torrvikt för sedimentlevande organismer som representerar tre olika trofiska nivåer (insekt: Chironomus tentans, plattmask: Tubifex tubifex och kräftdjur: Hyalella azteca). Eftersom dessa organismer är från tre olika taxonomiska grupper som representerar olika livs- och födostrategier användes en AF på 10 tillsammans med det lägsta NOEC-värdet (488 mg/kg torrvikt, Hyalella azteca) för att beräkna GVsediment.

20

GVsediment= PNECsediment = NOECmin/AF = (488/10) mg/kg torrvikt = 49 mg/kg torrvikt

5.3.9 GVsediment med jämviktsfördelningsmetodik I enlighet med NV, 2008 Rapport 5799 kan EP-GVsediment också beräknas med hjälp av jämviktsfördelningsmetodik utifrån det tidigare bestämda GV för vatten, vilket resulterar i ett värde på 860 mg/kg torrvikt (se rapport NV 5799). GV för sediment baserat på testdata blir flera gånger lägre än det som är framräknat med jämviktsfördelningsmetodik. I Rapport 5799 konstateras det att ytterligare kunskap krävs innan ett GVsediment kan fastställas. Denna bedömning gäller fortfarande varför ett GVsediment inte kan rekommenderas.

5.3.10 Källor 1) WFD-UKTAG, 2011. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII

substances: zinc. 2) Naturvårdsverket, Rapport 5799, April 2008. Förslag till gränsvärden för särskilda

förorende ämnen. Stöd till vattenmyndigheterna vi statusklassificering och fastställande av MKN.

21

5.4 Arsenik Ämne Arsenik, As CAS nr 7440-38-2

5.4.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för arsenik presenteras i Tabell 8.

Tabell 8. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för arsenik framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.






Marina vatten kronisk 0.55 0.6*

* WFD-UKTAG, 2007

5.4.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Arsenik är ett grundämne som finns naturligt förekommande i miljön, men som också sprids till miljön via antropogena källor. Arsenik förekommer som arsenit (H2AsO3,HAsO2), arsenat (H2AsO4, HAsO4), arsenikpentoxid (As2O5) och arsenikoxid (As2O3). Arsenikoxid är den form som vanligen produceras i samhället. Andelen arsenit i vatten ökar med minskad mängd syre. As(V) och As(III) är lika toxiska för akvatiska organismer därför har GV för As(V) och As(III) inte separerats i den här rapporten. Data från WFD-UKTAG, 2007 har använts för att ta fram GV för både sötvatten och marina vatten.

5.4.3 GVsötvatten akut Lägsta rapporterade tillförlitliga EC50-värde från akuttoxicitetsstudier med sötvattenlevande arter (se Bilagor, Tabell B10) är från en 96-timmars tillväxtstudie på alg (Scenedesmus obliquus) och ligger på 79 µg/ l. Tillgänglig data från andra trofiska nivåer tyder på lägre känslighet. En AF på 10 har därför använts för att beräkna GVsötvatten akut. GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = EC50-min/AF = (79/10) µg/l = 7.9 µg/l

5.4.4 GVsötvatten kronisk Lägsta tillförlitliga rapporterade värde från ett långtidsförsök är ett LOEC-värde på 10 µg/l (Bilagor, Tabell B10) fastställd från en 26 dagars reproduktionsstudie med kräftdjur (Daphnia puplex). Eftersom det lägsta LOEC-värdet inte orsakade mer än 20 % effekt (jämfört med kontrollgrupp) kan ett NOECmin beräknas genom att dividera LOEC med 2. Eftersom data finns för tre trofiska nivåer (Bilagor, Tabell B11) har en AF på 10 använts för att beräkna GVsötvatten kronisk.

22

GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = (LOEC/2)/AF = ((10/2)/10) µg/l = 0.50 µg/l

5.4.5 GVmarina vatten akut Lägsta rapporterade EC50-värde är från ett mortalitetstest på kräftdjur (Tigriopus brevicornis) och ligger på 11 µg/l (se Bilagor, Tabell B12). Detta värde är i samma storleksordning som det lägsta rapporterade NOEC-värdet för kronisk exponering för sötvatten. Därför har en AF på 10 (i stället för 100, se Tabell 2) använts för att beräkna GVmarina vatten akut. GVmarina vatten akut = PNECmarina vatten akut = EC50-min/AF = (11/10) µg/l = 1.1 µg/l

5.4.6 GVmarina vatten kronisk Lägsta rapporterade LOEC-värde från kronisk exponering med marina arter är 11 µg/l (Bilagor, Tabell B13) (tagghuding; Strongylocentrosus purpuratus). Ett NOEC-värde kan uppskattas utifrån detta LOEC-värde genom att dela LOEC med 2 (WFD-UKTAG, 2007). NOEC-värden finns tillgängliga för mer än tre marina arter som representerar tre trofiska nivåer (alg, kräftdjur, tagghudingar och blötdjur) samt akuttoxicitetsdata för ytterligare en marin art (mask). Därför har en AF på 10 använts för att beräkna GVmarina vatten kronisk. GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk = (LOEC/2)/AF = ((11/2)/10) µg/l = 0.55 µg/l

5.4.7 Källor 1) WFD-UKTAG 2007. Science Report Proposed EQS for arsenic

23

5.5 Nitrat Ämne Nitrat , NO3

-

CAS nr 14797-55-8 Molekylvikt (g/mol) 62

5.5.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för nitrat presenteras i Tabell 9.

Tabell 9. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för nitrat framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.

GV Reviderat värde (µg NO3-N/l)

Tidigare publicerat värde (µg NO3-N/l)

Sötvatten akut 2000 20000*

Sötvatten kronisk 160 2400*


Marina vatten kronisk 960 - *NIWA, 2013

5.5.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Nitrat förekommer naturligt i miljön där det produceras och konsumeras via olika processer i kvävets kretslopp. Nitrat framställs också industriellt för användning i olika produkter, bl a som gödning. Nitrat är mindre toxisk för vattenlevande organismer än ammoniak eller nitrit, men akuttoxiska koncentrationer av NO3-N är upp till 100 gånger högre än för NH3-N och NO2-N (Colt and Armstrong, 1981). Data från Environment Canada och National Institute of Water & Atmospheric Research Ltd, New Zealand har använts för att ta fram GV för NO3-N. Där nitratkoncentration rapporteras som NO3

- har den konverteras till NO3-N genom att multiplicera med 0.23 (WHO, 1996).

5.5.3 GVsötvatten akut Det finns akuttoxicitetsdata för fisk, blötdjur, groddjur, kräftdjur och insekter (se Bilagor, Tabell B14). Lägsta rapporterade LC50-värde på 99 mg/l är fastställd för insekten (Hydropsyche occidentalis) i ett 96 timmars mortalitetstest. Då det saknas korttidsstudier för alg har en AF på 50 tillsammans med LC50-min använts för att beräkna GVsötvatten akut. GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = LC50-min/AF= (99/50) mg/l = 2.0 mg/l

24

5.5.4 GVsötvatten kronisk Kroniska NOEC-värden finns för fisk, blötdjur, groddjur, kräftdjur, insekter och alg (Bilagor, Tabell B15). Data tyder på högre känslighet för fisk jämfört med andra organismer. Det lägsta NOEC-värdet på 1.6 mg NO3-N/l har också fastställts för fisk (Salvelinus namaycush). Data finns från tre trofiska nivåer (alg, kräftdjur och fisk), vilket innebär att en AF på 10 kunde användas för att beräkna GVsötvatten kronisk. GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = NOECmin/AF = (1.6/10) mg/l = 0.16 mg/l


5.5.6 GVmarina vatten kronisk Kroniska EC10-värden finns för fisk, ringmask, tagghuding och leddjur (se Bilagor, Tabell B16). Det lägsta rapporterade EC10-värdet har fastställts till 48 mg/l för en havsborstmask (Nereis grubei). Eftersom det finns långtidsstudier med marina arter som representerar två trofiska nivåer samt långtidsdata från ytterligare en taxonomisk grupp har en AF på 50 använts för att beräkna GVmarina vatten kronisk.

GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk = (EC10-min)/AF = (48/50) mg/l = 0.96 mg/l

5.5.7 Källor 1) WHO (World Health Organization). 1996. Inorganic Constituents and Physical

Parameters. In: Guidelines for Drinking-Water Quality: Volume 2 Health Criteria and Other Supporting Information. (2nd Ed.). World Health Organization. Geneva. pp. 313-322.

2) Colt, J. and D. A. Armstrong. 1981. Nitrogen toxicity to crustaceans, fish, and molluscs. Bio-Engineering Symposium for Fish Culture. 1: 34-37.

3) CCME, 2012. Canadian Water Quality Guidelines: Nitrate Ion. Scientific Criteria Document (http://www.ccme.ca/assets/pdf/pn_1470_aql_nitrate_scd_1.0.pdf).

4) NIWA. 2013. Updating nitrate toxicity effects on freshwater aquatic species

25

5.6 Uran Ämne Uran, U

CAS nr 7440-61-1

5.6.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för uran presenteras i Tabell 10.

Tabell 10. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för uran framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.






Marina vatten kronisk 0.07 0.015* *Danska Miljöministeriet, 2011. Observera att dessa gränsvärden för kronisk toxicitet är baserade på sekundär förgiftning.

5.6.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Urans förekomstform, biotillgänglighet och toxicitet i vatten bestäms av vattnets hårdhet, pH, salthalt, DOC-halt samt koncentrationer av andra katjoner. Data från Danska Miljöministeriet och Canadian Council of Ministers of the Environment har använts för att ta fram GV för uran.

5.6.3 GVsötvatten akut Det finns tillförlitliga LC50- och EC50-värden för alg, nässeldjur, kräftdjur, fisk, insekter och blötdjur (se Bilagor, Tabell B17). Det lägsta tillförlitliga EC50-värdet på 21 µg/l har fastställts för kräftdjur (Hyalella azteca) i en sjudagars reproduktionsstudie. Denna studie bör dock betraktas som en kronisk studie och därför användes istället ett LC50-värde på 23 µg/l från en studie på alg (Chlorella sp.) tillsammans med en AF på 10 för att beräkna GVsötvatten akut. GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = LC50-min/AF = (23/10) µg/l =2.3 µg/l

5.6.4 GVsötvatten kronisk Tillförlitliga NOEC/EC10-värden finns för alg, nässeldjur, kräftdjur och fisk (se Bilagor, Tabell B18). Lägsta tillförlitliga EC10-värde på 0.70 µg/l är fastställt i en tillväxtstudie med en grönalg (Chlorella sp, 72 h), vilket användes tillsammans med en AF på 10 för att beräkna GVsötvatten kronisk. GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk= EC10-min/AF = (0.70/10) µg/l = 0.07 µg/l

26

5.6.5 GVmarina vatten akut Det finns inte tillräckligt med data från marina arter för att därur beräkna GVmarina vatten akut. Då urans toxicitet minskar med ökad pH och vattenhårdhet förväntas toxiciteten i marin miljö vara lägre än i sötvatten. GVmarina vatten akut fastställs utifrån lägsta tillförlitliga studie från limnisk miljö med hjälp av en AF på 10. GVmarina vatten akut = PNECmarina vatten akut = PNECsötvatten akut/AF = (23/10) µg/l = 2.3 µg/l

5.6.6 GVmarina vatten kronisk Det finns inte data från marina arter för att beräkna GVmarina vatten kronisk. Då urans toxicitet minskar med ökad pH och vattenhårdhet förväntas toxiciteten i marin miljö vara lägre än i sötvatten. GVmarina vatten kronisk fastställs utifrån lägsta tillförlitliga studie från limnisk miljö med hjälp av en AF på 10. GVmarina vatten kronisk = PNECmarina vatten kronisk = PNECsötvatten kronisk /AF =(0.70/10) µg/l = 0.07 µg/l

5.6.7 Källor 1) CCME, 2011. Scientific Criteria Document for the Development of the Canadian

Water Quality Guidelines for the Protection of Aquatic Life. Uranium. ISBN 978-1-896997- 97-1.

2) Danska Miljöministeriet, 2011. Fastsættelse af kvalitetskriterier for vandmiljøet, uran.

27

5.7 Bentazon Ämne Bentazon

CAS nr 25057-89-0 Molekylformel C10H12N2O3S

Molekylvikt (g/mol) 240.3 Vattenlöslighet (mg/l) 490 vid 20 ºC, pH 3

570 vid 20 ºC, ~pH 7 pKa 3.3 vid 24 ºC Log Kow 0.77 vid pH 5, 22 ºC; < 0 vid pH > 6, 22 ºC

Log Koc 13.3–176 ml/g (medel 42)

5.7.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för bentazon presenteras i Tabell 11.

Tabell 11. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för bentazon framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.



Sötvatten akut 4700 -

Sötvatten kronisk 27 27*


Marina vatten kronisk - - *Narurvårdsverket, 2008

5.7.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Bentazon är ett selektivt kontaktverkande ämne som hämmar fotosyntesen. Bentazon har måttlig till låg akut giftighet för vattenlevande organismer och vattenväxter är den mest känsliga gruppen.

Datas som ligger till grund för beräkningarna av GV för bentazon är från Naturvårdsverket, 2008 och Macedo et al., 2008.

5.7.3 GVsötvatten akut Det finns akut toxicitetsdata för alg, kräftdjur och fisk (se Bilagor, Tabell B19). Det lägsta rapporterade EC50-värdet är på 47 mg/l och har fastställts i ett 72-timmars tillväxttest med alg (Ankistrodesmus bibraianus). En AF på 10 har använts för beräkning av GVsötvatten akut eftersom data finns för de tre trofiska nivåerna alg, kräftdjur och fisk. GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = EC50-min/AF = (47/10) mg/l = 4.7 mg/l

28

5.7.4 GVsötvatten kronisk Det finns kronisk exponeringsdata för alg, fisk och högre vattenväxter. Det lägsta av de rapporterade NOEC-värdena är 2.7 mg/l, fastställt för vattenväxt (Lemna gibba). Vattenväxter verkar vara känsliga, men akutdata för kräftdjur tyder på en liknande känslighet. En AF på 100 har tillsammans med det lägsta NOEC-värdet använts för att beräkna GVsötvatten kronisk. GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = NOECmin/AF = (2.7/100) mg/l = 0.027 mg/l

5.7.5 GVmarina vatten Det saknas dataunderlag för att beräkna GVmarina vatten.

5.7.6 Källor

1) Naturvårdsverket, Rapport 5799, April 2008. Förslag till gränsvärden för särskilda förorende ämnen. Stöd till vattenmyndigheterna vi statusklassificering och fastställande av MKN.

2) Macedo R.S; Lombardi A.T.; Omachi, C. Y. & Rörig L. R., 2008. Effects of the herbicide bentazon on growth and photosystem II maximum quantum yield of the marine diatom Skeletonema costatum. Toxicology in Vitro 22, 716–722

29

5.8 Bisfenol-A

Ämne Bisphenol-A

CAS nummer 80-05-7 Molekylformel (CH3)2C(C6H4OH)2 Molekylvikt (g/mol) 228.29 Vattenlöslighet (mg/l) 120-300 (vid rumstemperatur) Log Kow 3.4 BCF (Uppmätt) 67, Cyprinus carpio (fisk)

144, Pisidum amnicum 5.8.1 Sammanfattning Reviderade och tidigare publicerade GV för bisfenol-A presenteras i Tabell 12.

Tabell 12. Sammanfattning av gränsvärden (GV) för sötvatten och marina vatten för Bisfenol A framtagna i den här rapporten (reviderat värde) samt som jämförelse värden publicerade i tidigare studier.



Sötvatten akut 2.7 -


Marina vatten akut 0.11 -

Marina vatten kronisk - -

*Naturvårdsverket, 2008

5.8.2 Toxicitet för vattenlevande organismer Bisfenol A är en hormonstörande kemikalie som bl a används i produktionen av polykarbonatplast, epoximaterial och i tillverkning av termopapper. Den är relativt lättnedbrytbar och har låg potential att bioackumulera. Toxicitet för vattenlevande organismer har observerats.

5.8.3 GVsötvatten akut Det finns akuttoxicitetsdata för alg, kräftdjur och fisk (se Bilagor, Tabell B20). Det lägsta tillförlitliga rapporterade EC50-värdet är 2.73 mg/l för grönalg (Pseudokirchneriella subcapitata; 96 h). En konservativ AF på 1000 (Tabell 1) används för att beräkna GVsötvatten

akut.

GVsötvatten akut = PNECsötvatten akut = EC50-min/AF = (2.7/1000) mg/l = 2.7 µg/l

5.8.4 GVsötvatten kronisk Det lägsta tillförlitliga kroniska NOEC-värdet på 16 µg/l har rapporterats för fisk (Pimephales promelas) i en multigenerationsstudie där dödlighet, tillväxt och reproduktionsförmåga

30

undersöktes. Eftersom det finns NOEC- eller EC10 -värden för både alg och ryggradslösa djur har en AF på 10 använts för att beräkna GVsötvatten kronisk. GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = NOECmin/AF = (16/10) µg/l = 1.6 µg/l I EUs riskbedömningsrapport finns tillräckligt många studier för att kunna bestämma GV med hjälp av SSD (se Bilagor, Tabell B21). Ett omdiskuterat NOEC-värde (2.1 µg/l) för reproduktion av mollusken Marisa cornuarietis inkluderades i SSDn och därför har en AF på 5 använts för beräkning av GVsötvatten kronisk från HC5. GVsötvatten kronisk = PNECsötvatten kronisk = HC5/AF = (8.2/5) µg/l = 1.6 µg/l

5.8.5 GVmarina vatten akut Det finns enbart data för alg, kräftdjur och fisk (se Bilagor, Tabell B20). Enligt TGD skall då GV beräknas från det lägsta LC50-värdet (här 1.1 mg/l fastställd för kräftdjur; Americanmysis bahia) och en AF på 10000. GVmarina vatten akut = PNECmarina vatten akut = LC50-min/AF = (1.1/10000) mg/l = 0.11 µg/l På grund av det begränsade dataunderlaget bör detta värde användas med försiktighet.

5.8.6 GVmarina vatten kronisk Det saknas dataunderlag för att beräkna GVmarina vatten kronisk.

5.8.7 Källor 1) ECB 2009. Updated European Risk Assessment Report on Bisphenol A. FINAL

APPROVED VERSION AWAITING PUBLICATION, 2010. Rapporten finns tillgänglig via European Substance Information System (ESIS): http://ecb.jrc.it/existing-chemicals

31

6 Bilagor Tabell B1: Ammonia short-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration Effect Endpoint Conc (mg/l ) Physico-chemical

conditions Reference

ALG

Chlorella vulgaris 5 d Abundance EC50 2 No pH data Przytocha-Jusiak M, 1976*

Chlorella vulgaris 5 d Abundance EC100 4.5 No pH data Przytocha-Jusiak M, 1976*

ROT

Brachionus rubens 24 h Mortality LC50 3.2 pH 7.4 -7.8 Snell T W & Personne G, 1989*

Brachionus rubens 96 h Mortality LC50 4.6 No pH data Snell T W, 1991*

Philodina acuticornus ND Mortality LC50 2.4 No pH data Buikema et al 1974*

CRU

Daphnia magna ND Mortality LC10 0.45 No pH data Malacea, 1966*

Daphnia magna 48 h Mortality LC50 1.7 No pH data Parkhurst et al 1979*

Daphnia magna 48 h Mortality LC50 4.1 No pH data Reinbold & Pescitelli, 1982*

Daphnia pulicaria 48 h Mortality LC50 0.95 No pH data Degraeve et al 1980*

Hyalella azteca 96 h Mortality LC50 0.16 pH 6.47-6.90 Besser et al 1998*

Hyalella azteca 96 h Mortality LC50 1.8 pH 7.29-7.83 Besser et al 1998*

Orconectes nais - Mortality LC50 2.6 No pH data Evans, 1979*

Orconectes nais - Mortality LC50 3.1 No pH data Hazel et al 1979*

Echinogammarus echinosetosus 96 h Mortality LC50 1.22 Alonso & Camargo 2006

Echinogammarus tolentanus 96 h Mortality LC50 0.65 Alonso & Camargo 2004

Gammarus pulex 96 h Mortality LC50 0.25-1.22 Dehedin et al., 2012

Gammarus roeselii 96 h Mortality LC50 0.32-1.68 Dehedin et al., 2012

Asellus aquaticus 96 h Mortality LC50 0.68-2.6 Dehedin et al., 2012

MOL

Potamopyrgus jenkinsi 96 h Mortality LC50 0.31 No pH data Watton & Hawkes, 1984*

ANN

32

Tubifex tubifex - Mortality LC50 2.21 No pH data Stammer, 1953*

Lumbriculus variegatus 96 h Mortality LC50 0.29 pH 6.47-6.9 Besser et al 1998*

Lumbriculus variegatus 96 h Mortality LC50 3.2 pH 7.29-7.83 Besser et al 1998*

PLA

Dendrocoelum lacterum - Mortality LC50 1.2 No pH data Stammer, 1953*

INS

Chironomus tentans 96 h Mortality LC50 0.53 pH 6.47-6.9 Besser et al 1998*

Chironomus tentans 96 h Mortality LC50 5.6 pH 7.29-7.83 Besser et al 1998*

Stenelmis sexineata - Mortality LC50 6.6 No pH data Hazel et al 1979*

Campostoma anomalum 96 h Mortality LC50 1.4 No pH data Swigert & Spacie,1983*

Catostomus commersoni 96 h Mortality LC50 1.1 No pH data Reinbold & Pescitelli, 1982*

Catostomus commersoni 96 h Mortality LC50 0.65 No pH data Swigert & Spacie,1983*

Castomus platyrhynchus 96 h Mortality LC50 0.55 No pH data Thurston & Meyn, 1984*

Clarias batrachus 96 h Mortality LC50 4.3 No pH data Krainara, 1988*

Cottus bairdi 96 h Mortality LC50 1.1 No pH data Thurston & Russo, 1981*

Cyprinus carpio 96 h Mortality LC50 0.9 No pH data Rao et al 1975*

Cyprinus carpio 96 h Mortality LC50 0.66 No pH data Xu et al 1994*

Cyprinus carpio 96 h Mortality LC50 0.44 No pH data Xu et al 1994*

Etheostoma spectabile 96 h Mortality LC50 0.74 No pH data Hazel et al 1979*

Galaxias maculatus 96 h Mortality LC50 1.6 pH 8.7-9.4 Richardson, 1991*

Hypophthalmichthys molitrix 96 h Mortality LC50 0.38 No pH data Xu et al 1994*

Hypophthalmichthys nobilis 96 h Mortality LC50 0.3 No pH data Xu et al 1994*

Lebistes reticulatus 96 h Mortality LC50 0.25 pH 7.2-7.8 Kumar & Krishnamoorhi, 1983*

Lepomis cyanellus 96 h Mortality LC50 0.41 pH 6.6 Richardson, 1991*

Lepomis cyanellus 96 h Mortality LC50 1.4 pH 8.7 Richardson, 1991*

Leuciscus idus 1d Behaviour LOEC 1.2 No pH data Hendriks & Stouten, 1993*

Ictalurus punctatus 48 h Mortality LC50 1 No pH data Vaughn & Simco, 1977*

Micropterus salmoides 96 h Mortality LC50 0.82 No pH data Roseboom & Richey, 1977*

Morone americana 96 h Mortality LC50 0.12 pH 6.0 Stevenson, 1977*

Morone americana 96 h Mortality LC50 0.43 pH 8.0 Stevenson, 1977*

Notemigonus cryoleucas 96 h Mortality LC50 0.98 No pH data Baird et al 1979*

33

Notemigonus cryoleucas 96 h Mortality LC50 0.59 No pH data Swigert & Spacie,1983*

Nothiobranchius guentheri 24 h Mortality LC50 0.57 pH 7.75-7.82 Shedd et al 1999*

Nothiobranchius guentheri 24 h Mortality LC50 1.2 pH 7.75-7.82 Shedd et al 1999*

Notoropsis spilopterus 96 h Mortality LC50 0.98 No pH data Rosage et al 1979*

Notoropsis spilopterus 96 h Mortality LC50 1.1 No pH data Swigert & Spacie,1983*

Notropis lutrensis 96 h Mortality LC50 0.88 No pH data Hazel et al 1979*

Notropsis whipplei 96 h Mortality LC50 1 No pH data Swigert & Spacie,1983*

Oncorhynchus kisutch 96 h Mortality LC50 0.45 No pH data Buckley, 1978*

Oncorhynchus mykiss 48 h Survival Unspecified Effect

0.03 No data Speare & Backman, 1988*

Oncorhynchus mykiss 96 h Mortality LC50 0.23 pH 7.6-8.1 Thurston & Russo, 1983*

Oncorhynchus mykiss 96 h Mortality LC50 0.11 pH 6.51 Thurston et al, 1981*

Oncorhynchus mykiss 96 h Mortality LC50 0.67 pH 7.7-7.9 Thurston et al, 1981*

Oncorhynchus gorbuscha 96 h Mortality LC50 0.068 No pH data Rice & Bailey , 1980*

Oncorhynchus tshawytscha 96 h Mortality LC50 0.45 No pH data Servizi & Gordon, 1990*

Oncorhynchus tshawytscha 24 h Mortality LC50 0.3 pH 7.6-7.9 Harader & Allen, 1983*

Oncorhynchus tshawytscha 24 h Mortality LC50 0.33 No pH data Thurston & Meyn, 1984*

Pimephales promelas 96 h Mortality LC50 1 pH 6.0-9.0 Thurston et al, 1983*

Poecilia reticulata 96 h Mortality LC50 1.2 No pH data Rubin & Elmaraghy, 1977*

Prosopium williamsoni 96 h Mortality LC50 0.11 No pH data Thurston & Meyn, 1984*

Salmo aguabonita 96 h Mortality LC50 0.62 No pH data Thurston & Russo, 1981*

Salmo clarki 96 h Mortality LC50 0.52 No pH data ]Thurston et al, 1978*

Salmo salar (smolts) 24 h Mortality LC50 0.12 No pH data Alabaster et al 1979*

Salmo salar 24 h Mortality LC50 0.16 pH 8.12 Alabaster et al 1983*

Salmo trutta 96 h Mortality LC50 0.47 No pH data Miller 1981*

Salvelinus fontinalis 96 h Mortality LC50 0.79 No pH data Thurston & Meyn, 1984*

Stizostedion vitreum 96 h Mortality LC50 0.7 No pH data Reinbold & Pescitelli, 1982*

Tilapia aurea 72 h Mortality LC50 2.3 No pH data Redner & Stickney, 1979*

Salmo clarki 96 h Mortality LC50 43.6 pH: 7.81, T: 13.1°C Thurston et al 1978*




34

AMP

Bufo americanus 3 d Growth, survival NOEC >0.9 pH 8.7 Jofre & Karasov, 1999*

Rana clamitans 4 d Growth, survival NOEC 0.6 pH 8.7 Jofre & Karasov, 1999*

Rana pipiens 5 d Growth, survival NOEC 1.5 pH 8.7 Jofre & Karasov, 1999*

MOL

Villosa iris 96 h Mortality LC50 0.1 pH: 7.3, T: 12.5°C Mummert et al 2003

Villosa iris 96 h Mortality LC50 0.12 pH: 7.3, T: 12.5°C Mummert et al 2003

Lampsilis fasciola 96 h Mortality LC50 0.23 pH: 7.3, T: 12.5°C Mummert et al 2003

Lampsilis fasciola 96 h Mortality LC50 0.28 pH: 7.3, T: 12.5°C Mummert et al 2003

Lampsilis cardium 96 h Mortality LC50 0.3721 pH: 7.6,T: 21°C Newton & Bartsch 2007

Lampsilis cardium 96 h Mortality LC50 0.215 pH: 7.6,T: 21°C Newton & Bartsch 2007

Lampsilis higginsii 96 h Mortality LC50 0.318 pH: 7.6,T: 21°C Newton & Bartsch 2007

Lampsilis higginsii 96 h Mortality LC50 0.157 pH: 7.6,T: 21°C Newton & Bartsch 2007

Lampsilis cardium 96 h Mortality LC50 0.165 pH: 8.2, T: 20.5°C Newton et al., 2003

Lampsilis cardium 96 h Mortality LC50 0.127 pH: 8.2, T: 20.5°C Newton et al., 2003

Lampsilis siliquoidea 96 h Survival LC50 0.732 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Lampsilis siliquoidea 96 h Survival LC50 0.359 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Lampsilis rafinesqueana 96 h Survival LC50 0.812 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Lampsilis rafinesqueana 96 h Survival LC50 0.805 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Epioblasma capsaeformis 96 h Survival LC50 0.417 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Villosa iris 96 h Survival LC50 0.461 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007



Lampsilis fasciola 96 h Survival LC50 0.542 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Lampsilis abrupta 96 h Survival LC50 0.168 pH: 8.3, T: 20°C Wang et al 2007

Planarie

Polycelis felina 96 h Mortality LC50 0.39 Alonso & Camargo 2005

Polycelis tenuis 96 h Mortality LC50 0.58 William et al 1986*

*In WFD-UKTAG, April 2007. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: ammonia (un-ionised)

35

Tabell B2: Ammonia long-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration (d) Effect Endpoint Conc (mg/l) Physico-chemical


ALG

Mixed algal populations 14 Abundance LOEC 3.0 No pH data Champs et al 1977*

CRU

Daphnia magna ND Growth, reproduction LOEC 1.6 No pH data Reinbold and Pescitelli, 1982*

Cerodaphnia dubia 7 Reproduction NOEC 2.8 pH 8.57, T 26°C Willingham 1987*

MOL

Musculium transversum 28 Mortality NOEC 0.2 No pH data Sparks and Sandusky, 198*1

Musculium transversum 28 Mortality LOEC 0.6 No pH data Sparks and Sandusky, 1981*

Villosa iris 28 Survival LC10 0.065 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007

Villosa iris 28 Growth EC10 0.029 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007 Lampsilis siliquoidea 28 Survival LC10 0.0095 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007 Lampsilis siliquoidea 28 Growth EC10 0.023 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007 Lampsilis fasciola 28 Survival LC10 0.0095 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007 Lampsilis fasciola 28 Growth EC10 0.035 pH: 8.2, T: 20°C Wang et al 2007 Sphaerium novaezelandiae 60 Survival NOEC 0.97 pH: 7.5, T:

20°C Hickey and Martin 1999*

Sphaerium novaezelandiae 60 Reproduction NOEC 0.01 pH: 7.5, T: 20°C

Hickey and Martin 1999*

Sphaerium novaezelandiae 60 Survival LOEC 5.4 pH: 7.5, T: 20°C


Sphaerium novaezelandiae 60 Survival LOEC 0.046 pH: 7.5, T: 20°C


Potamopygus antipodarum 40 Immobility NOEC 0.07 pH: 8.1, T: 15.3°C

Alvaro et al 2009

Potamopygus antipodarum 40 Mortality NOEC 0.13 pH: 8.1, T: 15.3°C

Alvaro et al 2009

ANN

Lumbriculus variegatus 10 Mortality LC50 0.37 pH 6.5 Schubauer-Berigan et al 1995*




36

INS Schubauer-Berigan et al 1995*

Chironomus tentans 10 Mortality LC50 0.60 pH 6.5 Schubauer-Berigan et al 1995*




Pteronarcella badia ND Emergence NOEC 3.40 No pH data Thurston et al, 1984*

Pteronarcella badia 24 Mortality LC50 1.50 No pH data Thurston et al, 1984*

Pteronarcella badia 30 Mortality LC50 4.40 No pH data Thurston et al, 1984*

Coloburiscus humeralis 29 Mortality NOEC 0.16 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999* Coloburiscus humeralis 29 Mortality LOEC 0.36 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999*

Coloburiscus humeralis 29 Mortality MATC 0.23 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999*

Deleatidium sp. 29 Mortality NOEC 0.07 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999*

Deleatidium sp. 29 Mortality LOEC 0.16 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999*

Deleatidium sp. 29 Mortality MATC 0.10 pH 7.99-8.75 Hickey et al 1999*

FIS

Cyprinus carpio 28 Mortality LC50 0.50 pH 7.22-7.88 Mallett and Sims , 1994*

Cyprinus carpio 31 Hatching NOEC 0.66 pH 7.66-7.93 Mallett and Sims , 1994*

Cyprinus carpio 31 Mortality LOEC 0.66 pH 7.66-7.93 Mallett and Sims , 1994 *

Cyprinus carpio 31 Growth NOEC 0.23 pH 7.66-7.93 Mallett and Sims , 1994*

Cyprinus carpio 31 Growth LOEC 0.35 pH 7.22-7.88 Mallett and Sims , 1994*

Oncorhynchus mykiss 6 mths Growth LOEC 0.017 Low DO (5.8 mg l-1)

Smith and Piper, 1975*

Oncorhynchus mykiss - Growth, survival LOEC 0.050 No pH data Burkhalter and Kaya, 1977*

Oncorhynchus mykiss 72 Mortality LC50 0.046 pH 7.4 Calamari et al 1981*

Oncorhynchus mykiss 1,460 Growth NOEC 0.070 pH 7.7 Thurston et al 1984*

Oncorhynchus mykiss 73 Mortality LOEC 0.022 pH 7.47-7.57 Solbe and Shurben , 1989*

Oncorhynchus mykiss 90 Survival of fry NOEC 7.44 pH 7.75, T 11.4oC

Brinkman et al 2009

Oncorhynchus mykiss Growth NOEC 7.44 pH 7.75, T 11.4oC

Brinkman et al 2009

Rutilus rutilus 31 Mortality NOEC 0.55 pH 7.68-7.98 Mallett and Sims , 1994*

Rutilus rutilus 130 Mortality NOEC 0.10 pH 7.77-7.81 Mallett and Sims , 1994*

Pimephales promelas 20 Fecundity (cumulative EC10 0.03 pH 7.3, T Armstrong et al., 2012

37

egg produktion) 25.6oC

Pimephales promelas 20 Fecundity (cumulative egg produktion)

LOEC 0.06 pH 7.3, T 25.6oC

Armstrong et al., 2012

Pimephales promelas 28 Mortalitet NOEC 0.31 pH: 8.2, T: 20°C Fairchild et al 2005

Pimephales promelas 28 Growth NOEC 0.31 pH: 8.2, T: 20°C Fairchild et al 2005

Pimephales promelas Growth NOEC 0.44 pH: 8, T: 24°C Thurston et al 1986

Pimephales promelas Survival NOEC 0.44 pH: 8, T: 24°C Thurston et al 1986

Pimephales promelas Egg production NOEC 0.37 pH: 8, T: 24°C Thurston et al 1986

Pimephales promelas F1 larvae growth survival

NOEC 0.36 pH: 8, T: 24°C Thurston et al 1986

Pimephales promelas Egg hatching NOEC 0.19 pH: 8, T: 24°C Thurston et al 1986

Ptychocheilus lucius 28 Mortality NOEC 0.54 pH: 8.2,T: 20°C Fairchild et al 2005

Ptychocheilus lucius 28 Growth NOEC 0.29 pH: 8.2,T: 20°C Fairchild et al 2005

Xyrauchen texanus 28 Growth NOEC 0.53 pH: 8.2,T: 20°C Fairchild et al 2005

Xyrauchen texanus 28 Growth NOEC 0.53 pH: 8.2,T: 20°C Fairchild et al 2005

Salmo trutta f.fario L. 79 ELST "developmental score"

LOEC 0.025 Luckenbach et al., 2003*

AMP

Rana clamitans 114 Growth NOEC 1.00 pH 8.0-8.6 Jofre and Karasov , 1999*

PLA

Polycelis felina 30 Mortality LOEC 0.05 pH: 8.11, T: 15.1°C

Alonso et al., 2011

Polycelis felina 30 Mortality NOEC 0.02 pH: 8.11, T: 15.1°C

Alonso et al., 2011

Polycelis felina 30 Behavior LOEC 0.02 pH: 8.11, T: 15.1°C

Alonso et al., 2011


38

Tabell B3: Ammonia short-term toxicity data for marine organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration (hrs) Effect Endpoint Conc

(mg/l) Physico-chemical conditions

Reference

ALG

Dunaliella tertolecta 1.5 Photosynthetic activity EC50 17 pH 8.0-9.5 Azoz and Goldman, 1982*

Phaeodactylum tricornutum 1.5 Photosynthetic activity EC50 17 pH 8.0-9.5 Azoz and Goldman, 1982*

ROT

Brachionus plicatilis 96 Mortality LC50 8.6 pH 7.5-7.9 Ostrensky et al., 1992*

CRU

Niitocra spinipes 96 Mortality LC50 1.2 No pH data Linden et al., 1979*

Tisbe battagliai 96 Mortality LC50 0.79 No pH data Williams and Brown, 1992*

Crangon crangon 24 Mortality LC50 1.6 No pH data Franklin F L, 1978*

Penaeus chinensis 120 Mortality LC50 1.4 pH 7.94 Chen et al., 1990a*

Penaeus monodon 144 Mortality LC50 0.77 pH 7.57 Chen et al., 1990b*

Penaeus monodon 144 Mortality LC50 1 pH 7.70 Chen and Lin, 1992*

Penaeus pencillatus 120 Mortality LC50 0.86 pH 8.10 Chen and Lin, 1992*

Homarus americanus 96 Mortality LC50 1.8 No pH data Delistraty et al 1977*

Ampelisca abdita 96 Mortality LC50 0.83 pH 8.0 Kohn et al., 1994*

Eohausterius estuarius 96 Mortality LC50 2.5 pH 8.0 Kohn et al., 1994*

Grandidierella japonica 96 Mortality LC50 3.5 pH 8.0 Kohn et al., 1994*

Rhepoxynius abronius 96 Mortality LC50 1.6 pH 8.0 Kohn et al., 1994*

Crassostrea gigas 48 Mortality LC50 0.13 No pH data US EPA, 1993*

MOL

Crassostrea virginica 96 Mortality LC50 6.8 No pH data Epifano and Srna 1975*

Haliotis rufescens 48 Mortality LC50 0.07 ND Nicely et al., 2000*

Mercenaria mercanaria 96 Mortality LC50 2.9 No pH data Epifano and Srna 1975*

Anadara granosa 168 Mortality LC50 1.8 pH 7.9 Wang X, 1989*

Ruditapes phillipinarum 168 Mortality LC50 0.64 pH 7.9 Wang X, 1989*

Argopecten irradians 96 Mortality LC50 5.3 pH 8.1 Lin G, 1992*

ECH

39

Dendaster excentricus 72 Mortality LC50 0.03 No pH data US EPA, 1993*

Strongylocentrotus purpuratus

72 Mortality LC50 0.057 pH 8.0 Greenstein et al, 1995*

FIS

Agonus cataphractus 24 Mortality LC50 0.26 No pH data Franklin F L, 1978*

Diplodus sargus 24 Feeding EC50 0.1 No pH data Brownell C L, 1980*

Diplodus sargus 24 Mortality LC50 0.36 No pH data Brownell C L, 1980*

Gaidropsarus carpensis 24 Feeding EC50 0.11 No pH data Brownell C L, 1980*

Gaidropsarus carpensis 24 Mortality LC50 0.46 No pH data Brownell C L, 1980*

Gasterosteus aculeatus 96 Mortality LC50 1.6 No pH data Hazel et al 1976*

Lithognathus mormyrus 24 Feeding EC50 0.16 No pH data Brownell C L, 1980*

Lithognathus mormyrus 24 Mortality LC50 0.38 No pH data Brownell C L, 1980*

Morone saxatilus 96 Mortality LC50 0.66 No pH data Hazel et al 1976*

Monacanthus hispidus 96 Mortality LC50 0.57 No pH data Venkataramiak et al., 1981*

Mugil caphalaus 96 Mortality LC50 0.98 No pH data Venkataramiak et al., 1981*

Oncorhynchus mykiss 24 Mortality LC50 0.59 pH 7.45 Herbert and Shuben, 1965*

Oncorhynchus tschawytscha 24 Mortality LC50 0.95 No pH data Harader and Allen, 1983*

Pachymetopa blochi 24 Feeding LC50 0.22 No pH data Brownell C L, 1980*

Pachymetopa blochi 24 Mortality LC50 0.42 No pH data Brownell C L, 1980*

Pagrus major 24 Mortality LC50 0.15 pH 8.11-8.97 Kido et al., 1991*

Salmo salar 24 Mortality LC50 0.27 No pH data Herbert and Shuben, 196*

Sciaenops ocellatus 96 Mortality LC50 0.39 No pH data Holt and Arnold, 1983*


40

Tabell B4: Ammonia long-term toxicity data for marine organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration (hrs) Effect Endpoint Conc (mg/l) Physico-chemical


ALG

Estuarine benthic diatoms 10 Growth LOEC 0.2 Admiraal W, 1977*

CRU

Penaeus setiferus 21 Growth EC50 0.59 No pH data Wickens J F, 1976*

Penaeus japonica 20 Mortality LC50 1.29 No pH data Lin et al., 1991*

Macrobrachium rosenbergii 42 Growth LOEC 0.1 No pH data Wickens J F, 1976*

FIS

Scophthalmus maximus 11 Growth NOEC 0.11 pH 6.8-7.9 Alderson R, 1979*

Solea solea 42 Growth NOEC 0.066 pH 6.9-7.9 Alderson R, 1979*


References (other than those listed in WFD-UKTAG, 2007)

1) Alonso A. and Camargo J.A. 2009. Long-term effects of ammonia on the behavioral activity of the aquatic snail Potamopyrgus antipodarum (Hydrobiidae, Mollusca) Arch Environ Contam Toxicol, 56: 96–802

2) Alonso, A. and Camargo, J.A. 2004. Toxic effects of unionized ammonia on survival and feeding activity of the freshwater amphipod Eulimnogammarus toletanus (Gammaridae, Crustacea). Bull. Environ. Contam. Toxicol., 72: 1052-1058.

3) Alonso, A. and J.A. Camargo. 2003. Short-term toxicity to ammonia, nitrite, and nitrate to the aquatic snail Potamopyrgus antipodarum (Hydrobiidae, Mollusca). Bull. Environ. Contam. Toxicol. 70: 1006-1012.

4) Dehedin, A., Piscart, C., Marmonier, P., 2013. Seasonal variations of the effect of temperature on lethal and sublethal toxicities of ammonia for three common freshwater shredders, Chemosphere 90 : 1016–1022.

5) Mummert, A.K., R.J. Neves, T.J. Newcomb and D.S. Cherry. 2003. Sensitivity of juvenile freshwater mussels (Lampsilis fasciola, Villosa iris) to total and un-ionized ammonia. Environ. Toxicol. Chem. 22: 2545-2553.

6) Newton, T.J. and M.R. Bartsch. 2007. Lethal and sublethal effects of ammonia to juvenile lampsilis mussels (Unionidae) in sediment and water-only exposures. Environ. Toxicol. and Chem. 26(10):2057–2065.

7) Newton, T.J., J.W. Allran, J.A. O'Donnell, M.R. Bartsch and W.B. Richardson. 2003. Effects of ammonia on juvenile unionid mussels (Lampsilis cardium) in laboratory sediment toxicity tests. Environ. Toxicol. Chem. 22(10): 2554-2560.

41

8) Wang, N., C.G. Ingersoll , D.K. Hardesty, C.D. Ivey, J.L. Kunz, T.W. May, F.J. Dwyer, A.D. Roberts, T. Augspurger, C.M. Kane, R.J. Neves and M.C. Barnhart. 2007a. Contaminant sensitivity of freshwater mussels: Acute toxicity of copper, ammonia, and chlorine to glochidia and juveniles of freshwater mussels (Unionidae). Environ. Toxicol. Chem. 26(10):2036-2047.

9) Wang, N., C.G. Ingersoll , D.K. Hardesty, I.E. Greer, D.J. Hardesty, C.D. Ivey, J.L. Kunz, W.G. Brumbaugh, F.J. Dwyer, A.D. Roberts, J.T. Augspurger, C.M. Kane, R.J. Neves and M.C. Barnhart. 2007b. Contaminant sensitivity of freshwater mussels: Chronic toxicity of copper and ammonia to juvenile freshwater mussels (Unionidae). Environ. Toxicol. Chem. 26(10):2048-2056.

10) Armstrong, B., LAZORCHAK J. M., Murphy C., Haring H., Jensen K. M. and Smith M. E. 2012 Determining the effects of ammonia on fathead minnow (Pimephales promelas) reproduction. Sci. Tot. Environ. 420:127-133.

11) Brinkman.S.F, Woodling J.D, Vadda A, M, and Norris D.O. 2009. Chronic Toxicity of Ammonia to Early Life Stage Rainbow Trout. Trans. Am. Fish. Soc. 138:433–440

12) Fairchild J.F., Allert A.L., Sappington L.C., Waddell B. 2005. Chronic toxicity of un-ionized ammonia to early life-stages of endangered Colorado pikeminnow (Ptychocheilus lucius) and razorback sucker (Xyrauchen texanus) compared to the surrogate fathead minnow (Pimephales promelas) Arch. Environ. Contam. Toxicol. 49, 378–384

13) Thurston, R.V., R.C. Russo, E.L. Meyn, R.K. Zajdel and C.E. Smith. 1986. Chronic toxicity of ammonia to fathead minnows. Trans. Am. Fish. Soc. 115(2): 196-207.

14) Alonso, A. and Camargo, J. A. 2011. The freshwater planarian Polycelis felina as a sensitive species to assess the long-term toxicity of ammonia Chemosphere 84: 533-537

42

Table B5: Reliable copper long-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Organism Duration Effect Endpoint Conc

(µg/l) Cu background (µg Cu/l)

Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Chlamydomonas reinhardtii 10 d growth NOEC 22 0.5* T: 24°C; pH: 6.6; H: 25 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Schäfer et al., 1994*

Chlamydomonas reinhardtii 3 d growth NOEC 178 0.5* T: 20°C; pH: 6.02; H: 23 mg/l CaCO3; DOC: 9.84 mg/l

De Schamphelaere et al., 2006*





Chlorella vulgaris 3 d growth NOEC 108 0.5* T: 20°C; pH: 6.03; H: 97 mg/l CaCO3; DOC: 5.17 mg/l




























43







Pseudokirchneriella subcapitata

3 d growth NOEC 53 0.5* T: 20°C; pH: 6.74; H: 10.0 mg/l CaCO3; DOC: 2.72 mg/l

Heijerick et al., 2002*


3 d growth NOEC 62 0.5* T: 20°C; pH: 7.0; H: 12.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.34 mg/l



3 d growth NOEC 95 0.5* T: 20°C; pH: 6.14; H: 7.9 mg/l CaCO3; DOC: 12 mg/l



3 d growth NOEC 18 0.5* T 20°C; pH: 7.66; H: 48.7 mg/l CaCO3; DOC: 2.52 mg/l



3 d growth NOEC 49 0.5* T: 20°C; pH: 8.0; H: 220 mg/l CaCO3; DOC: 6.42 mg/l























HIGHER PLANTS

Lemna minor 7 d growth NOEC 30 0.5* T: 25°C; pH: 6.5; H : 26.8 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Teisseire et al., 1998*

CLADOCERANS

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 10 0.5* T: 23°C; pH: 7.6; H: 85 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Cerda & Olive, 1993*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 10 1.5* T: 25°C; pH: 9.0; H: 98 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (2)

Belanger & Cherry, 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 20 1.5* T: 25°C; pH: 8.0; H: 114 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)


44





Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 6 1.5 T: 25°C; pH: 8.15; H: 94 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (2)

Belanger et al., 1989*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 24 4.7 T: 25°C; pH: 8.31; H: 179 mg/l CaCO3; DOC: 3 mg/l (4)

Belanger et al., 1989*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 4 / T: 25°C; pH: 6.3-7.6; H: 20 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Jop et al., 1995*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 32 3.4 T: 25°C; pH: 8.25; H: 100 mg/l CaCO3; DOC: 5.7 mg/l (5)

Spehar & Fiandt, 1985*

Ceriodaphnia dubia 7 d reproduction NOEC 10 / T: 25°C; pH: 6.6-7.4; H: 22 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)

Jop et al., 1995*

Ceriodaphnia dubia 7 d mortality NOEC 20 0.5* T: 23°C; pH: 7.6; H: 85 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Cerda & Olive, 1993*

Ceriodaphnia dubia 7 d mortality NOEC 19 / T: 25°C; pH: 7.0; H: 22 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)

Jop et al., 1995*

Ceriodaphnia dubia 7 d mortality NOEC 4 / T: 25°C; pH: 6.95; H: 20 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Jop et al., 1995*

Ceriodaphnia dubia 7 d mortality NOEC 122 3.4 T: 25°C; pH: 8.25; H: 100 mg/l CaCO3; DOC: 5.7 mg/l (5)


Daphnia magna 21 d growth NOEC 13 2.6 T: 20°C; pH: 8.1; H: 225 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)

Van Leeuwen et al., 1988*

Daphnia magna 21 d population growth NOEC 37 2.6 T: 20°C; pH: 8.1; H: 225 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)


Daphnia magna 21 d mortality NOEC 37 2.6 T: 20°C; pH: 8.1; H: 225 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)


Daphnia magna 21 d reproduction NOEC 28 0.5* T: 20°C; pH: 6.31; H: 10 mg/l CaCO3; DOC: 2.72 mg/l


Daphnia magna 21 d reproduction NOEC 22 0.5* T: 20°C; pH: 6.1; H: 12.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.34 mg/l










Daphnia magna 21 d reproduction NOEC 29 0.3 T: 25°C; pH: 6.0; H: 100 mg/l CaCO3; DOC: 4.9 mg/l

De Schamphelaere et al., 2006b*

45







Daphnia pulex 42 d mortality NOEC 4 0.5* T: 20°C; pH: 8.6; H: 57.5 mg/l CaCO3; DOC: 0.1 mg/l (6)

Winner, 1985*


Winner, 1985*


Winner, 1985*

Daphnia pulex 42 d mortality NOEC 5 0.5* T: 20°C; pH: 8.7; H:115 mg/l CaCO3; DOC: 0.1 mg/l (6)

Winner, 1985*

Daphnia pulex 42 d mortality NOEC 20 0.5* T: 20°C; pH: 8.55; H: 115 mg/l CaCO3; DOC: 0.475 mg/l (6)

Winner, 1985*

Daphnia pulex 42 d mortality NOEC 40 0.5* T: 20°C; pH: 8.55; H:115 mg/l CaCO3; DOC: 0.85 mg/l (6)

Winner, 1985*


Winner, 1985*


Winner, 1985*


Winner, 1985*

ROTIFERS

Brachionus calyciflorus 2 d reproduction NOEC 8.2 0.3 T: 25°C; pH: 6.0; H: 100 mg/l CaCO3; DOC: 4.9 mg/l


Brachionus calyciflorus 2 d reproduction NOEC 31 0.3 T: 25°C; pH: 6.0; H: 100 mg/l CaCO3; DOC: 14.5 mg/l






AMPHIPODS

Gammarus pulex 100 d population response

NOEC 11 2.6 T: 11°C; pH: 8.0; H: 103 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

Maund et al., 1992*

Hyalella azteca 10 d mortality NOEC 50 / T: 20°C; pH: 7.65; H: 36 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (8)

Deaver & Rodgers, 1996*



46



Hyalella azteca 10 d mortality NOEC 82 / T: 20°C; pH: 7.5; H: 22 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/L (8)


Hyalella azteca 10 d mortality NOEC 30 / T: 20°C; pH: 6.95; H: <10 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (8)


Hyalella azteca 35 d mortality NOEC 32 3 T: 22°C; pH: 7.6; H: 128 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

Othman & Pascoe, 2002*

INSECTS

Chironomus riparius 10 d growth NOEC 17 0.5* T: 20°C; pH: 6.8; H: 151 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Taylor et al., 1991*

Clistoronia magnifica 240 d Life cycle NOEC 8.3 / T: 15°C; pH: 7.3; H: 26 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)

Nebeker et al., 1984*

Clistoronia magnifica 240 d Life cycle NOEC 13 / T: 15°C; pH: 7.3; H: 26 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Paratanytarsus parthenogeneticus

16 d growth NOEC 40 0.5* T: 23°C; pH: 6.9; H: 25 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Hatakeyama & Yasuno, 1981*

Paratanytarsus parthenogeneticus

16 d reproduction NOEC 40 0.5* T: 23°C; pH: 6.9; H: 25 mg/l CaCO3; DOC: 0.5 mg/l (1)

Hatakeyama & Yasuno, 1981*

MOLLUSCS

Dreissenia polymorpha 63-77 d Filtration rate NOEC 13 3 T: 15°C; pH: 7.9; H: 150 mg/l CaCO3; DOC: <7.34 mg/l (10)

Kraak et al., 1994*

Dreissenia polymorpha 27 d Filtration rate NOEC 21 / T: 13.4°C; pH: 7.8; H: 296 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (7)

Mersch et al., 1993*

Villosa iris 30 d mortality NOEC 19 3.2 T: 20.8°C; pH: 8.4; H: 152 mg/l CaCO3; DOC: 3.0 mg/l (4)

Jacobson et al., 1997*

Campeloma decisum 42 d mortality NOEC 8 1.9 T: 15°C; pH: 8.15; H: 44.9 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

Arthur & Leonard, 1970*

Campeloma decisum 42 d mortality NOEC 8 1.9 T: 15°C; pH: 8.15; H: 44.9 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

Arthur & Leonard, 1970*

Juga plicifera 30 d mortality NOEC 6 0.5* T: 15°C; pH: 7.1; H: 21mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


FISH

47

Ictalurus punctatus 60 d growth NOEC 13 3 T: 22°C; pH: 7.65; H: 186.3 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)

Sauter et al., 1976*

Ictalurus punctatus 60 d mortality NOEC 13 3 T: 22°C; pH: 7.65; H: 186.3 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Noemacheilus barbatulus 64 d mortality NOEC 120 2 T 11.9°C; pH: 8.26; H: 249 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)

Solbe & Cooper, 1976*

Oncorhynchus kisutch 61 d growth NOEC 22 / T: 9.5 °C; pH: 7.15; H: 24.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*


Mudge et al., 1993*


Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus kisutch 61 d mortality NOEC 24 / T: 9.5 °C; pH: 7.15; H: 24.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus kisutch 60 d mortality NOEC 18 / T: 16.7 °C; pH: 7.4; H: 31.8 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus mykiss 60 d growth NOEC 2.2 0.45* T: 9.8 °C; pH: 7.5; H: 24.6 mg/l CaCO3; DOC: 0.2 mg/l (12)

Marr et al., 1996*

Oncorhynchus mykiss 61 d growth NOEC 45 / T: 9.5 °C; pH: 7.2; H: 24.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus mykiss 63 d growth NOEC 16 3 T: 12 °C; pH: 7.65; H: 120 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)

Seim et al., 1984*

Oncorhynchus mykiss 45 d Growth NOEC 11 3 T: 10.8 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Oncorhynchus mykiss 61 d mortality NOEC 24 / T: 9.5 °C; pH: 7.15; H: 24.4 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus mykiss 61 d mortality NOEC 28 / T: 8.7 °C; pH: 7.0; H: 28.7 mg/l CaCO3; DOC: 2.9 mg/l (11)

Mudge et al., 1993*

Oncorhynchus mykiss 45 d mortality NOEC 11 3 T: 10.8 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Catostomus commersoni 40 d Growth NOEC 13 3 T: 14.9 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Catostomus commersoni 40 d mortality NOEC 13 3 T: 14.9 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Esox lucius 35 d Growth NOEC 35 3 T: 15.6 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Esox lucius 35 d mortality NOEC 35 3 T: 15.6 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Perca fluviatilis 30 d growth NOEC 39 1 T: 17.5 °C; pH: 7.8; H: 194 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

Collvin, 1984*

Perca fluviatilis 30 d mortality NOEC 188 3 T: 15.1 °C; pH: 7.8; H: 178 mg/l CaCO3; DOC: 1mg/l (7)

Collvin, 1984*

48

Pimephales notatus 30 d growth NOEC 44 4.3 T: 25 °C; pH: 8.1; H: 201 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Horning & Neiheisel, 1979*

Pimephales notatus 60 d growth NOEC 72 4.3 T: 25 °C; pH: 8.1; H: 201 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)


Pimephales notatus 60 d mortality NOEC 72 4.3 T: 25 °C; pH: 8.1; H: 201 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)


Pimephales promelas 330 d growth NOEC 33 3.5 T: 21°C; pH: 8.0; H: 198 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Mount, 1968

Pimephales promelas 327 d growth NOEC 11 4.4 T: 22°C; pH: 6.9; H: 31.4 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Mount & Stephan, 1969*

Pimephales promelas 187 d growth NOEC 60 4.2 T: 23°C; pH: 7.85; H: 202 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Pickering et al., 1977*

Pimephales promelas 32 d growth NOEC 4.8 1.25* T: 25°C; pH: 7.05; H: 44 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (13)


Pimephales promelas 330 d mortality NOEC 33 3.5 T: 21°C; pH: 8.0; H: 198 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Mount, 1968*

Pimephales promelas 327 d mortality NOEC 11 4.4 T: 22°C; pH: 6.9; H: 31.4 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)


Pimephales promelas 28 d mortality NOEC 61 0.6 T: 21°C; pH: 8.17; H: 202 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)

Scudder et al., 1988*

Pimephales promelas 32 d mortality NOEC 5 1.25* T: 25°C; pH: 7.05; H: 44 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (13)


Pimephales promelas 270 d reproduction NOEC 66 7 T: 23°C; pH: 8.1; H: 274 mg/l CaCO3; DOC: 2 mg/l (3)

Brungs et al., 1976*

Pimephales promelas 330 d reproduction NOEC 15 3.5 T: 21°C; pH: 8.0; H: 198 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)

Mount, 1968*

Pimephales promelas 327 d reproduction NOEC 11 4.4 T: 22°C; pH: 6.9; H: 31.4 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)








Pimephales promelas 4d reproduction NOEC 23 4.2 T: 23°C; pH: 7.9; H: 202 mg/l CaCO3; DOC: 0.55 mg/l (14)


Salvelinus fontinalis 60 d Growth NOEC 22 / T: 5.6 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Salvelinus fontinalis 189 d Growth NOEC 9.5 / T: 10.6 °C; pH: 7.5; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)

McKim & Benoit, 1971*

Salvelinus fontinalis 244 d growth NOEC 17 / T: 10.6 °C; pH: 7.5; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)


49

Salvelinus fontinalis 30 d Growth NOEC 7 3 T: 10 °C; pH: 6.85; H: 37.5 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Salvelinus fontinalis 30 d growth NOEC 21 3 T: 10 °C; pH:6.9; H: 187 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Salvelinus fontinalis 60 d mortality NOEC 22 / T: 5.6 °C; pH: 7.6; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1.0 mg/l (13)

McKim et al., 1978*

Salvelinus fontinalis 189 d mortality NOEC 9.5 / T: 10.6 °C; pH: 7.5; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)


Salvelinus fontinalis 244 d mortality NOEC 17 1.9 T: 10.6 °C; pH: 7.45; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)


Salvelinus fontinalis 60 d mortality NOEC 13 3 T: 10 °C; pH: 6.85; H: 37.5 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Salvelinus fontinalis 30 d mortality NOEC 21 3 T: 10 °C; pH:6.9; H: 187 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Salvelinus fontinalis 244 d reproduction NOEC 17 1.9 T: 10.6 °C; pH: 7.45; H: 45 mg/l CaCO3; DOC: 1 mg/l (7)


Salvelinus fontinalis 60 d reproduction NOEC 7 3 T: 10 °C; pH: 6.85; H: 37.5 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


Salvelinus fontinalis 30 d reproduction NOEC 49 3 T: 10 °C; pH:6.9; H: 187 mg/l CaCO3; DOC: 1.3 mg/l (9)


* In EFSA, 2010: Monteiro S.C.; Lofts S. and Boxall A. B. Pre- assessment of environmental impact of copper and zinc used in animal nutrition. Scientific/Technical Report. Avialable on http://www.efsa.europa.eu/fr/supporting/doc/74e.pdf

50

Tabell B6: NOEC-values for Cu normalised to pH, hardness and DOC (EFSA, 2010) Organism NOEC (µg/l) ALGAE Chlamydomonas reinhardtii (n=4) 1.4

Chlorella vulgaris (n=17) 2.5

Pseudokircherniella subcapitata (n=12) 6.2

EVERTEBRATES Ceriodaphnia dubia (n=14) 9.4

Daphnia magna (n=9) 4.6

Daphnia pulex (n=9) 2.4

Hyalella azteca (n=5) 2.4

Brachionus calyciflorus (n=4) 2.5

Clistoronia magnifica (n=2) 1.6

FISH Oncorhynchus kisutch (n=5) 3.0

Oncorhynchus mykiss (n=7) 2.5

Perca fluviatilis (n=2) 2.4

Pimephales notatus (n=3) 1.3

Pimephales promelas (n=14) 8.0

Salvelinus fontanilis (n=14) 5.5

EFSA, 2010: Monteiro S.C.; Lofts S. and Boxall A. B. Pre- assessment of environmental impact of copper and zinc used in animal nutrition. Scientific/Technical Report. Avialable on http://www.efsa.europa.eu/fr/supporting/doc/74e.pdf

51

Tabell B7: Reliable copper long-term aquatic toxicity data for marine organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Test

duration Effect End-point Conc (µg/l) Temp

(°C) Cu back-ground (µg/1)

DOC pH Salinity (g/l)

Reference

ALGAE and HIGHER PLANTS

Macrocystis pyrifera 19 d sporophyte growth NOEC 10.2 13-15 <0.6m 2.0e 7.8 -8.3 35-37 Anderson et al., 1990 *

Macrocystis pyrifera 19 d Germination NOEC 50.1 13-16 <0.6m 2.0e 7.8 -8.3 35-37 Anderson et al., 1990 *

Macrocystis pyrifera 19 d Germ tube growth NOEC 10.2 13-17 <0.6m 2.0e 7.8 -8.3 35-37 Anderson et al., 1990 *

Fucus vesiculosus 14 d Growth NOEC 11 21 4.2m 1.67m 8.1 30.9 Brooks 2006d*

Fucus vesiculosus 14 d Growth NOEC 14 21 2.5m 105m 8.1 31.1 Brooks 2006d*

Fucus vesiculosus 14 d Growth NOEC 18.5 21 2.3m 2.11m 8.1 31 Brooks 2006d*



Phaeodactylum tricornutum

72 h Growth rate EC10 2.9 20 NR 1.0m 8.2- 8.3 31 Simpson 2003*

Phaeodactylum tricornutum

72h Growth rate NOEC 5.7 20 <0.4m 2.19m 8.2- 8.3 31 Simyth 2006*

Skeletonema costatum 72 h Growth rate NOEC 7.5 20 <0.4m 2.19m 8.2- 8.6 31 Simyth 2006*

Skeletonema costatum NR Growth NOEC 25 0.5e 0.3e 16 NR NR Metaxas and Lewis 1991*

Nitzschia thermalis NR Growth NOEC 32 0.5e 0.3e 16 NR NR Metaxas and Lewis 1991*

Prorocentrum minimum 96 h Growth NOEC 632 0.5e 2.0e 19 8.2 NR Miaoet et al 2005*

Dunaliella tertiolecta 96 h Growth NOEC 3160 0.5e 2.0e 19 8.2 NR Miaoet et al 2005*

Synechococcus sp. 96 h Growth NOEC 8.7 0.5e 2.0e 19 8.2 NR Miaoet et al 2005*

Thallasiosira weisflogii 96 h Growth NOEC 318 0.5e 2.0e 19 8.2 NR Miaoet et al 2005*

ANN

Eudistylia vancouveri 35 d Growth NOEC 6.1 0.3m 2.0e 8.2 7.8 30.4 Young, et al, 1979

CRU

Penaeus mergulensis 14 d growth NOEC 33 <1m 2.0e 27 NR 20 Ahsanullah, et al 1995*

Penaeus monodon 14 d growth NOEC 145 <1m 2.0e 27 NR 20 Ahsanullah, et al 1995*

Tisbe furcata 100 d Survival and reproduction NOEC 19.1 NR 2.0e 15 8 34 Bechmann R.K., 1994*

Artemia franciscana 48 h Hatching NOEC 6.6 0.2m 0.48m 25 7.8 - 8.1 NR Brix, 2006 *

Eurytemora affinis 8 d Mortality, fecundity and NOEC 51.1 <3m 2.0e 25±2 7.9 - 8.8 14 - 17 Hall, L 1997*

52

maturation

Tisbe battagliai 21 d Survival NOEC 18 2.0m 2.79m 20 ± 1 8.1 -8.4 35 Williams, T. 2006*

Tisbe battagliai 21 d Development NOEC 18 2.0m 2.79m 20 ± 1 8.1 -8.4 35 Williams, T. 2006*

Tisbe battagliai 21 d Reproduction NOEC 18 2.0m 2.79m 20 ± 1 8.1 -8.4 35 Williams, T. 2006*

Pandalus danae >42 d Mortality NOEC 9.9 0.47m 2.0e 8.7 - 10.3

7.9 - 9.7 29.8 - 30.6 Young et al 1979*

Pandalus danae >42 d Development NOEC 9.9 0.47m 2.0e 8.7 - 10.3

7.9 - 9.7 29.8 - 30.6 Young et al 1979*

Mysidopsis bahia 35 d Mortality NOEC 77 2.9m 2.0e 20 - 25 NR 30 Lussier et al., 1985*

Mysidopsis bahia 35d Reproduction NOEC 38 2.9m 2.0e 20 - 25 NR 30 Lussier et al., 1985*

Cancer anthonyi 7 d mortality NOEC 10 1.7m 2.0e NR 7.8 34 MacDonald et al., 1988*

Cancer anthonyi 11 d mortality NOEC 10 1.7m 2.0e NR 7.8 34 MacDonald et al., 1988*

Echinogamma rus perlotti

21 d mortality NOEC 100 0.6m 0.3e 10 NR 33 Rainbow et al 1989*

Elminius modestus 28 d mortality NOEC 6 0.6m 0.3e 10 NR 33 Rainbow et al 1989*

Palaemon elegans 21 d mortality NOEC 316 0.6m 0.3e 10 NR 33 Rainbow et al 1989*

Carcinus maenass 21 d mortality NOEC 1000 0.6m 0.3e 10 NR 33 Rainbow et al 1989*

Elminius modestus 21 d mortality NOEC 316 0.6m 0.3e 10 NR 33 Rainbow et al 1989*

Palaemon elegans 21 d Survival NOEC 316 0.6m 0.3e NR NR NR White &Rainbow, 1982*

CHOR

Ciona intestinalis 20 h Embryonic development NOEC 16 0.5e 0.3e 18 - 23 7.4 - 8.8 34 Bellas et al 2004*

Ciona intestinalis 20 h Embryonic development NOEC 32 0.5e 0.3e 18 - 23 7.4 - 8.8 34 Bellas et al 2004*

CNI

Goniastrea aspera 72 h Motility NOEC 14.2 1.2m 2.0e NR NR NR Reichelt-Brushett, 2005*

Acropora tenuis 48 h Settlement success NOEC 17.3 0.63m 2.0e NR NR NR Reichelt-Brushett, 2005*

Lobophytum compactum 5 h Fertilisation success NOEC 36 NR 2.0e NR NR NR Reichelt-Brushett, 2005*

COE

Aiptasia sp 8 wks population growth NOEC 70 1.1e 2.0e 24 8.3 34 Kaiser et al 2003*

MOL

Argopecten irradians 56 d Spawning NOEC >10.2 1.8m 2.0e 14 (8- 18)

NR 29-32 Zaroogian & Johnston, 1983*

Crassostreas gigas 24 h Development NOEC 10.89 2.8m 2.19m 21 ± 1 8.0 - 8.2 31.1 - 34.2 Brooks, S. 2006*


53





Crassostrea virginica 48 h Embryo development EC10 7.8 0.3 m 0.8 15 7.7 29.8 Arnold et al. 2010a *



Crassostrea virginica 14 d Mortality LC10 12.6 13.4m 2.0e 25 NR 24 Calabrese, A. et al. 1977 *

Crassostrea virginica 14 d Growth EC10 14.8 13.4m 2.0e 24 NR 24 Calabrese, A. et al. 1977*

Mytilus edulis 48 h Embryo development EC10 2.03 0.28 m 0.6 15 7.8 30.5 Arnold et al 2009*


Mytilus edulis 48 h Embryo development EC10 12.7 2.13 m 4.1 15 8 30.5 Arnold et al 2009*




Mytilus edulis 48 h Embryo development EC10 15.4 2.13 m 4.1 15 8 30.5 Arnold et al 2009*


Mytilus edulis 48 h Development NOEC 6.2 1.8m 1.51m 13 8.3 32 Brooks, S. 2006*

Mytilus edulis 21 mth Growth NOEC 7.9 3.0m 2.0e 2.6 to 24

NR 25 Calabrese, A. et al. 1984*

Mytilus edulis 10 d growth rate NOEC 6 2.0 - 2.4 2.0m NR NR NR Redpath 1985*

Mytilus galloprovincial 48 h Development NOEC 5.9 0.6m 0.9m 15 NR NR Rosen, 2005*




Mytilus trossulus 100 min Sperm motility/ fertilization success

NOEC 27.4 1.5 m NR NR NR NR Fitzpatrick et al. 2008*

Mytilus trossulus 100 min Egg viability NOEC > 71 1.5 m NR 11 NR NR Fitzpatrick et al. 2008*

Mytilus trossulus 48 h Embryo development NOEC 4.6 1.5 m NR 20 NR NR Fitzpatrick et al. 2008*

Placopecten magellanicus

8 wks Gonad development NOEC 10 2.5 -3.4m 2.0e 6.6 NR 25 Natural Gould, 1988 *

Protothaca staminea 30 d Mortality NOEC 18 0.35m 2.0e 12.3 8.1 32 Roesijida, G. 1980*

Mercenaria mercenaria 8 - 10 d Mortality LC10 6.2 13.4m 2.0e 24 NR 24 Calabrese, A. et al. 1977*

54

Mercenaria mercenaria 8 - 10 d Growth EC10 5.5 13.4m 2.0e 24 NR 24 Calabrese, A. et al. 1977*

Mercenaria mercenaria 96 h Development NOEC 7 1m 0.5e 24 8.0 -8.5 26.5 LaBreche, 2002*

ECH

Dendraster excentricus 72 h Embryo development EC10 17.3 0.2 m 1.2 15 7.8 32 Arnold et al. 2010a*



Dendraster excentricus 72 h Embryo development EC10 61.7 3.2 m 5 15 7.9 32 Arnold et al. 2010a*

Dendraster excentricus 72 h Embryo development EC10 23.5 0.4 m 1.3 15 8 33.1 Arnold et al. 2010a*

Dendraster excentricus 72 h Embryo development EC10 24.1 2.3 m 1.8 15 8.1 34.3 Arnold et al. 2010a*

Strongylo-centrotus purpuratus

72 h Embryo development EC10 12.3 0.2 m 1.2 15 7.8 32 Arnold et al. 2010a*






72 h Embryo development EC10 35.6 3.2 m 5 15 7.9 32 Arnold et al. 2010a*


72 h Embryo development EC10 14.2 0.4 m 1.3 15 8 33.1 Arnold et al. 2010a*

Strongylo-centrotus 72 h Embryo development EC10 17.7 2.3 m 1.8 15 8.1 34.3 Arnold et al. 2010a*


96 h Embryo development NOEC 9.1 0.9 m 2.47 15.8 8.09 34.2 Rosen et al. 2008 *


96 h Embryo development NOEC 14.1 2.5 m 3.43 16 8.2 35.4 Rosen et al. 2008 *

Paracentrotus lividus 48 h Development NOEC 8.8 4m 1.83m 18 8.2 - 8.3 34.4 Hurdl, K 2006a *

Paracentrotus lividus 48 h Development NOEC 16.5 0.32 - 1.45

2.0e 20 8.1 35 Lorenzo, J. 2006*

POL

Neanthes arenaceodent 28 d growth NOEC 13.5 2 ± 1 2.0m NR NR 32 Pesch et al 1986*

Neanthes arenaceodent 28 d growth NOEC 12.1 2 ± 1 2.0m NR NR 32 Pesch et al 1986*

FISH

Atherinops affinis 12 d embryo abnormalities NOEC 123 <3m 2.0e 21 7.1- 7.7 33 Anderson et al., 1991*

Atherinops affinis 12 d Hatchability NOEC 123 <3m 2.0e 21 7.1- 7.7 33 Anderson et al., 1991*

Atherinops affinis 12 d young abnormalities NOEC 63 <3m 2.0e 21 7.1- 7.7 33 Anderson et al., 1991*


55






Cyprinodon variegates 7 d hatchability NOEC 109 <4m 1.19m 25 25 8.0- 8.3 23.5- 27 Hurd 2006b*

Cyprinodon variegates 32 d Survival NOEC 109 <4m 1.19m 25 25 8.0- 8.3 23.5- 27 Hurd 2006b*

Cyprinodon variegates 32 d Embryo development (weight) NOEC 57.8 <4m 1.19m 25 25 8.0- 8.3 23.5- 27 Hurd 2006b*

* WFD-UKTAG 2011. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: Copper (salt water) (for consultation)

Tabell B8: Reliable zinc long-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Test

duration Effect End point Conc

(µg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE (unicellular)


3d Growth rate NOEC 50 OECD medium, pH 7.4 hardness1 24 mg/l CaCO3/l Van Woensel 1994*


3d Growth rate NOEC 24 OECD medium, pH 7.5 hardnes-s 24 mg CaCO3/l Van Ginneken 1994a*


3d Growth rate EC10 5.4 OECD medium, pH 7.5 hardness1 24 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*













56


3d Growth rate NOEC 8.5 OECD medium, pH 7.5 hardness1 24 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*








3d Growth rate EC10 4.9 OECD medium, pH 7.5 De Schamphelaere et al. 2003*


3d Growth rate NOEC 124 OECD medium, pH 6.2 hardness1 24 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*






3d Growth rate EC10 15 OECD medium, pH 7.4 hardness1 24 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*


3d Growth rate NOEC 10 OECD medium, pH 7.7; hardness1 24 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*




3d Growth rate NOEC 58 River water -1 DOC 2.9 mg l pH 6.2 hardness1 28 mg CaCO3/l

De Schamphelaere et al. 2003*



De Schamphelaere et al. 2003, 2005*





3d Growth rate EC10 27 Lake water -1 DOC 5.9 mg l hardness 239 mg CaCO3/l



3d Growth rate NOEC 105 Ditch water -1 DOC 22 mg l hardness 144 mg CaCO3/l



3d Growth rate NOEC 28 Lake Maridalsvann water pH 6.7 hardness1 8mg CaCO3/l

Muyssen et al. 2003*


3d Growth rate NOEC 67 Lake Maridalsvann water pH 6.7 hardness 100 mg CaCO3/l



3d Growth rate NOEC 65 Lake Sundungen water pH 6.4 hardness 6.11 mg CaCO3/l



3d Growth rate NOEC 86 Lake Sundungen water pH 6.4 hardness 100 mg CaCO3/l


Chlorella sp. 48 hrs Growth rate EC10 349 Artificial water pH 6 hardness1 43 mg CaCO3/l Wilde et al. 2006*

57

Chlorella sp. 48 hrs Growth rate EC10 104 Artificial water pH 6.5 hardness1 43 mg CaCO3/l Wilde et al. 2006*

Chlorella sp. 48 hrs Growth rate EC10 92 Artificial water pH 7 hardness1 43 mg CaCO3/l Wilde et al. 2006*

Chlorella sp. 48 hrs Growth rate EC10 15 Artificial water pH 7.5 hardness1 43 mg CaCO3/l Wilde et al. 2006*

Chlorella sp. 48 hrs Growth rate EC10 4.9 Artificial water pH 8 hardness1 43 mg CaCO3/l Wilde et al. 2006*

ALGAE (multicellular)

Cladophora glomerata

3d Growth rate NOEC 60 pH 8.4 hardness >135 mg CaCO3/l Whitton 1967*

SPONGES

Ephydatia fluviatilis 7d Development NOEC 43 Elendt M4 pH 8 hardness 250 mg CaCO3/l Van de Vyver 2001*

Ephydatia muelleri 7d Development NOEC 43 Elendt M4 pH 8 hardness 250 mg CaCO3/l Van de Vyver 2001*

Spongilla lacustris 7d Development NOEC 65 Elendt M4 pH 8 hardness 250 mg CaCO3/l Van de Vyver 2001*

Eunapius gragilis 7d Development NOEC 43 Elendt M4 pH 8 hardness 250 mg CaCO3/l Van de Vyver 2001*

ROTIFERS

Anuraeopsis fissa ~ 20 d Population growth

NOEC 48 EPA medium pH 7.1-7.3 hardness 80- 100 mg CaCO3/l

Azuara-García et al. 2006*

Brachionus rubens ~ 20 d Population growth

NOEC1 24 EPA medium pH 7.1-7.3 hardness 80- 100 mg CaCO3/l

Azuara-García et al. 2006*

MOLLUSCS

Dreissena polymorpha 10 wks Survival NOEC 379 Lake water pH 7.9 hardness 270 mg CaCO3/l Kraak et al. 1994*

Potamopyrgus jenkinsi

16 wks Growth NOEC 60 Lake water pH 8 hardness 160 mg CaCO3/l Dorgelo et al. 1995*

CRUSTACEANS

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 25 River water pH 6 hardness1 81 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC1 25 River water pH 8 hardness1 81 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 25 River water pH 9 hardness1 81 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction EC10 40 River water pH 6 hardness 118 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 50 River water pH 8 hardness 118 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*



Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 50 River water pH 8 hardness 168 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC2 33 River water pH 9 hardness 168 mg CaCO3/l Belanger and Cherry 1990*

Ceriodaphnia dubia 4 d Reproduction NOEC 50 Little Miami pH 8 hardness 169 mg CaCO3/l Masters et al. 1991*

Ceriodaphnia dubia 4 d Reproduction NOEC 14 pH 8 hardness 169 mg CaCO3/l Masters et al. 1991*

58

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 50 pH 8 hardness 169 mg CaCO3/l Masters et al. 1991*

Ceriodaphnia dubia 7 d Reproduction NOEC 100 Little Miami pH 8 hardness 169 mg CaCO3/l Masters et al. 1991*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 97 Well water pH 7.5 hardness1 52 mg CaCO3/l Chapman et al. 1980*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 43 Well water pH 7.7 hardness 104 mg CaCO3/l Chapman et al. 1980*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 42 Well water pH 8.4 hardness 211 mg CaCO3/l Chapman et al. 1980*

Daphnia magna 7 wks Reproduction EC10 31 Pond water pH 8.4 hardness1 52 mg CaCO3/l Paulauskis and Winner 1988*

Daphnia magna 7 wks Reproduction EC10 33 Pond water DOC 0.75 mg/l pH 8.4 hardness1 52 mg CaCO3/l

Paulauskis and Winner 1988*

Daphnia magna 7 wks Reproduction NOEC 84 Pond water DOC 1.5 mg l pH 8.4 hardness1 52 mg CaCO3/l


Daphnia magna 7 wks Reproduction NOEC 83 Pond water pH 8.3 hardness 102 mg CaCO3/l Paulauskis and Winner 1988*

Daphnia magna 7 wks Reproduction NOEC 159 Pond water pH 8.3 hardness 197 mg CaCO3/l Paulauskis and Winner 1988*

Daphnia magna 7 wks Reproduction NOEC 208 Pond water DOC 1.5 mg l pH 8.3 hardness 197 mg CaCO3/l


Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC1 35 Lake Superior water pH 7.7 hardness1 45 mg CaCO3/l

Biesinger and Christensen 1972*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 74 Lake Superior water pH 7.7 hardness1 45 mg CaCO3/l

Biesinger et al. 1986*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 310 Lake IJssel water pH 8.1 hardness 225 mg CaCO3/l Enserink et al.

Daphnia magna 17 d Reproduction EC10 420 Lake IJssel water pH 8.1 hardness 225 mg CaCO3/l Enserink et al.

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 100 Lake Maggiore water pH 7.7 hardness1 65 mg CaCO3/l

Münzinger and Monicelli 1991*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 100 Lake Maggiore water pH 7.7 hardness1 65 mg CaCO3/l


Daphnia magna 21 d Reproduction EC10 25 Lake Maggiore water pH 7.7 hardness1 65 mg CaCO3/l


Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 82 Artificial water pH 6.6 hardness1 50 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*


Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 54 Artificial water pH 6.6 hardness 125 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*







59




Daphnia longispina 21 d Reproduction NOEC 37 Lake Maridalsvann water pH 6.7 hardness1 8 mg CaCO3/l


Daphnia longispina 21 d Reproduction NOEC 82 Lake Maridalsvann water pH 6.7 hardness 100 mg CaCO3/l


Daphnia longispina 21 d Reproduction NOEC 41 Lake Sundungen water pH 6.4 hardness 6.11 mg CaCO3/l


Daphnia longispina 21 d Reproduction NOEC 199 Lake Sundungen water pH 6.4 hardness 100 mg CaCO3/l


Hyalella azteca 10 wks Survival NOEC 36 Dechlorinated tap water pH 7.9 - 8.6 hardness 130 mg CaCO3/l

Borgmann et al. 1993*

Chironomus tentans 8 wks Emergence NOEC 137 Lake water pH 7.7 hardness1 45 mg CaCO3/l Sibley et al. 1996*

Fish

Brachydanio rerio 14 d Hatchability NOEC 2900 Artificial water pH 7.5 hardness 100 mg CaCO3/l Dave et al. 1987*



Brachydanio rerio 14 d Hatchability NOEC 180 Artificial water pH 7.5 hardness 100 mg CaCO3/l l Dave et al. 1987*






Jordanella floridae 14 wks Growth NOEC 26 Lake Superior water pH 7.5 hardness1 44 mg CaCO3/l

Spehar 1976*

Jordanella floridae 14 wks Growth/ reproduction

NOEC 75 Lake Superior water pH 7.5 hardness1 44 mg CaCO3/l

Spehar 1976*

Oncorhynchus mykiss 2 years Survival NOEC 130 Dechlorinated tap water pH 6.8 hardness1 26 mg CaCO3/l

Sinley et al. 1974*

Oncorhynchus mykiss 25 d Survival NOEC 25 Dechlorinated tap water pH 6.8 hardness1 26 mg CaCO3/l

Sinley et al. 1974*

Oncorhynchus mykiss 72 d Survival NOEC 440 Well water pH 7.0 hardness1 27 mg CaCO3/l Cairns et al. 1982*

Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 39 Artificial water pH 7.5 hardness1 30 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003*

Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 95 Artificial water pH 7.5 hardness1 30 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003, De Schamphelaere and Janssen 2004*

60

Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 45 Artificial water pH 7.7 hardness1 45 mg CaCO3/l l De Schamphelaere et al. 2003, De Schamphelaere and Janssen 2004*

Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 151 Artificial water pH 7.7 hardness 139 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003, De Schamphelaere and Janssen 2004*


Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 256 Artificial water pH 6.7 hardness1 29 mg CaCO3/l De Schamphelaere et al. 2003, De Schamphelaere and Janssen 2004*



Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 771 Ditch water DOC 23 mg l pH 7.8 hardness 104 mg CaCO3/l


Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 696 Lake water DOC 6.2 mg l pH 8.1 hardness 176 mg CaCO3/l


Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 324 River water DOC 3.9 mg l pH 6.8 hardness1 28 mg CaCO3/l


Oncorhynchus mykiss 30 d Survival NOEC 370 River waterDOC 4.3 mg l pH 6.2 hardness1 23 mg CaCO3/l


Phoxinus phoxinus 5 mths Survival/ growth

NOEC 50 Dechlorinated tap water pH 7.5 hardness1 70 mg CaCO3/l

Bengtsson 1974*

Pimephales promelas 8 mths Reproduction NOEC 78 Lake water pH 7-8 hardness 46 mg CaCO3/l Benoit and Holcombe 1978*

Salvelinus fontinalis 3 years Hatchingability NOEC 530 Lake water pH 7.0-7.7 hardness1 45 mg CaCO3/l Holcombe et al. 1979*

Salmo trutta ~ 120 d Hatching success

NOEC 51 Lake Store Sandungen water pH 6.7 hardness1 8 mg CaCO3/l

Källqvist et al. 2003*


NOEC 243 Lake Store Sandungen water pH 6.2-6.6 hardness 100 mg CaCO3/l



NOEC 54 Lake Maridalsvann water pH 6.4 hardness 6.11 mg CaCO3/l



NOEC 51 Lake Maridalsvann water pH 6.6-6.9 hardness 100 mg CaCO3/l


Cottus bairdii 30 d Survival NOEC 169 Dechlorinated tap water/ well water pH 7.5 hardness 154 mg CaCO3/l

Brinkman and Woodling 2005*

AMPHIBIA

Rhinella arenarum 21 d Survival LC10 840 Artificial water hardness1 90 mg CaCO3/l Brodeur et al. 2009*

*WFD-UKTAG, 2010. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: zinc (for consultation).

61

Tabell B9: Reliable zinc long-term aquatic toxicity data for marine organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Test

duration Effect End point Conc

(µg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Ascophyllum nodosum 10 d Growth EC10 69 T=6.4 - 6.8°C, SW - 33.4 - 33.5‰ BG= 7 - 9 µg/l Strömgren 1979*

Asterionella japonica 4d Growth EC10 21 T=17°C; FSW - 35‰ ; BG= 1.5 µg l Fisher et al. 1981*

Asterionella japonica 3d Growth EC10 15 T=17 ± 1°C ; UV irradiated FSW - 35‰ ; BG= 1.5 µg l Fisher and Frood 1980*

Asterionella japonica 3d Growth EC10 17 T=17 ± 1°C ;UV irradiated FSW - 35‰ ,BG= 5.2 µg l Fisher and Frood 1980*

Asterionella japonica 3d Growth EC10 2.2 T=17 ± 1°C; FSW - 35‰;DOC 1.46 mg/l; BG= 1.5 µg/l

Fisher and Frood 1980*

Asterionella japonica 3d Growth EC10 29 T=17 ± 1°C ;FSW - 35‰ -1 DOC 1.6 mg/l BG= 5.2 µg l


Asterionella japonica 3d Growth EC10 11 T=17 ± 1°C;FSW - 35‰ -1 DOC 2.1 mg/l BG= 1.5 µg l


Asterionella japonica 3d Growth EC10 47 T=17 ± 1°C;FSW - 35‰ -1,DOC 1.9 mg-l1;BG= 5.2 µg


Ceramium tenuicorne 7d Growth EC10 12 T=26°C ;NSW= 20‰;DOC 1.9 mg-l1;BG= 5.2 µg l Eklund 2005*

Chaetoceros compressum

3d Growth EC10 7.1 T=17°C ;FSW - 35‰;DOC=1.56 mg l- ;BG= 1.5 µg/l Fisher and Frood 1980*


3d Growth EC10 57 T=17°C ;FSW - 35‰;DOC=2.61 mg l- ;BG= 5.2 µg/l Fisher and Frood 1980*


3d Growth EC10 18 T=17°C;FSW - 35‰;DOC=1.03 mg l- ;BG= 1.5 µg/l Fisher and Frood 1980*

Fucus serratus 10 d Growth EC10 410 T=6.4 - 6.8°C;SW - 33.4 -33.5‰;BG= 7 - 9 µg/l Strömgren 1979*

Fucus spiralis 10 d Growth EC10 101 T=6.4 - 6.8°C ;SW - 33.4 - 33.5‰;BG= 7 - 9 µg/l Strömgren 1979*

Fucus vesiculosus 10 d Growth EC10 71 T=6.4 - 6.8°C ;SW - 33.4 - 33.5‰;BG= 7 - 9 µg/l Strömgren 1979*

Macrocystis pyrifera 2d Growth NOEC 190 T=11.5 - 17°C ;UV treated FSW 34 - 36‰ Anderson and Hunt 1988*

Nitzschia closterium 3d Growth EC10 52 T=17°C ;FSW - 35‰; DOC=3 mg/l BG= 1.5 µg l Fisher and Frood 1980*

Nitzschia closterium 3d Growth EC10 53 T=17°C; FSW - 35‰;DOC=1.91 mg l; BG= 5.2 µg/l Fisher and Frood 1980*

Nitzschia closterium 3d Growth EC10 12 T=17°C; FSW - 35‰;DOC=2.62 mg/l; BG= 1.5 µg/l Fisher and Frood 1980*

Nitzschia closterium 3d Growth EC10 84 T=27°C;FSW - 34‰ ;BG= < 10 µg l Johnson et al. 2007*

Pelvetia canaliculata 10 d Growth EC10 720 T=6.4 - 6.8°C; SW - 33.4 - 33.5‰;BG= 7 - 9 µg/l Strömgren 1979*

Skeletonema costatum 3d Growth EC10 1.4 T=17°C; UV irradiated;FSW - 35‰ ; BG= 1.5 µg l Fisher and Frood 1980*

Skeletonema costatum 3d Growth EC10 7.2 T=17°C;UV irradiated;FSW - 35‰ ;BG= 5.2 µg l Fisher and Frood 1980*

62

Skeletonema costatum 3d Growth EC10 12 T=17°C;FSW - 35‰ ;DOC=1.46 mg l-; BG= 1.5 µg/l Fisher and Frood 1980*

Skeletonema costatum 3d Growth EC10 70 T=17°C; FSW - 35‰; DOC=2.19 mg l- ;BG= 5.2 µg/l Fisher and Frood 1980*

Ulva pertusa 5d Sporulation NOEC 313 T=15°C ASW - 35‰ Han and Choi 2005*

ANNELID

Capitella capitata 2 mo Reproduction NOEC 100 T=15 & 20°C ;FSW - 32‰ Reish et al. 1977*

Ctenodrilus serratus 21 d Reproduction NOEC 100 BG= 8 µg/l SW Reish and Carr 1978*

Neanthes arenaceaodentata

7 mo Reproduction NOEC 33 T=15 & 20°C ;FSW - 32‰, BG= 8 µg/l Reish et al. 1977*

Ophryotrocha diadema 28 d Reproduction NOEC 100 SW Reish and Carr 1978*

CRUSTACEANS

Allorchestes compressa 28 d Survival LC10 62 T=19°C ;SW - 31‰ Ahsanullah and Williams 1991*

Holmesimysis costata 24 d Survival NOEC 5.6 T=12 ± 2°C;SW - 33 ± 2 ‰ Hunt et al. 1997*

Americamysis bahia 7d Survival NOEC 101 T=26 - 27°C ;FSW - 30‰ Harmon and Langdon 1996*

Mysidopsis intii 7d Growth NOEC 101 T=20°C ;FSW - 34‰ Harmon and Langdon 1996*

Tigriopus brevicornis 10 d Reproduction NOEC 297 T=20°C,SW - 34-36‰ Le Dean and Devineau 1987*

ECHINODERM

Arbacia lixula 38 h Development NOEC 10 T=20°C ,FSW - 38 ‰ Cesar et al. 2002*

Asterias amurensis 20 + 60 min

Fertility NOEC 50 T=15°C, FSW Lee et al. 2004*

Paracentrotus lividus 3d Development EC10 23 T=18°C ,ASW - 35‰ Novelli et al. 2003*

Paracentrotus lividus 2d Development EC10 18 T=22°C, FSW - 34‰ Radenac et al. 2001*

Paracentrotus lividus 28 h Development NOEC 10 T=20°C, FSW - 38 ‰ Cesar et al. 2002*

Sphaerechinus granularis

28 h Development NOEC 10 T=20°C; FSW - 38 ‰ Cesar et al. 2002*

Sterechinus neumayeri 20-23 d Development NOEC 160 T=0 ± 0.5°C; FSW - 34 ± 1‰ King and Riddle 2001*

MOLLUSCS

Crassostrea cacullata 4d Growth EC10 23 T=22 - 23°C;FSW - 34‰ Watling 1982*

Crassostrea gigas 4d Growth EC10 58 T=22 - 23°C;FSW - 34‰ Watling 1982*

Crassostrea margaritacea

4d Growth EC10 13 T=22 - 23°C; FSW - 34‰ Watling 1982*

Haliotis ruba 2d Development EC10 20 T=20°C Gorski and Nugegoda 2006*

63

Haliotis rufescens 9d Metamorphosis NOEC 19 T=14 - 17.5°C ; UV treated NSW 33 - 36‰ FSW Anderson et al. 1988*

Haliotis rufescens 10 d Metamorphosis NOEC 7.5 T=15°C , NSW Conroy et al. 1996*

Mytilus galloprovincialis 2d Development NOEC 80 T=20°C , FSW Beiras and Albentosa 2004*

Mytilus galloprovincialis 2d Development NOEC 90 T=20°C ; SW - 38‰ Pavicic et al. 1994*

Ruditapes decussatus 2d Development EC10 55 T=20°C; ASW - 34‰ , DOC=0 mg/ l Beiras and Albentosa 2004*

CNIDARIAN

Eirene viridula 3 mths Development NOEC 300 T=20°C ; FSW - 30‰ Karbe 1972*

NEMATODES

Monhystera disjuncta 4d Reproduction NOEC 250 T=17°C; ASW - 30‰ Vranken et al. 1991*

FISH

Clupea harengus 27 d Development NOEC 25 T=8°C , ASW - 21‰ Somasundaram et al. 1984*

*WFD-UKTAG, 2010. Proposed EQS for Water Framework Directive Annex VIII substances: zinc (for consultation).

64

Tabell B10: Arsenic short-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Test

duration Effect Endpoint Conc (mg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Scenedesmus obliquus 96 hrs Population size EC50 0.159 pH 7; 24oC Chen et al 1994*

Scenedesmus obliquus 96 hrs Population size EC50 0.079 pH 7; 24oC Chen et al 1994*

Selenastrum capricornutum

96 hrs Population size EC50 0.69 - Call et al, 1983*

Tetrahymena thermophila 48 hrs Population abundance

NOEC 0.9 Pauli et al., 1993*

CRUSTACEANS

Ceriodaphnia reticulata 48 hrs Immobilisation EC50 1.27 pH 8; 23o-1C; hardness 240 mg /l CaCO3 Elnabarawy et al., 1986*

Daphnia pulex 48 hrs Mortality LC50 1.9 pH 7.2--1 7.4; hardness 45 mg /l CaCO3 Mount and Norberg , 1984*

Simocephalus vetulus 48 hrs Mortality LC50 1.7 pH 7.2--1 7.4; hardness 45 mg /l CaCO3 Mount and Norberg , 1984*

Simocephalus serrulatus 48 hrs Immobilisation EC50 1.4 pH 7.4;-16 oC; hardness 44 mg /l CaCO3. Mayer and Ellersieck, 1986*

Bosmina longirostris 96 hrs Immobilisation EC50 0.85 pH 6.8; 17oC; hardness 120 mg /l CaCO3; Passino and Novak, 1984*

Bosmina longirostris 96 hrs Immobilisation EC50 0.25 Novak et al 1980*

Ceriodaphnia dubia 48 hrs Mortality LC50 1.448 pH 8.2; 25oC; hardness 100 mg/l CaCO3 Spehar and Fiandt, 1986*

Gammarus pseudolimnaeus

96 hrs Immobilisation EC50 0.874 pH 7.2-8.1; 18.5oC; hardness 46-50 mg/l CaCO3 Lima et al., 1948*

Gammarus pseudolimnaeus

96 hrs Mortality LC50 0.875 pH 7.7; 18.4oC; hardness 46.3 mg/l CaCO3 Call et al 1983*

INSECTS

Chironomus tentans 48 hrs Immobilisation EC50 0.68 pH 6.3; 14oC; hardness 25 mg/l CaCO3 Khangarot and Ray, 1989*

FISH

Thymallus articus 96 hrs Mortality (juvenile) LC50 4.76 pH 7.1- 8; 12oC; hardness 41.3 mg/l CaCO3 Buhl and Hamilton S, 1990*

Barbus javanicus 96 hrs Mortality LC50 24.17 pH 7.1-7.2; 23oC; hardness 230 mg/l CaCO3 Gupta and Chakrabarti, 1993*

Carassius auratus 7 days Mortality LC50 0.49 pH 7; hardness 195 mg/l CaCO3 Birge et al., 1979*

Channa punctata 96 hrs Mortality (fingerling)

LC50 10.9 Shukla et al., 1987*

Oncorhynchus mykiss 96 hrs Mortality LC10 12.1 pH 8.4; 12oC; hardness 250 mg/l CaCO3 Tisler and Zagorc-Koncan, 2002*

Colisa fasciatus 96 hrs Mortality (fingerling)

LC50 6.1 pH 7.1; 30oC Shukla and Pandey, 1985*

65

Pimephales promelas 96 hrs Mortality LC50 12.6 pH 7.4; 25oC; hardness 43.9 mg/l CaCO3 Spehar and Fiandt, 1986*

Barbus sophore 48 hrs Mortality LC50 14 34.8oC Pandey and Shukla, 1979*

Oryzias latipes 7 days Mortality LC50 14.6 21oC Suhendrayatna et al., 2002*

Oreochromis mossambicus

144 hrs Mortality LC50 15.98 pH 7.7; 24.7oC Liao et al., 2004*

Amphibians

Rana hexadactyla 96 hrs Mortality LC50 0.249 pH 6.1; 15oC; hardness 20 mg/l CaCO3 Khangarot et al., 1985*

* WFD-UKTAG 2007. Science Report Proposed EQS for arsenic

66

Tabell B11: Arsenic long-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Test duration Effect Endpoint Conc (mg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Chlamydomonas sp. 72-96 hrs Growth (no. of cells ) LOEC 0.05 Hörnström, 1990*

Monoraphidium 72-96 hrs Growth (no. of cells ) LOEC 0.5 Hörnström, 1990*

Monosigna sp. 72-96 hrs Growth (no. of cells ) NOEC 0.5 Hörnström, 1990*

Ankistrodesmus falcatus 14 days Growth NOEC 0.1 pH 7; 24oC;-1hardness;16-17 mg l CaCO3

Vocke et al., 1980*

Scenedesmus obliquus 14 days Growth EC50 0.048 pH 7; 24oC;-1hardness 16-17 mg l CaCO3

Vocke et al., 1980*

Chlorella vulgaris 3-4mths Population NOEC 0.03 pH 2.2-8,lowest concentration tolerated Den Dooren de Jong , 1965*

MACROPHYTES

Lemna minor 14 d Growth NOEC <0.75 23oC Jennerand Janssen-Mommen, 1993*

Myriophyllum spicatum 32 d Biomass EC50 2.6 20oC Stanley, 1974*

Azolla pinnata 28 d Growth/ chlorophyll NOEC 1 pH 8.5; 21oC Sarkar and Jana1986*

CRUSTACEANS

Daphnia magna 14 d Mortality/ Reproduction NOEC 0.932 H 6.9-7.3; 14-16oC; hardness 42-45 mg/l CaCO3

Spehar et al 1980*

Daphnia magna 14 d Mortality/ Reproduction NOEC 0.955 pH 6.9-7.3; 14-16oC; hardness 42-45 mg/l CaCO3

Spehar et al 1980*

Daphnia magna 28 d Mortality/ NOEC 0.63 pH 7.2-8.1; 20.8oC; hardness 46-50 mg/l C CaCO3

Lima et al., 1948*

Daphnia magna 21 d Reproduction NOEC 1.85 21oC Tisler and Zagorc-Koncan, 2002*

Daphnia magna 21 d Reproduction EC50 1.4 pH 7.74; 18oC; hardness 45.3 mg/l CaCO3 Biesingerand Christensen, 1972*

Daphnia pulex 26 d Reproduction (egg production)

LOEC 0.01 Significant decrease in reproduction Chen et al 1999*

Ceriodaphnia dubia 7 d Production of young MATC 1.14 pH 8.2; 25oC; hardness 100 mg/l CaCO3 Spehar and Fiandt, 1986*

Ceriodaphnia dubia 24 d Survival/ brood size Effect 1 pH 7.3-9.3; 25oC; hardness EPA moderately hard; RI = 2

52. Hansen et al., 2002*

Gammarus fossarum 10 d Immobilisation LC50 0.2 12oC Canivet et al., 2001*

MOLLUSCS

Lymnaea emarginata 28 d Mortality NOEC 0.961 pH 6.9-7.3; 14-16oC; hardness 42-45 mg/l CaCO3

Spehar et al 1980*

67

Helisoma campanulatum 28 d Mortality NOEC 0.961 pH 6.9-7.3; 14-16oC; hardness 42-45 mg/l CaCO3

Spehar et al 1980*

INSECTSs

Heptagenia sulphurea 10 d Immobilisation LC50 1.6 12oC Canivet et al., 2001*

FISH

Clarias batrachus 14 d Change in protein content

Effect 1 pH 8.5; 22oC; hardness 'soft' Jana et al., 1986*

Jordanella floridae 31 d Growth NOEC 2.13 pH 7.2-8.1; 23-25.8oC; hardness 46-50 mg/l CaCO3

Lima et al., 1948*

Jordanella floridae 31 d Growth LOEC 4.12 pH 7.2-8.1; 23-25.8oC; hardness 46-50 mg/l CaCO3

Lima et al., 1948*

Oncorhynchus kisutch 6 mths Significant reduction in migration success

Effect 0.3 pH 8.2; 3.8-13.8oC; hardness 69 mg/l CaCO3

Nichols et al., 1984*

Oncorhynchus mykiss (parr) 28 d Mortality NOEC 0.961 pH 6.9-7.3; 14-16oC;hardness 42-45 mg/l CaCO3

Spehar et al 1980*

Oncorhynchus mykiss 28 d Mortality (egg) LC10 0.134 pH 7.2-7.8; 12-13oC;hardness 93-105 mg/l CaCO3

Birge et al., 1978*

Oryzias latipes 7-11 d (exposure of 2-3 day old embroyos until hatching)

Hatching Success LOEC 0.05 hatching success in controls 85%; EC50 = 54%; LOEC = 75%; NOEC = 86%; RI = 4

Ishaque et al., 2004*

Oryzias latipes 7-11 d (exposure of 2-3 day old embroyos until hatching)

Hatching Success NOEC 0.025 hatching success in controls 85%; EC50 = 54%; LOEC = 75%; NOEC = 86%; RI = 4

Ishaque et al., 2004*

Pimephales promelas 30 d Growth ELS test NOEC 0.53 pH 6.9-7.8; 25oC; hardness 45-48 mg/l CaCO3

De Foe, 1982*

Pimephales promelas 30 d Growth ELS test LOEC 1.5 pH 6.9-7.8; 25oC; hardness 45-48 mg/l CaCO3

De Foe, 1982*

Pimephales promelas 29 d Growth NOEC 2.13 pH 7.2-8.1; 23-25.8oC; hardness 46-50 mg/l CaCO3

Lima et al., 1948*

Pimephales promelas 29 d Growth LOEC 4.3 pH 7.2-8.1; 23-25.8oC; hardness 46-50 mg/l CaCO3

Lima et al., 1948*

Pimephales promelas 32 d Mortality/ growth/reproduction

MATC 3.33 pH 7.4; 25oC; hardness 43.9 mg/l CaCO3 Spehar and Fiandt, 1986*

Pimephales promelas 32 d Weight/no. of young per female

EC50 7.08 pH 7.4; 25oC; hardness 43.9 mg/l CaCO3 Spehar and Fiandt, 1986*

AMPHIBIANS

Gastrophryne carolinensis 7 d Mortality (fertilisation until 4-day post-hatch)

LC50 0.04 pH 7-7.8; hardness 195 mg/l CaCO3 Birge et al., 1979


68

Tabell B12: Arsenic short-term aquatic toxicity data for marine organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Test duration Effect Endpoint Conc

(mg/l) Physico-chemical conditions Reference

Algae

Skeletonema costatum 25 hrs Biochemical Effect 0.025 20 oC Sandersand Windom, 1980*

Crustaceans

Acartia clausi 96 hrs Mortality LC50 0.907 8 oC; salinity 30 ppt Lussier and Cardin, 1985*

Penaeus chinensis 96 hrs Mortality LC50 0.003 Chen and Chen, 1990*

Cancer magister 24 hrs Mortality LC50 0.232 pH 8.1; 15 oC; salinity 34% Martin et al., 1981*

Nitocra spinipes 96 hrs Mortality female LC50 3 Salinity 7 ppt Bengtsson and Bergstrom, 1987*

Tigriopus brevicornis 96 hrs Mortality LC50 0.011 pH 7.7-8.1; 20 oC; salinity 35 ppt Forget et al., 1998*

Corophium insidiosum 96 hrs Mortality LC50 1.1 19 oC Reish, 1993*

Americamysis bahia 96 hrs Mortality LC50 1.74 pH7.8-8.2; 20-25 oC; salinity 30 ppt Lussier et al., 1985*

Molluscs

Crassostrea gigas 48 hrs Development EC50 0.326 pH 8.1; 20 oC; salinity 34% Martin et al., 1981*

Polychaetes

Capitella capitata 96 hrs Mortality LC50 2.05 Reish and Lemay, 1991*

Ophryotrocha labronica 96 hrs Mortality LC50 1.5 Reish and Lemay, 1991*

Echinoderms


48 hrs Embryo development

LOEC 0.0113 pH 7.8; 15 oC; salinity 34 ppt Garman et al., 1997*



EC10 0.0063 pH 7.8; 15 oC; salinity 34 ppt Garman et al., 1997*



EC50 0.015 pH 7.8; 15 oC; salinity 34 ppt Garman et al., 1997*

Fish

Therapon jarbua 96 hrs Mortality LC50 3.38 Salinity 36 % Krishnakumari et al 1983*

Therapon jarbua 96 hrs LC10 1.03 Salinity 36 % Krishnakumari et al 1983*

Oncorhynchus gorbuscha 72 hrs Mortality NOEC 9.5 pH 7.7; 10.5 oC Holland et al., 1960*

69

Morone saxatilis 96 hrs Mortality LC50 10.3 pH 8.1; 25 oC; salinity 22.5 ppt Dwyer et al., 1992*

Morone saxatilis 96 hrs Mortality LC50 7.28 pH 7.6; 16-21.5oC; salinity 3.5 -5.2 ppt Klauda, 1986*


70

Tabell B13: Arsenic long-term aquatic toxicity data for marine organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Test duration Effect Endpoint Conc

(mg/l) Test conditions Reference

ALGAE

Skeletonema costatum 6-8 d Growth LOEC 0.01 20oC Sanders J G, 1979*

Skeletonema costatum 6-8 d Growth LOEC 0.013 20 oC Sanders J G, 1979 *

Fucus serratus 17 wks Growth/ mortality NOEC 0.02 16-20oC; salinity 12.5-22% Geiszinger et al 2001

Champia parvula 14 d Sexual reproduction

NOEC 0.06 20-22oC Thursby and Steele, 1984*

ECHINODERMS



LOEC 0.0113 pH 7.8; 15 oC; salinity 34 ppt Garman et al 1997*



EC10 0.006 pH 7.8; 15 oC; salinity 34 ppt Garman et al 1997*

CRUSTACEANS

Palaemonetes pugio 28 d Growth NOEC 0.025 20-25oC; salinity 12.5 ppt Lindsay and Sanders, 1990*

Eurytemora affinis 15 d Mortality Effect 0.1 Significant increase in juvenile mortality Sanders J G, 1986*

Americamysis bahia 29-51 d Reproduction NOEC 0.631 pH 7.8-8.2; 20-25 oC; salinity 30 ppt Lussier et al 1985*

Nitocra spinipes 13 d Reproduction EC50 1.4 salinity 7 ppt Bengtsson and Bergstrom, 1987*

MOLLUSCS

Crassostrea gigas 21 d Mortality NOEC (unbounded )

0.01 Ettajani et al., 1996*

FISH

Oncorhynchus gorbuscha 10 d Mortality NOEC 2.65 pH 7.7; 10.5 oC Holland et al 1960*


71

Tabell B14: Reliable short-term nitrate aquatic toxicity data for freshwater organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration (h) Effect Endpoint Conc (mg

NO3-N/l) Temp (oC) Hardness (mg

CaCO3/l) Reference

INSECTS

Hydropsyche accidentalis 96 MOR LC50 99 18 42.7 Camargo and Ward 1992*

Cheumatopsyche pettiti 120 MOR LC50 107 18 Camargo & Ward, 1995*

Hydropsyche exocellata 120 MOR LC50 230 1 7 .9 Camargo et al., 2005*

Chironomus dilutis 48 MOR LC50 278 2 2 .0 8 4 -1 3 6 US EPA, 2010*

Amhinemura delosa 96 MOR LC50 456 1 2 .5 8 8 -9 2 US EPA, 2010; Soucek & Dickinson, 2012*

Allocapnia vivipara 96 MOR LC50 836 1 1 .0 99 Soucek & Dickinson, 2012*

AMPHIBIANS

Xenopus laevis 96 MOR LC50 1656 22 21 Schuytema & Nebeker, 1999c*

Pseudacris regilla 96 MOR LC50 1750 22 7 0 -8 0 Schuytema & Nebeker, 1999c*

CRUSTACEANS

Hyalella azteca 96 MOR LC50 168 23 44 Nautilus , 2012*

Hyalella azteca 96 MOR LC50 485 23 100 Nautilus, 2012*

Hyalella azteca 96 MOR LC50 921 23 164 Nautilus, 2012*

Hyalella azteca 96 MOR LC50 667 2 2 .5 117 Soucek & Dickinson 2012*

Hyalella azteca 96 MOR LC50 1 6 .4 22 8 0 -8 4 US EPA, 2010*

Daphnia magna 48 MOR EC50 462 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

MOLLUSCS

Lampsilis siliquoidea 96 MOR LC50 357 2 0 .0 9 0 -9 2 Soucek & Dickinson, 2012; US EPA, 2010*

Sphaerium simile 96 MOR LC50 371 2 2 .8 9 0 -9 2 US EPA 2010; Soucek & Dickinson, 2012*

Ceriodaphnia dubia 48 MOR LC50 374 25 Scott & Crunkilton, 2000*

Megalonaias nervosa 96 MOR LC50 937 2 0 .9 9 0 -9 2 Soucek & Dickinson, 2012*

Potamopyrgus antipodarum 96 MOR LC50 1042 2 0 .4 Hamlin, 2006*

FISH

Acipenser baeri 96 MOR LC50 397 2 2 .5 260 Hamlin, 2006*

Pimephales promelas 96 MOR LC50 415 2 5 .0 9 0 -9 2 US EPA, 2010*

Pimephales promelas 96 MOR LC50 1341 2 5 .0 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

Pimephales promelas 96 MOR LC50 746 2 5 .0 9 0 -1 7 2

72

Oncorhynchus tshawytscha 168 MOR LC50 1084 1 3 -1 4 Westin, 1974*

Gambusia holbrooki 96 MOR LC50 1095 Wallen et al., 1957*

Salvelinus namaycush 96 MOR LC50 1121 7 .5 10 McGurk et al.,2006*

Oncorhynchus mykiss 96 MOR LC50 691 15 11 Nautilus , 2012*




Oncorhynchus mykiss 168 MOR LC50 1061 1 3 -1 4 ND Westin, 1974*

Oncorhynchus mykiss 168 MOR LC50 1658 12 4 0 -4 2 Buhl & Hamilton, 2000*

Notropis topeka 96 MOR LC50 1354 2 4 .5 210-230 Adelman et al., 2009*

Ictalurus punctatus 96 MOR LC50 1355 22 Colt & Tchobanoglous,1976*

Galaxias maculatus 96 MOR LC50 1549 15 14 Hickey et al. 2013*



Coregonus clupeaformis 96 MOR LC50 1903 7 .5 10 McGurk et al.2006*

Lepomis macrochirus 96 MOR LC50 1974 22 4 5 -4 6 Trama, 1954*

* NIWA. 2013. Updating nitrate toxicity effects on freshwater aquatic species

73

Tabell B15: Reliable long-term nitrate aquatic toxicity data for freshwater organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration

(d) Effect Endpoint NOEC

(mg NO3-N/l) LOEC (mg NO3-N/l)

Temp (oC) Hardness (mgCaCO3/l)

Reference

ALGAE


3 growth NOEC 206 406 24 ~1 0 Nautilus Environmental, 2011b*

INSECTS

Deleatidium sp. 20 mortality NOEC 2 0 ,3 6 0 ,1 15 Martin & Thompson, 2012

Chironomus dilutus 10 growth NOEC 40 80 23 46 Nautilus* Environmental,2011b*

Chironomus dilutus 10 growth NOEC 80 160 23 86 Nautilus Environmental,2011b*

Chironomus dilutus 10 growth NOEC 160 320 23 172 Nautilus Environmental,2011b*

AMPHIBIANS

Bufo americanus 23 Hatchability NOEC >9 ,3 >9 ,3 5 -1 0 ND Laposata & Dunson, 1998*

Pseudacris regilla 10 growth NOEC 14 3 0 ,1 22 75 Schuytema & Nebeker, 1999c*

Xenopus laevis 5 -1 0 growth NOEC 4 0 .4 5 8 ,5 22 2 1 -3 6 Schuytema & Nebeker,1999c ; Schuytema & Nebeker, 1999*

Rana aurora 10 growth NOEC 162 235 2 5 .5 2 5 .5 Schuytema & Nebeker , 1999b*

MOLLUSCS

Pomacea paludosa 14 mortality NOEC 2 3 ,2 2 1 -2 4 Corrao et al., 2006*

Pomacea paludosa 14 mortality NOEC 2 8 ,6 2 1 -2 4 ND Corrao et al., 2006*

CRUSTACEANS Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 7 ,1 1 4 ,1 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 5 6 ,5 113 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 7 ,1 1 4 ,1 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 1 7 ,9 3 5 ,9 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 1 7 ,9 3 5 ,9 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000*

74

Ceriodaphnia dubia 7 reproduction NOEC 1 0 ,0 20 25 44 Nautilus Environmental, 2011b*



Daphnia magna 7 reproduction NOEC 358 717 25 156-172 Scott & Crunkilton, 2000 *

Hyalella azteca 14 growth NOEC 10 20 23 46 Nautilus Environmental, 2011b*



Hyalella azteca 10 growth NOEC 470 965 23 310 Stantec, 2006

Macrobrachium rosenbergii

21 growth NOEC 35 6 2 ,0 28 ND Wickins, 1976*

FISH Salvelinus namaycush

146 growth NOEC 1.6 6 ,2 5 7 .5 1 0 -1 6 McGurk et al., 2006*

Oncorhynchus tshawytscha

30 mortality NOEC 2 ,3 4 ,5 10 8 -1 0 Kinchloe et al., 1979*

Salmo clarki 30 mortality NOEC 4 ,5 7 ,6 13 6 -9 Kinchloe et al., 1979*

Oncorhynchus kisutch

30 mortality NOEC >4 ,5 >4 ,5 10 8 -1 0 Kinchloe et al., 1979*

Coregonus clupeaformis

126 development NOEC 6 .2 5 25 7 .5 1 0 -1 6 McGurk et al., 2006*

Galaxias maculatus 40 growth NOEC 6 20 15 14 Hickey et al., 2013*

Galaxias maculatus 40 growth NOEC 21 108 15 40 Hickey et al., 2013*

Oncorhynchus mykiss

30 mortality NOEC 1 ,1 2 ,3 10 8 -1 0 Kinchloe et al., 1979*

Oncorhynchus mykiss

30 mortality NOEC 4 ,5 >4 ,5 10 8 -1 0 Kinchloe et al., 1979*

Oncorhynchus mykiss

3 7 -4 0 growth NOEC 1 5 ,0 4 ,5 14 10 Nautilus Environmental, 2011a *

Oncorhynchus mykiss

3 7 -4 0 growth NOEC 1 5 ,0 4 ,5 14 50 Nautilus Environmental, 2011a *

Oncorhynchus mykiss

3 7 -4 0 growth NOEC 4 5 ,0 1 3 ,5 14 92 Nautilus Environmental, 2011a *

Oncorhynchus mykiss

3 7 -4 0 growth NOEC 405 >4 0 5 14 176 Nautilus Environmental, 2011a*

75

Oncorhynchus mykiss

64 growth NOEC 115 240 14 310 Stantec , 2006

Oncorhynchus mykiss

42 development NOEC 99 389 16 40 Hickey et al., 2013*

Galaxias maculatus 31 mortality NOEC >1 0 3 >1 0 3 15 40 Martin & Thompson, 2012*

Pimephales promelas

7 growth NOEC 358 717 25 140-170 Scott & Crunkilton, 2000*

Pimephales promelas

7 mortality, growth

NOEC 50 100 25 12 Nautilus Environmental,2011b*

Pimephales promelas

7 mortality NOEC 100 200 25 50 Nautilus Environmental,2011b*

Pimephales promelas

7 mortality, growth

NOEC 200 400 25 94 Nautilus Environmental,2011b*

Pimephales promelas

7 mortality NOEC 200 400 25 168 Nautilus Environmental,2011b*

Pimephales promelas

30 mortality NOEC 58 121 2 3 .1 210-230 Adelman et al., 2009*

Pimephales promelas

32 mortality, growth

NOEC 49 109 25 132-180 US EPA, 2010*

Notropis topeka 30 growth NOEC 268 486 2 4 .5 210-230 Adelman et al., 2009 *

* NIWA. 2013. Updating nitrate toxicity effects on freshwater aquatic species

Reference

1) Stantec Consulting Ltd. 2006. Report on the toxicity of nitrate to Canadian fish and aquatic invertebrate species. Prepared for: Environment Canada, National Guidelines Standards Office. Stantec Project No. 162704276.

76

Tabell B16: Reliable long-term nitrate aquatic toxicity data for marine organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration (d) Effect Endpoint Conc (mg NO3-

N/l) Reference

ANNELIDS

Nereis grubei 28 ND LC 10 48 Reish 1970*

Neanthes arenaceodentata 28 ND LC 10 99 Reish 1970*

Capitella capitella 28 ND LC 10 149 Reish 1970*

Dorvillea articulate 28 ND LC 10 158 Reish 1970*

CRUSTACEANS

Cherax quadricarinatus 5 respiration NOEC 1001 Meade and Watts 1995*

Penaeus monodon 21 Growth NOEC 200 Wickins 1976*

ECHINODERMS

Paracentrotus lividus 15 Growth/feeding LOEC 250 Basuyaux and Mathieu 1999*

FISH

Amphiprion ocellaris 72 growth,mortality LOEC 100 Frakes and Hoff Jr. 1982*

Atherinops affinis 7 Mortality LOEC 934 Stantec, Ltd.2006*

Atherinops affinis 7 Mortality NOEC 445 Stantec, Ltd.2006*

Oncorhynchus mykiss 7 ND LC50 904 Westin 1974*

Oncorhynchus mykiss 7 ND LC10 667 Westin 1974*

Oncorhynchus tshawytscha 7 ND LC50 904 Westin 1974*

Oncorhynchus tshawytscha 7 ND LC10 793 Westin 1974*

MOLLUSCS

Haliotis tuberculata 15 Growth LOEC 250 Basuyaux and Mathieu 1999*

* CCME, 2012. Canadian Water Quality Guidelines: Nitrate Ion. Scientific Criteria Document

77

Tabell B17: Uranium short-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration (h) Conc (µg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Chlorella sp. 72 EC50 56 BEC10 og EC50. H 8 (mg CaCO3/l); pH 7; OC<0,2 mg/l; Alk. 8 (mg CaCO3/l)

Charles et al. 2002*

Chlorella sp. 72 EC50 72 EC10≈BEC10. H 40; pH 7; OC<0,2 mg/l; Alk 8






Chlorella sp. 48 EC50 23 EC10≈BEC10. pH 7; H 8 Charles 2000*

Chlorella sp. 72 EC50 78 EC10≈BEC10. pH 5,7; H 2-4 Franklin et al. 2000*

Chlorella sp. 72 EC50 44 Franklin et al. 2000*

COELENTERATA

Hydra viridissima 96 EC50 114 pH 6; H 6,6; Alk. 4,0. 95% CI 107-121) Riethmuller et al.2001*

Hydra viridissima 96 EC50 177 pH 6; H 165; Alk.4,0. 95% CI 166-188 Riethmuller et al.2001*

Hydra viridissima 96 EC50 171 pH 6; H 165; Alk. 102. 95% CI150-192 Riethmuller et al.2001*

Hydra viridissima 96 EC50 219 pH 6; H 330; Alk. 4,0; 95% CI 192-246 Riethmuller et al.2001*

Hydra viridissima 96 EC50 108 EC10≈BEC10. pH 6: H 4 Markich & Camilleri 1997* Hydra viridissima 96 EC50 1,87*106 pH 7,86 Labrot et al. 1999*

Corbicula sp. 96 EC50 1,87*106 Ribera et al. 1996*

Velesunio angasi 48 EC50 78 pH 5,0; DOC ≈ 0; H 3,9; Alk 4,1 Markich & Camilleri 1997*

Velesunio angasi 48 EC50 103 pH 5,0; DOC ≈ 0; H 3,9; Alk 4,1 Markich et al. 2000*

Velesunio angasi 48 EC50 99 pH 5,0; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 3,7mg/l Markich & Camilleri 1997*

Velesunio angasi 48 EC50 127 pH 5,0; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 3,7mg/l Markich et al. 2000*

Velesunio angasi 48 EC50 171 pH 5,0; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 8,9 mg/l Markich & Camilleri 1997*

Velesunio angasi 48 EC50 218 pH 5,0; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 8,9 mg/l Markich et al. 2000*

Velesunio angasi 48 EC50 93 pH 5,3; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 0 Markich & Camilleri 1997*

Velesunio angasi 48 EC50 124 pH 5,3; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 0 Markich et al. 2000*

78



Velesunio angasi 48 EC50 167 pH 5,5; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 3,7mg/l Markich & Camilleri 1997*

Velesunio angasi 48 EC50 213 pH 5,5; H 3,9; Alk 4,1; DOC ≈ 3,7mg/l Markich et al. 2000*












MOLLUSCS

Diaphanosoma excisum 24 EC50 1000 pH = 6,6 Bywater et al. 1991*

Latonopsis fasciculata 24 EC50 410 pH = 6,6 Bywater et al. 1991*

Dadaya macrops 24 EC50 1100 pH = 6,6 Bywater et al. 1991*

Moinodaphnia macleayi 24 EC50 1290 pH = 6,6 Bywater et al. 1991*

Moinodaphnia macleayi 48 EC50 176 Hyne et al. 1993*

Moinodaphnia macleayi 48 EC50 160 pH 6,63-6,92 Semann et al. 2001*

Moinodaphnia macleayi 48 EC50 240 pH 6,63-6,92 Semann et al. 2001*

79

Moinodaphnia macleayi 48 EC50 360 pH 6,5 Semann et al. 2001*





CRUSTACEANS

Daphnia magna 48 EC50 6315 pH 7,9 - 8,0. H 67 - 73. Alk. 54-60 Poston et al. 1984**

Daphnia magna 48 EC50 36834 pH 7,9 - 8,0. H 126 - 140. Alk. 92 - 93 Poston et al. 1984**

Daphnia magna 48 EC50 46877 pH 7,9 - 8,0. H 188 - 205. Alk. 124 - 133 Poston et al. 1984**

Daphnia magna 48 EC50 6600 pH 7,9-8. H 66-73. Alk.54-60 mg/l CaCo3 Poston et al. 1984*

Daphnia magna 48 EC50 1200 pH 7,6-8,1. H 66-73. Alk. 54-60. DOC 1,15 mg/l

Poston et al. 1984*

Daphnia magna 48 EC50 3684* H=66-73 Poston et al. 1984*

Daphnia magna 48 EC50 9360 pH 7,7; H 90,7; Alk. 62,1. Barata et al. 1998*

Daphnia magna 48 EC50 5870 pH 7,7; H 90,7; Alk. 62,1. Barata et al. 1998*

Daphnia magna 48 EC50 25400 pH 8,1; H 179; Alk. 126. Barata et al. 1998*

Daphnia magna 48 EC50 17300 pH 8,1; H 179; Alk. 126. Barata et al. 1998*

Ceriodaphnia dubia 48 EC50 72* pH 5,6; H 3,8; Alk 1,2. Pickett et al. 1993*

Ceriodaphnia dubia 48 EC50 107* pH 5,6; H 3,8; Alk 1,2. Pickett et al. 1993*

Ceriodaphnia dubia 48 EC50 50 pH 5,6; H 3,8; Alk 1,2. Pickett et al. 1993*

Hyalella azteca 7 d LC50 10500 pH 8.2; H 157mg/l (CaCO3); alkalinity 137mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 5.1 mg/l

Kuhne et al. 2002*

INSECTS

Chironomus tentans 96 EC50 15000 pH 7,9-8; H 66-200; Alk 54-60; DOC 1,15 mg/l

Poston et al. 1984*

FISH EC50

Brachydanio rerio 96 EC50 3050 pH 7,86 Labrot et al. 1999*

80

Melanotaenia nigrans 96 EC50 1700 pH = 6,6; alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Melanotaenia nigrans 96 EC50 1900 pH = 6,6; alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Melanotaenia splendida 96 EC50 2660 pH = 6,6; alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Melanotaenia splendida 96 EC50 3460 pH = 6,6; alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Melanotaenia splendida inorata 96 EC50 1390 pH 6,6; alkalinity 3,2 mg/l (CaCO3), TOC 9,2 mg/l; DOC 5,8 mg/l

Holdway 1992*

Melanotaenia splendida inorata

7 d EC50 890 pH 6,3; alkalinity 1,8 mg/l; TOC 2,7 mg/l;DOC 1,5 mg/l

Holdway 1992*

Craterocephalus marianae 96 EC50 1220 pH = 6,6. alkalinity t 3,26 mg/l Bywater et al. 1991* Pseudomugil tenellus 96 EC50 730 pH = 6,6. alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991* Ambassus mcleayi 96 EC50 800 pH = 6,6. alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991* Mogurnda mogurnda 96 EC50 1568 pH 6; H 3,9; Alk. 4,1; Markich & Camilleri 1997*

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1110 pH = 6,6; alkalinity 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1460 pH = 6,6. Alkalinit 3,26 mg/l Bywater et al. 1991*

Mogurnda mogurnda 14 d EC50 1290 pH 6,4; alkalinity 3,0mg/l (CaCO3); TOC 5,4 mg/l; DOC 5,1 mg/l

Holdway 1992*

Mogurnda mogurnda 7 d EC50 1590 pH 6,6; alkalinity 3,2 mg/l, TOC 9,2 mg/l; DOC 5,8 mg/l

Holdway 1992*

Mogurnda mogurnda 7 d EC50 890 pH 6,3; alkalinity 1,8 mg/l; TOC 2,7 mg/l;DOC 1,5 mg/l

Holdway 1992*

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1570 pH 6,6; alkalinity 3,2 mg/l, TOC 9,2 mg/l; DOC 5,8 mg/l

Holdway 1992*


Holdway 1992*


Holdway 1992*


Holdway 1992*


Holdway 1992*


Holdway 1992*

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1730 H 6,6 mg/l; pH 6; Alk 4 mg/l; Riethmuller et al 2000*

81

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1965 H 6,6 mg/l; pH 6; Alk 4 mg/l; Riethmuller et al 2000*

Mogurnda mogurnda 96 EC50 1335 H 165 mg/l; pH 6; Alk 4 mg/l; Riethmuller et al 2000*




Salvelinus fontinalis 96 EC50 5500 Hardness 32; pH 6,7; Alkalinity 12 Parkhurst et al. 1984*

Salvelinus fontinalis 96 EC50 23000 H 210; Alk 54; pH 7,5 Parkhurst et al. 1984*

Salvelinus fontinalis 48 EC50 59000 H 184; Alk 146; pH 7,4 Parkhurst et al. 1984*

Salvelinus fontinalis 77 d NOEC >9080 H 201; Alk 189; pH 8,0 Parkhurst et al. 1984*

Brachydanio rerio 96 EC50 3020 OECD guideline Ribera et al. 1996*

Pimephales promelas 96 EC50 >100000 pH 7,9-8. H 66-73. Alk 54-60. DOC 1,15 mg/l

Poston et al. 1984*

* Danska Miljöministeriet, 2011. Fastsættelse af kvalitetskriterier for vandmiljøet, uran.

** CCME, 2011. Scientific Criteria Document for the Development of the Canadian Water Quality Guidelines for the Protection of Aquatic Life. Uranium. ISBN 978-1-896997- 97-1.

82

Tabell B18: Uranium long-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Studies highlighted in red are those that meet the quality criteria listed in the TGD and that are included in the calculation of PNEC. Organism Duration

(h) Effect Conc (µg/l) Physico-chemical conditions Reference

ALGAE

Chlorella sp. 72 EC 10 0,7 EC10≈BEC10. H 40; pH 7; OC<0,2 mg/l; Alk 8 Charles et al. 2002**

Chlorella sp. 72 EC 10 21 EC10≈BEC10. pH 5,7; H 2-4 Franklin et al. 2000*

Chlorella sp. 72 EC 10 11 EC10≈BEC10. pH 6,5; H 2-4 Franklin et al. 2000* Pseudokirchneriella subcapitata 72 NOEC 570 pH 7.8-9.7; H 70(mg CaCO3/l); Alk. 64(mg CaCO3/l);

T 22oC Liber et al. 2007*

COELENTERATA

Hydra viridissima 4d EC 10 89 pH 6,1 - 6,7. Hyne et al. 1992a*

Hydra viridissima 4d EC 10 56 EC10≈BEC10. pH 6: H 4 Markich & Camilleri 1997*

CRUSTACEANS

Moinodaphnia macleayi 5d NOEC 25 Median af tre værdier. pH 6,9 Semann et al. 2001*

Moinodaphnia macleayi 5d NOEC 27 Median af to værdier. pH 6,5 Semann et al. 2001*

Moinodaphnia macleayi 5d NOEC 26,5 Median af to værdier. pH 7,7 Semann et al. 2001*

Daphnia magna 21d EC10 200 pH 7,6-8,1. H 66-73. Alk 54-60. DOC 1,15 mg/l Poston et al. 1984*



Ceriodaphnia dubia 7d EC10 1,2 pH 5,6; H 3,8; Alk 1,2. Pickett et al. 1993**

Ceriodaphnia dubia 7d MATC 2 pH 5,6; H 3,8; Alk 1,2. Pickett et al. 1993*

Hyalella azteca 7d LC50 10500 pH 8.2; H 157mg/l (CaCO3); alkalinity 137mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 5.1 mg/l

Kuhne et al. 2002*

Hyalella azteca 7d EC50 21 H 18; Alk 14; DOC 0,28 mg/l; pH 7,4-8,3 Borgmann et al. 2005*

Hyalella azteca 7d EC50 1651 H 124; Alk. 84; DOC 1,1 mg/l; pH 8,2-8,5 Borgmann et al. 2005*

Hyalella azteca 28d EC10 12 pH 8.2; H 73mg/l (CaCO3); alkalinity 80mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 7,5 mg/l

Liber et al. 2007*

Simocephalus serrulatus 21d NOEC 460 pH 8 - 8.4; H 78mg/l (CaCO3); alkalinity 70mg/l (CaCO3), T 17.2 oC; DOC 8,5 mg/l

Liber et al. 2007*

83

INSECTS

Chironomus tentans 28d LOEC 9560 pH 8; H 80mg/l (CaCO3); alkalinity 76mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 7,6 mg/l

Liber et al. 2007*

Chironomus tentans 28d NOEC 2240 pH 8; H 80mg/l (CaCO3); alkalinity 76mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 7,6 mg/l

Liber et al. 2007*

Chironomus tentans 10d NOEC 39 pH 7.8; H 134mg/l (CaCO3); alkalinity 66mg/l (CaCO3), T 23oC; DOC 7,2 mg/l

Muscatell o et al., 2009*

FISH

Salvelinus namaycush 141d NOEC 6050 pH 7.9-8.1; H 74-80mg/l (CaCO3); alkalinity 69-77mg/l (CaCO3), T 7.6-8.6oC; DOC 10.1-11 mg/l

Liber et al., 2004*

Salvelinus fontinalis 77 d NOEC >9080 H 201; Alk 189; pH 8,0 Parkhurst et al. 1984*

*CCME, 2011. Scientific Criteria Document for the Development of the Canadian Water Quality Guidelines for the Protection of Aquatic Life. Uranium. ISBN 978-1-896997- 97-1.

** Danska Miljöministeriet, 2011. Fastsættelse af kvalitetskriterier for vandmiljøet, uran

84

Tabell B19: Reliable bentazon long-, and shot-term aquatic toxicity data for freshwater organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration

(h) Endpoint Effect Conc

(mg/l) Reference

ALGAE

Ankistrodesmus bibraianus 72 EC50 62 1

NOEC 5



NOEC 4.7

Ankistrodesmus bibraianus 72 growth EC50 47.3 3

Pseudokirshneriella subcapitata 72 growth EC50 4.5 3

Aphanizomenon flos-aque 120 EC50 10.1 KemI*

HIGHER PLANTS

Lemna giba 14d EC50 3.6 1,2

NOEC 2.7

14d EC50 5.4 KemI*

CRUSTACEANS EC50

Daphnia magna 96 immobility EC50 64 2


85


FISH

Onchorhynchus mykiss 96 mortality LC50 >100 1,2

Onchorhynchus mykiss 28d NOEC >48

Lepomis macrochirus 96 mortality LC50 >100 1

Cyprinus carpio 96 mortality LC50 >910 1

*This data is from a non-published report from the Swedish Chemicals Agency (KemI)

References

1) European Commission Peer Review Programme. Bentazone Monograph, 1996. Rapporteur Member State: Germany. 2) European Commission Peer Review Programme. Bentazone Review report. Appendix II -Endpoints and related information, 2000. Rapporteur Member

State: Germany. 3) Macedo R.S; Lombardi A.T.; Omachi, C. Y. & Rörig L. R., 2008. Effects of the herbicide bentazon on growth and photosystem II maximum quantum

yield of the marine diatom Skeletonema costatum. Toxicology in Vitro 22, 716–722

86

Tabell B20: Reliable bisphenol A short-term toxicity data for freshwater and marine organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration (hours) Endpoint Conc. (mg/l) Reference

ALGAE Freshwater Pseudokirchneriella subcapitata 96 EC50 2.73 Alexander et al., 1998*

Marine Skeletonema costatum 96 EC50 1.1 Alexander et al., 1998*

CRUSTACEANS Freshwater Daphnia magna 48 EC50 10.2 Alexander et al., 1998*

Marine Americanmysis bahia 96 LC50 1.1 Alexander et al., 1998*

FISH Freshwater Pimephales promelas 96 LC50 4.6 Alexander et al., 1998*

Marine Cyprinodon variegatus 96 LC50 11 Sayers, 2009*

* ECB 2009. Updated European Risk Assessment Report on Bisphenol A. FINAL APPROVED VERSION AWAITING PUBLICATION.

87

Tabell B21: Reliable bisphenol A long-term toxicity data for freshwater organisms. Note; all the studies listed in this table were used for calculation of the PNEC. Organism Duration Effect Endpoint Conc (ug/l) Reference

ALGAE

Selenastrium capricornutum 96 h cell count, growth NOEC 1360 Alexander et al.1998*

CRUSTACEANS

Daphnia magna 48 h 48h-immobilization NOEC 4100 Alexander et al 1998*

Daphnia magna 21 d survival: 21-d, molting success, growth NOEC 3160 Caspers, 1998*

Daphnia magna 21 d reproduction NOEC 314 Caspers, 1998

Ceriodaphnia dubia 6-7 d reproduction NOEC 940 Tatarazako et al., 2002

Daphnia magna 21d Reproductiion NOEC 3140 Mihaich et al., 2009

Hyalella azteca 42 d reproduction NOEC 490 Springborn Smithers, 2006b*

Tigriopus japonicus 96h Mortality NOEC 3500 Mihaich et al., 2009

MOLLUSCS

Marisa cornuarietis 5mths Egg production, reproduction NOEC 2.1 Oehlmann et al., 2006*

Marisa cornuarietis 100d female growth reduction NOEC 25 Forbes et al 2008*

AMPHIBIANS

Xenopus laevis 120 h sex reversal, reproduction: NOEC 7.3 Levy et al 2004

Xenopus laevis 90 d mortality NOEC 500 Pickford et al 2000*

INSECTS

Chironomus riparius life-cycle Time to moult&growth NOEC 100 Watts et al 2003*

Chironomus tentans 96h Mortality NOEC 1400 Mihaich et al., 2009

ROTIFERS

Brachionus calyciorus 48 h reproduction NOEC 1800* Springborn Smithers, 2006a

Brachionus calyciorus 48 h Intrinsic rate of increase in offspring NOEC 1800 Mihaich et al., 2009

CNIDARIANS

Hydra olgactis 35 d Growth- Testes- male-35 days, NOEC 170 Fukuhori et all 2005

Hydra vulgaris 6 wk growth NOEC 42 Pascoe et al., 2002*

POLIFERANS

Heteromyemia riparius 9d Abnormal growth NOEC 1600 Hill et al 2002*

MACROPHYTES

Lemna gibba 7 d growth NOEC 7800 Mihaich et al., 2009

88

Lemna gibba 7 d growth NOEC 7800 Putt, 2003*

FISH

Branchydanio retio 14 d survival NOEC 3200 Bayer AG 1999a

Cyrpinus carpio 49 d growth NOEC 100 Bowmer and Gimeno, 2001*

Danio rerio Full lifecycle Multiple end point NOEC 750 Segner et al 2003*

Danio rerio Fertilization to adult-survival NOEC 1500 Segner et al 2003*

Danio rerio Fertilization success growth NOEC 1500 Segner et al 2003*

Pimephales promelas 32 d post hatch survival NOEC 640 Caunter 1999

Pimephales promelas 32 d growth NOEC 640 Caunter 1999

Pimephales promelas 29 -30 d development (abnormal) NOEC 100 Warner and Jenkins 2007

Pimephales promelas 29 -30 d growth NOEC 1000 Warner and Jenkins 2007

Pimephales promelas 29 -30 d survival (mortality) NOEC 1000 Warner and Jenkins 2007

Pimephales promelas lifecycle egg hatchibility (reproduction) NOEC 16 Sumpter et al 2001*

Pimephales promelas lifecycle mortality NOEC 640 Sumpter et al 2001*

Pimephales promelas lifecycle growth NOEC 160 Sumpter et al 2001*

Oncorhynchus mykiss 28 d growth NOEC 3640 Bayer 1999*

Oryzias latipes 3 wk fecudity, reproduction NOEC 837 Yokota et al. 2002

Oryzias latipes 4 wk fecudity, reproduction NOEC 1720 Yokota et al. 2002

Oryzias latipes 3 wk fertility, reproduction,survival growth NOEC 3120 Yokota et al. 2002

Oryzias latipes 60 d survival NOEC 1820 Yokota et al 2000

Oryzias latipes 60 d Growth NOEC 355 Yokota et al 2000

Oryzias latipes NOEC 247 Japanese Ministry of the Environment, 2006*

Oryzias latipes 100 d growth NOEC 120 Metcalfe et al 2001

Oryzias latipes 14 d no. of eggs, no of hatched eggs NOEC 684 Shioda and Wakabayashi 2000

Poecillia reticulata 30-d Survival NOEC 500 Kinnberg and Toft 2003*

Salmo trutto fario 4 mths growth NOEC 2400 Lahnsteiner et al 2005

Salmo trutto fario 4 mths reproduction NOEC 2400 Lahnsteiner et al., 2005

* ECB 2009. Updated European Risk Assessment Report on Bisphenol A. FINAL APPROVED VERSION AWAITING PUBLICATION.

89

References

1) Tatarazako N, Takao Y, Kishi K, Onikura N, Arizono K, Iguchi T. 2002 Styrene dimers and trimers affect reproduction of daphnid (Ceriodaphnia dubia). Chemosphere 5:597–601.

2) Levy G, Lutz I, Krüger A, Kloas W. 2004 Bisphenol A induces feminization in Xenopus laevis tadpoles. Environ Res. 94:102–111. 3) Fukuhori N, Kitano M, Kimura H. 2005 Toxic effects of Bisphenol A on sexual and asexual reproduction in Hydra oligactis. Arch Environ Contam

Toxicol. 48:495–500. 4) Bayer A. 1999a Fish prolonged toxicity test (Brachydanio rerio) 14 day study of Bisphenol-A.Study Number 707 A/98 Fl, Leverkusen, Germany 5) Caunter J. 1999 Bisphenol A: Effect on the Embryo-Larval Developmental Stage of the Fathead Minnow (Pimephales promelas). Report No.

BL6421/B Brixham, Devon, UK. Brixham Environmental Laboratory, Zeneca, Ltd. 6) Warner K. E and Jenkins J. J. 2007 Effects of 17alpha-ethinylestradiol and bisphenol A on vertebral development in the fathead minnow (Pimephales

promelas). Environ Toxicol Chem 26:732–737. 7) Yokota H, Tsuruda Y and Maeda M. 2000 Effect of bisphenol A on the early life stage in Japanese medaka (Oryzias latipes). Environ Toxicol Chem

9:1925–1930. 8) Shioda T and Wakabayashi M. 2000 Effect of certain chemicals on the reproduction of medaka (Oryzias latipes). Chemosphere 40:239–43. 9) Metcalfe C, Metcalfe TL, Kiparissis Y, Koenig BG, Khan C, Hughes RJ, Croley T.R., March R.E and Potter T. 2001 Estrogenic potency of chemicals

detected in sewage treatment plant effluents as determined by in vivo assays with Japanese medaka (Oryzias latipes). Environ Toxicol Chem 20:297–308.

10) Lahnsteiner F, Berger B, Kletzl M,and Weismann T. 2005 Effect of bisphenol A on maturation and quality of semen and eggs in the brown trout, Salmo trutta f. fario. Aquat Toxicol 213–24.

11) Mihaich E. M, Friederich U, Caspers N, Hall A. T, Klecka G. M, Dimond S.S, Staples C. A, Ortego L.S and Hentges S. G. 2009 Acute and chronic toxicity testing of bisphenol A with aquatic invertebrates and plants. Ecotoxicol Environ Saf. 72(5):1392-1399

särskilt förorenande ämnen i ytvatten: förslag till …„...8 1 inledning denna rapport har på...

Documents