metody spektroskopii molekularnej -...
TRANSCRIPT
Krzysztof Gibasiewicz
Zakład Biofizyki Molekularnej
tel. 61 829 6370
e-mail: [email protected]
Metody spektroskopii molekularnej- III rok biofizyki molekularnej
Metody eksperymentalne biofizyki- I rok II stopnia fizyki medycznej i optometrii
http://bio4.fizyka.amu.edu.pl/MSM/MSM.htm
Biofizyka molekularna
Ćwiczenia – demonstracje: czwartki 9.00-10.30 lub inny termin po uzgodnieniu z
osobami prowadzącymi; pierwsze zajęcia – dr A. Wilk 23 luty 2012 ([email protected])
Literatura
Wiliam W. Parson, Modern Optical Spectroscopy, Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2007
Zbigniew Kęcki, Podstawy spektroskopii molekularnej, PWN W-wa 1992 lub nowsze wydanie
Metody spektroskopii molekularnej – plan
wykładów
1) Spektroskopia optyczna (12 wykładów)- wprowadzenie do zjawisk optycznych (absorpcja, fluorescencja, rozpraszanie światła) i technik z nimi związanych (3 wykłady),- wprowadzenie do mechaniki kwantowej jako podstawy rozumienia zjawisk optycznych (3 wykłady),- światło - klasyczny i kwantowo-mechaniczny opis promieniowania elektromagnetycznego (2 wykłady),- zjawiska absorpcji i fluorescencji w ujęciu kwantowo-mechanicznym (4 wykłady).
2) Spektroskopia magnetyczna (3 wykłady)- jądrowy rezonans magnetyczny (NMR, nuclear magnetic resonance),- elektronowy rezonans paramagnetyczny (EPR, electron paramegnetic resonance).
Plan wykładu wprowadzającego
1) Zagadnienia do przypomnienia
2) Definicje i podział spektroskopii
3) Informacje wstępne nt. spektroskopii optycznej
4) Wprowadzenie do zjawisk absorpcji i fluorescencji
5) Metody pomiaru absorbancji
6) Wprowadzenie do zjawisk dichroizmu liniowego i kołowego
7) Podstawowe pojęcia i techniki pomiaru fluorescencji
8) Wprowadzenie do spektroskopii podczerwieni i rozpraszania ramanowskiego
Zagadnienia do przypomnienia
1) Światło jako fala (elektrodynamika)
2) Kwantowa natura poziomów energetycznych atomów i
cząsteczek (fizyka atomu i cząsteczki).
3) Orbitale atomowe i molekularne (chemia organiczna).
4) Formy energii cząsteczek – rotacyjna, oscylacyjna i elektronowa (podstawy biofizyki II).
Spektroskopia – nauka o badaniu materii za pomocą promieniowania (elektromagnetycznego, neutronowego,...).
Spektroskopia molekularna – materię stanowią cząsteczki.
Skupimy się na cząsteczkach:
a) biologicznych,
b) w roztworach wodnych lub organicznych.
Definicje
Spektroskopia optyczna
EPR
~1 cm
NMR~10 m
spektroskopia
optyczna
~1 µm
Spektroskopia optyczna –badanie materii za
pomocą światła
(włączając bliski nadfiolet i podczerwień)
Zalety technik spektroskopii
optycznej
1) Czułość
- fotopowielacze, fotodiody rejestrują pojedyncze
fotony emitowane przez wzbudzone cząsteczki,
2) Szybkość
- impulsy światła <10-14 s – zachowanie cząsteczek w skali czasu ruchu jąder atomowych.
milisekundy, ms – 10-3 s
mikrosekundy, µs – 10-6 s
nanosekundy, ns – 10-9 s
pikosekundy, ps – 10-12 s
femtosekundy, fs – 10-15 s
Informacje uzyskiwane za pomocą
technik spektroskopii optycznej
Absorpcja, fluorescencja, liniowy i kołowy dichroizm:
� identyfikacja cząsteczek,
� stęŜenie,
� energie,
� konformacja,
� dynamika,
� wpływ otoczenia na ww.,
� wyznaczanie odległości między cząsteczkami,
� umiejscowienie i dynamika cząsteczek w Ŝywych komórkach (w powiązaniu z inŜynierią genetyczną i mikroskopią).
Jak cząsteczki reagują na światło?
Cząsteczki istnieją w dobrze określonych stanach i przechodzą z jednych stanów do innych.
Opisu tych stanów i przejść dostarcza mechanika kwantowa.
Ale!
Cząsteczki biologiczne są zbyt duŜe, Ŝeby mogły być opisane ściśle metodami kwantowo-mechanicznymi.
Jednak!
Kwantowo-mechaniczne zasady sformułowane na podstawie prostszych układów pomagają zrozumieć duŜe cząsteczki.
Stan podstawowy
RóŜne stany cząsteczek wynikają z róŜnego obsadzenia orbitali molekularnych przez elektrony.
KaŜdy orbital ma ściśle określoną energię.
Stan podstawowy 2n-elektronowej cząsteczki:
- kaŜdy z n orbitali o najniŜszej energii jest obsadzony przez 2 elektrony o przeciwnych spinach,
- orbitale o wyŜszych energiach są puste.
W nieobecności zaburzeń zewnętrznych cząsteczka pozostaje w stanie podstawowym nieskończenie długo.
Światło (klasycznie) = oscylujące pole elektromagnetyczne
Oscylacja elektronów w cząsteczce
Przemieszczenie elektronu z jednego z zajętych orbitali na
wolny orbital o wyŜszej energii
Ekspozycja cząsteczki na światło
Dwa warunki przejścia elektronu na
wyŜszy orbital
1) Pole elektromagnetyczne musi drgać z odpowiednią częstotliwością:
- ∆E róŜnica energii pomiędzy stanami podstawowym i wzbudzonym
- h – stała Plancka.
Kolory cząsteczek!
(Nie ma konieczności odwoływania się tutaj do kwantowej natury światła! Wystarczy kwantowa natura stanów energetycznych cząsteczki!)
ν = ∆E/h
Kolory cząsteczek!
Pasmo Qy – w czerwieni
(Chl)
Pasmo Soreta – w obszarze
niebieskim lub uv
Zielony kolor chlorofili
Dwa warunki przejścia elektronu na
wyŜszy orbital – c.d.
2) Orbitale, pomiędzy którymi przechodzi elektron muszą mieć róŜną symetrię
geometryczną i muszą być odpowiednio zorientowane względem kierunku
oscylacji pola EM
� pasma absorpcji róŜnych cząsteczek róŜnią się,
� absorpcja światła przez próbki anizotropowe zaleŜy od kierunku polaryzacji
światła względem próbek.
Moment przejścia
Moment przejścia (transition dipole)
– wektor określający siłę pasma absorpcji i optymalny kierunek polaryzacji światła dla danej cząsteczki,
– moŜe być obliczony ze znajomości orbitali molekularnych w stanie
podstawowym i wzbudzonym,
– podniesiony do kwadratu – siła dipola (dipole strength) – proporcjonalna
do siły absorpcji (pole powierzchni pod pasmem absorpcji).
Fluorescencja
Emisja światła przez wzbudzoną cząsteczkę podczas jej powrotu do stanu podstawowego
Podobnie jak przy absorpcji:
Ale zazwyczaj
1) v’ ≠ v i ∆E’ ≠ ∆E
2) kierunki polaryzacji światła zaabsorbowanego i wyemitowanego są róŜne
ν’ = ∆E’/h
Prawo Lamberta-Beera
dIIdx = −ε’ I C
dI – zmiana natęŜenia światła przy przechodzeniu przez cienką warstwę
próbki o grubości dx
dx – grubość warstwy próbki
I – natęŜenie światła
C – stęŜenie cząsteczek aborbujących
ε’ – stała proporcjonalności zaleŜna od:
- długości fali światła,
- struktury i orientacji cząsteczek,
- środowiska.
Prawo Lamberta-Beera – c.d.
0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.00.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
Tra
nsm
isja
, I/I 0
Grubosc warstwy absorbujacej [j.u.]
T = I/I0 = 10
-εCl
dIII = −ε’ C dx
I = I0 exp(−ε’Cl) = I0 10−ε C l ≡ I0 10-A
I0 I
l
A – absorbancja, gęstość optyczna (A=εCl),
(bezwymiarowa)
ε – molowy współczynnik ekstynkcji
(absorpcji), ε = ε’/ln 10 = ε’/2.303, (M-1 cm-1)
C – stęŜenie cząsteczek aborbujących (1 M
= 1 mol/litr)
l – grubość absorbujacej próbki, (cm)
I0, I – natęŜenie światła padającego i
przechodzącego, (J s-1 cm-2, W cm-2)
Metody spektroskopii molekularnej
Spektroskopia optyczna Spektroskopia magnetyczna
podstawowe
zjawiska optyczne(absorpcja,
fluorescencja,
rozpraszanie światła)
i techniki eksp. z nimi
związanych
światło– opis
klasyczny
i kwantowo-
mechaniczny
mechanika
kwantowa- podstawa
rozumienia
zjawisk
optycznych
absorpcja i
fluorescencjaw ujęciu
kwantowo-
mechanicznym
NMRjądrowy
rezonans
magnetyczny
EPRelektronowy
rezonans
para-
magnetyczny
Przypomnienie
Światło monochromatyczne
- światło o jednej długości fali lub (w rzeczywistości) – o wąskim przedziale długości fali
ν = c/nλ
v – częstotliwość fali EM
c – prędkość światła w próŜni
n – współczynnik załamania światła w danym ośrodku
λ – długość fali
Widmo absorpcji- zaleŜność absorbancji (A=εcl=log(I0/I)) lub molowego
współczynnika ekstynkcji (ε) od częstotliwości światła
(v), długości fali światła (λ) lub liczby falowej (v = 1/λ =
v/c; cm-1)
ν = c/nλ ν = ∆E/h
400 500 600 700 800
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
A
λ [nm]
12000 14000 16000 18000 20000 22000 24000 26000
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
A
liczba falowa [cm-1]
Fotosystem I(Chlamydomonas reinhardtii)
Widma absorpcji - rotacyjne, oscylacyjne i elektronowe cząsteczek biologicznych
1) Widma elektronowe – 300 do 800 nm
2) Widma oscylacyjne –podczerwień
3) Widma rotacyjne – daleka podczerwień
A
λzakres
widzialny
(uv-vis)
pod-
czerwień
(IR)
daleka
pod-
czerwień
(far IR)
260-280 nm – aminokwasy aromatyczne
(elektrony na orbitalach π w łańcuchu
bocznym odpowiadają za aborpcję)
(mostki dwusiarczkowe –S –S– pomiędzy
dwoma cysteinami)
Elektronowe widma absorpcji
aminokwasów i białek
Przejście z orbitalu π (wiąŜącego) na
π* (niewiąŜący)
W – tryptofan Y – tyrozyna F – fenyloalanina
190-215 nm – wiązania peptydowe, –
C(O) –N(H) –
ε190nm = 7000 M-1 cm-1
Elektronowe widma absorpcji zasad
azotowych i kwasów nukleinowych
~260 nm – nukleozydy DNA
(znów elektrony na orbitalach
π odpowiadają za aborpcję)
dA – deoksyadenozyna
dG – deoksyguanozyna (rys.)
dU – deoksyurydyna
dC – deoksytymidyna
Widma zasad azotowych, nukleozydów
(zasada + cukier) i nukleotydów
(nukleozyd + gr fosforan.) są podobne!
deoksyguanozynaguaninaadenina
Widmo DNA
Podwójna nić 25 st. C
Efekt hipochromowy – 30-40%
spadek absorbancji po utworzeniu
podwójnej nici DNA przez nukleotydy
- oddziaływanie elektronów
naleŜących do róŜnych nukleotydów
Poj. nić, 82 st. C
Trawienie enzymatyczne
Maksima absorpcji i współczynniki
ekstynkcji aminokwasów i zasad
azotowych w wodzie
aminokwasy
zasady
azotowe
„silne”
barwniki
(np. chlorofil)
> 100,000 M-1 cm-1
Widma absorpcji mieszanin
Absorbancja mieszaniny nieoddziałujących ze sobą cząstek jest sumą absorbancji poszczególnych składników k
Prawo Lamberta Beera dla mieszaniny kilku typów cząsteczek o stęŜeniach Ci:
Z ww. układu równań moŜna wyliczyć stęŜenia Ci (liczba róŜnych długości
fal ≥ liczba składników).
Punkt izozbestyczny
- długość fali, λi, przy której dwie róŜne cząsteczki mają jednakowe
współczynniki ekstynkcji
- zmiana proporcji stęŜeń tych dwóch typów cząsteczek – brak zmian
absorbancji w λi
- obserwacja punktu izozbestycznego sugeruje Ŝe mieszanina składa się tylko z
dwóch składników
Składniki A i BMieszanina A i B o
róŜnych proporcjach
A
B
Wyznaczanie stęŜenia białka
- z prawa Lamberta-Beera na podstawie pomiaru A przy 280 nm:
C = A280/(ε280l)
i wyliczonego współczynnika ekstynkcji dla białka przy 280 nm:
ε280 = (5500 x W + 1490 x Y + 125 x CC) M-1 cm-1
W, Y, CC – ilość tryptofanów, tyrozyn i mostków dwusiarczkowych
w badanym białku
Metody pomiaru absorbancji
A = log(I0/I)
Pomiar absorbancji sprowadza się do pomiaru natęŜenia światła
Pomiar natęŜenia światła
1) Fotopowielacze – efekt fotoelektryczny
2) Fotodiody – zjawisko fotoelektryczne wewnętrzne
Efekt fotoelektryczny (Einstein, 1905)- podstawa działania fotopowielacza
- wybicie elektronu przez światło padające
na stałą powierzchnię
1) Światło musi mieć częstotliwość większą
od progowej, v > v0
2) Energia kinetyczna wybitego elektronu
jest proporcjonalna do (v-v0)
3) Wybicie następuje natychmiast nawet
przy bardzo słabym natęŜeniu światła
=> światło ma naturę korposkularną
=> kaŜda cząstka światła (nazwana
fotonem w 1926 r.) ma określoną ilość energii proporcjonalną do v
=> natęŜenie światła jest miarą ilości
fotonów przechodzących przez 1 cm2 w
czasie 1 s (a nie miarą energii fotonów)
1, 2 – dwa róŜne materiały
Fotopowielacz
- 6 do 14 elektrod przyspieszających elektrony
- fotokatoda, dynody, anoda, napięcie przyłoŜone między tymi elektrodami
- wzmocnienie prądu 106 – 108
- za anodą sygnał wzmacniany na wzmacniaczu i rejestrowany jako ciągły sygnał
lub pojedynczy impuls rejestrowany cyfrowo (praca w trybie zliczania
pojedynczych fotonów)
- wysoka czułość – wydajność kwantowa 25%
- rozdzielczość czasowa 10-9 – 10-8 s <= rozrzut czasów przelotu elektronów
Fotopowielacz mikrokanalikowy (MCP)- zasada działania jw.
- mniejsze rozmiary – kapilary, na ściankach których następuje wzmacnianie prądu
=> impuls na anodzie (rozdzielczość czasowa) ~2 x 10-11 s (20 ps)
Fotodiody- światło generuje pary elektron-dziura w półprzewodnikach =>
powstaje impuls prądu
- wydajność kwantowa do 80%
- typowa rozdzielczość czasowa – 10-9 – 10-8 s
- fotodiody o małych powierzchniach czynnych - rozdzielczość czasowa 10-11 s
rozmiary < 1 mm
Spektrofotometr absorpcyjny
- lampa – światło białe, ciągłe
- monochromator – zamiana światła białego na monochromatyczne
- rozszczepienie światła białego (na siatce dyfrakcyjnej)
- selekcja wąskiego pasma długości fali (przez obrót siatki dyfrakcyjnej)
- dobieranie rozdzielczości spektralnej (przez regulację szerokości szczelin)
- wirujące lustro – obszary odbijające i przepuszczające światło – dwie wiązki
- fotodetektor (PD) – fotopowielacz lub fotodioda
wirujące
lustro
Ir
Is
I0
I0
A = log (I0/ Is) − log(I0/ Ir) = log(Ir/ Is)
Spektrofotometr absorpcyjny - ograniczenia
wirujące
lustro
Ir
Is
I0
I0
- długi czas pomiaru – skanowanie długości fali przez obrót siatki dyfrakcyjnej
(rozwiązanie – linijka diodowa w niektórych instrumentach)
- zwiększanie rozdzielczości spektralnej (zmniejszanie szczeliny) => zwiększenie
szumu (mniej światła)
Spektrofotometr FTIR
FTIR = Fourier Transform Infra Red – do pomiarów w podczerwieni
- dwie wiązki monochromatycznego spójnego światła interferują za
półprzepuszcalnym lustrem pozytywnie lub negatywnie zaleŜnie od połoŜenia
ruchomego lustra => powstaje interferogram (wykres zaleŜności rejestrowanego
natęŜenia światła od połoŜenia L ruchomego lustra) w postaci sinusoidy (okres =
długość fali), jej transformata – delta Diraca
półprzepuszczalne
lustro
v
transformacja
FourieraL, t
interferogram
II
I – natęŜenie światła na detektorze L – połoŜenie ruchomego lustra t – czas
Spektrofotometr FTIR
FTIR = Fourier Transform Infra Red
- dwie wiązki monochromatycznego spójnego światła interferują za
półprzepuszcalnym lustrem pozytywnie lub negatywnie zaleŜnie od połoŜenia
ruchomego lustra => powstaje interferogram (wykres zaleŜności rejestrowanego
natęŜenia światła od połoŜenia L ruchomego lustra) w postaci sinusoidy (okres =
długość fali), jej transformata – delta Diraca
półprzepuszczalne
lustro
v
transformacja
Fouriera
interferogram
Spektrofotometr FTIR
FTIR = Fourier Transform Infra Red
- dwie wiązki monochromatycznego spójnego światła interferują za
półprzepuszcalnym lustrem pozytywnie lub negatywnie zaleŜnie od połoŜenia
ruchomego lustra => powstaje interferogram (wykres zaleŜności rejestrowanego
natęŜenia światła od połoŜenia L ruchomego lustra) w postaci sinusoidy (okres =
długość fali), jej transformata – delta Diraca
- wiązki niemonochromatyczne => interferogram - złoŜeniem oscylacji o wielu
okresach; jego transformata – „widmo” promieniawania ze źródła IR
półprzepuszczalne
lustro
v
transformacja
FourieraL
interferogram
Spektrofotometr FTIR
FTIR = Fourier Transform Infra Red
- dwie wiązki monochromatycznego spójnego światła interferują za
półprzepuszcalnym lustrem pozytywnie lub negatywnie zaleŜnie od połoŜenia
ruchomego lustra => powstaje interferogram (wykres zaleŜności rejestrowanego
natęŜenia światła od połoŜenia L ruchomego lustra) w postaci sinusoidy (okres =
długość fali), jej transformata – delta Diraca
- wiązki niemonochromatyczne => interferogram - złoŜeniem oscylacji o wielu
okresach; jego transformata – „widmo” promieniawania ze źródła IR
półprzepuszczalne
lustro
v
transformacja
FourieraL
interferogram
Spektrofotometr FTIR
FTIR = Fourier Transform Infra Red
- dwie wiązki monochromatycznego spójnego światła interferują za
półprzepuszcalnym lustrem pozytywnie lub negatywnie zaleŜnie od połoŜenia
ruchomego lustra => powstaje interferogram (wykres zaleŜności rejestrowanego
natęŜenia światła od połoŜenia L ruchomego lustra) w postaci sinusoidy (okres =
długość fali), jej transformata – delta Diraca
- wiązki niemonochromatyczne => interferogram - złoŜeniem oscylacji o wielu
okresach; jego transformata – „widmo” promieniawania ze źródła IR
- po włoŜeniu próbki - interferogram zawiera obniŜony udział absorbowanych
oscylacji
półprzepuszczalne
lustro
v
transformacja
FourieraL
interferogram
po włoŜeniu próbki
Spektrofotometr FTIR – widmo absorpcji
A(ν) = log [Sr(ν)/Ss(ν)]
Sr(v), Ss(v) – transformaty Fouriera interferogramów otrzymanych bez próbki i z próbką
Spektrofotometr FTIR – zalety
1) Lepszy, w stosunku do klasycznych spektrofotometrów, stosunek sygnału do szumu
(mniejszy szum)
2) Szybszy pomiar
3) Precyzyjna kalibracja długości fali
4) Wysoka czułość (światło zewnętrzne, które nie
przechodzi przez interferometr nie wprowadza błędu,
bo nie jest skorelowane z L)
Czasowo-rozdzielcze pomiary
zmian absorpcji
Układ typu pompa-sonda (demonstracja) – wzbudzenie przez krótki impuls
pompujący inicjuje zmiany absorpcji próbki, które ewoluują w czasie, aŜ do
zaniku stanu wzudzonego i powrotu cząsteczek do stanu podstawowego.
Chwilowe róŜnicowe widma absorpcji – pomiar impulsami sondującymi dla
róŜnych chwil czasu (linia opóźniająca).
∆A = Aexc – A = log(I0/Iexc) – log(I0/I) = log (I/Iexc)
I0
I, Iexc
„pompa” (światło wzbudzające;
monochromatyczne)
„sonda” (światło
próbkujące; białe lub
monochromatyczne)
ruchoma linia opóźniająca – pomiary
zmian absorpcji w funkcji czasu
Czasowo-rozdzielcze pomiary (zmian) absorpcji
Wybielanie –
spadek A
Stan podst.
A
λ
A
λ
λ
∆A
0
1
E
∆A
λ λ
∆A
A
λ
Stopniowa
odbudowa
pasma absorpcji
w czasie
Stan wzbudz.
0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.00.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
Abso
rban
cja
Czas [j.u.]
0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0
-1.0
-0.8
-0.6
-0.4
-0.2
0.0
Zm
ian
a a
bsorb
an
cji
Czas [j.u.]
Czasowo-rozdzielcze pomiary
zmian absorpcji c.d.
Układ pompa-sonda
- rozdzielczość czasowa do 10-14 s (10 fs)
- c = s/t, c = 3 x 108 m/s, s = 1 cm => t = 0,33 x 10-10 s (3,3 ps)
- okno czasowe do t = 5 x 10-9 s (5 ns) => l = 1,5 m
- detektor – linijka diodowa lub kamera CCD – całe widmo róŜnicowe
jednocześnie
- konieczność wielokrotnego uśredniania
Pomiary zmian absorpcji w wolniejszej skali czasu – w czasie rzeczywistym
(demonstracja).
Dichroizm liniowy
- zjawisko zaleŜności siły absorpcji wiązki światła spolaryzowanego liniowo od kierunku polaryzacji
A ~ cos2θ
- zaleŜność między kątem θ a absorbancją
θ
kierunek polaryzacji
dipolowy
moment
przejścia
Dichroizm liniowy c.d.
Próbka anizotropowa (nieuporządkowana)
– brak dichroizmu liniowego
Próbka izotropowa – uporządkowanie
cząsteczek wymuszone przez
- przepływ,
- ściskanie lub rozciąganie Ŝelu, w którym
są cząsteczki,
- pole magnetyczne (porządkuje błony)
- pomiar za pomocą klasycznego spektrometru absorpcyjnego wyposaŜonego
dodatkowo w polaryzator
Dichroizm liniowy indukowany
-dichroizm liniowy jest spowodowany uprzednim wzbudzeniem wybranych
cząsteczek światłem spolaryzowanym liniowo
liniowo
spolaryzowane
światło próbkujące
impuls światła wzbudzającego
(liniowo spolaryzowanego)
Dichroizm liniowy indukowany
- zanik indukowanego dichroizmu w czasie niesie informację o dynamice obrotu
cząsteczki, szybkości zaniku wzbudzenia lub jest efektem obu procesów
Dichrozim kołowy
- zajwisko róŜnej absorbancji światła spolaryzowanego kołowo prawo- i
lewoskrętnie
- polaryzacja kołowa – składowe x i y wektora pola elektrycznego fali EM mają
jednakowe amplitudy i są przesunięte w fazie względem siebie o 90 stopni
Polaryzacja kołowa
- częstotliwość rotacji wektora pola
elektrycznego jest taka sama
częstotliowść drgań wektora
elektrycznego fali spolaryzowanej
liniowo
Polaryzacja
lewostronna
Dichrozim kołowy (circular
dichroizm, CD) c.d.- zazwyczaj bardzo mały 10-4, ale mierzalny dzięki szybkiemu naprzemiennemu
włączaniu światła spolaryzowanego prawo- i lewostronnie => mała oscylująca składowa światła przechodzącego
- wyraŜony w róŜnicy molowych współczynników absorpcji światła spolaryzowanego prawo- i lewostronnie (∆ε = εp – εl , M
-1cm-1)
lub,
częściej (z powodów historycznych) jednostkach eliptyczności (w stopniach xM-1cm-1)
Przed próbką Za próbką
światło próbkujące spolaryzowane eliptycznieświatło próbkujące spolaryzowane liniowo
Dichrozim kołowy białek i kwasów
nukleinowych- warunek: cząsteczka musi być odróŜnialna od swojego obrazu lustrzanego, np.
prawo- i lewoskrętne helisy α;
- CD zaleŜy od oddziaływania zarówno pola magnetycznego jak i elektrycznego z
cząsteczkami i od geometrii układu molekularnego
- CD – dobra metoda do określania struktury drugorzędowej białek, kwasów
nukleinowych i wielocząsteczkowych kompleksów
- np. α-helisa: dodatnie pasmo @ 195 nm, ujemne pasma @ 210 i 220 nm,
- β-kartka: dodatnie pasmo @ <200 nm, ujemne pasmo @ 215 nm.
Zniekształcanie absorbancji przez
rozpraszanie
I0 I II0
A = log (I0 / I) A ≠ log (I0 / I)
- rozpraszanie jest tym większe im
- rozmiary cząsteczek zbliŜają się lub przekraczają długość fali światła
- im krótsza jest długość fali światła
Wpływ rozpraszania na widmo
absorpcji
Centra reakcji bakterii purpurowych A) wyizolowanych z błony, B) w
błonach lipidowych
A) B)
małe obiekty – słabo rozpraszają duŜe obiekty – silnie rozpraszają
Pomiar absorpcji w próbkach
rozpraszających
1) Fragmentacja próbek (np. ultradźwiękami)
2) Sfera całkująca – ścianki białe (lub wyłoŜone fotodiodami) –
światło rozproszone nie „ucieka”, teŜ jest mierzone
3) Spektroskopia fotoakustyczna – do próbek bardzo mętnych lub nawet
prawie nieprzepuszczalnych dla światła
- pomiar ciepła dysypowanego przez próbkę podczas jej powrotu ze stanu
wzbudzonego do podstawowego (ciepło powoduje rozszerzenie płynu lub
gazu otaczającego próbkę – to rozszerzenie jest rejestrowane przez
mikrofon) (Politechnika Poznańska)
Widma fluorescencji aminokwasów
Absorpcja Fluorescencja w r-rze wodnym (w
białkach „świeci” głównie tryptofan)
Pole pod krzywymi proporcjonalne do
wydajności kwantowej: W – 0,12; Y – 0,13;
F – 0,022
Green Fluorescent Protein (GFP)
"for the discovery and development of the green fluorescent protein, GFP"
The Nobel Prize in Chemistry 2008
Osamu Shimomura Martin Chalfie Roger Y. Tsien
- GFP silnie „świeci” w zakresie widzialnym i moŜe być genetycznie przyłączane
do innych białek
Spektrofluorymetr
2 typy widm:
- widma emisji: wzbudzenie dla jednej długości fali, pomiar fluorescencji – kolejno
dla całego zakresu fal;
przesunięte w stronę fal dłuŜszych względem widm A i (1-T)
Wybór koloru światła
wzbudzającego
Wybór koloru światła
emitowanego
Spektrofluorymetr
- widma emisji: wzbudzenie dla jednej długości fali, pomiar fluorescencji – kolejno
dla całego zakresu fal;
przesunięte w stronę fal dłuŜszych względem widm A i (1-T)
-widma wzbudzenia: pomiar dla jednej długości fali, wzbudzanie – kolejno dla całego
zakresu fal;
dla cząsteczek z jednym chromoforem widmo wzbudzenia przypomina kształtem
widmo (1-T), T = I/I0, 1-T = 1 - I/I0 = (I0 – I)/I0
Pomiar widm fluorescencji wymaga korekty ze względu na widmo lampy i zaleŜność czułości miernika od długości fali światła
Wybór koloru światła
wzbudzającego
Wybór koloru światła
emitowanego
2 typy widm:
Wydajność fluorescencji
- odsetek wzbudzonych cząsteczek powracających do stanu podstawowego na drodze emisji fluorescencji
Procesy konkurujące z emisją fluorescencji
- wygaszanie przez inne cząsteczki (podczas zderzeń)
- przejście interkombinacyjne ze stanu singletowego do tripletowego
- konwersja wewnętrzna
abs fl
Czasowo-rozdzielcze pomiary
fluorescencji
τ – czas Ŝycia fluorescencji (średni czas
jaki cząsteczka pozostaje w stanie
wzbudzonym)
k
k
k
k k
- natęŜnie fluorescencji, F(t), zanika w czasie (jedno- lub wielowykładniczo):
F(t) = F(0) exp(−t/τ)
F(t) =ΣFi(0) exp(−t/τi)
[M*(t)] – stęŜenie cząsteczek wzbudzonych
F(t) ~ [M *(t)]
dM*/dt = -kM
(dM*/M)/dt = -k
k – prawdopodobieństwo, zaniku wzbudzenia w
jednostce czasu
M*(t) = M*(0) exp(−kt/)
M*(t) = M*(0) exp(−t/τ), τ = 1/k
- wzbudzenie krótkim impulsem światła
fluore
sce
ncja
Techniki czasowo-rozdzielczych
pomiarów fluorescencji
1) Zliczanie pojedynczych fotonów (demonstracja)
2) Metoda modulacyjna
3) Up-konwersja fluorescencji
Cel: wyznaczenie czasu (czasów) Ŝycia fluorescencji
Zliczanie pojedynczych fotonów
1) wzbudzenie b. słabymi impulsami
światła – kaŜdy impuls światła
powoduje rejestrację tylko jednego
fotonu;
2) mierzone są czasy od wzbudzenia
do zarejstrowania fotonu
fluorescencji, a następnie liczone
fotony, które wpadają do
odpowiednich kanałów czasowych
3) budowany jest histogram: liczba
zliczeń w funkcji nru kanału
czasowego
4) 105 zarejestrowanych fotonów –
gładki histogram
5) Rozdzielczość czasowa ~10 ps Kanał czasowy
Lic
zba
foto
nów
F
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 .....
Metoda modulacyjna1) Wzbudzenie próbki światłem ciągłym o modulowanym sinusoidalnie natęŜeniu
światła z częstotliwością ω
2) Fluorescencja oscyluje sinusoidalnie z tą samą częstotliwością ω, ale
amplituda i faza (φ) tych oscylacji względem oscylacji światła wzbudzającego
zaleŜy od iloczynu ω i τ (czas Ŝycia fluorescencji)
3) Im dłuŜszy czas Ŝycia fluorescencji – tym większe przesunięcie fazowe,
najlepiej gdy ω = 1/τ . τ wyznacza się ze znajomości ω i φ
4) Zaniki wieloeksponencjalne – kilka częstotliwości ωi
wzbudzanie emisja fluorescencji
amplituda sygnału
fluorescencji
przesunięcie fazowe
Metoda modulacyjna1) Wzbudzenie próbki światłem ciągłym o modulowanym sinusoidalnie natęŜeniu
światła z częstotliwością ω
2) Fluorescencja oscyluje sinusoidalnie z tą samą częstotliwością ω, ale
amplituda i faza (φ) tych oscylacji względem oscylacji światła wzbudzającego
zaleŜy od iloczynu ω i τ (czas Ŝycia fluorescencji)
3) Im dłuŜszy czas Ŝycia fluorescencji – tym większe przesunięcie fazowe,
najlepiej gdy ω = 1/τ . τ wyznacza się ze znajomości ω i φ
4) Zaniki wieloeksponencjalne – kilka częstotliwości ωi
wzbudzanie emisja fluorescencji
amplituda sygnału
fluorescencji
przesunięcie fazowe5)Rozdzielczość czasowa
~100 ps
Up-konwersja fluorescencji
1) Zasada uzyskiwania rozdzielczości
czasowej (10-14 s) i układ
eksperymentalny podobne jak w
czasowo-rozdzielczych pomiarach
typu pompa-sonda.
2) Światło fluorescencji jest ogniskowane
na nieliniowym krysztale wraz krótkim
impulsem swiatła próbkujacego
3) W momencie gdy światło fluorescencji
dotrze do kryształu w tym samym
czasie co impuls światła
próbkujacego, kryształ emituje światło
o nowej częstotliwości będącej sumączęstotliwości światła fluorescencji i
światła próbkującego.
4) ZaleŜność natęŜenia fluorescencji od
czasu – zmiana opóźnienia impulsu
próbkującego względem impuslu
pompującego
Laser
femtosekundowy
próbka
kryształ
5) Rozdzielczość czasowa ~0.1 ps
impuls pompujący
impuls próbkujący
fluor.
Anizotropia fluorescencji
- jeśli fluorescencja następuje z tego samego stanu, który został wzbudzony
(momenty przejścia absorpcji i fluorescencji są wzajemnie równoległe) i cząsteczka
nie obraca się pomiędzy tymi dwoma zdarzeniami wówczas fluorescencja
spolaryzowana równolegle do wzbudzenia jest ok. 3 razy większa niŜ fluorescencja
spolaryzowana prostopadle
- informacje o ruchach cząsteczek i przekazywaniu wzbudzenia innym cząsteczkom
P1, P2 – polaryzatory
S - próbka
Spektroskopia podczerwieni
1) Klasycznie, częstotliwość (ν) drgań dwuatomowej cząsteczki rośnie ze wzrostem stałej siłowej (k’) a maleje ze wzrostem masy zredukowanej (mr, wstęp do biofizyki II):
ν ~ (k’/mr)1/2 mr = m1m2/(m1 + m2)
2) Kwantowo-mechanicznie, dwuatomowa
cząsteczka ma serię jądrowych funkcji falowych,
których energie są skwantowane (nie maja
dowlnych wartości) oddzielone między sobą o
stałą (w przybliŜeniu) wartość.
RóŜnice te odpowiadają kwantom
promieniowania z zakresu podczerwieni.
mr = <0.5m, m)
m – masa lŜejszego składnika
E = ½ k’x2 + ½ mrv2
E ~ k’mrA2
E-energia (o dowolnych wartościach)
A-amplituda max.
x – wychylenie
v - predkość
Cząsteczki wieloatomowe
TwistingWaggingRockingScissoringAntisymmetricalstretching
Symmetricalstretching
Ale!
- drgania nie dotyczą pojedynczych wiązań, lecz angaŜują całą cząsteczkę!
Jednak!
- często specyficzne drganie moŜe być głównie związane z pewną grupą atomów.
Mają wiele modów drgań;
kaŜdy z nich ma dyskretne poziomy energetyczne związane z drganiami
=> widmo absorpcji w IR moŜe być bardzo skomplikowane!
Widma IR (infrared) białek
Widma IR białek – 3 charakterysytyczne pasma absorpcji od grupy peptydowej
1) rozciąganie wiązania N-H, (3 280 - 3 300 cm−1)
2) rozciąganie wiązania C=O (I pasmo amidowe, 1 620 –1 660 cm−1)
3 ) wahania noŜycowe kąta C-N-H (II pasmo amidowe, 1 520 – 1 550 cm−1),
Częstotliwości ww. pasm są róŜne dla α-helis i β-kartek � pomiary konformacji
białek.
Pomiary stacjonarne (FTIR) i czasowo-rozdzielcze.
Spektroskopia Ramana
- podobnie jak spektroskopia IR pozwala obserwować przejścia pomiędzy róŜnymi stanami jądrowymi (oscylacyjnymi) cząsteczki
podstawowy
stan
elektronowy!
Spektrometry Ramana
- podobne do spektrofluorymetrów
Ale!
- waŜna jest wysoka rozdzielczość spektralna
Dlatego
- wzbudzanie laserem o bardzo wąskim spektralnie pasmie wzbudzenia
- dwa monochromatory w torze detekcji
Rezonansowa spektroskopia
Ramana
- bardzo uŜyteczna w biofizyce molekularnej
- wzbudzenie światłem o długości fali pasującej do pasm absorpcji elektronowej
- korzyści:
1) zwiększenie siły rozpraszania ramanowskiego
2) duŜa selektywność: rozpraszanie tylko od chromoforów o przejściu elektronowym pasującym do długości fali światła