laporan_aspi.docx

7/22/2019 laporan_ASPI.docx

1/21

ANALISIS KUALITAS SPERMA IKAN

Oleh :

Nama : Cikha Farahdiba Iman

NIM : B1J0111157

Rombongan : IV

Kelompok : 4

Asisten : Wawat Carwati

LAPORAN PRAKTIKUM STRUKTUR DAN PERKEMBANGAN HEWAN II

KEMENTERIAN PENDIDIKAN DAN KEBUDAYAAN

UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN

FAKULTAS BIOLOGI

PURWOKERTO

2012


2/21

I. PENDAHULUAN

A.Latar Belakang

Analisis kualitas sperma pada ikan adalah pemeriksaan tentang sifat-sifat,

kualitas dan kuantitas sperma ikan. Analisa sperma biasanya dilakukan pada pria

pasangan suami istri yang telah lebih sekurang-kurangnya 3 tahun setelah menikah

belum memiliki keturunan, lebih-lebih bagi pasangan yang istrinya belum pernah

hamil sama sekali selama waktu itu. Pemeriksaan ini untuk menentukan tindakan apa

yang perlu dilakukan untuk menolong pasangan tersebut agar bisa memperoleh

keturunan.

Dalam reproduksi sering diperlukan adanya standar kualitas spermatozoa.

Salah satu pemeriksaan yang penting untuk penilaian kesuburan pria, yaitu analisis

sperma (semen). Analisis semen berguna bagi pasangan yang ingin melakukan

program Keluarga Berencana. Analisis semen penting untuk mengetahui apakah

semen mereka masih fertil atau tidak. Perbandingan dan standardisasi analisis semen

diperoleh dengan analisis semen. Standardisasi penting untuk memperoleh

penyeragaman, karena analisis semen merupakan pemeriksaan yang memerlukan

suatu ketepatan, dapat diulang kembali, relevan, dan dapat dipakai dimana pun.

Spermatozoid atau sel sperma atau spermatozoa (berasal dari Bahasa Yunani

Kuno yang berarti benih dan makhluk hidup) adalah sel dari system reproduksi laki-

laki. Sel sperma akan membentuk zigot. Zigot adalah sebuah sel dengan kromosom

lengkap yang akan berkembang menjadi embrio. Peran aktif spermatozoon sebagai

gamet jantan sehingga penting pada keberhasilan munculnya individu baru, oleh

karenanya didalam reproduksi sering diperlukan adanya standar kualitas

spermatozoa. Analisis sperma yang dimaksud meliputi pemeriksaan jumlah milt


3/21

yang dapat distripping dari seekor ikan jantan masak kelamin, kekentalan sperma,

warna, bau, jumlah spermatozoa mati, motilitas (bila mungkin kemampuan gerak per

menit), morfologi (ukuran dan bentuk kepala, ukuran ekor, berbagai penyimpangan,

ada tidaknya akrosoma).

Acara praktikum kali ini digunakan Ikan Nilem (Osteochillus hasselti).

Analisis sperma pada Ikan Nilem (Osteochillus hasselti) dapat diaplikasikan pada

spesies lain, contohnya pada mamalia, termasuk manusia. Kriteria kesuburan pria

secara umum didasarkan pada jumlah spermatozoa motil per ml ejakulat.

Spermatozoa diperoleh dari semen hasil masturbasi atau dari koilus interuptus. Pria

yang akan diperiksa biasanya dianjurkan untuk puasa tidak melakukan hubungan

intim selama 3 hari sebelumnya dan harus segera diperiksa setelah ejakulasi.

Praktikum analisis sperma ini tidak menggunakan sperma manusia karena

sampel dan bahan pewarnanya sangat mahal. Sampel sperma manusia mudah

diperoleh, namun tetap saja bahan pewarna tidak mudah didapat, oleh karena itu

digunakan spermatozoa ikan nilem, karena mudah didapat dan dicoba serta dapat

menggunakan pewarna standar seperti Larutan Giemsa. Memeriksa kualitas

spermatozoa ikan memang jarang dilakukan, namun kali ini dilakukan untuk

mempelajari bagaimana mengetahui kualitas dan kuantitas spermatozoa tersebut.

B.Tujuan

Tujuan dari praktikum kali ini adalah untuk melakukan analisis sperma dan

menentukan kualitas spermatozoa Ikan Nilem (Osteochillus hasselti).


4/21

II. TINJAUAN PUSTAKA

Ikan Nilem (Osteochillus hasselti) adalah jenis ikan yang hidup diair tawar. Ikan

Nilem hidup di tempat-tempat yang dangkal dengan arus yang tidak begitu deras seperti

danau atau sungai. Ikan ini mudah berkembang biak menurut aturan air mengalir. Ikan ini

memakan jasad yang menempel pada tanaman air (Setiadi, 2011).

Ikan jantan dan ikan betina dapat dibedakan dengan cara memijit bagian

perut ke arah anus. Ikan jantan akan mengeluarkan cairan putih susu dari lubang

genitalnya. Induk betina yang sudah matang telurnya dicirikan dengan perut yang

relatif besar dan lunak bila diraba (Sumantadinata, 1981).

Tubuh ikan dapat dibagi menjadi 3 bagian yaitu caput (kepala), truncus

(badan), dan cauda (ekor). Anatomi ikan nilem (Osteochius hasselti) dimulai kepala

yaitu mulai dari moncong sampai dengan batas tutup insang, badan ikan dimulai dari

belakang tutup insang sampai dengan anus, sedangkan ekor dimulai dari belakang

anus sampai dengan bagian ujung sirip ekor (Brotowidjoyo, 1990).

Ikan nilem memiliki organa urop cetica yang terdiri dari ren, ureter, vesica

urinaria, dan sinus urogenitalis. Ureter merupakan saluran keluar dari ren (ginjal).

Sinus urogenitalis bermuara keluar melalui porus umgenibilis yang terdapat caudal

dari anus, cranial dari pangkal pinna analis. Alat ekskresi ikan nilem berupa sepasang

ginjal yang berwarna kemerah-merahan terletak diantara gelembung udara depan dan

belakang. Ginjal ini dilengkapi dengan saluran urine yang muaranya menyatu dengan

muara kelaminnya dan disebut dengan saluran urogenitalia (Huet, 1971).

Sistem genital ikan nilem berfungsi untuk perkelaminan, organ utamanya

adalah gonad. Gonad jantan disebut dengan testis dan sepasang yang didalamnya

terbentuk spermatozoid. Tiap-tiap testis berhubungan dengan ductus diferentia yang


5/21

pendek, kemudian bagian belakangnya bersatu dan bermuara di porus urogenital

(Djuhanda, 1981).

Hewan uji yang memenuhi syarat dalam praktikum kali ini adalah Ikan Nilem

jantan masak kelamin setelah berumur 8 bulan. Berat testis lebih ringan dibanding

berat ovarium pada ikan yang sama umurnya. Sepasang testis dapat menghasilkan

sekitar 1-1,5 ml milt dalam keadaan ejakulasi alami, tetapi pada striping hanya 1 ml.

Setiap 1 ml milt mengandung 200-300 juta spermatozoa. Milt Ikan Nilem setelah

diejakulasikan dan bersentuhan dengan air lalu menggumpal. Milt harus diencerkan

dengan larutan Ringer sampai 100 kali. Pengenceran ini dapat memperpanjang daya

hidup spermatozoa Ikan Nilem (Rugh, 1962).

Praktikum analisis sperma memerlukan suatu alat yang dapat digunakan

untuk menghitung jumlah sperma normal dan abnormal. Alat yang dimaksud adalah

haemocytometer. Haemocytometer berbentuk persegi panjang dimana terdapat dua

liang sebagai tempat cairan sperma. Haemocytometer sangat diperlukan dalam

praktikum analisis sperma karena dapat digunakan dalam menghitung jumlah sperma

yang normal dan abnormal dan juga sperma yang motil dan non motil (Jamieson,

1990).

Penentuan persentase hidup sperma dilakukan dengan metode pewarnaan. Cara

ini menggunakan pengencer berupa larutan pewarna eosin negrosin. Satu tetes sperma (

0,01 ml) yang telah diencerkan, diletakkan pada obyek glasskemudian ditambah dengan

cairan pewarna eosin negrosin dan dihomogenkan. Pengamatan menggunakan

mikroskop dengan perbesaran 400x. (Herdianto et al., 2012).


6/21

III. MATERI DAN METODE

A. Materi

Alat yang digunakan pada praktikum ini adalah mikroskop cahaya, bilik

hitung (haemocytometer), spluit injeksi, gelas objek, gelas penutup, pH

indicator/kertas pH, kertas penghisap/tissue, bak preparat, dan label.

Bahan-bahan yang digunakan adalah sperma/milt segar, larutan NaCl,

larutan Ringer, larutan George, larutan Giemsa, dan ether alcohol.

B. Metode

Metode yang digunakan dalam praktikum analisis sperma adalah sebagai

berikut :

1. Cara strippinga. Ikan dipegang dengan bagian ventral ada di bawah dan bagian dorsal

menghadap ke atas.

b. Tangan kanan menutupi kepala, sedangkan tangan kiri menyangga ekor.c. Bagian lubang urogenital dilap dengan tissue. Abdomen ikan diurut dari

anterior ke arah posterior menuju lubang urogenital hingga pada lubang

tersebut keluar cairan berwarna putih susu (milt).

d. Milt yang keluar langsung disedot dengan menggunakan spluit injeksi tanpajarum.

2. Volumea. Milt Ikan Nilem yang tertampung pada spluit injeksi diukur volumenya dengan

langsung membaca skalanya.


7/21

b. Volume sperma Ikan Nilem juga dapat diukur dengan menggunakan gelas ukurvolume 5 atau 10 ml.

3. Warna

Diamati secara visual dengan latar belakang warna putih.

4. pHDerajat keasaman (pH) diukur dengan menggunakan kertas pH, dengan cara

mencelupkan kertas pH ke dalam sampel sperma, diamkan beberapa saat,

kemudian cocokkan perubahan warna yang terjadi dengan tube.

5. Cara pengenceran milta. Sampel sperma diambil 1 ml dan dimasukkan ke dalam cawan.

b. Larutan Ringer sebanyak 9 ml dicampurkan ke dalam cawan (perbandinganantara sampel dengan larutan pengencer harus selalu 1: 9).

c. Diaduk-aduk dengan menggunakan batang pengaduk sampai benar-benarhomogen.

d. Sperma yang sudah diencerkan ini merupakan sperma dengan pengenceran10x.

e. Sperma pengenceran 10x diambil dengan menggunakan spluit yang lainsebanyak 1 ml ke dalam cawan yang berbeda.

f. Larutan Ringer 9 ml dimasukkan ke dalam sperma tersebut.g. Sperma dengan pengenceran dua kali ini merupakan sperma dengan

pengenceran 100x.

h. Pengenceran dilakukan lagi untuk mendapatkan sperma dengan pengenceran1.000x dan 10.000x.


8/21

6. Motilitas spermatozoaa. Milt yang sudah diencerkan 1.000x diambil dengan menggunakan pipet

tetes.

b. Milt diteteskan di atas objek glass.c. Ditetesi dengan aquades, kemudian dihomogenkan.d. Ditutup dengan cover glass dan diamati dengan menggunakan mikroskop.e. Bergerak atau tidak bergerak, ditentukan prosentase motilitasnya.

7. Menghitung jumlah total spermatozoaa. Milt yang sudah diencerkan 10.000x diambil dengan menggunakan pipet

tetes.

b. Diteteskan di bilik hitung Haemocytometer yang sudah ditutup dengan coverglass melalui sela-sela paritnya.

c. Hitung jumlah sperma menggunakan lima kotak sedang di dalam kotak besaryang di bagian tengah.

d. Jumlah total spermatozoa dihitung dengan rumus: total Spermatozoa = (Rata-rata 5 kotak sedang x pengenceran x 2,5.105) sel/ml

8. Morfologi Spermatozoaa. Miltencer diteteskan pada salah satu ujung object glass.

b. Object milt glass yang lain diletakkan secara vertikal membentuk sudutruncing dan diteteskan pada sudut runcing tersebut.

c. Kedua object glakss didekatkan hingga menyentuh tetesan milt.d. Kedua object glass didorong ke sisi menjauhi tetesan milt sehingga tetesan

milt tersebut terulas di atas objeck glass pertama.

e. Diteteskan lauratan giemsa atau eosin di atas ulasan milt dan diratakandengan mengubah posisi pada object glass.


9/21

f. Diletakkan di atas hot plate hangat hingga bagian tepi pewarna agakmengering.

g. Dicuci kelebihan pewarna dalam air mengalir dan dikeringkan diudara.


10/21

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

A. Hasil

1. Volume : 0,94 ml

2. Viskositas : 20 menit

3. PH : 7 (netral)

Tabel 1. Akumulasi Data Pengamatan Viskositas Spermatozoa Rombongan IV

NO Kelompok Waktu menggumpal (menit)

1 1 8

2 2 8

3 3 16

4 4 20

5 5 18

4. Warna : Putih susu

5. Motilitas : a. Sperma motil = 80%

b. Sperma non motil = 20%

Tabel 2. Akumulasi Data Pengamatan Motilitas Spermatozoa Rombongan IV

Persentase sperma motil (%)

K1 K2 K3 K4 K5 Rata-rata

30 30 70 80 95 61


11/21

Persentase sperma non motil

(%)70 70 30 20 5 39

Keterangan :

K = Kelompok

6. Pengamatan Bilik Hitung:

Gambar 1. Bilik Hitung Haemocytometer


12/21

7. Jumlah Total Spermatozoa

Tabel 3. Akumulasi Data Pengamatan Total Spermatozoa Rombongan IV

K1 K2 K3 K4 K5 Rata-rata

Total

Spermatozo

a (sel/ml)

5,15x

1010

2,65x

5,65x

10103,35x 1010

1,9x

10103,734 x1010

Keterangan :

K = Kelompok

Perhitungan:

Diketahui : L1 = 13

L2 = 13

L3 = 13

L4 = 16

L5 = 12

Pengenceran = 1000x

total spermatozoa = rata-rata 5 kotak x pengenceran x 2,5 x 105sel/ml

= L1+L2+L3+L4+L5 /5 x pengenceran x 2,5 x 105sel/ml

= 13+13+13+16+12 /5 x 1000 x 2,5 x 105sel/ml

=13,4 x 1000 x 2,5 x 105sel/ml

=3,35 x 1010sel/ml


13/21

8. Morfologi Spermatozoa

Gambar 2. Mikroskopis Morfologi Sperma Ikan Nilem

Pembesaran 4x10

Keterangan:

1. Kepala

2. Ekor

3. Leher

2

3

1


14/21

B. Pembahasan

Berdasarkan hasil percobaan didapatkan bahwa warna sperma Ikan Nilem

(Osteochillus hasselti)berwarna putih susu. Hal itu sesuai dengan pernyataan Lagler

(1977) bahwa ikan nilem jantan dapat mengeluarkan cairan semen yang berwarna

putih susu. Menurut Asmawi (1989), bau sperma ikan adalah langu.

Berdasarkan pengamatan pH, didapatkan bahwa pH dari sperma ikan adalah

7 berarti bersifat netral. Hal ini tidak sesuai dengan pernyataan Sutisna dan Yatim

(1990) bahwa pH berkisar antara 7,2-7,8. Pengamatan volume sperma Ikan Nilem

(Osteochillus hasselti) sebanyak 0,94 ml. Menurut Yatim (1990), volume kurang dari

1 ml disebut hypospermia. Hypospermia dapat terjadi oleh beberapa hal yaitu sampel

tumpah pada saat ditampung, gangguan patologis dan genetis pada genitalia, vesikula

seminalis tak ada atau tak berfungsi, dan gangguan hormonal atau karena radang

kelenjar.

Pengamatan mikroskopis meliputi jumlah molilitas dan morfologi sperma.

Jumlah motilitas yang dihasilkan oleh masing-masing kelompok berbeda-beda.

Kelompok pertama sampai kelompok enam pengamatan motilitas sperma dihasilkan

30%, 30%, 70%, 80%, 95%. Faktor yang menyebabkan perbedaan tersebut adalah

pada waktu pengenceran terkena air. Air menyebabkan milt menggumpal dan sperma

cepat mati. Penurunan motilitas yang normal ada dua macam yaitu 2-3 jam sesudah

ejakulasi 50% - 60% spermatozoa motil/ml dan 7 jam sesudah ejakulasi 50%

spermatozoa motil maju/ml (Soeminto, 2002).

Setelah 3 jam, spermatozoa yang motil kurang dari 50% menandakan adanya

gangguan atau kelainan genitalia. Spermatozoa yang motilitasnya rendah disebut

asthenozoospermia. Abstinensi yang lama dapat mempercepat penurunan motilitas.

Viabilitas spermatozoa diukur dari prosentase motilitas dan progresivits motilitas


15/21

sesuai dengan Cosson (1999) dari 0-5 yaitu 0 = tidak ada pergerakan, 1 = ekor

bergetar lemah, 2 = gerakan ke depan lemah terutama dengan arah membelok

(kurva), 3 = gerakan ke depan sedang terutama dengan arah membelok (kurva), 4 =

gerakan ke depan dengan kecepatan sedang hingga cepat dengan arah lurus, 5 =

gerakan ke depan dengan sangat cepat dengan arah lurus.

Hasil morfologi sperma yaitu sperma yang telihat pada mikroskop berkepala

bulat. Menurut referensi sperma ikan yang normal berkepala bulat. Ini berarti sperma

Ikan Nilem (Oateochillus hasselti) yang diamati normal. Ciri-ciri ikan jantan masak

kelamin adalah jika dilakukan uji fertilitas dengan dilakukan stripping Ikan Nilem

jantan (Osteochillus hasselti) mengeluarkan milt, yang berarti bahwa testis sudah

masak (Soeminto, 2002).

Morfologi spermatozoa pada ikan berbeda dengan manusia. Manusia memiliki

spermatozoa yang berkepala lonjong (dilihat dari atas) dan pyriform (dilihat dari

samping). Lebih tebal dekat leher dan menggepeng ke ujung. Panjang kepala 4-5

mikro meter dan lebar 2,5-3,5 mikro meter. Panjang ekor seluruhnya sekitar 55 miro

meter dan tebalnya berbagai dari 1 mikro meter dekat pangkal ke 0,1 mikro meter

dekat ujung. Ikan memiliki spermatozoa yang berflagelata dan tak berakrosoma.

Spermatozoa hasil suspensi testis keadaannya sama dengan spermatozoa hasil

sripping. Kepala berbentuk bulan, dengan diameter sekitar 2,86-0,16 mikro meter,

panjang sekitar 25,86 mikro meter. Pada pangkal flagella ada bangunan seperti

cincin, annulus. Spermatozoa yang normal terdiri dari kepala, leher, bagian tengah

dan ekor yang utuh, serta ada penyimpangan-penyimpangan dari struktur

spermatozoa ikan yang normal. Kerusakan yang terjadi pada milt yang disimpan

pada umumnya adalah ekor tanpa kepala, ekor tidak utuh atau kepala dan ekor putus

(Jamienson, 1991).


16/21

Macam-macam spermaozoa menurut stukturnya ada dua macam yaitu yang

memiliki flagel dan tidak. Spermatozoa yang tidak berflagel terdapat pada beberapa

jenis avetebrata, sedangkan yang memiliki flagel terdapat pada hewan vetebrata,

termasuk ikan (Yatim, 1990). Sel-sel sperma sebenarnya hanya merupakan inti yang.

Sperma dihasilkan dalam testis oleh sel-sel khusus yang disebut dengan

spermatogonia. Sebuah sel sperma terdiri atas kepala yang mengandung kromosom

dalam suatu keadaan kompak dan inaktif, leher yang merupakan daerah genting

sperma, di dalamnya terdapat sentriol depan dan bagian depan terdapat filamen

poros. Badan mengandung filament poros, mitokondria dan sentriol belakang

berbentuk cincin. Ekor terdiri dari dua daerah yakni bagian utama dan bagian ujung .

ekor sedikit mengandung sitoplasma, pada bagian ujung ekor sama sekali tidak

mengandung sitoplasma (Asmawi, 1981).

Djanuar (1985) menyatakan bahwa pada umumnya semua penyimpangan

morfologi dari kerangka normal spermatozoa dianggap sebagai bentuk-bentuk

abnormal. Abnormal ini diklasifikasikan dalam abnormalitas primer dan sekunder.

Abnormal primer disebabkan oleh gangguan dalam testis (kelainan spermatogenesis

di dalam tubuli seminiferus). Bentuk yang termasuk abnormalitas primer yaitu :

kepala berukuran kecil, kepala rangkap dan membunyai dua ekor. Abnormalitas

sekunder disebabkan karena perlakuan terlalu kasar, terlalu panas atau terlalu cepat

didinginkan. Bentuknya yaitu : kepala lepas, ekornya patah dan ekornya bergelung,

bengkok atau melipat.

Praktikum analisis sperma menggunakan larutan-larutan sebagai pendukung.

Larutan ringer dapat digunakan untuk memperpanjang viabilitas spermatozoa di

dalam milt menjadi sekitar 9-10 menit. Larutan george digunakan sebagai pencampur

milt spermatozoa dapat bereaksi, digunakan saat menghitung jumlah spermatozoa.


17/21

Larutan giemsa digunakan sebagai pewarna spermatozoa saat mengamati morfologi

spermatozoa, dimana sperma yang kecil dan transparan dapat terlihat lebih jelas

(Mulyadi, 1990).

Syarat pengenceran yang ideal adalah isotonik, mempunyai kemampuan

menyangga yang baik, mengandung nutrisi yang menstabilkan koloid-koloid dan anti

oksidan, anti bakteri serta mampu melindungi spermatozoa dari kejutan dingin.

Praktikum kali ini sperma ikan diencerkan dengan pengenceran 1000x dengan

menggunakan larutan ringer. Digunakannya larutan ringer karena larutan ini mudah

didapat dan relatif murah dan dapat mempertahankan viabiliti sperma selama satu

(Asmawi, 1981).

Semen atau milt yang cukup jumlahnya dan baik kualitasnya adalah salah satu

faktor yang harus tersedia agar proses fertilisasi terjadi secara baik bagi spesies ikan.

Beberapa studi sudah dapat mendeskripsikan karakteristik dari semen atau milt yang

berkualitas. Contohnya adalah daya tahan, motilitas dan komposisi cairan sperma.

Cairan sperma memiliki komposisi yang unik, yaitu terdiri dari komponen organik

dan anorganik. Kedua komponen tersebut sangat mempengaruhi kualitas dari

sperma. Contoh dari komponen-komponen tersebut adalah mineral (potasium,

sodium, magnesium, kalsium dan klorida), pH, protein, glukosa dan trigliserida.

Bagaimanapun, komposisi cairan semen, motilitas dan daya tahan spermatozoa

sangat mempengaruhi kemampuan spermatozoa itu sendiri dalam melakukan proses

fertilisasi nantinya (Hajirezaee et al., 2009).

Motilitas, viabilitas dan lama gerak spermatozoa sangat dipengaruhi persediaan

energi di dalam sel (Salisbury dan VanDemark, 1985). Spermatozoa dapat

menggunakan karbohidrat dari susunan gula sederhana secara langsung dalam bentuk

fruktosa untuk menghasilkan energi pada metabolismenya (Salisbury dan


18/21

VanDemark, 1985). Fruktosa diubah menjadi asam laktat dan energi dengan bantuan

enzim fruktolisin. Penggunaan fruktosa dalam pengencer sperma ikan dimaksudkan

untuk memberikan sumber energi yang dapat diubah menjadiATP untuk mendukung

motilitas, viabilitas dan lama gerak spermatozoa (Setyana et al., 2011)

Kelebihan reaktif oksigen spesies (ROS) dalam semen dapat berdampak pada

kesuburan sperma. Penetapan kualitas semen menggambarkan parameter dari

kelengkapan plasma seminal sperma. Stuktur testis dibebaskan bersih dan

spermatozoa tidak memenuhi kesatuan bentuk semua testis. Sperma motil tidak

berpengaruh dengan konsentrasi sperma karena seluruh waktu bertelur tidak

mengubah konsentrasi sperma (Sundadarajan et al., 2009).

Viabilitas adalah daya tahan spermatozoa atau telur untuk hidup, membuahi

dan dan dibuahi setelah dilepaskan dari induknya. Pada Ikan Nilem, viabilitas

spermatozoa dan telur hanya sekitar 5 menit setelah ejakulasi atau oviposisi. Hal ini

sangat mempengaruhi daya fertilitas telur ikan kerena telur dapat terbuahi apabila

viabilitas telur dan spermatozoa baik. Dengan sangat pendeknya waktu viabilitas ini

maka akan sulit dikembangkan manipulasi untuk reproduksi (Yatim, 1990).


19/21

IV. KESIMPULAN DAN SARAN

A.Kesimpulan

Berdasarkan hasil dan pembahasan sebelumnya dapat diambil kesimpulan

bahwa :

1 Warna sperma hasil striping pada ikan nilem (Osteochillus hasselti) adalah putihsusu, hal ini menunjukkan bahwa sperma ikan nilem yang digunakan pada

praktikum adalah sehat.

2 Volume hasil striping adalah 0,94 ml yang menunjukkan bahwa ikan nilem yangdigunakan unutk praktikum mengalami hypospermia.

3 Sperma ikan nilem yang diamati menunjukkan pH 7 bersifat netral.4 Perhitungan motilitas spermatozoa ikan nilem diperoleh jumlah spermatozoa

yang motil adalah 80%, sedangkan jumlah spermatozoa yang non motil adalah

20%. Hal ini menunjukkan bahwa spermatozoa ikan nilem yang diamati

normal.

5 Viabilitas spermatozoa ikan nilem 20 menit setelah ejakulasi.6 Hasil perhitungan jumlah spermatozoa 3,35 1010spermatozoa/ml semen.

B. Saran

Pengamatan melalui mikroskop, morfologi sperma kurang begitu jelas hanya

terlihat bagian kepala, ini dimungkinkan adanya keabnormalan pada ekor

spermatozoa. Sedangkan untuk perhitungan sperma pada haemocytometer harus

benar-benar teliti.


20/21

DAFTAR REFERENSI

Asmawi. 1981.Pemeliharaan Ikan dalam Keramba. Gramedia, Jakarta.

. 1989.Pemeliharaan Ikan dalam Keramba. Gramedia, Jakarta.

Brotowidjoyo, Mukayat Djarubito. 1990.Zoologi Dasar. Erlangga, Jakarta.

Christopher Pateman-Jones, Maria Berica Rasotto, Martin Reichard, Caiping Liao,

Huanzhang Liu, Grzegorz ZieBa Dan Carl Smith. 2010. Variation in male

reproductive traits among three bitterling fishes (Acheilognathinae:

Cyprinidae) in relation to the mating system. (103) : 622632.

Condro, Herdianto Sapto, A. Shofy Mubarak dan Laksmi Sulmartiwi. 2012.

Pengaruh Penambahan Madu Pada Media Pengenceran NaCl FisiologisDalam Proses Penyimpanan Sperma Terhadap Kualitas Sperma Ikan Komet

(Carassius auratus auratus). 1(1) : 112.

Cosson J, Billard R, Cibert C, Dreanno C. 1999.Ionic Factor regilating the Motility

of fish sperm. Villefranch, France.

Djanuar, R. 1985. Fisiologi Reproduksi dan Inseminasi pada Sapi. Gajah Mada

University Press, Yogyakarta.

Djuhanda, T. 1981.Pengantar Anatomi Perbandingan. Armico, Bandung.

Hajirezaee, S, B.M Amiri and A.R Mirvaghefi. 2009. Effects of Stripping Frequency

on Semen Quality of Endongered Caspian Brown Trout, Salmo trutta caspius .

American Journal of Veterinary Sciences 4 (3): 65-71.

Huet, M. 1971. Text Book of Fish Culture Breeding and Cultiation of Fish. Fishing

News Book Ltd, England.

Meirnawati, Setyana, Laksmi Sulmartiwi dan Hari Suprapto. 2011. Daya Fertilisasi

Sperma Beku Ikan Tawes (Puntius javanicus) Setelah Disimpan Dengan

Fruktosa Dan Tris Aminomrethan. 88-89.

Mulyadi, Mukhsin dan Jayadi . 1990. Budidaya Ikan Mas, Nila, Tawes, Gurame,

Nilem. CV Yasaguna, Jakarta.

Rugh, R. 1962.Experimental Emrbryology. Burger Publishing Company, Minnesota.

Setiadi. 2011.Anatomi Ikan Nilem (Osteochillus hasselti).http://aepcute .blogspot.

com /2011/02/anatomi-ikan-nilem-osteochillus.html. Di akses tanggal 9

Oktober 2012.


21/21

Soeminto. 2002. Pembentukan Ikan Jantan Homogamet (XX) lewat Ginosenis dan

Pemberian Andriol pada Ikan Nilem (Osteocillus hasselti CV). Fakultas

Biologi Unsoed, Purwokerto.

Sumantadinata, K. 1981. Pengembangan Ikan-Ikan Peliharaan Di Indonesia. Sastra

Hudaya, Jakarta.

Sundararajan V, Pharm M, Singh G, Gupta N.P,Kumar R, Deecaraman M and Dada

R. 2009. Correlation of sperm morphology and oxidative stress in infertile

men. (7): 29-34.

Yatim, W. 1990. Embryologi untuk Mahasiswa Biologi dan Kedokteran. Tarsito ,

Bandung.

laporan_aspi.docx

Documents