肠道葡萄糖转运载体研究进展

5
ReviewPapers · 2009年 第45卷 第3期 —— 收稿日期:2007-05-07;修回日期:2007-09-15 基金项目: “国家重点基础研究发展计划”(973)(2004CB117501); 广东省自然科学基金(05300836) 作者简介:黄志毅(1978-),男,博士研究生 *通讯作者 要: -葡萄糖是机体的主要能源物质,对机体代谢与内环境稳态有非常重要的作用。葡萄糖的吸收主要通 过位于肠黏膜上皮细胞的两类葡萄糖转运载体家族来完成。Na + 与SGLTs的结合促使载体与葡萄糖的结合,葡萄 糖顺着 Na + 的浓度梯度进入细胞;当细胞内葡萄糖浓度升高后,葡萄糖顺着浓度差通过肠黏膜上皮细胞基底膜 GLUT2经易化扩散转运进入血液。本文综述了肠道不同葡萄糖转运载体家族的成员和分类,介绍了其结构特征、 功能特性及其组织分布;并详细阐述了肠道葡萄糖转运载体基因表达的影响因素。 关键词: 葡萄糖转运载体;结构;综述;功能;基因表达;肠道 中图分类号: S852.2 文献标识码: A 文章编号: 0258-7033 2009 03-0057-04 肠道葡萄糖转运载体研究进展 黄志毅,王修启,邹仕庚,冯定远 ! (华南农业大学动物科学学院,广东广州 510642) 营养物质的吸收是动物生长、繁殖及其一切生 命活动的基础。其中,葡萄糖的吸收与利用是极为 重要的一环。可消化的糖类进入肠道后,被酶分解 为多种单糖和寡糖。单糖主要有葡萄糖、半乳糖和 果糖,其中葡萄糖占 80%。-葡萄糖是可被肠黏膜 上皮细胞转运的单糖,是机体的主要能源物质,主要 依靠肠黏膜上皮细胞的两类转运载体—钠 /葡萄糖 转运载体(sodium/glucosecotransporter,SGLT)家 族 和 葡萄糖转运载体(glucosetransporter,GLUT)家族进入 机体。肠道葡萄糖转运载体对葡萄糖的吸收、葡萄 糖内环境稳态起着非常重要的作用,本文着重阐述 肠道葡萄糖转运载体的结构特征、功能特性及影响 其基因表达的因素。 结构特征 1.1 SGLT家族 SGLT家族或称 SSF家族(sodium: solutesymporter)的成员超过450个,包括SGLTs和 SMIT(钠/肌醇转运载体)等。在这些载体中,在肠道 中主动转运葡萄糖的有 SGLT1、SGLT3,其在不同物 种的动物中均有表达。大约有 230个 SGLT转运载 体的结构相 似,SGLT1是这个大家族里研究得最多 最彻底也是最基础的基因,因此它的结构最具有代 表性。研究表明,SGLT1是分子量约为 75ku的膜蛋 白,由662~670个氨基酸组成,在不同物种中有较高 的同源性。其二级结构由 14个跨膜的 螺旋 EnvironmentalEnrichmentandFarmAnimalWelfare "#$% &'()*+,-)./ 0'()+12)* ! 3#4 5'()+612)* 74)89'9-9: 2; <)'=(> 3?':)?:"1'):8: <?(@:=, 2; <*A'?->9-A(> 3?':)?:839(9: B:, &(C2A(92A, 2; <)'=(> %-9A'9'2)D:'E')* FGGFHI"1')(J Abstract: K1'8 (A9'?>: ')9A2@-?:@ 91: @:=()@ 2; $-A2L:() /)'2) 2) :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 ') ;(A= ()'=(> L:)8A:M':N:@ 91: :;;:?98 2; :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 2) ;(A= ()'=(>8 C:1(M'2-A8L1,8'2>2*, ()@ =:(9 O-(>'9,8-==(A'6:@ (@M()?:@ A:8:(A?18 2) :)A'?1=:)9 =(9:A'(>8()(>,8:@ 82=: ?(-8:8 N1, :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 ;('>:@ 92 (?9 N:>> PQ: C:>':M:@ 91(9 91: A:8:(A?1 =:912@8 2; :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 )::@ =2A: '=LA2M:=:)9P Keywords: :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9R ;(A= ()'=(> N:>;(A:R ( A:M':NR :)A'?1=:)9 =(9:A'(>8 57

Upload: zhang-haichao

Post on 18-Mar-2016

235 views

Category:

Documents


0 download

DESCRIPTION

为多种单糖和寡糖。单糖主要有葡萄糖、半乳糖和 机体。肠道葡萄糖转运载体对葡萄糖的吸收、葡萄 糖内环境稳态起着非常重要的作用,本文着重阐述 肠道葡萄糖转运载体的结构特征、功能特性及影响 最彻底也是最基础的基因,因此它的结构最具有代 依靠肠黏膜上皮细胞的两类转运载体—钠 / 葡萄糖 体的结构相似, S G L T 1是这个大家族里研究得最多 其基因表达的因素。 葡萄糖以外,肠道葡萄糖转运载体还具有单向输送 泵的作用不依赖于渗透压的梯度,甚至能逆渗透压 梯度进行。钠与葡萄糖的共同转运与水的转运存在 的存在是葡萄糖吸收与转运的主要途径之一,同时 数值上与其他已知的水通道相近。这种通道功能可 S G L T 1的通道功能。由于在小肠黏膜上皮细胞刷状 罕见的常染色体隐性遗传先天性葡萄糖代谢异常疾 有效地治疗了腹泻。

TRANSCRIPT

Page 1: 肠道葡萄糖转运载体研究进展

ReviewPapers· 综 述2009年 第45卷 第3期

———————————————————————————

收稿日期:2007-05-07;修回日期:2007-09-15

基金项目:“国家重点基础研究发展计划”(973)(2004CB117501);

广东省自然科学基金(05300836)

作者简介:黄志毅(1978-),男,博士研究生

*通讯作者

摘 要:!

-葡萄糖是机体的主要能源物质,对机体代谢与内环境稳态有非常重要的作用。葡萄糖的吸收主要通

过位于肠黏膜上皮细胞的两类葡萄糖转运载体家族来完成。Na+与SGLTs的结合促使载体与葡萄糖的结合,葡萄

糖顺着Na+的浓度梯度进入细胞;当细胞内葡萄糖浓度升高后,葡萄糖顺着浓度差通过肠黏膜上皮细胞基底膜

GLUT2经易化扩散转运进入血液。本文综述了肠道不同葡萄糖转运载体家族的成员和分类,介绍了其结构特征、

功能特性及其组织分布;并详细阐述了肠道葡萄糖转运载体基因表达的影响因素。

关键词:葡萄糖转运载体;结构;综述;功能;基因表达;肠道

中图分类号:S852.2 文献标识码:A 文章编号:0258-7033(2009)03-0057-04

肠道葡萄糖转运载体研究进展黄志毅,王修启,邹仕庚,冯定远 !

(华南农业大学动物科学学院,广东广州 510642)

营养物质的吸收是动物生长、繁殖及其一切生

命活动的基础。其中,葡萄糖的吸收与利用是极为

重要的一环。可消化的糖类进入肠道后,被酶分解

为多种单糖和寡糖。单糖主要有葡萄糖、半乳糖和

果糖,其中葡萄糖占80%。!

-葡萄糖是可被肠黏膜

上皮细胞转运的单糖,是机体的主要能源物质,主要

依靠肠黏膜上皮细胞的两类转运载体—钠 /葡萄糖

转运载体(sodium/glucosecotransporter,SGLT)家族和

葡萄糖转运载体(glucosetransporter,GLUT)家族进入

机体。肠道葡萄糖转运载体对葡萄糖的吸收、葡萄

糖内环境稳态起着非常重要的作用,本文着重阐述

肠道葡萄糖转运载体的结构特征、功能特性及影响

其基因表达的因素。

!

结构特征

1.1 SGLT家族 SGLT家族或称 SSF家族(sodium:

solutesymporter)的成员超过 450个,包括 SGLTs和

SMIT(钠/肌醇转运载体)等。在这些载体中,在肠道

中主动转运葡萄糖的有 SGLT1、SGLT3,其在不同物

种的动物中均有表达。大约有 230个 SGLT转运载

体的结构相似,SGLT1是这个大家族里研究得最多

最彻底也是最基础的基因,因此它的结构最具有代

表性。研究表明,SGLT1是分子量约为75ku的膜蛋

白,由662~670个氨基酸组成,在不同物种中有较高

的同源性。其二级结构由 14个跨膜的!

螺旋

EnvironmentalEnrichmentandFarmAnimalWelfare

"#$% &'()*+,-)

,./ 0'()+12)*

!,3#4 5'()+612)*

74)89'9-9: 2; <)'=(> 3?':)?:

,"1'):8: <?(@:=, 2; <*A'?->9-A(> 3?':)?:8

,39(9: B:, &(C2A(92A, 2; <)'=(> %-9A'9'2)

D:'E')* FGGFHI

,"1')(J

Abstract:!K1'8 (A9'?>: ')9A2@-?:@ 91: @:=()@ 2; $-A2L:() /)'2) 2) :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 ') ;(A= ()'=(> L:)8

A:M':N:@ 91: :;;:?98 2; :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 2) ;(A= ()'=(>

’8 C:1(M'2-A8

,L1,8'2>2*, ()@ =:(9 O-(>'9,

8-==(A'6:@ (@M()?:@ A:8:(A?18 2) :)A'?1=:)9 =(9:A'(>8

,()(>,8:@ 82=: ?(-8:8 N1, :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 ;('>:@ 92

(?9 N:>> PQ: C:>':M:@ 91(9 91: A:8:(A?1 =:912@8 2; :)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9 )::@ =2A: '=LA2M:=:)9P

Keywords:!:)M'A2)=:)9(> :)A'?1=:)9R ;(A= ()'=(> N:>;(A:R ( A:M':NR :)A'?1=:)9 =(9:A'(>8

!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!

57

Page 2: 肠道葡萄糖转运载体研究进展

综 述·ReviewPapers 2009年 第45卷 第3期

(transmembranesegments,TMS1~TMS14)组成(如图

1A所示)[1],N末端位于TMS1的细胞外,C末端位于

TMS14的胞质边缘。靠近C末端有5个连续的跨膜

!

螺旋,是葡萄糖结合与转运的结构域(称为 C5结

构域),在连接 TMS6与 TMS7的细胞外环中存在一

个糖基化位点。对其保守氨基酸残基进行点突变是

研究其结构与功能常用的方法之一,用该方法的研

究结果表明,TMS9中的精氨酸残基对葡萄糖的转运

起关键作用;在 TMS4(Cys255)和 TMS7(Cys511)间

的外部环中分别有两个半胱胺酸残基,它们形成了

一个二硫键,这个二硫键对载体空载时的构象变化

起重要作用[2]。

! "

图! "#$%&

和#$'%(

结构示意图

1.2 GLUT家族 GLUT家族包括了 14个成员,根

据其序列的同源性和功能特点分为3个亚类。其中,

表达在肠道转运葡萄糖的有第 1亚类中的 GLUT2

和第 3亚类中的GLUT7。研究表明,GLUT家族的二

级结构基本相似,均由 12个跨膜的 α 螺旋(Trans-

membrane,TM1~TM12)组成(如图 1B所示),N端和

C端均在细胞内,糖基化位点 Asn45位于 TM1和

TM2间的胞外环中 [3]。当 TM7中的 Gln突变为 Leu

时,载体对葡萄糖的亲和力降低;TM11中 Trp或者

Asn的突变大大降低载体的活性,由此可以推测

TM7和 TM11在空间上距离非常近,可能是结合与

转运葡萄糖的位点[4]。

)

功能特性

研究表明,SGLT1的突变会引发 GGM疾病(glu-

cose-galactosemalabsorption)。先天性缺乏 GLUT2基

因也会导致 FBS(fanconi-bickelsyndrome),这是一种

罕见的常染色体隐性遗传先天性葡萄糖代谢异常疾

病。由此可见葡萄糖转运载体的重要性,但除转运

葡萄糖以外,肠道葡萄糖转运载体还具有单向输送

Na+、运输水和尿素等功能,这些功能被称之为葡萄

糖转运载体的多功能性。

2.1 转运葡萄糖的机理 由于细胞外钠离子的浓

度远远高于细胞内,使得 Na+易于与 SGLTs载体上

带负电荷的位点相结合,从而引起该载体构象发生

改变,对葡萄糖的亲和力增强,从而在结合位点与葡

萄糖结合,形成 Na+-载体 -葡萄糖复合物,葡萄糖

在细胞内外 Na+浓度差的驱动下进入细胞。释放出

Na+和葡萄糖后,载体恢复到最初的构象,进入下一

个转运循环,钠离子也被钠钾泵泵出到细胞外,以维

持细胞内外的浓度差。当细胞内葡萄糖浓度升高以

后,葡萄糖便顺着浓度差通过肠黏膜上皮细胞基底

膜的GLUT2经易化扩散转运进入血液。

然而,随后的研究发现肠黏膜上皮细胞刷状缘

膜上也有 GLUT2的存在,因此,有人提出顶膜

GLUT2也可以从肠腔吸收葡萄糖的观点,尤其表现

在餐后顶膜 GLUT2对葡萄糖的大量吸收[5]。随着研

究的深入与扩展,越来越多的证据表明顶膜 GLUT2

的存在是葡萄糖吸收与转运的主要途径之一,同时

对糖尿病的治疗提供了新的思路[6]。

Caccia等[7]对昆虫肠道葡萄糖吸收的研究结果

表明,顶膜上也同时存在 SGLT1和 GLUT2,因此他

认为昆虫和哺乳动物肠道葡萄糖的吸收机制基本上

是一致的。

2.2 水的转运 实验证明,在卵母细胞表达系统

中,SGLT1是水和小分子亲水物质的通道,其效率和

方向取决于膜内外渗透压。尿素通道位于 SGLT1的

C5结构域,该通道和水通道的活化能为 21kJ/mol,

数值上与其他已知的水通道相近。这种通道功能可

被 SGLT1的抑制剂———根皮苷所抑制,直接证明了

SGLT1的通道功能。由于在小肠黏膜上皮细胞刷状

缘膜上没有水通道和尿素转运载体,因此 SGLT1对

小肠水和尿素的跨膜转运具有非常重要的作用[8]。

SGLT1还具有水泵作用。在非洲蟾蜍卵母细胞

表达系统中,随着环境葡萄糖水平的增加,SGLT1的

活性也增强,进而引起对水吸收的增强,而且这种水

泵的作用不依赖于渗透压的梯度,甚至能逆渗透压

梯度进行。钠与葡萄糖的共同转运与水的转运存在

明显的数量关系,2个 Na+与 1个葡萄糖分子共同

转运时,也伴随着230~380个水分子同时被转运[9]。

这也是在传染性腹泻时采用口服葡萄糖治疗的原

因,肠道吸收葡萄糖的同时也吸收肠腔里的水,从而

有效地治疗了腹泻。

2.3 葡萄糖感受器 猪 SGLT3(pSGLT3)在肾脏和

小肠等部位均有表达,只转运葡萄糖,对半乳糖的亲

和力极低。但近来的研究表明,人 SGLT3不转运葡

萄糖,而是一个葡萄糖转运的传感器[10]。人 SGLT3在

58

Page 3: 肠道葡萄糖转运载体研究进展

ReviewPapers· 综 述2009年 第45卷 第3期

骨骼肌和大脑等部位表达,在神经内分泌细胞中,葡

萄糖和!

-甲基 -!

-葡萄糖刺激了胰高血糖素样肽

的分泌,并能够被根皮苷所抑制,这为人 SGLT3参

与神经内分泌调节提供了证据。人SGLT3也在小肠

神经系统的胆碱能神经元中表达,因为胆碱能神经

元参与餐后肠的反射运动调节,因而认为人 SGLT3

对控制小肠运动有重要的影响[8]。

不仅如此,餐后 GLUT2从胞浆向顶膜定位的趋

向是由 PKC(蛋白激酶 C)激活的,而 PKC的活化受

到 SGLT1的控制,因而认为 SGLT1也是顶膜 GLUT2

趋向的葡萄糖感受器[6]。SGLT1作为葡萄糖的感受器

迅速调节顶膜 GLUT2的活性是葡萄糖吸收的短期

调控,并与餐后肠腔内葡萄糖浓度变化相适应,这保

证了餐后机体能够大量地吸收葡萄糖。

!

葡萄糖转运载体在肠道分布的特异性

葡萄糖转运载体在肠道的不同部位表达水平是

不相同的。Garriga等[11]用 WesternBlotting的方法研

究了白来航鸡肠道 SGLT1的组织分布,结果表明空

肠的表达丰度显著高于直肠。王修启等[12]应用相对

定量 RT-PCR (reversetranscription-polymerasechain

reaction)的方法研究了 AA(ArborAcre)鸡肠道 SGLT1

和 GLUT2mRNA表达的组织特异性,结果表明随着

肠道空间位置的后移,SGLT1mRNA的丰度逐步降

低,十二指肠SGLT1mRNA的丰度极显著高于结肠

和直肠;定性研究显示,十二指肠与空肠 GLUT2mR-

NA丰度高于回肠和结肠直肠。这些研究结果提示

葡萄糖在肠道的吸收主要发生在小肠的前段而非后

段。

"

影响葡萄糖转运载体表达的因素

大量研究表明,葡萄糖转运载体的活性及其基

因表达受到多种因素的调节。如日粮的营养水平和

激素水平等。

4.1 昼夜节律 小肠 SGLT1的表达明显受到昼夜

节律的调节。研究表明,10:00~11:00大鼠空肠

SGLT1mRNA表达水平是 16:00~17:00时的 8倍;

尽管夜晚的采食量提高了,但在 15:00时左右完全

没有进食的情况下,此时空肠葡萄糖的转运、SGLT1

mRNA和蛋白水平是晚上的 2倍[13],这表明肠内葡

萄糖转运的昼夜节律调节完全不同于日粮的调节。

因而可能存在两条调控葡萄糖转运载体表达的途

径,其一是利用淀粉日粮多糖水平的慢性变化作为

信号,产生长期的葡萄糖转运调节;二是根据每日肠

腔葡萄糖水平的提高而产生每日的相适应变化,是

一种短期的调节机制。

4.2 日粮 日粮 Na+水平对 SGLT1表达的影响参

见王修启等[14]的综述。但日粮中碳水化合物的含量

也明显影响葡萄糖转运载体的表达。短期饲喂高水

平的淀粉多糖日粮,可以提高小鼠小肠葡萄糖的吸

收和 SGLT1的活性和蛋白密度[15];长期饲喂高水平

的多糖日粮,可以上调大鼠 SGLT1mRNA和 GLUT2

mRNA的表达[16]。这提示由日粮因素引起的葡萄糖

转运载体的表达是翻译或翻译后水平的调控。

日粮中糖类的成分也可明显影响葡萄糖转运载

体的表达。与饲喂高水平多糖或者不含多糖日粮相

比,饲喂二糖(蔗糖)日粮可上调大鼠 SGLT1mRNA

和 GLUT2mRNA的表达[17];与此同时,饲喂单糖(葡

萄糖和果糖)大鼠空肠 GLUT2蛋白丰度远远高于饲

喂标准日粮或者 PBS盐溶液[18]。这表明单糖或者二

糖可明显提高葡萄糖转运载体的表达。

影响营养物质消化利用的添加剂也可对葡萄糖

转运载体的表达产生影响。王修启等[19]的研究表明,

在小麦基础日粮中添加木聚糖酶,可以上调鸡十二

指肠SGLT1mRNA的表达,但不影响 GLUT2mRNA

的表达。

4.3 发育阶段 不同年龄不同品种的动物,其葡萄

糖转运载体的表达有所差异。Barfull等[20]研究发现,

白色来航鸡空肠SGLT1mRNA表达在 2日龄和 5周

龄时无甚差别,但在蛋白水平上,2日龄明显比 5周

龄要高,提示年龄对 SGLT1表达的影响是转录后水

平的调控。但对 AA鸡和黄羽肉鸡十二指肠 SGLT1

mRNA和 GLUT2mRNA发育规律的系统研究 [21],结

果表明 AA鸡和黄羽肉鸡 SGLT1mRNA表达,从

2~30d不断升高,44d下降,55d回升;AA鸡和黄

羽肉鸡GLUT2mRNA的表达在 2~30d呈现升高的

趋势,AA鸡 44d和 58dGLUT2mRNA的表达显著

低于 16d和 30d("

<0.05),而黄羽肉鸡 GLUT2

mRNA的表达,58d显著高于 2、16d和 30d("

0.05)。在大鼠的研究上,断奶后和成年大鼠空肠

SGLT1蛋白丰度明显高于哺乳期[22]。有关发育阶段

对 SGLT1和 GLUT2mRNA和蛋白水平基因表达的

影响机理,还需要更多的直接证据支持。

4.4 生理状态 动物处于不同生理状态如患病时,

59

Page 4: 肠道葡萄糖转运载体研究进展

综 述·ReviewPapers 2009年 第45卷 第3期

其葡萄糖转运载体的表达也有差异,糖尿病人空肠

SGLT1、GLUT2mRNA表达和 SGLT1蛋白水平远远

高于正常人[23]。应激明显抑制大鼠对葡萄糖的吸收,

其 SGLT1蛋白的表达没有影响,但是严重抑制了

GLUT2蛋白的表达[24]。

4.5 体液因素 研究发现,体内的多种激素均明显

影响葡萄糖转运载体的表达。表皮生长因子(epi-

dermalgrowthfactor,EGF)可增加肠道刷状缘膜的表

面积,并通过增加顶膜SGLT1的数量而提高兔空肠

葡萄糖吸收的最大速度[25]。醛固酮和精氨酸加压素等

激素对葡萄糖转运载体的表达见王修启等[14]的综述。

4.6 其他因素 影响葡萄糖转运载体基因表达的

因素还有很多,比如肠黏膜上皮细胞沿肠绒毛轴的

分化及其细胞周期[15],均显著影响机体对葡萄糖的

吸收、葡萄糖转运载体基因的表达和机体葡萄糖内

环境的稳态。

!

结 语

肠道葡萄糖的吸收与其转运载体密切相关,研

究其基因的表达与动物营养物质吸收的关系,对于

促进动物的生产具有重要意义。以葡萄糖作为药物

媒介被葡萄糖转运载体主动转运进入机体已是生物

医药研究的发展趋势。对葡萄糖转运载体的结构、

功能及其表达调节因素进一步的研究,其结果对于

推动各个学科(生理学、分子生物学、医学等)的发

展,促进畜牧生产,拓宽生物医药开发的途径具有重

大的现实意义。

参考文献:

[1]! !QuickM,TomasevicJ,WrightEM.Functionalasymmetryofthe

humanNa+/glucosetransporter(hSGLT1)inbacterialmembrane

vesicles[J].Biochemistry,2003,42:9147-9152.

[2]! ! GagnonDG,BissonnetteP,LapointeJY.Identificationofa

DisulfideBridgeLinkingtheFourthandtheSeventhExtracellu-

larLoopsoftheNa+/GlucoseCotransporter[J].JGenPhysiol,

2006,127:145-158.

[3]! !MuecklerM,CarusoC,BaldwinSA,!" #$

.Sequenceandstruc-

tureofahumanglucosetransporter[J].Science,1985,229:

941-945.

[4]! !BellGI,BurantCF,TakedaJ,!" #$

.Structureandfunctionof

mammalianfacilitativesugartransporters[J].JBiolChem,1993,

268:19161-19164.

[5]! ! KellettGL.Thefacilitatedcomponentofintestinalglucoseab-

sorption[J].JPhysiol(Lond),2001,531:585-595.

[6]! !KellettGL,Brot-LarocheE.ApicalGLUT2:amajorpathwayof

intestinalsugarabsorption[J].Diabetes,2005,54:3056-3062.

[7]! !CacciaS,CasartelliM,GrimaldiA,!" #$

.Theunexpectedsimi-

larityofintestinalsugarabsorptionbySGLT1andapicalGLUT2

inaninsect(Aphidiuservi,Hymenoptera)andmammals[J].Am

JPhysiolRegulIntegrCompPhysiol,2007,292:R2284-

R2291.

[8]! !WrightEM,LooDDF,HirayamaBA,!" #$

.Surprisingversa-

tilityofNa+-glucosecotransporters:SLC5[J].Physiology,2004,

19:370-376.

[9]! !ZeuthenT,BelhageB,ZeuthenE.WatertransportbyNa+-cou-

pledcotransportersofglucose(SGLT1)andofiodide(NIS).The

dependenceofsubstratesizestudiedathighresolution[J].J

Physiol,2006,570:485-499.

[10]! Diez-SampedroA,HirayamaBA,OsswaldC,!" #$

.Aglucose

sensorhidinginafamilyoftransporters[J].PNAS,2003,100:

11753-11758.

[11]!GarrigaC,RoviraN,MoretoM,!" #$

.ExpressionofNa+-D-glu-

cosecotransporterinbrush-bordermembraneofthechickenin-

testine[J].AmJPhysiolRegulIntegrCompPhysiol,1999,276:

R627-631.

[12]!王修启,谭会泽,冯定远,等.鸡肠道 SGLT1和 GLUT2mR-

NA表达的组织特异性研究 [J].畜牧兽医学报,2006,37

(1):12-17.

[13]!TavakkolizadehA,BergerUV,ShenKR,!" #$

.Diurnalrhyth-

micityinintestinalSGLT-1function,Vmax,andmRNAexpres

siontopography[J].AmJPhysiolGastrointestLiverPhysiol,2001,

280:G209-215.

[14]!王修启,陈杰.钠葡萄糖共转运载体(SGLT1)研究进展[J].中

国畜牧兽医,2003,30:24-26.

[15]! FerrarisRP,DiamondJM.Crypt/VillusSiteofSubstrate-De-

pendentRegulationofMouseIntestinalGlucoseTransporters[J].

PNAS,1993,90:5868-5872.

[16]! ReimerRA,FieldCJ,McBurneyMI.Ontogenicchangesin

proglucagonmRNAinBBdiabetesproneandnormalratsweaned

ontoachowdiet[J].Diabeologia,1997,40:871-878.

[17]!KishiK,TanakaT,IgawaM,!" #$

.Sucrase-isomaltaseandhex-

osetransportergeneexpressionsarecoordinatelyenhancedbydi-

etaryfructoseinratjejunum[J].JNutr,1999,129:953-956.

[18]!GouyonF,CaillaudL,CarriereV,!" #$

.Simple-sugarmealstar-

getGLUT2atenterocyteapicalmembranestoimprovesugarab-

sorption:astudyinGLUT2-nullmice[J].JPhysiol,2003,552:

823-832.

[19]!王修启,张兆敏,张磊,等.日粮添加木聚糖酶对肉鸡小肠

葡萄糖吸收及其转运基因表达影响[J]农业生物技术学报,

2005,13:497-502.

[20]! BarfullA,GarrigaC,MitjansM,!" #$

.Ontogeneticexpression

andregulationofNa+-D-glucosecotransporterinjejunumofdo-

mesticchicken [J].Am JPhysiolGastrointestLiverPhysiol,

60

Page 5: 肠道葡萄糖转运载体研究进展

ReviewPapers· 综 述2009年 第45卷 第3期

AdvanceinGlucoseTransportersinIntestine

!"#$% &'()*(+ ,#$% -(.)/(+ &0" 1'()2342+ 56$% 7(42)*.84

9

:;<==323 <> #4(?8= 1@(34@3+ 1<.A' ;'(48 #2B(@.=A.B8= "4(C3BD(A*+ %.842E<42 %.842F'<. GHIJKL+ ;'(48M

Abstract:7)2=.@<D3 (D A'3 ?8(4 D<.B@3 <> 343B2* (4 <B284(D?D 84E N=8*D 8 @34AB8= B<=3 (4 ?3A8O<=(D? 84E @3==.=8B

'<?3<DA8D(DP %=.@<D3 8OD<BNA(<4 (D @<)?3E(8A3E O* AQ< >8?(=(3D <> 2=.@<D3 AB84DN<BA3B =<@8A3E (4 A'3 34A3B<@*A3D <> A'3

(4A3DA(43P %=.@<D3 (D >(BDA AB84DN<BA3E (4A< A'3 3N(A'3=(.? O* 1<E(.?R%=.@<D3 ;<AB84DN<BA3BD S1%TUDV 8>A3B (A '8E O334

O<.4E O* $8

W

84E A'(D AB84D@3==.=8B N8A'Q8* (D N<Q3B3E O* 8 E<Q4'(== 2B8E(34A <> $8

W

8@B<DD A'3 8N(@8= ?3?OB843P U'34+

A'3 8@@.?.=8A3E 2=.@<D3 (4 A'3 34A3B<@*A3D+ .N'(== (AD @<4@34AB8A(<4 2B8E(34A Q(A' >8@(=(A8A3E E(>>.D(<4+ (D AB84DN<BA3E O*

%=.@<D3 UB84DN<BA3B L :%T"ULV =<@8A3E (4 A'3 O8D<=8A3B8= ?3?OB843 (4A< A'3 O=<<EP U'3 [email protected] 84E >.4@A(<4 <> A'3D3

2=.@<D3 AB84DN<BA3B >8?(=(3D 8D Q3== 8D 2343 3XNB3DD(<4 B32.=8A(<4 O* D<?3 >8@A<BD 8B3 A'3 ?8(4 ><@.D3D <> A'(D B3C(3QP

Keywords:2=.@<D3 AB84DN<BA3BDY [email protected] 8 B3C(3QY >.4@A(<4Y 2343 3XNB3DD(<4Y (4A3DA(43

2002,282:G559-564.

[21]!王修启,谭会泽,冯定远,等.不同基因型肉鸡十二指肠

SGLT1和 GLUT2mRNA表达的发育性变化[J].农业生物技

术学报,2006,14:334-340.

[22]!KhanJM,WingertzahnMA,TeichbergS,!" #$

.Developmentof

theintestinalSGLT1transporterinrats[J].MolGenetMetab,

2000,6(9):233-239.

[23]!DyerJ,WoodIS,PalejwalaA,!" #$%

Expressionofmonosaccha-

ridetransportersinintestineofdiabetichumans[J].AmJPhysiol

GastrointestLiverPhysiol,2002,282:G241-248.

[24]!ShepherdEJ,HelliwellPA,MaceOJ,!" #$

.Stressandgluco-

corticoidinhibitapicalGLUT2-traffickingandintestinalglucose

absorptioninratsmallintestine[J].JPhysiol,2004,560:

281-290.

[25]! ChungBM,WongJK,HardinJA,!" #$

.Roleofactinin

EGF-inducedalterationsinenterocyteSGLT1expression[J].Am

JPhysiol,1999,276:G463-469.

添加应用,对其适应性具有相当严格的要求,既要在

整个饲料加工中表现良好的耐受性,贮存时保持相当

的稳定性,同时又要求在动物肠道整个生理环境下发

挥出优良的生物活性作用。因此,对于木聚糖酶来说,

其酶学特性决定其是否在饲料工业中具有显著的应

用效果。在评价饲料用酶制剂的应用潜力及饲用效果

时,应从热稳定性、耐酸碱性、对蛋白酶的耐受性及贮

存稳定性等几方面来综合评估,才能科学预测木聚糖

酶的使用效价,为科学合理选择饲用木聚糖酶提供可

靠的参考依据,避免目前市场上简单依据酶活进行选

择木聚糖酶产品的单一性做法。

参考文献:

ZH[

李莲+

罗长才P

饲用酶制剂中木聚糖酶酶学性质的研究Z\[P

饲料工业+ LII]+ LK:HV^ H_)LHP

ZL[

杨会涛+

陈代文+

田刚+

等P

木聚糖酶的酶学性质研究Z\[P

国畜牧杂志+ LII`+ K]SLHV^ G`)JIP

Z][

杨会涛+

陈代文+

余冰P N!

对木聚糖酶活性的影响Z\[P

饲料

博览+ LIIJ+

(`

)̂KL)KKP

ZK[

付生慧+

张宏福+

何瑞国P

木聚糖酶在制粒工艺中热稳定性

的研究Z\[P

饲料工业+ LIIG+ LJSH`V^ HG)H`P

ZG[

付五兵+

朱涛+

张勤良+

等P a8@(==.D D.OA(=(D

产木聚糖酶的酶

学特性及其在禽饲料中应用的初步研究Z\[P

饲料工业+

LIIG+ LJSHJV^ L`)]IP

ZJ[

詹志春P

饲用酶制剂稳定化技术研究Z\[P

粮食与饲料工业+

H__]+ K^ L`)L_P

!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!

!

!"#

!"

$

"

61